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      運動性心房損傷和纖維化發(fā)生過程中Smad基因和蛋白的表達變化

      2016-12-14 05:19:40王世強饒志堅馬曉雯
      體育科學 2016年11期
      關鍵詞:運動性心房纖維化

      王世強,常 蕓,饒志堅,馬曉雯

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      運動性心房損傷和纖維化發(fā)生過程中Smad基因和蛋白的表達變化

      王世強1,2,常 蕓2,饒志堅2,馬曉雯2

      目的:探討運動性心房纖維化發(fā)生過程中大鼠心房Smad信號通路調控分子的表達變化。方法:8周齡SD雄性大鼠48只,隨機分為安靜對照組和大強度運動組,每組又分為8周組、12周組和16周組,大強度組分別進行8周、12周和16周的跑臺運動。采用熒光定量PCR和Western Blot檢測心肌Smad-2、Smad-4和Smad-7 mRNA與蛋白的表達。結果:與安靜對照組相比,大強度組Smad-2的表達有增加趨勢,但無顯著性差異。16周大強度運動后,Smad-4 mRNA和蛋白的表達均顯著性增加(P<0.05,P<0.01)。Smad-4 mRNA的表達隨著時間的延長而增加,16周大強度組顯著高于8周大強度組(P<0.05)。12周和16周大強度運動后,Smad-7 mRNA和蛋白的表達均顯著性降低(P<0.05)。隨運動時間的延長,Smad-7 mRNA的表達逐漸降低,12和16周大強度組顯著低于8周大強度組(P<0.01)。結論:長期大強度運動導致大鼠心房Smad-4的表達持續(xù)上調,而Smad-7的表達進行性降低,各型Smad之間表達失調,可能是運動性心房損傷和纖維化發(fā)生的分子病理機制。

      大強度運動;心房;纖維化;Smad;心房纖顫

      運動性心律失常是備受研究者關注的問題。心房纖顫是最常見的運動性心律失常,會制約運動員比賽成績的提高,影響運動員的身體健康和生命安全[2]。研究證實,運動性心房纖顫的發(fā)生與運動的劇烈程度及累積時間有關[18]。有研究表明,長期反復大強度運動導致了心房纖維化發(fā)生,可能是運動性心房纖顫的主要病理改變[10]。本課題組前期研究也證實了16周大強度跑臺運動會造成大鼠心房纖維化的發(fā)生[6,7]。進一步研究發(fā)現(xiàn),長期大強度運動導致大鼠心房轉化生長因子(transforming growth factor-β1,TGF-β1)的長期高表達,可能介導了心房損傷和間質纖維化的發(fā)生過程[8]。Smad(small mother against decapentaplegic)作為TGF-β1信號轉導通路的下游信號分子,與細

      胞膜上TGF-β受體結合并將信號傳遞至細胞核內發(fā)揮生物學作用[37]。Smad在細胞外基質重塑和組織損傷修復過程中具有重要作用。研究證實,在糖尿病和心肌梗死等多種疾病誘導的心房纖維化發(fā)生過程中均存在Smad異常表達[16,25,29]。Smad在運動性心房損傷和纖維化發(fā)生中的作用,鮮見相關報道。鑒于此,本研究通過建立長期大強度運動動物模型,觀察Smad(Smad-2、Smad-4和Smad-7)基因和蛋白的表達變化,以期為揭示運動性心房損傷和纖維化的發(fā)生機制提供實驗依據(jù),為運動性心房纖顫的預防和治療提供新思路。

      1 材料與方法

      1.1 實驗對象

      8周齡SPF級SD大鼠購置于北京維通利華實驗動物技術有限公司。在國家體育總局體育科學研究所ABSL-3級實驗動物房飼養(yǎng),普通嚙齒類動物飼料喂養(yǎng),恒溫恒濕,每天光照12 h。

      1.2 動物分組與運動方案

      1.3 取材

      運動8周、12周和16周結束后的第2天,大鼠腹腔注射水合氯醛麻醉后摘心臟,分離出右心房,組織分為兩份,經液氮速凍后存于-80℃超低溫冰箱,一份用于RT-PCR,一份用于Western blot。

      1.4 熒光定量PCR檢測mRNA的表達

      取組織放入液氮預冷的研缽中,研磨成粉末后加入Trizol裂解,加入氯仿抽提,離心后加入氯丙醇,再次離心后經75%的酒精洗滌,離心后晾干加入去離子水,測量RNA的濃度和純度。每個樣本按0.5 μg總RNA 10 μl的反應體系,采用cDNA反轉試劑盒(RR370A,購于Takara生物公司)反轉成cDNA后,-20℃保存。以合成的cDNA為模板,加入上下游引物,采用試劑盒(RR820A,購于Takara生物公司)在ABI 7300熒光定量檢測系統(tǒng)進行檢測。反應條件為:預變性95℃ 30 s,PCR反應95℃ 5 s,60℃ 31 s,40個循環(huán)。數(shù)據(jù)導出后,用Excel分析處理,通過2-△△CT公式計算樣本中mRNA的相對含量,其中,△△CT=(CT實驗組目的基因-CT實驗組內參基因)-(CT對照組目的基因-CT對照組內參基因)。采用β-actin作為參照物,所有引物均通過GenBank數(shù)據(jù)庫查詢設計,由上海生工生物有限公司合成。引物序列見表1。

      表1 Real-time PCR基因引物序列

      1.5 Western Blot檢測蛋白的表達

      組織經液氮研磨后,加入蛋白裂解液(RIPA,購于碧云天公司)和蛋白酶抑制劑(PMSF,購于碧云天公司)。離心后采用BCA法測其濃度,通過加入不同量的去離子水使所有樣本蛋白總量一致,按5:1加入上樣緩沖液(購于碧云天公司),最終使總蛋白濃度為4 μg/μl。水浴鍋內沸騰水煮10 min使蛋白變性。采用10%的膠,120 V恒壓電泳1.5 h,200 mA恒流濕轉1 h。脫脂奶粉封閉PVDF膜(購于美國Millipore公司)1 h,加入一級抗體(β-actin 濃度為1∶5 000,Smad-2和Smad-4濃度為1∶1 000,Smad-7濃度為1∶500,購于美國Abcam公司),二級抗體(1∶5 000,購于美國Abcam公司)4℃搖床過夜。PBST洗膜后,加入發(fā)光液(購于美國Millipore公司),放入暗匣,在暗室內X光片曝光數(shù)十秒。顯影數(shù)秒,定影液定影。條帶在Quantiy One軟件下分析。計算目的蛋白條帶和內參條帶灰度值的比值。

      1.6 數(shù)據(jù)采集與統(tǒng)計學處理

      所得數(shù)據(jù)用 GraghPad Prism 6.0軟件轉換作圖。所有數(shù)據(jù)均用SPSS 18.0進行分析處理,結果采用平均數(shù)±標準差表示,采用雙因素方差分析組間差異。顯著性差異選擇P<0.05或P<0.01水平。

      2 實驗結果

      2.1 Smad-2基因和蛋白的表達

      Smad-2基因和蛋白的表達變化見圖1、圖2。與安靜對照組相比,8周、12周和16周運動后,心房Smad-2 基因和蛋白的表達均有所增加,但均無顯著性差異。

      圖1 Smad-2 mRNA的表達變化柱狀圖

      圖2 Smad-2 蛋白的表達變化示意圖

      2.2 Smad-4基因和蛋白的表達

      Smad-4 mRNA的表達變化見圖3。8周和12周運動后,和安靜對照組相比,大強度組心肌Smad-4 mRNA表達均有升高趨勢,但均無明顯差異。16周運動后,大強度組Smad-4 mRNA表達顯著高于安靜對照組(P<0.05)。對比8周、12周和16周大強度組,隨時間的延長,Smad-4 mRNA表達逐漸增加。16周大強度組右心房Smad-4 mRNA表達顯著高于8周大強度組(P<0.05)。

      圖3 Smad-4 mRNA的表達變化柱狀圖

      Smad-4蛋白的表達變化見圖4。和基因的變化趨勢一致,8周和12周運動后,和安靜對照組相比,大強度組心肌Smad-4蛋白表達均有升高趨勢,但均無明顯差異。16周運動后,大強度Smad-4蛋白表達顯著高于安靜對照組(P<0.01)。

      圖4 Smad-4蛋白的表達變化示意圖

      2.3 Smad-7基因和蛋白的表達

      Smad-7 mRNA的表達變化見圖5。8周運動后,和安靜對照組相比,大強度組Smad-7 mRNA表達均有降低趨勢,但均無明顯差異。12周和16周運動后,Smad-7 mRNA表達顯著低于安靜對照組(P<0.05)。對比8周、12周和16周大強度組,隨著時間的延長,Smad-7 mRNA表達逐漸有降低趨勢。12周和16周大強度組Smad-7 mRNA均顯著低于8周大強度組(P<0.01)。

      圖5 Smad-7 mRNA的表達變化柱狀圖

      和基因的變化趨勢一致,Smad-7蛋白的表達變化見圖6。8周運動后,和安靜對照組相比,大強度組Smad-7蛋白的表達均有降低趨勢,但均無明顯差異。12周和16周運動后,右心房Smad-7蛋白的表達顯著低于安靜對照組(P<0.05)。

      圖6 Smad-7蛋白的表達變化示意圖

      3 討論

      Smad蛋白是TGF-β1的下游信號分子,包括3種:1)受體型Smad蛋白(R-Smads),主要是Smad-2和Smad-3;2)通用Smad蛋白(Co-Smad),主要有Smad-4;3)抑制型Smad蛋白(I-Smads),主要有Smad-6和Smad-7[27]?;罨腡GF-β1受體分子使Smad-2和Smad-3發(fā)生磷酸化,然后與Smad-4結合形成Smad復合物,該復合物隨即轉移至細胞核內,與各種轉錄因子相互作用以調節(jié)相關基因的轉錄。而Smad-7可與TGF-β1的受體競爭性結合,阻止R-Smad的磷酸化,從而阻斷TGF-β1的效應[28]。在正常生理狀態(tài)下,心肌TGF-β1/Smad 信號通路中各型Smad 分子之間精密協(xié)調。在異常情況下,R-Smads與I-Smads表達失衡是誘發(fā)纖維化的分子基礎之一[14,38]。

      過量的TGF-β1與細胞膜上的受體結合進而造成胞內Smad表達失衡,進一步通過促進成纖維細胞的增殖、成纖維細胞向成肌纖維細胞轉化并且促進CTGF表達的增加,最終使細胞外基質的合成增加,誘導器官纖維化發(fā)生[19]。另外,TGF-β1還可通過與Smad作用后促進TIMP的表達,抑制MMP的表達和活性,MMP/TIMP的比例失調,細胞外基質降解減少,促進纖維化的發(fā)生[12]。前期研究證實,長期大強度運動誘導大鼠心房膠原蛋白含量增加,Ⅰ/Ⅲ型膠原蛋白比例失調,心房發(fā)生纖維化[6,7]。進一步研究發(fā)現(xiàn),心房TGF-β1的含量顯著增加,可能是運動性心房纖維化發(fā)生的關鍵因子[8]。Smad蛋白是介導TGF-β1發(fā)生作用的重要調控蛋白,在運動性心房損傷和纖維化發(fā)生過程中,Smad蛋白的變化規(guī)律如何,目前鮮有相關報道。

      本研究結果表明,16周大強度運動后,心房Smad-2的表達無明顯變化。與本研究結果一致,Lessard等[21]研究報道,急性大強度運動后,大鼠比目魚肌Smad-2的總蛋白無明顯改變,而Smad-2蛋白磷酸化增加,可能誘導了骨骼肌ECM發(fā)生重塑,導致代謝風險因子增加和運動能力降低。也有研究發(fā)現(xiàn),成纖維細胞的增殖誘導了心肌纖維化的發(fā)生,Smad-2總蛋白并未明顯增加,而Smad-2蛋白的磷酸化表達上調[40]。本研究中雖未發(fā)現(xiàn)明顯的Smad-2上調,但長期大強度運動是否可能通過增加心房Smad-2蛋白的磷酸化,進而激活TGF-β1/Smad信號通路,是后續(xù)研究需補充完善之處。

      本研究還發(fā)現(xiàn),16周大強度運動后,大鼠心房Smad-4的基因和蛋白表達顯著增加。有研究報道,力竭運動后,大鼠肝臟Smad-4的表達增加,可能介導了過度運動導致的肝損傷過程[5]。TGF-β1可通過與細胞膜受體結合,使Smad-2和Smad-3發(fā)生磷酸化,并與Smad-4結合成復合體,進入細胞核內,調控相關基因的轉錄。本研究中,上調的Smad-4信號通路蛋白可能介導了由于TGF-β1增加導致的纖維化反應,在運動性心房損傷和纖維化的發(fā)生過程中可能發(fā)揮重要作用。在損傷纖維化的不同階段,Smad-4的表達不同,可能和致病因素的持續(xù)時間和強度有關[30]。本研究還發(fā)現(xiàn),隨著大強度運動時間的持續(xù),Smad-4的表達逐漸增加,在16周時出現(xiàn)了明顯升高,這可能是造成心房發(fā)生纖維化的分子機制。與本研究結果一致,Goldstein等[15]發(fā)現(xiàn),骨骼肌和心肌損傷后, Smad-4的表達增加,介導了TGF-β1促纖維化反應。而通過體內抑制Smad-4的表達后,纖維化程度降低,心肌和骨骼肌功能得到改善。李宏云等[4]發(fā)現(xiàn),急性鈍挫損傷后心肌發(fā)生纖維化,Smad-4的表達顯著增加,而通過Smad-4基因沉默后,骨骼肌纖維化程度明顯降低,減輕了瘢痕形成。研究證實,Smad-4在心肌細胞肥大到凋亡的轉化過程中具有“分子開關”的作用。Smad-4的過表達增加了細胞凋亡蛋白酶caspase 3的表達,增加了bax/bcl-2的比例,介導了心肌肥大的發(fā)生,也促進了心肌細胞的凋亡進程[17]。早年研究顯示,大強度運動和過度運動誘導心肌發(fā)生凋亡,可能參與了運動性心肌的重塑過程[3]。而運動性心肌細胞凋亡的發(fā)生是否和Smad-4的表達增加有關,需要進一步的研究予以證實。

      Smad-7是TGF-β1/Smad信號通路中的抑制性調控分子,其可與TGF-β1的I型受體競爭性結合,阻止R-Smads的磷酸化,從而阻斷TGF-β1的效應[9]。本研究發(fā)現(xiàn),12周和16周大強度運動顯著降低了心房Smad-7的表達。Smad-7和Smad-2之間的平衡被打破,造成Smad-2和Smad-4復合物核轉位增加,纖維化因子轉錄增加。TGF-β1可通過下游Smad信號通路,激活膠原蛋白的合成途徑,使成纖維化細胞增殖,細胞外基質的增加,誘發(fā)心房纖維化[20,35]。TGF-β1表達增加和Smad-7表達減少,促進了纖維化的發(fā)生[39]。而Smad-7高表達,可消除由TGF-β1所誘導的Smad-2的磷酸化,降低了α-SMA和CTGF等纖維化因子的表達,阻止了成纖維細胞向肌成纖維細胞轉化,使膠原蛋白的含量降低[31]。另外,Smad-7的降低可能使抵抗活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)的作用降低。敲除Smad-7基因誘導心肌ROS升高,ROS可增加MMP-9的活性,成纖維化細胞膠原蛋白合成增加。相反,Smad-7的過表達可通過降低心肌成纖維細胞ROS的產生,通過抑制MMP-9活性,降低膠原蛋白增加,抑制纖維化的發(fā)生[36]。急性或大強度耐力運動誘導心肌中的ROS含量增加,已經被研究證實[13,22],但其是否和Smad-7的表達降低有關,需進一步研究予以證實。

      研究顯示,Smad-7的表達受miR-21的調控[16,23,24]。Li等研究發(fā)現(xiàn),miR-21可通過結合在Smad-7的3'-UTR端,抑制其轉錄水平。TGF-β1干預原代培養(yǎng)的成纖維細胞,成熟miR-21的表達增加,而Smad-7蛋白水平降低。敲除miR-21或Smad-7過表達均能阻遏TGF-β1誘導的纖維化發(fā)生,而miR-21的過表達或抑制Smad-7則促進了纖維化發(fā)生[23]。miR-21的過表達抑制了Smad-7蛋白轉錄,而膠原蛋白的含量增加,加強了TGF-β1誘導的纖維化程度[33]。Li等[24]證實,具有冠狀動脈疾病的患者血液中,miR-21和TGF-β1的含量增加,而Smad-7的表達降低。上調miR-21降低了Smad-7的表達,下調miR-21則增加了Smad-7的表達。血管緊張素II可誘導miR-21表達,靶基因PTEN的表達降低,導致Smad-7的表達降低,成纖維細胞的增加,造成心肌纖維化[26]。He等[16]通過快速心房起搏建立心房纖顫模型,研究發(fā)現(xiàn),心房TGF-β1和miR-21呈現(xiàn)高表達狀態(tài),而Smad-7的表達顯著降低。體外用TGF-β1干預成年大鼠心肌成纖維細胞,發(fā)現(xiàn)miR-21表達增加,而Smad-7表達降低,TGF-β1抑制劑則降低了miR-21的上調。進一步研究發(fā)現(xiàn),miR-21前體抑制了Smad-7,而miR-21抑制劑則促進了Smad-7的表達,提示,Smad-7可能是miR-21的作用靶基因。本研究前期結果表明,長期大強度運動導致大鼠心房miR-21呈現(xiàn)持續(xù)高表達,其可能是通過下調Smad-7的表達,促進心房損傷和纖維化的發(fā)生和發(fā)展[8]。

      本研究還發(fā)現(xiàn),與安靜對照組相比,8周大強度組Smad-7表達無明顯差異,而12周和16周大強度組 Smad-7的表達顯著降低。大強度組之間進行比較發(fā)現(xiàn),Smad-7的表達逐漸降低。與此一致,有研究表明,長期的促纖維化因子作用于心肌,Smad-7的表達隨時間呈現(xiàn)下調趨勢[1,32,34]。曹輝[1]研究顯示,神經卡壓造成的骨骼肌損傷纖維化過程中,Smad-7的表達隨卡壓時間的延長表達呈逐漸下降趨勢。Wang等[32]研究也表明,心肌梗死后2周,大鼠心肌梗死區(qū)Smad-7的表達降低。而隨著梗死時間的延長,Smad-7的表達逐漸降低,8周后梗死區(qū)和梗死邊緣均發(fā)現(xiàn)Smad-7的表達降低。研究提示,在心肌纖維化發(fā)生過程中,Smad-7的表達呈現(xiàn)出進行性的降低,因此,Smad-7的表達水平和纖維化的程度呈負相關。

      綜上所述,長期大強度運動大鼠心房Smad-4的表達持續(xù)上調,而Smad-7的表達進行性降低,各型Smad之間表達失調,可能是運動性心房纖維化發(fā)生的分子病理機制。這為深入了解運動性心房纖顫的發(fā)生機制提供了實驗依據(jù)。

      4 結論

      長期大強度運動導致大鼠心房Smad-4的表達持續(xù)上調,而Smad-7的表達進行性降低,各型Smad之間表達失調,這可能是運動性心房損傷和纖維化發(fā)生的分子病理機制。

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      Expression of Smad Gene and Protein in the Development of Exercise-induced Atrial Damage and Fibrosis

      WANG Shi-qiang1,2,CHANG Yun2,RAO Zhi-jian2,MA Xiao-wen2

      Objectives:This study was carried out to determine the expression of smad gene and protein in the development of exercise-induced atrial fibrosis.Methods:48 adult male sprague-dawley rats,8-week old,were randomly divided into two groups:Control group(C),and Highly intensive exercise group(H).Then each group is divided into 8 weeks,12 weeks and 16 weeks group.Group H were trained for 8 weeks,12 weeks and 16 weeks of treadmill exercise respectively.mRNA and protein expression of Smad-2,Smad-4 and Smad-7 were detected by Real time PCR and Western Blot.Results:Smad-2 expression of H group has a trend of increase,but there was no significant difference,compared to control group.mRNA and protein expression of Smad-4 increased significantly after 16 week-highly-intensive exercise(P<0.05,P<0.01).Smad-4 mRNA expression increased with the extension of time,thus the Smad-4 mRNA expression of H group after 16 weeks is significantly higher than 8 weeks(P<0.05).Aftre 16 week-highly-intensive exercise,mRNA and protein expression of Smad-7 significantly decreased(P<0.05).Smad-7 mRNA and protein expression gradually reduced after 12 and 16 weeks of highly intensive exercise(P<0.05).With the extension of time,Smad-7 mRNA expression reduced gradually.Thus the Smad-4 mRNA expression of H group after 16 weeks is significantly lower than 8 weeks(P<0.01).Conclusion:Long-term highly intensive exercise caused the expression of atrial Smad-4 increase,while progressive decrease of the Smad-7,inducing disorders between Smad,Which may be the molecular pathological mechanism of exercise-induced atrial fibrosis.

      highlyintensiveexercise;atrial;fibrosis;Smad;atrialfibrillation

      1000-677X(2016)11-0050-06

      10.16469/j.css.201611006

      2016-06-28;

      2016-10-28

      國家體育總局體育科學研究所基本科研業(yè)務經費(15-37)。

      王世強(1987-),男,山東濟寧人,講師,博士,主要研究方向為運動心臟生理和病理,E-mail:suswsq@163.com;常蕓(1957-),女,內蒙古呼和浩特人,研究員,博士,博士研究生導師,主要研究方向為運動員心臟病生理與醫(yī)務監(jiān)督,Tel:(010)87182526,E-mai:changyun@ciss.cn;饒志堅(1989-),男,江西上饒人,在讀博士研究生,主要研究方向為運動心臟生理和病理。

      1.湖南工業(yè)大學 體育學院,湖南 株洲 412000;2.國家體育總局體育科學研究所,北京 100061 1.Hunan University of Technology,Zhuzhou 412000,China;2.China Institute of Sports Science,Beijing 100061,China.

      G804.5

      A

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