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      不同浸提劑及對(duì)照設(shè)置對(duì)土壤脲酶活性測(cè)定的影響

      2017-03-21 10:49:41李秀芝黃斌范弟武
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年11期
      關(guān)鍵詞:土壤

      李秀芝+黃斌+范弟武

      摘要:關(guān)于土壤脲酶活性的測(cè)定,不同學(xué)者選用的浸提劑以及對(duì)照的設(shè)置往往大相徑庭,對(duì)于這些不同處理方式測(cè)得的脲酶活性的差異,目前還缺乏相應(yīng)的比較研究。選用1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl、2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4、2.5 mol/L KCl、2.0 mol/L KCl以及1.0 mol/L KCl等5種不同的浸提劑,設(shè)置對(duì)照培養(yǎng)2 h與對(duì)照不培養(yǎng)2種對(duì)照方法,以洪澤湖濕地土壤為例,比較不同浸提劑及對(duì)照設(shè)置方法間土壤脲酶活性的差異。結(jié)果表明,在對(duì)照培養(yǎng)條件下,測(cè)得的脲酶活性最大達(dá)到0.098 μg/(kg·h),浸提劑1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl;脲酶活性最小為0.035 μg/(kg·h),浸提劑2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4。與對(duì)照不培養(yǎng)組相比,對(duì)照培養(yǎng)2 h組更容易獲得較高的脲酶活性,當(dāng)浸提劑分別為2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4、2.0 mol/L KCl、1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl 時(shí),對(duì)照培養(yǎng)組土壤脲酶活性分別是對(duì)照不培養(yǎng)的1.6、3.0、7.5倍。對(duì)于不同的抑制劑而言,1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl 是1.0 mol/L KCl的1.58 倍,而2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4與2.5 mol/L KCl的差異較小,差值僅為0.001 μg/(kg·h)。

      關(guān)鍵詞:土壤;脲酶活性;浸提劑;對(duì)照培養(yǎng)

      中圖分類號(hào): S154.2 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

      文章編號(hào):1002-1302(2016)11-0427-03

      在土壤酶中,脲酶催化土壤中尿素酰胺態(tài)氮水解為銨態(tài)氮,在土壤氮元素的循環(huán)與轉(zhuǎn)化過(guò)程中扮演重要角色[1-3]。脲酶活性是評(píng)價(jià)生態(tài)系統(tǒng)氮素轉(zhuǎn)化機(jī)制及其功能演變時(shí)最常見的酶學(xué)指標(biāo)。土壤脲酶活性的測(cè)定有比色法、擴(kuò)散法、尿素剩余量測(cè)定法、電極法、CO2量度法等[4-6]多種方法,其中比色法由于測(cè)量結(jié)果精確性較高、重現(xiàn)性較好、儀器設(shè)備簡(jiǎn)單,應(yīng)用最為廣泛。非甲苯法[7]因?yàn)闆](méi)有甲苯的加入因而更加注重脲酶對(duì)于尿素的水解功能,是比色法中最常應(yīng)用的方法。對(duì)于非甲苯法,可以選擇不同的浸提劑,如有的學(xué)者采用 2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4混合液或者1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl,在浸提劑加入的同時(shí)加入抑制劑阻止脲酶的進(jìn)一步水解;而有的學(xué)者直接采用2.0 mol/L KCl進(jìn)行浸提。并且對(duì)于對(duì)照的處理方法也不盡相同,有的是在土樣培養(yǎng)之后加入底物尿素[7];有的則是與處理同步加入底物,但對(duì)照處理不進(jìn)行培養(yǎng)[8]。抑制劑是否可以有效地抑制酶的活性、這些不同的處理方式測(cè)出的脲酶活究竟會(huì)有什么差異,目前還缺乏相應(yīng)的比較與研究。本研究以洪澤湖濕地為原型區(qū)域,采集濕地沉積物樣品,采用非甲苯法并使用5種不同的浸提劑(1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl、2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4、2.5 mol/L KCl、2.0 mol/L KCl、1.0 mol/L KCl),同時(shí)設(shè)立對(duì)照培養(yǎng)2 h與對(duì)照不培養(yǎng)2種不同的對(duì)照試驗(yàn),對(duì)脲酶活性進(jìn)行檢測(cè),以期明確不同浸提劑及不同對(duì)照設(shè)置對(duì)土壤脲酶活性測(cè)定的影響。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)材料

      試驗(yàn)土壤取自于洪澤湖濕地,取0~20 cm的表層沉積物自然風(fēng)干后,碾碎,過(guò)2 cm篩,備用。供試土樣的全氮、全碳含量分別為0.675、0.1 g/kg。

      1.2 試驗(yàn)方法

      1.2.1 脲酶活性的測(cè)定 選用水楊酸鈉-二氯異氰尿酸鈉比色法測(cè)定脲酶活性[6-11]。(1)稱取5 g土壤樣品,置于 100 mL 的有蓋容器內(nèi),加入2.5 mL 0.08 mol/L尿素水溶液,密封后在37 ℃下恒溫培養(yǎng)2 h。培養(yǎng)結(jié)束后,打開塞子,加入2.5 mL蒸餾水,然后加入50 mL 5種不同的浸提劑(1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl、2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4、2.5 mol/L KCl、2.0 mol/L KCl、1.0 mol/L KCl)振蕩30 min,轉(zhuǎn)速180 r/min,將振蕩后的土壤懸濁液迅速過(guò)濾,取1.0 mL濾液于10 mL容量瓶中,加蒸餾水定容至刻度線,搖勻,倒入25 mL小燒杯中,并依次加入 5 mL 的水楊酸鈉和2 mL的二氯異氰尿酸鈉溶液。室溫下靜置30 min,以蒸餾水為參比,用紫外可見分光光度計(jì)在 690 nm 處測(cè)吸光度。每個(gè)樣品3個(gè)重復(fù),比較不同浸提劑對(duì)于土壤脲酶活性的差異。

      1.2.2 第1種對(duì)照的設(shè)置 稱取5 g土壤樣品置于100 mL的有蓋容器內(nèi),加入2.5 mL蒸餾水,密封,在37 ℃下恒溫培養(yǎng)2 h。培養(yǎng)結(jié)束后,打開塞子,加入浸提劑,再加入 2.5 mL 0.08 mol/L尿素水溶液(先加浸提劑再加尿素)。之后的步驟與處理試驗(yàn)中相同。

      1.2.3 第2種對(duì)照的設(shè)置 在處理試驗(yàn)與對(duì)照試驗(yàn)中,處理與對(duì)照同時(shí)按相同試驗(yàn)步驟進(jìn)行的,但對(duì)處理進(jìn)行2 h培養(yǎng),對(duì)照不培養(yǎng),分析不同對(duì)照的設(shè)置對(duì)脲酶活性測(cè)定結(jié)果的影響。該對(duì)照下浸提劑使用1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl、2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4、2.0 mol/L KCl。比較不同對(duì)照對(duì)于脲酶活性的差異。

      1.2.4 脲酶活性的計(jì)算 脲酶活性用1 g干土1 h水解尿素產(chǎn)生銨態(tài)氮的量表示。

      U=(T-CK)×17×55/(5×2)。

      式中:U表示脲酶活性,μg/(g·h);T表示處理吸光度從標(biāo)準(zhǔn)曲線中查得銨態(tài)氮的濃度,μg/mL;CK表示對(duì)照組吸光度從標(biāo)準(zhǔn)曲線中查得的銨態(tài)氮濃度,μg/mL;17為取1.0 mL濾液共稀釋17倍;55是處理和對(duì)照濾液制備前稀釋的體積,mL;5為沉積物的干質(zhì)量,g;2為換算成1 h的系數(shù),h。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 不同浸提劑對(duì)于脲酶活性的影響

      由圖1表明,對(duì)照培養(yǎng)條件下當(dāng)浸提劑為1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl時(shí),脲酶活性達(dá)到最強(qiáng),為0.098 μg/(kg·h),2.0 mol/L KCl次之,浸提劑為 2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4測(cè)得的脲酶活性最弱,為0.035 μg/(kg·h),最大值為最小值的2.8倍。當(dāng)浸提劑分別為 1.0 mol/L KCl、2.0 mol/L KCl、2.5 mol/L KCl時(shí),脲酶活性分別為0.062、0.072 0、0.036 μg/(kg·h),KCl濃度從 1.0 mol/L 增至2.0 mol/L時(shí),脲酶活性增加 0.01 μg/(kg·h);當(dāng)濃度繼續(xù)升高至2.5 mol/L時(shí),其脲酶活性比2.0 mol/L KCl 低 50%。比較1.0、2.0、2.5 mol/L KCl等3種不同KCl離子濃度浸提劑相應(yīng)酶活性的變化可以看出,脲酶活性與浸提劑的離子濃度并不是呈現(xiàn)明顯的正相關(guān)關(guān)系,而是先增強(qiáng)后減弱,在2.0 mol/L KCl時(shí)測(cè)得的脲酶活性最強(qiáng),這可能是因?yàn)榈蜐舛冉釀?duì)銨根離子的提取效率相對(duì)較低,但并不是濃度越高就越有利于提??;高濃度可能影響到脲酶活性的比色,進(jìn)而減弱脲酶活性。從表1可以看出,離子濃度的升高,使得脲酶活性差異顯著。不同濃度下,脲酶活性之間均差異顯著(P<0.05)。

      分別對(duì)1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl與1.0 mol/L KCl、2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4與2.5 mol/L KCl浸提劑對(duì)應(yīng)的酶活性進(jìn)行比較,結(jié)果見圖1。0.01 mol/L HCl的加入使得測(cè)定的土壤脲酶活性增強(qiáng)58%,可見HCl能有效抑制脲酶對(duì)尿素的進(jìn)一步水解,增強(qiáng)脲酶活性,特別是第1種對(duì)照處理。第1種對(duì)照是先于尿素將提取劑與抑制劑混合液加入到土壤中,測(cè)得的脲酶活性是0.098 μg/(kg·h);第2種對(duì)照測(cè)得的脲酶活性是 0.013 μg/(kg·h)。2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4與2.5 mol/L KCl等2種浸提劑測(cè)得的脲酶活性略有差異,分別為0.035、0.036 0 μg/(kg·h)。

      由圖2表明,第2種對(duì)照中,2.0 mol/L KCl作為浸提劑測(cè)得的脲酶活性最強(qiáng),為0.024 μg/(kg·h);1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl作為浸提劑時(shí)測(cè)得的土壤脲酶活性最弱。1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl作為浸提劑明顯弱于2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4與2.0 mol/L KCl。

      2.2 不同對(duì)照設(shè)置對(duì)于脲酶活性的影響

      分別選取1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl、2.5 mol/L KCl+0.1mmol/L Ag2SO4、2.0 mol/L KCl分別進(jìn)行不同對(duì)照處理脲酶活性測(cè)定。一組對(duì)照設(shè)置方法是在培養(yǎng)(2 h)結(jié)束后再加入底物尿素(對(duì)照培養(yǎng)),另一組對(duì)照試驗(yàn)過(guò)程與處理組同時(shí)加入底物,但是對(duì)照不進(jìn)行2 h的培養(yǎng)(對(duì)照不培養(yǎng))。1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl、2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4、2.0 mol/L KCl作為浸提劑時(shí),對(duì)照培養(yǎng)組土樣脲酶活性明顯高于對(duì)照不培養(yǎng)組,當(dāng)浸提劑為 2.5 mol /L KCl、0.1 mmol/L Ag2SO4時(shí),培養(yǎng)組脲酶活性是不培養(yǎng)組的1.6倍;當(dāng)浸提劑是2.0 mol/L KCl是,培養(yǎng)2 h的脲酶活性是不培養(yǎng)的3倍,特別是在浸提劑為1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl時(shí),對(duì)照培養(yǎng)測(cè)得的土壤脲酶活性是對(duì)照不培養(yǎng)的7.53倍,第2種對(duì)照下3種浸提劑得到的脲酶活性均弱于第1種對(duì)照中相同浸提劑得到的脲酶活性(圖3)。

      3 討論

      從水解尿素的土壤脲酶發(fā)現(xiàn)以來(lái),國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)其來(lái)源、作用、性質(zhì)等進(jìn)行了研究,取得了許多重要進(jìn)展[1-4,12-15]。非甲苯法顧名思義是指試驗(yàn)過(guò)程中沒(méi)有甲苯的加入,甲苯在脲酶活性測(cè)定方面[2]被用作土樣的前處理試劑,它的加入可以殺死土壤中的微生物,使得水解脲酶產(chǎn)生的銨態(tài)氮全部來(lái)自于脲酶對(duì)于尿素的水解。目前,對(duì)于脲酶活性的測(cè)定許多學(xué)者選用的是添加甲苯的方法[1,9,16],然而對(duì)于甲苯對(duì)脲酶活性影響的研究結(jié)論[7,16-19]卻大相徑庭,如Dalal等認(rèn)為甲苯能降低脲酶活性[18],Tabatabai等卻發(fā)現(xiàn)甲苯會(huì)增大脲酶活性[19]。此外,Kandeler等的研究結(jié)果表明,甲苯作為一種外來(lái)添加物,對(duì)于脲酶活性的測(cè)定有著明顯但不確定的影響,因而非甲苯法測(cè)得的脲酶活性可能更加接近于土壤脲酶活性的真實(shí)數(shù)值[7]。

      土壤脲酶活性的檢測(cè),往往選擇2.0 mol/L KCl作為浸提劑。然而,Tabatabai等為了防止浸提過(guò)程中脲酶繼續(xù)水解樣品進(jìn)而對(duì)試驗(yàn)結(jié)果產(chǎn)生誤差,建議在浸提過(guò)程中添加HCl或者Ag2SO4等來(lái)抑制脲酶活性[7-8]。此外,對(duì)于浸提劑的濃度,也有學(xué)者使用高于或低于2.0 mol/L KCl的濃度來(lái)測(cè)定離子濃度對(duì)土壤脲酶活性的影響[10]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,對(duì)于不同濃度(1.0、2.0、2.5 mol/L)KCl浸提劑而言,測(cè)得的脲酶活性與離子濃度并不是明顯的正相關(guān)關(guān)系,而是先增強(qiáng)后減弱,浸提劑的效率并非因?yàn)殡x子濃度的提高而增強(qiáng),浸提劑離子濃度為2.0 mol/L時(shí)測(cè)得的脲酶活性最強(qiáng)。這可能是由于低濃度浸提劑對(duì)NH4+的提取效率相對(duì)較低,但并不是濃度越高就越有利于提取,高濃度可能影響到脲酶活性的比色,進(jìn)而降低脲酶活性。

      對(duì)于HCl和Ag2SO4這2種抑制劑而言,HCl的加入能夠明顯增強(qiáng)脲酶活性,這可能是由于抑制劑的加入提高了浸提率,或者HCl能夠有效抑制尿素的進(jìn)一步水解,進(jìn)而提高脲酶活性。但是Ag2SO4產(chǎn)生的抑制效果不明顯,這是因?yàn)锳g2SO4對(duì)脲酶沒(méi)有抑制作用,且2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4中浸提劑2.5 mol/L KCl的離子濃度太高,在影響比色的同時(shí)掩蓋了抑制劑的抑制效果。

      對(duì)照培養(yǎng)2 h組更易于獲得較高的脲酶活性,原因在于對(duì)照培養(yǎng)后土壤留有余溫,使得尿素加入后,脲酶會(huì)借助余溫繼續(xù)水解尿素,進(jìn)而導(dǎo)致測(cè)得的脲酶活性強(qiáng)于對(duì)照不培養(yǎng)組。對(duì)于脲酶活性較弱的土樣在測(cè)定脲酶活性時(shí)建議選擇對(duì)照培養(yǎng)的處理方式。

      4 結(jié)論

      不同浸提劑對(duì)應(yīng)的脲酶活性具有明顯差異。對(duì)照培養(yǎng)條件下當(dāng)浸提劑為1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl時(shí),脲酶活性達(dá)到最高,為0.098 μg/(kg·h);浸提劑為2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/LAg2SO4時(shí),測(cè)得的脲酶活性最低,為 0.035 μg/(kg·h)。對(duì)照不培養(yǎng)條件下,浸提劑為2 mol/L KCl時(shí),測(cè)得的最強(qiáng)脲酶活性為0.024 μg/(kg·h);浸提劑1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl時(shí),測(cè)得的最小脲酶活性為0.013 μg/(kg·h)。

      對(duì)照培養(yǎng)組比對(duì)照不培養(yǎng)組更容易獲得較強(qiáng)的脲酶活性,當(dāng)浸提劑分別為2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4、2.0 mol/L KCl、1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl 時(shí),對(duì)照培養(yǎng)組土壤脲酶活性分別是對(duì)照不培養(yǎng)的1.6、3.0、7.5倍。對(duì)照培養(yǎng)測(cè)得的脲酶活性高于對(duì)照不培養(yǎng)組,在今后的試驗(yàn)中對(duì)于土壤脲酶活性較弱的土樣建議采用對(duì)照培養(yǎng)的方式處理。

      抑制劑的加入能有效抑制脲酶進(jìn)一步水解,1.0 mol/L KCl+0.01 mol/L HCl 的脲酶活性是1.0 mol/L KCl的1.58 倍,而2.5 mol/L KCl+0.1 mmol/L Ag2SO4與2.5 mol/L KCl的差異較小,僅為0.001 μg/(kg·h)。對(duì)于2種抑制劑而言,0.01 mol/L HCl的抑制效果好于0.1 mmol/L Ag2SO4。

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