周妍,張圓圓,刁晨曦,3,陸濤峰,陳洪巖*
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江哈爾濱150030;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所獸醫(yī)生物技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與比較醫(yī)學(xué)團(tuán)隊(duì),黑龍江哈爾濱150069;3.牡丹江師范學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,黑龍江牡丹江157011)
玉米赤霉烯酮檢測(cè)方法的研究進(jìn)展
周妍1,2,張圓圓2,刁晨曦2,3,陸濤峰2,陳洪巖2*
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江哈爾濱150030;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所獸醫(yī)生物技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與比較醫(yī)學(xué)團(tuán)隊(duì),黑龍江哈爾濱150069;3.牡丹江師范學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,黑龍江牡丹江157011)
玉米赤霉烯酮是由鐮刀菌產(chǎn)生的類雌激素樣真菌毒素。本文結(jié)合國內(nèi)外的研究成果,對(duì)玉米赤霉烯酮檢測(cè)方法的研究進(jìn)展進(jìn)行了綜述,為真菌毒素如玉米赤霉烯酮檢測(cè)方法的探索提供參考。
玉米赤霉烯酮;檢測(cè)方法;研究進(jìn)展
玉米赤霉烯酮(ZEN)又稱F2毒素,是由多種鐮刀菌產(chǎn)生的非甾體雌激素樣作用真菌毒素,分子式為C18H22O5。其難溶于水,易溶于甲醇,在食品或飼料加工過程中均不易被破壞(Wang等,2009;Yumbe等,2003)。ZEN廣泛存在于霉變的玉米、高粱等谷類作物,是世界上污染范圍最廣的鐮刀菌毒素之一(葛文霞等,2016)。ZEN具有較強(qiáng)的生殖、發(fā)育毒性,其能與雌激素受體結(jié)合使動(dòng)物產(chǎn)生雌激素亢進(jìn)癥,從而導(dǎo)致不孕或流產(chǎn),給畜牧業(yè)造成重大經(jīng)濟(jì)損失(單妹等,2006;肖治軍,2005);其還具有細(xì)胞毒性以及潛在的致癌性(Vlata等,2006;Conková等,2001;Tomaszewski等,1998),嚴(yán)重威脅人類的健康。
目前已有多個(gè)國家或地區(qū)對(duì)食品和飼料中的ZEN含量制定了標(biāo)準(zhǔn)。2007年歐盟規(guī)定了谷物和玉米中ZEN的含量分別不能超過0.1 mg/kg和0.35 mg/kg。澳大利亞規(guī)定黑麥中ZEN含量不得超過60 μg/kg(侯月娥等,2014)。而我國頒布的《飼料衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)》(GB13078.2-2006)中規(guī)定玉米類飼料ZEN最大含量為500 μg/kg,《食品中真菌毒素限量》(GB2761-2011)中規(guī)定小麥中ZEN含量不得超過60 μg/kg。ZEN污染直接關(guān)系國計(jì)民生問題,因此尋找有效的ZEN檢測(cè)及去除方法是科學(xué)研究的一大熱點(diǎn)和難點(diǎn)。本文對(duì)可行的、靈敏度高的、特異性強(qiáng)的ZEN檢測(cè)方法進(jìn)行了概述。
2.1 氣相色譜法(GC法)GC法從20世紀(jì)70年代開始用于羥基衍生化處理后揮發(fā)性霉菌毒素的檢測(cè)(張思思,2016)。Amelin等(2013)采用Quick、Easy、Cheap、Effective、Rugged、Safe QuECh-ERS)樣品前處理方法結(jié)合GC-電子俘獲檢測(cè)器分離測(cè)定了多種谷物、飼料以及肉中的ZEN,檢出限為50 μg/kg,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)小于8%。GC法適合對(duì)飼料或食品中ZEN的定量定性分析,具有靈敏度高、回收率高等特點(diǎn),現(xiàn)今美國分析化學(xué)師協(xié)會(huì)(AOAC)仍采用該方法。但該方法對(duì)設(shè)備要求高,并且實(shí)驗(yàn)室條件下不能進(jìn)行常規(guī)操作,因而檢測(cè)時(shí)常與其他方法聯(lián)用。Zhang等(2006)建立了免疫親和柱(IAC)-GC-質(zhì)譜檢測(cè)器(MS)方法,發(fā)現(xiàn)檢測(cè)ZEN的最低檢測(cè)限和定量限可達(dá)0.5 ng/kg和1.0 ng/kg,添加ZEN標(biāo)準(zhǔn)品含量為1.0~5.0 ng/g時(shí),回收率為79.6%~110.7%。雖然GC-MS方法可以準(zhǔn)確檢測(cè)真菌毒素,但是需要將分析物轉(zhuǎn)化為氣態(tài)。一些高沸點(diǎn)、熱穩(wěn)定性差、相對(duì)分子質(zhì)量大的分析物則不適宜使用GC-MS方法(王元?jiǎng)P,2014)。
2.2 薄層色譜法1968年AOAC首次提出用微柱-薄層色譜法(TLC)測(cè)定花生中的黃曲霉毒素,之后許多國家都將該方法作為標(biāo)準(zhǔn)方法(張思思等,2016)。我國規(guī)定檢測(cè)ZEN的標(biāo)準(zhǔn)方法即為該方法,最低檢出限為50 ng/g(羅雪云等,1995)。隋凱等(2006)建立了檢測(cè)出口玉米中ZEN含量的TLC法,最低檢測(cè)限為100 μg/kg,并由此建立了《出口糧谷中赤霉烯酮檢測(cè)方法》的商檢行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)。吳文達(dá)等(2010)也構(gòu)建了檢測(cè)ZEN的TLC法,其比移值(Rf)約為0.26。Schaafsma等(1998)利用TLC測(cè)定谷物中的ZEN含量,檢出限為200 ng/kg,可以避免ZEN代謝物對(duì)測(cè)定的干擾。TLC法的優(yōu)點(diǎn)是成本較低,缺點(diǎn)是操作復(fù)雜、試劑需求高、靈敏度稍差、且主觀因素影響較大,實(shí)驗(yàn)室大都不采用該方法,但是在研究毒素的檢測(cè)和分析方法等方面,尤其是在實(shí)驗(yàn)條件不允許的情況下,TLC法還具有一定的優(yōu)越性(范偉杰,2016),目前該方法只在特殊情況下作為仲裁檢驗(yàn)。
2.3 高效液相色譜法(HPLC法)HPLC法是目前最常用的檢測(cè)糧油食品中ZEN的方法。Ostry等(2003)經(jīng)ZearalaTest免疫親和柱純化后,再用HPLC法檢測(cè)ZEN含量,其檢出限達(dá)0.1 μg/kg,回收率高達(dá)95%。羅小虎等(2010)采用HPLC法和熒光檢測(cè)器(FLD)方法測(cè)定ZEN的含量,批內(nèi)、批間加標(biāo)回收率為78.2%~89.6%,RSD為1.5%~3.9%,檢測(cè)限為8 μg/kg。Figueira等(2015)提出QuEChERS樣品前處理技術(shù)結(jié)合超聲輔助提取和超高壓液相色譜熒光檢測(cè)分析對(duì)谷物中ZEN進(jìn)行敏感和高通量定量檢測(cè),ZEN檢出限(3.4 μg/kg)和定量限(4.7 μg/kg)均低于歐盟設(shè)定的限值,回收率為80.2%~109.7%,RSD小于5%。HPLC法具有準(zhǔn)確度高、靈敏度高、檢出限較低等優(yōu)點(diǎn);缺點(diǎn)是成本高、檢測(cè)時(shí)間長、無法進(jìn)行大批量樣本檢測(cè)。
2.3.1 免疫親和柱-高效液相色譜法(IAC-HPLC法)劉勝利等(2011)采用層析柱和IAC結(jié)合凈化提取液的方法結(jié)合熒光檢測(cè)器檢測(cè)飼料樣品中的ZEN,加標(biāo)回收率高達(dá)88.74%,檢測(cè)限為5.7 μg/L, RSD低于4.01%。饒正華等(2012)利用IAC-HPLC熒光檢測(cè)法有效地將ZEN與其類似物分開,檢測(cè)配合飼料、預(yù)混料、玉米中的ZEN含量發(fā)現(xiàn),RSD均小于5%。隋凱等(2006)利用此法檢測(cè)玉米和小麥中ZEN的含量,最低檢測(cè)限為0.04 μg/g,加標(biāo)檢測(cè)為0.04~5.0 mg/kg時(shí),回收率為87.5%~98.6%,RSD為1.5%~8.3%。李軍等(2006)建立了ZEN的IAC凈化-柱后光化學(xué)衍生-HPLC方法,檢出限為4.0 μg/kg;在小麥、玉米、黑麥樣品中,平均加標(biāo)回收率為70.8%~94.0%,RSD為2.79%~9.38%。該方法比HPLC法更加可靠安全,靈敏度和準(zhǔn)確度也更高,但缺點(diǎn)是試樣準(zhǔn)備耗時(shí)長,成本高,目前僅限于花生、玉米等部分飼料原料的檢測(cè)。
2.3.2 高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)(HPLC-MS法)張利強(qiáng)等(2012)采用HPLC串聯(lián)MS技術(shù)建立了小麥中ZEN的測(cè)定方法,結(jié)果表明,ZEN質(zhì)量濃度在5~500 μg/L時(shí),線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)為0.9997,加標(biāo)回收率為80%~101%,RSD為3.6%~8.9%,檢出限為8.0 μg/kg。龔珊等(2015)利用HPLC-MS/MS法檢測(cè)大麥、小麥等谷物中的真菌毒素,其回收率最高可達(dá)100%。Zollne等(1999)采用HPLC-MS法測(cè)定小麥以及啤酒中ZEN,其檢測(cè)限為0.5 ng/kg。梁穎等(2006)應(yīng)用HPLC-MS法測(cè)定小麥面粉中的ZEN,檢出限為5 ng/kg,RSD均小于10%,回收率達(dá)93.7%。Franz等采用HPLC-APCI電離-MS/MS方法測(cè)定ZEN的含量,內(nèi)標(biāo)法回收ZEN達(dá)到99%,最低檢測(cè)限(LOD)為0.3 μg/kg(范偉杰,2016)。
HPLC-MS法綜合了色譜和質(zhì)譜兩大優(yōu)勢(shì),在真菌毒素的檢測(cè)過程中,既可以運(yùn)用色譜技術(shù)良好的分離方式,又可以擁有質(zhì)譜技術(shù)卓越的檢測(cè)能力(陳云良,2016)。與其他化學(xué)檢測(cè)方法相比,HPLC-MS檢測(cè)靈敏度更高,檢測(cè)結(jié)果更加精準(zhǔn)。但是,此方法的檢測(cè)過程復(fù)雜,設(shè)備昂貴,成本高,不適合大批量檢測(cè)樣品以及大范圍推廣。
2.4 免疫化學(xué)檢測(cè)法免疫化學(xué)檢測(cè)方法已經(jīng)成為真菌毒素的常規(guī)檢測(cè)方法,具有靈敏度高和特異性抗體高選擇性等特點(diǎn)。
2.4.1 酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)鄧歌等(2015)研究證明,間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法檢測(cè)動(dòng)物飼料中ZEN含量,其最低檢測(cè)限度為0.1 μg/kg,回收率高達(dá)99%;另外,使用ELISA與HPLC法對(duì)35個(gè)相同樣品進(jìn)行分析,其變異系數(shù)(CV)和回收率都相近,回收率相關(guān)系數(shù)(R2)為0.96,且ELISA法的最低檢測(cè)限較低。劉剛等(2015)利用直接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法檢測(cè)大麥中的ZEN,靈敏度為0.08 μg/kg,最低檢測(cè)限為0.01 μg/kg,回收率高達(dá)96.7%。
Zhan等(2016)將過氧化氫酶對(duì)過氧化氫(H2O2)的高催化活性和H2O2對(duì)碲鎘量子點(diǎn)敏感性能相結(jié)合建立了一種新型的熒光ELISA方法,檢測(cè)限為4.1 pg/mL。ZEN的半數(shù)抑制濃度(IC50)為75 pg/mL,比基于辣根過氧化物酶的傳統(tǒng)ELISA低約17倍。Zhang等(2015)建立了以磁性納米粒子為基礎(chǔ)的ELISA法,可定量檢測(cè)飼料樣品和谷物中ZEN的含量,其工作范圍為0.07~2.41 ng/mL,檢出限0.04 ng/mL,IC50為0.37 ng/mL;并與錳過氧化物酶試劑盒(MNP-bsELISA法)和LP-串聯(lián)MS法具有良好的相關(guān)性(R2=0.9283)。
目前已建立ZEN單克隆抗體ELISA檢測(cè)的國標(biāo)方法,并用于其快速篩選檢測(cè)(范偉杰,2016)。馬智鴻等(2009)研制出了生物素-鏈霉親和素的ELISA試劑盒檢測(cè)谷物中的ZEN,靈敏度為0.8 ng/mL,批內(nèi)和批間的變異系數(shù)分別為5.1%和8.6%,平均加標(biāo)回收率為91.2%。邱云青等(2010)研制的ZEN酶聯(lián)免疫化學(xué)發(fā)光檢測(cè)方法,其最低檢出濃度為0.007 ng/mL,線性范圍為0.01~50.00 ng/mL。萬宇平等(2013)研制的ZEN檢測(cè)ELISA試劑盒,線性檢測(cè)范圍為50~405 μg/L,線性相關(guān)系數(shù)為0.99,最低檢測(cè)限為93.5 μg/kg,飼料樣品的回收率為74.5%~109.9%。
ELISA法用于檢測(cè)飼料或食品中的ZEN時(shí),靈敏度高、特異性強(qiáng)、操作簡(jiǎn)單、安全可靠、可進(jìn)行批量檢測(cè)。
2.4.2 免疫膠體金診斷技術(shù)Anna等(2007)采用競(jìng)爭(zhēng)免疫層析技術(shù)檢測(cè)小麥中的ZEN,最低檢測(cè)限為100 μg/kg。李翹等(2013)研制出檢測(cè)玉米等谷物中ZEN殘留的免疫膠體金快速檢測(cè)試劑板,最低檢測(cè)限為100 μg/kg,檢測(cè)過程僅需15 min。駱敏兒等(2013)建立了ZEN的膠體金免疫層析檢測(cè)方法,檢測(cè)時(shí)間為5 min,最低檢測(cè)限為100 ng/mL。Urusov等(2015)利用抗體共軛納米金建立了一種免疫層析系統(tǒng)進(jìn)行ZEN的檢測(cè),該法抗原檢測(cè)限是0.1 ng/mL,檢測(cè)時(shí)間15 min。膠體金免疫層析(GICA)技術(shù)具有單樣本檢測(cè)、無需輔助試劑和儀器、可肉眼觀察結(jié)果等特點(diǎn),適用于大量樣本的篩檢,并易于普及推廣。Chen等(2016)通過系統(tǒng)地優(yōu)化抗體-金納米粒子偶聯(lián)物的制備、金納米顆粒的大小和捕獲抗原位置,研制出多重側(cè)流免疫分析技術(shù)(LFA),ZEN的可視檢測(cè)限為50 μg/kg,定量分析檢測(cè)限為0.42~0.46 μg/kg,遠(yuǎn)低于歐盟規(guī)定的監(jiān)管范圍。Sun等(2014)使用特定的抗ZEN單克隆抗體制備GICA試紙條應(yīng)用于篩選玉米樣品中的殘留ZEN,測(cè)試在5~10 min完成,可視檢測(cè)限為20 μg/kg,IC50為3.4 ng/mL,與間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA和HPLC法檢測(cè)結(jié)果一致性很高。
2.4.3 新型電化學(xué)生物傳感器法Afzali等(2015)采用多壁碳納米管修飾的碳糊電極來富集和測(cè)定ZEN,校準(zhǔn)曲線線性范圍為2~50 ng/mL,檢測(cè)限為0.58 ng/mL。Liu等(2014)組裝的無標(biāo)記安培免疫傳感器檢測(cè)ZEN,檢測(cè)限為1.7 pg/mL,線性范圍為0.005~15 ng/mL,并具有良好的穩(wěn)定性、重現(xiàn)性和選擇性。Ji等(2016)制備了一種新的基于通路毒性的重組細(xì)胞熒光生物傳感器來快速和簡(jiǎn)便評(píng)價(jià)ZEN,檢出限為3.2 ng/mL,ZEN的半最大效應(yīng)濃度為76.63 ng/mL。此方法是一個(gè)早期預(yù)警檢測(cè)方法,不適用于ZEN的快速檢測(cè)。Sweccha(2016)將光子成像學(xué)與多重表面等離子體共振結(jié)合制備的新型傳感器對(duì)ZEN的檢測(cè)限為6 μg/kg,與LC-MS/MS方法進(jìn)行比較并無明顯差異,可作為飼料中潛在霉菌毒素的半定量篩選方法。電化學(xué)生物傳感器靈敏度高、選擇性好,同時(shí)某些傳感器具有便攜可自動(dòng)化等特點(diǎn),該方法目前多處于實(shí)驗(yàn)室研究階段,常規(guī)檢測(cè)的應(yīng)用并不廣泛(張思思等,2016)。
ZEN的傳統(tǒng)檢測(cè)方法各有優(yōu)劣,探索高效、快速、靈敏的ZEN檢測(cè)方法是長期而艱巨的任務(wù)。
3.1 核酸適配體近幾年,適配體研究成為科學(xué)家們的討論焦點(diǎn)。其利用指數(shù)富集的配體系統(tǒng)進(jìn)化技術(shù)(SELEX),從單鏈寡核苷酸文庫中篩選出能與靶物質(zhì)高親和力和特異性結(jié)合的寡核苷酸序列。適配體通過鏈內(nèi)堿基間的氫鍵作用折疊形成穩(wěn)定的發(fā)卡、莖環(huán)、假結(jié)、口袋、凸環(huán)和G-四鏈體等二級(jí)或三級(jí)結(jié)構(gòu)并能與靶標(biāo)空間結(jié)構(gòu)匹配的核糖核酸(RNA)或單鏈脫氧核糖核酸(ssDNA)(Ellington,1990;Tuerk,1990)。適配體一般由幾十個(gè)核苷酸組成,相對(duì)分子質(zhì)量較小、易穿透細(xì)胞膜、性質(zhì)穩(wěn)定、容易制備和修飾(王勇等,2016),可以體外大量合成、便于運(yùn)輸、檢測(cè)時(shí)間短、檢測(cè)限可達(dá)ng/L或pg/L、不受免疫原性和免疫條件以及動(dòng)物耐受性的限制(王文鳳,2012)。
理論上任何靶標(biāo)都可以篩選到對(duì)應(yīng)的核酸適配體,包括小分子物質(zhì)(Klussmann,2006)。目前廣泛應(yīng)用于檢測(cè)食品和飼料中化學(xué)殘留物、生物毒素、重金屬、病原微生物以及非法添加物。桂海孌(2015)利用核酸適配體及Pico Green染料的特點(diǎn),建立了一種基于核酸適配體快速檢測(cè)赭曲霉毒素A和伏馬毒素B1的方法。Sun等(2014)建立了一種基于硅晶體微球與核酸適配體檢測(cè)伏馬毒素B1的方法,檢測(cè)范圍為0.001~1 ng/mL。Lamont等(2011)篩選出可與蓖麻毒素B鏈結(jié)合的適配體,其對(duì)液體基質(zhì)食品中蓖麻毒素B鏈的檢出限為30 ng/mL。Shim等(2014)應(yīng)用化學(xué)發(fā)光競(jìng)爭(zhēng)性適配體檢驗(yàn)玉米樣品中的黃曲霉毒素B1,檢測(cè)線性范圍為0.1~10 ng/mL,最低檢測(cè)限為0.1 ng/mL。
目前,Chen等(2013)已經(jīng)篩選出能夠與ZEN結(jié)合的適配體5Z28、8Z31和11Z1,構(gòu)建了以8Z31為基礎(chǔ)的檢測(cè)ZEN的特異捕獲-熒光分析法,ZEN熒光強(qiáng)度值與其濃度在3.14 nmol~31.4 μmol/L時(shí)線性關(guān)系良好,檢出限為785 pmol/L。現(xiàn)今還沒有出現(xiàn)商品化的用于檢測(cè)霉菌毒素的核酸適配體,但核酸適配體的強(qiáng)大優(yōu)勢(shì)使其勢(shì)必成為霉菌毒素快速檢測(cè)領(lǐng)域的首選之策。
3.2 其他新型檢測(cè)技術(shù)采用時(shí)間分辨熒光技術(shù)進(jìn)行ZEN檢測(cè),檢測(cè)限為0.101 ng/L,平均回收率達(dá)到94.14%(張羽,2015)。何慶華等(2009)建立了基于ZEN全抗原的固相膜免疫檢測(cè)方法,最低檢測(cè)限為50 μg/kg。Duan等(2015)采用微乳液法通過封裝在CdSe/ZnSQDs合成量子點(diǎn)(QD)熒光微球(QBS),作為敏感和定量檢測(cè)谷物中ZEN免疫分析(ICA)的新熒光探針,線性動(dòng)態(tài)范圍為0.125~10 ng/mL,半數(shù)抑制濃度0.92~1.10 ng/ mL。ZEN的標(biāo)準(zhǔn)溶液和玉米樣品的檢測(cè)限分別為0.0625 ng/mL和3.6 μg/kg。Natalia等(2016)首次開發(fā)了二氧化硅殼包裝膠體量子點(diǎn)(QD@SiO2)的微量滴定板。用QD@SiO2標(biāo)記ZEN的結(jié)合物,在玉米和小麥中測(cè)定ZEN,檢測(cè)限分別為5.4、4.1 μg/kg。Li等(2016)將抗體/功能單體生物綴合物與交聯(lián)劑共聚合形成毒素免疫親和單片陣列,其具有很好的線性響應(yīng),檢出限低至0.029 μg/L,具有良好的均勻性(批內(nèi)和批間CV均小于8%)。
真菌毒素污染嚴(yán)重,且廣泛存在于食品鏈中,對(duì)人類及畜禽的健康造成了不同程度的危害。由于許多真菌毒素結(jié)構(gòu)相似且含量較低,需要采用高選擇性、準(zhǔn)確、快速、便捷的定性定量方法。對(duì)ZEN的檢測(cè)已從最初的TLC法、HPLC法,到快速發(fā)展的ELISA法,再到適配體法。目前隨著適配體技術(shù)的不斷進(jìn)步,其將逐步應(yīng)用于單類真菌毒素和多種真菌毒素同時(shí)檢測(cè),而這也逐漸成為今后真菌毒素檢測(cè)發(fā)展的普遍趨勢(shì)。參考文獻(xiàn)
[1]陳云良.糧食中真菌毒素檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展[J].食品安全導(dǎo)刊,2016,12:52.
[2]鄧歌,李兆周,陳秀金,等.免疫分析技術(shù)在玉米赤霉烯酮檢測(cè)中的應(yīng)用和發(fā)展[J].中國免疫學(xué)雜志,2015,2:286~289.
[3]范偉杰.飼料中霉菌毒素的檢測(cè)方法研究[J].飼料工業(yè),2016,37(11):65~67.
[4]葛文霞,柳旭偉,張文舉,等.飼料中玉米赤霉烯酮檢測(cè)及脫毒技術(shù)的研究進(jìn)展[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(1):95~97,124.
[5]龔珊,黨獻(xiàn)民,任正東,等.C18固相萃取柱凈化-超高效液相色譜法檢測(cè)谷物中玉米赤霉烯酮[J].糧食與飼料工業(yè),2015,6:60~63.
[6]桂海孌.基于核酸適配體的赭曲霉毒素A和伏馬毒素B-1檢測(cè)方法研究:[碩士學(xué)位論文][D].臨安:浙江農(nóng)林大學(xué),2015.
[7]何慶華,許楊.分子印跡技術(shù)在真菌毒素檢測(cè)中的應(yīng)用[J].食品科學(xué),2009,30(11):273~275.
[8]侯月娥,姜瑞麗,李旭寧,等.飼料和原料中玉米赤霉烯酮的危害及檢測(cè)方法探討[J].飼料與營養(yǎng),2014,1:30~33.
[9]李軍,于一茫,田苗,等.免疫親和柱凈化-柱后光化學(xué)衍生-高效液相色譜法同時(shí)檢測(cè)糧谷中的黃曲霉毒素、玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素A[J].色譜,2006,24(6):581~584.
[10]李翹,桑麗雅,陳笑笑,等.玉米赤霉烯酮膠體金快速檢測(cè)試劑板的研制[J].食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào),2013,4(2):457~462.
[11]梁穎,劉鄰渭,張春暉.液質(zhì)聯(lián)用同時(shí)檢測(cè)小麥中三種鐮刀菌毒素[J].中國糧油學(xué)報(bào),2006,21(6):160~162.
[12]劉剛,韓錚,聶冬霞,等.玉米赤霉烯酮快速間接競(jìng)爭(zhēng)酶聯(lián)免疫檢測(cè)技術(shù)研究及應(yīng)用[J].上海農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2015,1:92~96.
[13]劉勝利,王瑩,何成華,等.玉米赤霉烯酮的高效液相色譜-熒光法檢測(cè)技術(shù)研究[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2011,34(6):100~104.
[14]羅小虎,包清彬,楊瀟,等.高效液相色譜法測(cè)定玉米赤霉烯酮的方法研究[J].食品科技,2010,35(1):266~270.
[15]羅雪云,劉宏道,周桂蓮.食品衛(wèi)生微生物檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)手冊(cè)[M].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,1995.
[16]駱敏兒,唐勇,向軍儉,等.玉米赤霉烯酮單克隆抗體的制備及膠體金免疫層析法的建立[J].細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志,2013,29(7):729~733.
[17]馬智鴻,黃飚,屠薔,等.應(yīng)用生物素-鏈霉親和素的酶聯(lián)免疫吸附法檢測(cè)谷物中的玉米赤霉烯酮[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,15:6849~6851.
[18]邱云青,王偉,李鳳琴.食品中玉米赤霉烯酮化學(xué)發(fā)光酶免疫方法建立[J].中國公共衛(wèi)生,2010,26(12):1561~1563.
[19]饒正華,李蘭.IAC-HPLC熒光檢測(cè)法測(cè)定飼料中的玉米赤霉烯酮方法研究[J].飼料工業(yè),2012,33(11):54~57.
[20]單妹,許梓榮,馮建蕾.玉米赤霉烯酮對(duì)家畜繁殖性能和人體健康的影響[J].中國畜牧獸醫(yī),2006,33(1):3~5.
[21]隋凱,李軍,衛(wèi)鋒,等.免疫親和柱一高效液相色譜法檢測(cè)玉米中的玉米赤霉烯酮[J].中國衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志,2006,6:22~23.
[22]萬宇平,韓黎,吳鵬,等.玉米赤霉烯酮?dú)埩魴z測(cè)ELISA試劑盒的研制[J].江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2013,29(3):659~663.
[23]王文鳳.真菌毒素寡核苷酸適配體的篩選與應(yīng)用:[碩士學(xué)位論文][D].無錫:江南大學(xué),2012.
[24]王勇,趙新穎,石冬冬,等.小分子靶標(biāo)的核酸適配體篩選的研究進(jìn)展[J].Chinese Journal of Chromatography,2016,34(4):361~369.
[25]王元?jiǎng)P.玉米赤霉烯酮單克隆抗體的制備及高通量定性、定量檢測(cè)技術(shù)的研究:[碩士學(xué)位論文][D].上海:上海交通大學(xué),2014.
[26]吳文達(dá),王寶杰,蔡蘭芬,等.薄層色譜和高效液相色譜聯(lián)合檢測(cè)玉米赤霉烯酮的方法研究[J].畜牧與獸醫(yī),2010,42(7):17~20.
[27]肖治軍.豬玉米赤霉烯酮中毒與繁殖障礙[J].中國畜牧獸醫(yī),2005,32(2):45~46.
[28]張利強(qiáng),曹趙云,趙肖華,等.液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定小麥中T-2、ZEN及DON 3種鐮刀菌毒素[J].分析測(cè)試學(xué)報(bào),2012,31(2):169~173.
[29]張思思,陸繼偉,王少敏,等.國內(nèi)外真菌毒素檢測(cè)方法研究現(xiàn)狀及進(jìn)展[J].食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào),2016,7(7):2575~2586.
[30]張羽.糧食中玉米赤霉烯酮檢測(cè)方法的研究進(jìn)展和展望[J].中國食品安全,2015,18:69.
[31]Amelin V G,Karaseva N M,Tretyakov A V.Combination of the QuEChERS method with dispersive liquid-liquid microextraction and derivatization in the determination of mycotoxins in grain and mixed feed by gasliquid chromatography with an electron-capture detector[J].J Anal Chem,2013,68(6):552~557.
[32]Anna Y K,Sarah D S.Development of a colloidal gold!based lateralflow immunoassay for the rapid simultaneous detection of zearalenone and deoxynivalenol[J].Anal Bioanal Chem,2007,389(7):2103~2107.
[33]Afzali D,Padash M,Mostafavi A.Determination of trace amounts of zearalenone in beverage samples with an electrochemical sensor[J].Mycotoxin Res,2015,31:203~208.
[34]Chen X J,Huang Y K,Duan N,et al.Selection and identification of ssDNA aptamers recognizing zearalenone[J].Anal Bioanal Chem,2013,405:6573~6581.
[35]Chen Y Q,Chen Q,Han M M,et al.Development and optimization of a multiplex lateral flow immunoassay for the simultaneous determination of three mycotoxins in corn,rice and peanut[J].ELSEVIER,F(xiàn)ood Chemistry,2016,213:478~484.
[36]Conková E,Laciaková A,Pástorová B,et al.The effect of zearalenoneon some enzymatic parameters in rabbits[J].Toxicol Lett,2001,121(3):145~149.
[37]Duan H,Chen X L,Xu W,et al.Quantum-Do T submicrobead-based immunochromatographic assay for quantitative and sensitive detection of zearalenone[J].ELSEVIER,Talanta,2015,132:126~131.
[38]Ellington A D,Szostak J W.Nature,1990,346(6287):818.
[39]Ji J,Gu W S,Sun C,et al.A novel recombinant cell fluorescence biosen-
sor based on toxicity of pathway for rapid and simple evaluation of DON and ZEN[J].Scientific Repo Rts,2016,6:31270.
[40]KlussmannnS.The Aptamer Handbook:Functional Oligonu-cleotides and Their Applications.Weinheim:Wiley-VCH,2006.
[41]Lamont E A,He L,Warriner K,et al.A single DNA aptamer functions as a biosensor for ricin[J].Analyst,2011,136:3884~95.
[42]Li L,Xia L R,Zhao Y F,et al.Immune-a nity monolithic array with chemiluminescent detection for mycotoxins in Barley[J].Sci Food Agric,2017,97(8):2426~2435.
[43]Liu L,Chao Y J,Cao W,et al.A label-free Amperometric Immunosensor For Detection Of Zearalenone Based On Trimetallic Au-core/Ag Pt-shell Nanorattles And Mesoporous carbon[J].ELSEVIER.Analytica Chimica Acta,2014,847:29~36.
[44]Natalia V,Beloglazova,Astrid Foubert,et al.Sensitive QD@SiO2-based immunoassay for triplex determination of cereal-borne mycotoxins[J].ELSEVIER,Talanta,2016,160:66~71.
[45]Ostry V,Skarkova J.A HPTLC method for the determination ofthe mycotoxin zearalenone in cereal products[J].Mycotoxin Research,2003,19(1):64~68. [46]Priscilla Porto-Figueira,Irene Camacho,José S.Camara.Exploring the potentialities of an improved ultrasound-assisted quick,easy,cheap,effective,rugged,and safe-based extraction Technique combined with ultrahigh pressure liquidchromatography-fluorescence detection for determination of Zearalenone in Cereals[J].ELSEVIER,Journal Of Chromatography A,2015,14(8):187~196.
[47]SchaafsmaA W,Nicol R W,Savard M E,et al.Analysis of fusarium toxins in maize and wheat using thin layer chromatography[J].Mycopathologia,1998,14(22):107~113.
[48]Shim W B,Mun H,Joung H A,et al.Chemiluminescencecompetitive aptamer assay for the detection of aflatoxin B1 in corn samples[J].Food Control,2014,36(1):30~35.
[49]Sun Y N,Hu X F,Zhang Y,et al.Development of an Immunochromatographic Strip Test for the Rapid Detection of Zearalenone in Corn[J].A-gric.Food Chem,2014,62:11116~11121.
[50]Sweccha Joshi,Anna Segarra-Fas,Jeroen Peters,et al.van Beek,and Michel W.F.Nielen.Multiplex surface plasmon resonance biosensing and its transferability towards imaging nanoplasmonics for detection of mycotoxins in barley[J].Analyst,2016,141:1307~1318.
[51]Tomaszewski J,Miturski R,Semczuk A,et al.Tissue zearalenone concentration in normal,hyperplastic and neoplastic human endometrium[J].Ginekol Pol,1998,69(5):363~366.
[52]Tuerk C,Gold L.Science,1990,249(4968):505.
[53]Urusov A E,Petrakova A V,Kuzmin P G,et al.Application of gold nanoparticles produced by laser ablation for immunochromatographic assay labeling[J].ELSEVIER,Analytical Biochemistry,2015,491:65~71.
[54]Vlata Z,Porichis F,Tzanakakis G,et al.A study of zearalenone cy-totoxicity on human peripheral blood mononuclear cells[J].Toxicol Lett,2006,165(3):274~281.
[55]Wang Z P,Li X B,Wang Z.China Animal Husbandry and Veterinary Medicine[J].2009,36(5):216.
[56]Yue S,Jie X,Wei L,et al.Simultaneous detection of ochratoxin A and fumonisin B1 in cereal samples using an aptamer-photonic crystal encoded suspension array[J].Anal Chem,2014,86(23):11797~802.
[57]Yumbe Guevara B E,Imoto T,Yoshizawa T.Effects of heating proce-dures on deoxynivalenol,nivalenol and zearalenone levels in naturally contaminated barley and wheat[J].Food Addit Cont-am,2003,20(12):1132~1140. [58]Zhan S N,Huang X L,Chen R,et al.Novel fluorescent ELISA for the sensitive detection of zearalenone based on H2O2-sensitive quantum dots for signal transductio[J].ELSEVIER,Talanta,2016,158:51~56.
[59]Zhang W,Wang H,Wang J,et al.Multiresidue determination of zeranol and related compoundsin bovine muscle by gas chromatography/massspectrometry with immunoaffinity cleanup[J].Journal of AOAC iternational,2006,89(6):1677~1681.
[60]Zhang X,Wang X,Sun M J,et al.A Magnetic Nanoparticle Based Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Sensitive Quantification of Zearalenone in Cereal and Feed Samples[J].Toxins,2015,7:4216~4231
[61]Zollne P.Determination of zearalenone in grains by high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry after solid-phase extraction with RP-18 columns or immunoaffinity columns[J].Journal ofchromatography A,1999,12(2):167~174.■
Zearalenone(ZEN)is a estrogenic mycotoxin produced by Fusarium graminearum.The research progress of detection methods of ZEN were reviewed in this paper,which provided a reference for the exploration of the detection of mycotoxins such as ZEN.
zearalenone;detection methods;research progress
S816.17
A
1004-3314(2017)16-0035-05
10.15906/j.cnki.cn11-2975/s.20171609
國家自然科學(xué)基金(31601974)
*通訊作者