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      生物酶對五氯聯(lián)苯降解的初步研究

      2017-01-06 05:55:00季蕾陳貫虹傅曉文黃玉杰王加寧張強
      山東科學(xué) 2016年6期
      關(guān)鍵詞:持久性聯(lián)苯輔酶

      季蕾,陳貫虹,傅曉文,黃玉杰,王加寧,張強

      (山東省科學(xué)院生態(tài)研究所, 山東省應(yīng)用微生物重點實驗室, 山東 濟(jì)南 250014)

      【環(huán)境與生態(tài)】

      生物酶對五氯聯(lián)苯降解的初步研究

      季蕾,陳貫虹,傅曉文,黃玉杰,王加寧,張強*

      (山東省科學(xué)院生態(tài)研究所, 山東省應(yīng)用微生物重點實驗室, 山東 濟(jì)南 250014)

      多氯聯(lián)苯(PCBs)是具有代表性的持久性有機污染物(POPs),其氯代數(shù)目越多,降解越難。本文以分離篩選的6株P(guān)CBs降解細(xì)菌為材料,制備了含有NADH輔酶再生系統(tǒng)關(guān)鍵酶甲酸脫氫酶(FDH)的PCBs降解復(fù)合酶,研究了其對PCBs的降解效果。結(jié)果表明,Pseudomonassp. MGB11胞內(nèi)酶/FDH復(fù)合酶對五氯聯(lián)苯PCB114的降解率在10 h內(nèi)可達(dá)69.4%,對于高毒性、難降解的高氯PCBs的污染修復(fù)具有應(yīng)用價值。

      五氯聯(lián)苯; 降解復(fù)合酶; 甲酸脫氫酶

      工業(yè)化學(xué)品多氯聯(lián)苯(PCBs)是首批被列入國際持久性有機污染物( persistent organic pollutants, POPs)公約的污染物,具有持久性、半揮發(fā)性、長距離遷移性、生物蓄積性和高毒性的污染特性[1],其氯化程度越高,越難分解。五氯聯(lián)苯作為高氯PCBs,與低氯代物相比,具有更高的毒性和持久性[2]。目前,POPs污染事故仍不斷發(fā)生,及時、有效地修復(fù)污染環(huán)境,對人類健康和經(jīng)濟(jì)發(fā)展至關(guān)重要。

      微生物降解因其低耗、易于實現(xiàn)原位修復(fù)、環(huán)境安全和純生態(tài)過程的顯著優(yōu)點[3],是公認(rèn)的治理PCBs污染的一種環(huán)保而有效的手段。好氧微生物能夠把低氯PCBs(nCl<5)氧化為氯代苯甲酸,但很難降解高氯PCBs(nCl≥5)[4];厭氧生物過程將高氯PCBs還原成低氯PCBs,但不能破壞苯環(huán)結(jié)構(gòu)[5],PCBs好氧開環(huán)過程需要聯(lián)苯雙加氧酶等NADH依賴型氧化還原酶[6-8]。NADH的持續(xù)供給可通過高效、低成本的甲酸/FDH(甲酸脫氫酶) 輔酶再生系統(tǒng)實現(xiàn)[9]。

      本研究針對微生物降解高氯PCBs周期長、效率低的問題,以五氯聯(lián)苯為降解底物,選用實驗室自行分離篩選的6株P(guān)CBs降解好氧細(xì)菌,制備含有NADH輔酶再生系統(tǒng)關(guān)鍵酶FDH的PCBs降解復(fù)合酶,提高高氯PCBs的降解效率,以實現(xiàn)對PCBs污染的快速修復(fù)。

      1 材料與方法

      1.1 實驗材料

      聯(lián)苯(國藥集團(tuán));PCB114(2,3,4,4',5-Pentachlorobiphenyl)(Sigma-Aldrich);正己烷為色譜純;其他化學(xué)試劑為分析純。

      6株P(guān)CBs降解菌均由本實驗室分離并保存,分別為Burkholderiasp. MGB112、Sphingomonassp. MGB12、Pseudomonassp. MGB11、Rhodococcussp. MGB10、Arthrobactersp. MGB09、Pseudomonassp. VM14。

      表達(dá)博伊丁假絲酵母fdh基因的基因工程大腸桿菌E.coliBL21-fdh由本實驗室構(gòu)建,用于FDH的制備。

      誘導(dǎo)培養(yǎng)基:蛋白胨2 g/L,KH2PO40.5 g/L,K2HPO40.5 g/L,MgSO4·7H2O 0.2 g/L,CaCl20.1 g/L,NaCl 0.2 g/L,(NH4)2SO41.0 g/L,聯(lián)苯1.0 g/L,pH=7.0。

      ZYP培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,酵母提取物5 g/L,Na2HPO4·12H2O 9 g/L,KH2PO46.8 g/L,(NH4)2SO43.3 g/L,CaCl20.02 g/L,MgSO40.24 g/L,0.5%甘油,葡萄糖0.5 g/L,乳糖2 g/L。

      1.2 實驗方法

      1.2.1 PCBs降解酶制備

      6株P(guān)CBs降解菌分別在30 ℃、150 r/min條件下用誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h,4 ℃、8 000 r/min離心5 min,分別收集菌體及上清液,菌體用10 mmol/L PBS緩沖液(pH=7.5)稀釋至原濃度的1/20,在250 W、3 s/5 s條件下進(jìn)行細(xì)胞破碎20 min,離心,上清為粗酶液。

      1.2.2 FDH制備及活性檢測

      E.coliBL21-fdh在37 ℃、150 r/min條件下經(jīng)ZYP培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h,于4 ℃、8 000 r/min離心5 min,菌體稀釋至原濃度的1/20,在200 W、3 s/3 s條件下進(jìn)行細(xì)胞破碎6 min,離心,上清為粗酶液。

      FDH活性檢測:反應(yīng)體系中甲酸鈉1 670 mmol/L,NAD 16.7 mmol/L,10 mmol/L PBS緩沖液(pH=7.5)2 mL,加入適當(dāng)稀釋的酶液1 mL,蒸餾水補足4 mL,30 ℃反應(yīng)5 min,測定反應(yīng)前后340 nm處的吸光值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算酶活力。酶活力定義為1 min催化產(chǎn)生1 μmol NADH所需的酶量為1 U。

      1.2.3 菌株對PCBs降解

      不同菌株分別在誘導(dǎo)培養(yǎng)基中培養(yǎng)至飽和后,各取2 mL菌液8 000 r/min離心5 min,菌體用滅菌蒸餾水清洗2次,重懸后分別接種至50 mL 濃度為1 mg/L 的PCB114溶液中,置于搖床中30 ℃、150 r/min培養(yǎng)。培養(yǎng)7 d后測定PCB114的降解率。

      1.2.4 PCBs的酶降解

      反應(yīng)體系為10 mL,其中10 mmol/L PBS緩沖液(pH=7.5)5 mL,PCBs降解酶1 mL,F(xiàn)DH 酶液1 mL,蒸餾水補足至10 mL。PCB114 終濃度1 mg/L,甲酸鈉1 670 mmol/L,30 ℃水浴反應(yīng)8 h后測定降解率。

      1.2.5 PCBs萃取及檢測

      反應(yīng)體系中加入10 mL正己烷,充分震蕩后超聲5 min,轉(zhuǎn)移至分液漏斗,靜置分層后分離上下相,萃取3次,合并萃取液,經(jīng)無水硫酸鈉脫水,旋蒸后定容至5 mL,GC-MS法測定PCB114含量。

      氣相色譜條件:HP-5MS色譜柱,進(jìn)樣口溫度280 ℃,柱溫100 ℃保持1 min后,升至280 ℃保持4 min,載氣流速為1 mL/min,不分流進(jìn)樣,進(jìn)樣量1 μL。質(zhì)譜條件:離子源為電子轟擊源(EI),能量70 eV,阱溫220 ℃,傳輸線溫度280 ℃,溶劑延遲5 min。定量分析選擇SIM模式。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 菌株對PCBs的降解

      6株P(guān)CBs降解菌經(jīng)1 g/L聯(lián)苯誘導(dǎo),可達(dá)到的飽和生物量如表1所示。Pseudomonassp. MGB11的菌體密度最大,其OD600值為2.05;Pseudomonassp. VM14生物量達(dá)飽和時的OD600值僅為0.57,6株細(xì)菌在誘導(dǎo)培養(yǎng)基中所達(dá)到的飽和菌體密度均較低。收集菌體轉(zhuǎn)接至PCB114培養(yǎng)基中,7 d后有3株菌的降解率達(dá)到20%以上,其中Pseudomonassp. MGB11降解率最大,為29%(表1),其降解能力與生物量保持一致。

      表1 PCBs降解菌在誘導(dǎo)培養(yǎng)基中的飽和生物量和PCB114降解率

      2.2 復(fù)合酶對PCBs的降解

      E.coliBL21-fdh經(jīng)誘導(dǎo)產(chǎn)酶后,收集細(xì)胞并破碎,獲得的粗酶液FDH酶活力為0.633 U/mL。分別制備6株P(guān)CBs降解菌的粗酶液,與FDH粗酶按照1:1(V/V)的比例進(jìn)行復(fù)配,添加至PCB114濃度為1 mg/L的降解體系,反應(yīng)8 h后,PCB114降解率結(jié)果如表2所示。

      表2 不同復(fù)合酶對PCB114的降解率

      注:CK為MGB112粗酶液(未添加FDH)。

      結(jié)果顯示,8 h后MGB112、MGB11、VM14對PCB114降解率分別為57.1%、65.7%、40%,其中Pseudomonassp. MGB11胞內(nèi)酶/FDH復(fù)合酶對PCB114的降解率最高(65.7%)。Burkholderiasp. MGB112胞內(nèi)酶/FDH復(fù)合酶的PCB114降解率(57.1%)與其胞內(nèi)酶單獨作用8 h相比(7.5%)提高了6.6倍。

      2.3 PCBs降解酶在細(xì)胞不同部位的分布

      菌株P(guān)seudomonassp. MGB11經(jīng)培養(yǎng)后,對其培養(yǎng)液、菌體破碎液的PCB114降解能力進(jìn)行比較,結(jié)果顯示,在8 h內(nèi),Pseudomonassp. MGB11胞內(nèi)酶/FDH對PCB114的降解率達(dá)67.5%,而添加胞外上清液/FDH的體系中未檢測到降解活性,表明具有PCBs降解活性的酶主要存在于胞內(nèi),而不分泌到胞外培養(yǎng)液中。Ruiz-Aguilar等[10]報道,來源于細(xì)菌的PCBs降解酶大多為胞內(nèi)酶,而白腐真菌可分泌胞外過氧化物酶降解

      圖1 復(fù)合酶Pseudomonas sp. MGB11胞內(nèi)酶/FDH對PCB114的降解曲線Fig.1 Degradation curve of intracellular enzyme of Pseudomonas sp. MGB11 /FDH to PCB114

      PCBs,與好氧細(xì)菌相似,降解速率與含氯量成反比,降解四氯代以上的PCBs仍比較困難。

      2.4 復(fù)合酶對PCB114的降解曲線

      在短時間內(nèi)實現(xiàn)PCB114高效降解的復(fù)合酶Pseudomonassp. MGB11胞內(nèi)酶/FDH,對1 mg/L PCB114的降解曲線見圖1。結(jié)果顯示,經(jīng)8~10 h降解后,復(fù)合酶對底物的降解速率趨于穩(wěn)定,10 h時PCB114降解率達(dá)69.4%。

      3 討論

      目前關(guān)于高氯代PCBs降解的相關(guān)研究報道較少,多為低氯PCBs降解的相關(guān)研究。胡星等[11]篩選獲得的假單胞菌SYC01對四氯聯(lián)苯PCB77(0.5 mg/L)、PCB52(0.1 mg/L)的降解率分別為34%、68%。Sierra等[12]分離的好氧菌Janibactersp. MS3-02對四氯聯(lián)苯Aroclor1242在7 d內(nèi)的降解率為70%。本文中,對更難降解的毒性類二噁英類PCBs[13],降解酶系僅需10 h即可降解69.4%,具有更快的降解速率。此外,微生物降解高氯PCBs的過程,一般需要先經(jīng)過厭氧脫氯后,更易于好氧開環(huán)降解生成小分子。本文所使用的好氧微生物胞內(nèi)酶,直接通過好氧過程可將高氯PCBs降解,操作工藝簡單,適用于原位污染修復(fù)。

      在PCBs污染修復(fù)方面,厭氧脫氯的研究僅局限于菌種的分離和脫氯機理的研究,而在分子生物學(xué)及酶學(xué)方面仍處于空白階段,好氧生物降解主要集中在PCBs降解菌株的篩選、降解機理及降解相關(guān)的酶和基因方面的研究[14],對于構(gòu)建具有輔酶再生功能的高氯PCBs降解復(fù)合酶的相關(guān)研究尚屬首次[15]。

      利用分離篩選、富集或基因工程構(gòu)建獲得的具有特定降解功能的微生物,通過發(fā)酵工程及酶工程手段,提取相關(guān)酶或酶系,制備復(fù)合酶或經(jīng)固定化后,用于PCBs污染土壤、水體及有機污染場地的修復(fù),是極具應(yīng)用潛力的環(huán)境治理途徑。本研究將輔酶再生系統(tǒng)關(guān)鍵酶FDH引入PCBs降解復(fù)合酶的構(gòu)建,實現(xiàn)好氧條件下對高氯代PCBs的高效降解,周期短、降解能力強、成本低且操作工藝簡單,在污染環(huán)境治理、生態(tài)修復(fù)方面具有應(yīng)用價值。

      [1]董玉瑛, 馮霄. 持久性有機污染物分析和處理技術(shù)研究進(jìn)展 [J]. 環(huán)境污染治理技術(shù)與設(shè)備, 2003, 4(6): 49-55.

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      Pilot study on bioenzyme degradation to pentachlorodiphenyl

      JI Lei, CHEN Guan-hong, FU Xiao-wen, HUAGN Yu-jie, WANG Jia-ning, ZHANG Qiang*

      (Shandong Provincial Key Laboratory of Applied Microbiology, Ecology Institute, Shandong Academy of Sciences, Jinan 250014, China)

      ∶ Polychlorinated biphenyls (PCBs) is a representative of persistent organic pollutants (POPs). More its chlorinated number leads to more difficult its degradation . We prepared PCBs compound degrading enzyme of key enzyme formate dehydrogenase (FDH) of NADH coenzyme regeneration system with isolated 6 PCBs degradation bacteria strains as materials. We address its degrading effect to PCBs. Results indicate that degradation rate of Pseudomonas sp. MGB11/FDH compound enzyme to pentachlorodiphenyl PCB114 is up to 69.4% within 10 h. It therefore has application value in the repair for high chlorine PCBs pollutants with high toxicity and low degradability.

      ∶ pentachlorodiphenyl; compound degrading enzyme; formate dehydrogenase

      10.3976/j.issn.1002-4026.2016.06.015

      2016-08-08

      國家國際科技合作專項(2014DFE90100);山東省自然科學(xué)基金(ZR2015YL008, BS2015HZ011)

      季蕾(1985—),女,博士,研究方向為生態(tài)修復(fù)。

      *通信作者。E-mail:zhbuaiji@sina.com。

      X53

      A

      1002-4026(2016)06-094-04

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