李小龍,王榮麗
(西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院,四川瀘州 646000)
特發(fā)性肺纖維化發(fā)病機制的研究進展
李小龍,王榮麗
(西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院,四川瀘州 646000)
特發(fā)性肺纖維化(IPF)是一種以漸進性肺間質(zhì)纖維化為主要特征的疾病,其病理改變?yōu)榉闻萆掀ぜ毎麚p傷、成纖維細胞大量聚集及細胞外基質(zhì)沉積。肺泡上皮反復(fù)損傷與修復(fù)是IPF的起始,反復(fù)損傷的肺泡上皮細胞一方面分泌大量的轉(zhuǎn)化生長因子β1(TGF-β1)、血小板源性生長因子等細胞因子,誘導(dǎo)成纖維細胞聚集及肌成纖維細胞灶的形成,另一方面發(fā)生上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT),通過以TGF-β1為主的多種復(fù)雜途徑調(diào)控IPF的發(fā)生、發(fā)展。IPF的發(fā)病機制涉及多種學(xué)說,包括損傷修復(fù)學(xué)說、EMT學(xué)說、自噬不足、端??s短及表觀遺傳學(xué)改變(DNA甲基化、組蛋白去乙?;?等。
特發(fā)性肺纖維化;損傷修復(fù)學(xué)說;上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)化學(xué)說;自噬不足;端??s短;表觀遺傳學(xué)改變
特發(fā)性肺纖維化(IPF)是一種慢性、進行性、纖維化性間質(zhì)性肺炎,主要臨床特點為慢性進行性呼吸困難、肺間質(zhì)浸潤、肺順應(yīng)性降低以及肺內(nèi)氣體交換受損等。IPF被認為是一種異常的生物學(xué)進程,過多的細胞外基質(zhì)(ECM)分泌導(dǎo)致肺泡上皮細胞損傷,最終引起肺組織變形、瘢痕組織形成及肺功能不可逆受損[1]。目前認為,成纖維細胞匯聚、ECM分泌及沉積、長期組織損傷與修復(fù)是其主要病理特征。本研究就IPF的發(fā)病機制作一綜述。
損傷修復(fù)學(xué)說認為,IPF是反復(fù)的肺泡上皮損傷引起修復(fù)異常所導(dǎo)致[2]。IPF的纖維化進程始于被異常激活的肺泡上皮細胞(AECS),AECS可分泌能夠誘導(dǎo)成纖維細胞及肌成纖維細胞增殖的細胞介質(zhì),如轉(zhuǎn)化生長因子β1(TGF-β1)、血小板源性生長因子(PDGF)等,而此類介質(zhì)主要通過刺激間充質(zhì)細胞增殖、吸引招募循環(huán)纖維細胞、刺激肺泡上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)等途徑誘導(dǎo)成纖維細胞及肌成纖維細胞灶的形成[2]。成纖維細胞及肌成纖維細胞灶可分泌以膠原為主的ECM,從而導(dǎo)致肺組織疤痕形成及結(jié)構(gòu)破壞。
下呼吸道中存在的某些細菌菌落被認為參與了肺泡上皮的損傷與修復(fù)。Molyneaux等[3]以包含兩種基因編碼抗菌肽(SLPI、CAMP)的基因模塊為觀察指標(biāo),發(fā)現(xiàn)其在IPF組織中表達升高,推測下呼吸道細菌菌落可持續(xù)性刺激并反復(fù)損傷肺泡,從而參與IPF的發(fā)生與發(fā)展。胃食管返流(GER)也被認為是IPF發(fā)生的一種重要因素。多數(shù)學(xué)者認為,長期GER可造成胃酸的氣道誤吸,導(dǎo)致肺組織長期損傷,從而促進IPF的發(fā)生與發(fā)展[4,5]。肺泡上皮細胞在胃酸長期的刺激下受到損傷,血漿蛋白滲出至肺泡及間質(zhì),從而在肺泡及間質(zhì)中形成纖維蛋白沉積。此外,受損后的肺泡上皮還能分泌多種促纖維化細胞因子,如PDGF、締組織生長因子、內(nèi)皮素1等,進而導(dǎo)致IPF的發(fā)生[6]。吸煙可導(dǎo)致肺氣腫的發(fā)生以及肺組織中基金屬蛋白酶表達升高,并影響肺組織中巨噬細胞對外來刺激顆粒及病原菌的反應(yīng)。上皮細胞在該過程中最先暴露并逐漸出現(xiàn)凋亡及壞死[7,8],上皮細胞凋亡及壞死后殘留的碎片可導(dǎo)致TOLL樣受體、甲酰肽受體及C型凝集素表達升高,進而影響肺泡上皮細胞的修復(fù)[8,9]。
EMT即上皮細胞在某些因素及途徑的影響下轉(zhuǎn)變?yōu)榫哂虚g質(zhì)細胞表型的生物學(xué)過程,其中E鈣粘連蛋白(E-cad)表達下調(diào)及缺失是EMT最常見的特征之一,成纖維細胞特異蛋白1(FSP1)、波形蛋白、α平滑肌肌動蛋白等細胞骨架標(biāo)志蛋白表達上調(diào)以及細胞外蛋白(如纖粘連蛋白及層粘連蛋白等)表達下調(diào)都被證實參與了EMT的發(fā)生、發(fā)展。TGF-β1是TGF家族成員之一,在肺組織中可由肺巨噬細胞及上皮細胞分泌,在肺組織外則主要由巨噬細胞、血小板及內(nèi)皮細胞等分泌。TGF-β1能夠促進成纖維細胞及肌成纖維細胞合成Ⅰ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ型膠原蛋白,促進成纖維細胞的分化、增殖以及損傷組織的修復(fù)[10]。根據(jù)TGF-β1是否通過Smad蛋白參與IPF的發(fā)生,其相關(guān)通路可分為Smad蛋白依賴通路和非Smad蛋白依賴通路。
2.1 Smad蛋白依賴通路 在Smad蛋白依賴通路中,TGF-β1先與Ⅱ型受體結(jié)合,然后再與Ⅰ型受體結(jié)合形成四聚體復(fù)合物,該四聚體復(fù)合物再次激活Ⅰ型受體。Smad2、3蛋白與激活后的Ⅰ型受體結(jié)合,通過Smad2、3蛋白磷酸化而被活化?;罨蟮腟mad2、3蛋白與其共同通路Smad4蛋白結(jié)合形成三聚體,并從細胞質(zhì)轉(zhuǎn)移至細胞核而影響靶基因的調(diào)控[10]。而Smad6、7蛋白作為兩種受體抑制性蛋白,能夠與Ⅰ型受體結(jié)合,從而抑制Smad2、3蛋白活化,負性調(diào)控Smad蛋白依賴通路[11]。
2.2 非Smad蛋白依賴通路 在非Smad蛋白依賴通路中,絲裂原活化蛋白激酶通路(MAPK通路)被認為是最關(guān)鍵性的通路,目前已發(fā)現(xiàn)的MAPK通路包括細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK)信號通路、Jun-氨基末端激酶(c-JNK)信號通路、p38絲裂原活化激酶(p38MAPK)信號通路及細胞外信號調(diào)節(jié)激酶5(ERK5)信號通路,共同參與了細胞的增殖、轉(zhuǎn)化及凋亡等過程[12]。p38MAPK在被激活的TGF-β1受體復(fù)合物的影響下逐步活化,誘導(dǎo)相關(guān)靶基因轉(zhuǎn)錄,進而調(diào)節(jié)EMT蛋白表達,該通路也被認為與IPF的關(guān)系最為緊密[13,14]。除MAPK通路外,非Smad蛋白依賴通路還包括Wnt/Wingless、Rho/ROCK、過氧化物酶體增生物激活受體(PPAR)等通路。在Wnt/Wingless通路中,核β-catenin在細胞中大量堆積,不僅能夠誘導(dǎo)鄰近上皮細胞凋亡,影響肺組織損傷部位的再上皮化,還可以引起上皮細胞E-cad表達下降,從而參與調(diào)控EMT[15]。在Rho/ROCK通路中,ROCK可通過心肌相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子(MRTFs)來調(diào)節(jié)細胞骨架蛋白表達,并影響細胞黏附及移動能力,進而參與EMT[16]。PPAR是核激素受體,主要包括α、β及γ三個亞型。PPAR-γ被激活后能夠產(chǎn)生多種生物學(xué)效應(yīng),如細胞增殖分化、纖維化、糖代謝、炎癥及腫瘤等,但其抗肺纖維化的機制目前尚未完全清楚。PPAR-γ可能通過抑制TGF-β1及Ⅰ型膠原產(chǎn)生、降低E-cad表達、抑制PDGF誘導(dǎo)的P13K/AKT信號途徑等參與抗肺纖維化過程[17,18]。
microRNA被認為參與了多種病理進程(如癌癥、心、肝及腎臟纖維化等)及EMT的調(diào)節(jié)過程[19]。miR-21及miR-26a也被認為參與了EMT[20,21]。Liang等[20]研究表明,敲低miR-26a表達可使A549細胞發(fā)生明顯的EMT,而上調(diào)miR-26a表達則可減輕EMT及纖維化程度。
細胞自噬被認為是一種溶酶體依賴的細胞自我降解途徑,機體通過細胞自噬途徑維持自身動態(tài)平衡。在細胞自噬過程中,衰老的蛋白及相關(guān)細胞器(如線粒體)等通過自噬細胞吞噬包裹后,運送至溶酶體,進一步降解清除或被再利用[22]。細胞自噬主要分為分子伴侶介導(dǎo)的自噬、微自噬及巨自噬,目前巨自噬研究最為廣泛。自噬不足可促進肺肌成纖維細胞ECM沉積,從而參與肺纖維化的發(fā)生。Araya等[23]研究發(fā)現(xiàn),抑制微管相關(guān)蛋白質(zhì)1輕鏈3B(LC3B)及ATG自噬基因后,細胞Ⅰ型膠原及α膠原表達升高,而誘導(dǎo)自噬可阻止肌成纖維細胞分化、減少ECM分泌、加速肺泡上皮細胞衰老。上述研究提示,細胞自噬可能夠阻止IPF的進展。目前研究認為,細胞自噬的調(diào)控通路主要有mTOR信號通路、Bcl-2家族蛋白信號通路等,而內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激、氧化應(yīng)激及缺氧等均可參與細胞自噬及IPF的發(fā)生[23]。LC3B是自噬活化的標(biāo)志物,在被誘導(dǎo)自噬的肺組織肌成纖維細胞 LC3B表達升高。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激作為一種保護機制參與了細胞自噬,從而影響IPF的發(fā)生與發(fā)展,但是其具體機制仍需深入研究。
端粒是由多個重復(fù)的DNA序列形成的帽狀結(jié)構(gòu),位于真核生物染色體的末端,具有保護染色體、調(diào)控基因及細胞凋亡等作用。端粒酶主要是由端粒酶RNA元件(TERC)、端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶(TERT)及相關(guān)蛋白組成的一種能夠維持端粒長度、抑制端粒縮短的酶。端粒酶經(jīng)TGF-β1等相關(guān)細胞因子作用后可引起成纖維細胞分化為肌成纖維細胞,提示端粒酶能夠調(diào)節(jié)肌成纖維細胞的分化。有學(xué)者在家族性及散在性IPF患者血液中檢測到TERC及TERT基因突變[25],而突變的TERT基因又能影響端粒長度、降低端粒酶活性,進而參與IPF的發(fā)生,但其具體機制尚待進一步研究。
5.1 DNA甲基化 DNA甲基化不會改變DNA序列,但改變了染色體的結(jié)構(gòu),可抑制基因表達。研究發(fā)現(xiàn),IPF患者肺成纖維細胞中存在抑癌基因Thy-1啟動子區(qū)域甲基化,使Thy-1表達降低,進而導(dǎo)致肺成纖維細胞抗凋亡能力增強[26]。細胞黏附相關(guān)基因CDH1甲基化可導(dǎo)致E-cad表達降低,進而促進EMT進程,從而參與IPF的發(fā)生。
5.2 組蛋白去乙?;?組蛋白去乙?;?HDAC)是一類能夠影響染色體結(jié)構(gòu)及基因表達的蛋白酶。正常情況下,HDAC與組蛋白乙?;?HAT)處于動態(tài)平衡,而HDAC能夠使蛋白乙?;?,增加其與DNA的親和力,從而抑制基因轉(zhuǎn)錄,在IPF等以纖維化為主要特征的慢性疾病中發(fā)揮重要作用。研究表明,HDAC在纖維母細胞抗凋亡、增殖及EMT過程中發(fā)揮積極作用,而組蛋白去乙?;种苿﹦t可抑制上述作用[27],提示組蛋白去乙?;cIPF的發(fā)生有緊密聯(lián)系。
綜上所述,IPF是一類由多因素參與而導(dǎo)致的漸進性肺間質(zhì)纖維化疾病。肺泡上皮反復(fù)損傷與修復(fù)是IPF的起始,反復(fù)損傷的肺泡上皮細胞一方面分泌大量的TGF-β1、PDGF等細胞因子,誘導(dǎo)成纖維細胞聚集及肌成纖維細胞灶的形成,另一方面發(fā)生EMT,通過以TGF-β1為主的多種復(fù)雜途徑調(diào)控IPF的發(fā)生、發(fā)展。端??s短及表觀遺傳學(xué)改變是近年來新發(fā)現(xiàn)的IPF發(fā)生機制,目前尚處于初始研究階段,仍需深入探討。
[1] Stella GM, Balestro E. Idiopathic pulmonary fibrosis landscapes: looking glass from pathology to therapy[J]. Minerva Med, 2015,106(4 Suppl 3):17-24.
[2] King TE Jr, Pardo A, Selman M. Idiopathic pulmonary fibrosis[J]. Lancet, 2011,378(9807):1949-1961.
[3] Molyneaux PL, Willis Owen SA, Cox MJ, et al. Host-Microbial interactions in idiopathic pulmonary fibrosis[J]. Am J Respir Crit Care Med, 2017,195(12): 1640-1650.
[4] Fahim A, Crooks M, Hart SP. Gastroesophageal reflux and idiopathic pulmonary fibrosis: a review[J]. Pulm Med, 2011,2011(12):613-634.
[5] Lee JS, Collard HR, Raghu G, et al. Does chronic microaspiration cause idiopathic pulmonary fibrosis[J]. Am J Med, 2010,123(4):304-311.
[6] 齊軍,孔靈菲.特發(fā)性肺纖維化與胃食管反流關(guān)系的研究進展[J].中國實用內(nèi)科雜志,2013,33(7):573-576.
[7] Kishaba T, Nagano H, Nei Y, et al. Clinical characteristics of idiopathic pulmonary fibrosis patients according to their smoking status[J]. J Thorac Dis, 2016,8(6):1112-1120.
[8] Oh CK, Murray LA, Molfino NA. Smoking and idiopathic pulmonary fibrosis[J]. Pulm Med, 2012(2012):808260-808273.
[9] Shaykhiev R, Krause A, Salit J, et al. Smoking-dependent reprogramming of alveolar macrophage polarization: implication for pathogenesis of chronic obstructive pulmonary disease.[J]. J Immunol, 2009,183(4):2867-2883.
[10] 董曉峰,趙靜,王獻華,等.轉(zhuǎn)化生長因子β化相關(guān)基因在肺纖維化中的作用[J].現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué),2012,39(6):1548-1552.
[11] Mu Y, Gudey SK, Landstrom M. Non-Smad signaling pathways[J]. Cell Tissue Res, 2012,347(1):11-20.
[12] Sun Y, Liu WZ, Liu T, et al. Signaling pathway of MAPK/ERK in cell proliferation, differentiation, migration, senescence and apoptosis[J]. J Recept Signal Transduct Res, 2015,35(6):600-604.
[13] Mu Y, Gudey SK, Landstrom M. Non-Smad signaling pathways[J]. Cell Tissue Res, 2012,347(1):11-20.
[14] Zaringhalam J, Akhtari Z, Eidi A, et al. Relationship between serum IL10 level and p38MAPK enzyme activity on behavioral and cellular aspects of variation of hyperalg- esia during different stages of arthritis in rats[J]. Inflammopharmacology, 2014,22(1):37-44.
[15] Sun Z, Wang C, Shi C, et al. Activated Wnt signaling induces myofibroblast differentiation of mesenchymal stem cells, contributing to pulmonary fibrosis[J]. Int J Mol Med, 2014,33(5):1097-1109.
[16] Riches DW, Backos DS, Redente EF. ROCK and Rho: promising therapeutic targets to ameliorate pulmonary fibrosis[J]. Am J Pathol, 2015,185(4):909-912.
[17] Tan X, Dagher H, Hutton CA, et al. Effects of PPAR gamma ligands on TGF-beta1-induced epithelial-mesenchymal transition in alveolar epithelial cells[J]. Respir Res, 2010,11(1):21-38.
[18] Lu J, Shi J, Gui B, et al. Activation of PPAR-gamma inhibits PDGF-induced proliferation of mouse renal fibroblasts[J]. Eur J Pharmacol, 2016,789(12):222-228.
[19] Zheng H, Li W, Wang Y, et al. miR-23a inhibits E-cadherin expression and is regulated by AP-1 and NFAT4 complex during Fas-induced EMT in gastrointestinal cancer[J]. Carcinogenesis, 2014,35(1):173-183.
[20] Liang H, Gu Y, Li T, et al. Integrated analyses identify the involvement of microRNA-26a in epithelial-mesenchymal transition during idiopathic pulmonary fibrosis[J]. Cell Death Dis, 2014,5(5):1238-1249.
[21] Li P, Zhao GQ, Chen TF, et al. Serum miR-21 and miR-155 expression in idiopathic pulmonary fibrosis[J]. J Asthma, 2013,50(9):960-964.
[22] Margaritopoulos GA, Tsitoura E, Tzanakis N, et al. Self-eating: friend or foe? The emerging role of autophagy in idiopathic pulmonary fibrosis[J]. Biomed Res Int, 2013(2013):420-497.
[23] Araya J, Kojima J, Takasaka N, et al. Insufficient autophagy in idiopathic pulmonary fibrosis[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2013,304(1):56-69.
[24] Tsang AR, Wyatt HD, Ting NS, et al. hTERT mutations associated with idiopathic pulmonary fibrosis affect telomerase activity, telomere length, and cell growth by distinct mechanisms[J]. Aging Cell, 2012,11(3):482-490.
[25] Tang J, Yan H, Zhuang S. Histone deacetylases as targets for treatment of multiple diseases[J]. Clin Sci (Lond), 2013,124(11):651-662.
[26] 朱紅蘭,劉代順.組蛋白去乙?;讣捌湟种苿┡c特發(fā)性肺纖維化的研究進展[J].實用醫(yī)學(xué)雜志,2015,31(3):505-506.
[27] Yu XS, Du J, Fan YJ, et al. Activation of endoplasmic reticulum stress promotes autophagy and apoptosis and reverses chemoresistance of human small cell lung cancer cells by inhibiting the PI3K/AKT/mTOR signaling pathway[J]. Oncotarget, 2016,7(47):76827-76839.
王榮麗(E-mail: scybwrl@sina.com)
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.32.037
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A
1002-266X(2017)32-0110-03
2017-05-23)