李 杰,王靜茹,陳 浩,楊 林,祝戎飛
(華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬同濟(jì)醫(yī)院過(guò)敏反應(yīng)科, 武漢 430030)
ChinJAllergyClinImmunol,2017,11(4):344- 350
由真菌引起的支氣管哮喘等過(guò)敏性疾病在臨床上比較常見(jiàn)[1]。交鏈孢霉是一種重要的真菌過(guò)敏原,有研究顯示交鏈孢霉在氣傳真菌過(guò)敏原中占比較高,為優(yōu)勢(shì)真菌[2- 5]。交鏈孢霉可破壞哮喘患者氣道上皮屏障功能[6],與過(guò)敏性哮喘嚴(yán)重程度直接相關(guān)[7- 8]。由于在臨床上直接對(duì)哮喘患者進(jìn)行研究會(huì)受到患者依從性、取材等多方面的限制,還可能存在著醫(yī)學(xué)倫理問(wèn)題,很多研究均通過(guò)建立哮喘動(dòng)物模型來(lái)實(shí)施。小鼠免疫遺傳背景較為清楚,免疫系統(tǒng)認(rèn)識(shí)已較全面深入,加上基因技術(shù)及生物測(cè)定技術(shù)的迅猛發(fā)展,小鼠在國(guó)內(nèi)外已成為最主要的哮喘動(dòng)物模型[9- 10]。本研究擬建立交鏈孢霉致敏的Balb/c小鼠過(guò)敏性哮喘模型,為后續(xù)研究提供基礎(chǔ)。
由湖北省疾控中心提供的6周齡SPF級(jí)Balb/c雌鼠24只,體重(15±5)g Balb/c雌性小鼠隨機(jī)分為2組,每組12只。對(duì)照組:以生理鹽水致敏和激發(fā)小鼠;實(shí)驗(yàn)組:以交鏈孢霉提取物致敏和激發(fā)小鼠。
交鏈孢霉提取液(濃度100 μg/ml)購(gòu)自北京新華聯(lián)協(xié)和藥業(yè)有限公司,小鼠白介素(interleukin,IL)- 4和IL- 10、干擾素(interferon,IFN)-γ、總IgE和特異性IgE的酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒購(gòu)自欣博盛生物科技有限公司,聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reatcion,PCR)中的Trizol?試劑購(gòu)自Invitrogen公司,DNase Ⅰ 購(gòu)自Fermentas公司,小鼠肺功能儀購(gòu)自SCIREQ公司。
哮喘小鼠模型的建立參考文獻(xiàn)[10- 12]進(jìn)行,首先致敏:各組小鼠在第4、5、6天分別用交鏈孢霉提取液(25 μg/ml)滴鼻致敏,具體步驟如下:小鼠用乙醚麻醉后,移液器吸取50 μl交鏈孢霉提取液或生理鹽水,緩慢滴入小鼠鼻腔中,待全部操作完成后,再次麻醉小鼠,吸取50 μl交鏈孢霉提取液或生理鹽水滴入鼻腔;激發(fā):第18、19、20天,實(shí)驗(yàn)組再次采用100 μl交鏈孢霉提取液(50 μg/ml)滴鼻激發(fā),正常對(duì)照組采用100 μl 0.9%生理鹽水進(jìn)行滴鼻。
末次激發(fā)48 h內(nèi),用小鼠肺功能儀有創(chuàng)法測(cè)定小鼠的氣道反應(yīng)性。用1%戊巴比妥鈉50 mg/kg麻醉小鼠后,行氣管插管,連接呼吸機(jī),測(cè)定小鼠氣道阻力(airway resistance)和氣道順應(yīng)性(airway compliance)的變化。并且經(jīng)儀器加入50 μl乙酰甲膽堿(methacholine)6.25、12.5、25、50 μg/ml,分別觀察氣道反應(yīng)性變化。
取血后將小鼠置于仰臥位,固定頭部及四肢,充分暴露氣道,在光線充足情況下,用眼科剪剪開小鼠1/2的氣管,將氣管插管針插入小鼠氣管內(nèi),固定后緩慢注入1 ml PBS緩沖液進(jìn)行支氣管肺泡灌洗,然后0.3 ml/次,抽吸3次后,將支氣管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)進(jìn)行回收,回收率>80%。BALF 4 000 r/min(離心半徑13.5 cm),4 ℃離心10 min后,上清轉(zhuǎn)移至另一EP管中,-20 ℃保存。準(zhǔn)備用ELISA檢測(cè)BALF中IL- 4、IL- 10以及IFN-γ水平。細(xì)胞沉淀則溶于100 μl PBS中重懸,取計(jì)數(shù)板計(jì)算細(xì)胞數(shù)量,圖片固定后做蘇木精-伊紅(hematein eosin,HE)染色,連續(xù)計(jì)數(shù)200個(gè)細(xì)胞并進(jìn)行分類計(jì)算各細(xì)胞比例。
激發(fā)結(jié)束后48 h,麻醉各組小鼠后,將各組小鼠行眼窩取血,收集于干凈的EP管中,置于4 ℃冰箱中待血清析出,4 000 r/min(離心半徑13.5 cm),4 ℃離心5 min,將血清轉(zhuǎn)移至另一EP管中,ELISA檢測(cè)血清總IgE和交鏈孢霉特異性IgE。
打開小鼠胸腔,取出左側(cè)肺組織(一般用左側(cè)肺組織進(jìn)行固定包埋切片,因?yàn)樽蠓沃挥幸蝗~,結(jié)構(gòu)很完整),將肺組織放置于4%的多聚甲醛溶液中,4 ℃過(guò)夜后,用梯度酒精溶液脫水、二甲苯溶液透明后用石蠟包埋,使用組織切片機(jī)切片,然后采用HE染色,采用光學(xué)顯微鏡觀察鼻黏膜與肺組織的炎癥浸潤(rùn)程度。
取肺組織勻漿,總RNA用TRIzol試劑提取,然后將總RNA逆轉(zhuǎn)錄成為cDNA,將反應(yīng)體系加到熒光定量PCR反應(yīng)孔中進(jìn)行PCR擴(kuò)增。
對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組分別有2只小鼠麻醉過(guò)程中窒息死亡,另實(shí)驗(yàn)組有3只小鼠在激發(fā)2 d后死亡。進(jìn)行末次滴鼻激發(fā)后,實(shí)驗(yàn)組小鼠出現(xiàn)不同程度的煩躁不安或安靜少動(dòng)、口唇紫紺、喘息、行動(dòng)改變,以出現(xiàn)煩躁嗆咳、抓耳撓鼻、呼吸加快、口唇發(fā)紺、腹肌痙攣、點(diǎn)頭呼吸、豎毛以及站立不穩(wěn)等癥狀15~30 min后恢復(fù)平靜,而對(duì)照組在麻醉蘇醒5~10 min后就恢復(fù)正常。
實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組相比氣道阻力明顯增大,氣道順應(yīng)性明顯降低(表1、2)。
實(shí)驗(yàn)組BALF中細(xì)胞總數(shù)和Eos(%)較對(duì)照組明顯增加,實(shí)驗(yàn)組 BALF Eos(%)高達(dá) 68%(表3)。
實(shí)驗(yàn)組IL- 4水平[(109.14±42.51)pg/ml]高于對(duì)照組[(31.32±12.42)pg/ml](P<0.05),而 IFN-γ水平[(93.42±51.26)pg/ml]低于對(duì)照組[(277.34±24.35)pg/ml](P<0.01),IL- 10水平實(shí)驗(yàn)組[(359.7±142.9)pg/ml]低于對(duì)照組[(627.4±119.1)pg/ml],但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)(表4)。
表1小鼠氣道阻力
Table1Airway resistance in experimental group and control group mice
組別乙酰甲膽堿(μg/ml)06251252550對(duì)照組075±008 187±015285±078666±143900±131實(shí)驗(yàn)組087±017 296±024a1057±233b1326±579b1640±652b
與對(duì)照組相比,aP<0.05,bP<0.01
表2小鼠氣道順應(yīng)性
Table2Airway compliance in experimental group and control group mice
組別乙酰甲膽堿(μg/ml)06251252550對(duì)照組0310±0110 0190±0067 0120±0037 0096±0071 0061±0013實(shí)驗(yàn)組0280±0160 0150±0092a 0053±0031b 0046±0022b 0037±0009b
與對(duì)照組相比,aP<0.05,bP<0.01
組別細(xì)胞總數(shù)(×105/ml)Eos(%)Mac(%)Lym(%)Neu(%)對(duì)照組425±098336±0047932±1325645±1361087±336實(shí)驗(yàn)組2128±458b6833±1780b1569±514b932±087a666±135
BALF:支氣管肺泡灌洗液;Eos:嗜酸性粒細(xì)胞;Mac:巨噬細(xì)胞;Lym:淋巴細(xì)胞;Neu:中性粒細(xì)胞;與對(duì)照組相比,aP<0.05,bP<0.01
組別IL?4(pg/ml)IFN?γ(pg/ml)IL?10(pg/ml)TIgE(ng/ml)sIgE(ng/ml)IL?33mRNA對(duì)照組3132±1242 27734±2435 62741±11911 18501±67252341±874 066±031實(shí)驗(yàn)組 10914±4251a9342±5126b 35974±14293 88394±12233a 6576±1556a 221±058b
IL- 4:白介素- 4;IFN-γ:γ干擾素;IL- 10:白介素- 10;TIgE:總免疫球蛋白E;sIgE:特異性免疫球蛋白E;與對(duì)照組相比,aP<0.05,bP<0.01
實(shí)驗(yàn)組血清總IgE和特異性IgE水平[分別為(883.94±122.33)ng/ml和(65.76±15.56)ng/ml]均明顯高于對(duì)照組[分別為(185.01±67.25)ng/ml和(23.41±8.74)ng/ml](P<0.01)(表4)。
IL- 25 mRNA兩組均表達(dá)過(guò)低,未測(cè)出;IL- 33 mRNA表達(dá)水平實(shí)驗(yàn)組(2.21±0.58)高于對(duì)照組(0.66±0.31)(表4)。
HE染色光鏡下觀察肺組織病理學(xué)改變,與對(duì)照組(圖1,3,5)正常小鼠肺組織結(jié)構(gòu)相比,實(shí)驗(yàn)組小鼠肺小血管壁增厚,黏膜下炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),嗜酸性粒細(xì)胞增多(圖2);管腔黏膜增厚,管腔變窄,黏液滲出增多,黏液栓形成,周圍炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)(圖4);肺泡間隔增厚,結(jié)構(gòu)欠完整,大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)滲出(圖6)。
真菌尤其是交鏈孢霉對(duì)哮喘的影響巨大。Lyons等[2]調(diào)查914例哮喘兒童發(fā)現(xiàn)14%的兒童對(duì)真菌過(guò)敏,真菌過(guò)敏的哮喘兒童中又有46%對(duì)交鏈孢霉過(guò)敏。一項(xiàng)4 962例呼吸系統(tǒng)疾病患者的研究顯示,19%的過(guò)敏患者對(duì)至少一種真菌提取物過(guò)敏,而這些真菌過(guò)敏患者中又有60%對(duì)交鏈孢霉過(guò)敏[3]。我國(guó)廣州交鏈孢霉是主要?dú)鈧髡婢籟4]。武漢地區(qū)氣傳真菌調(diào)查顯示交鏈孢霉菌占13.87%,為優(yōu)勢(shì)真菌。
圖1 對(duì)照組小血管HE染色Fig 1 Control group small vessel(HE)
圖3 對(duì)照組細(xì)支氣管HE染色Fig 3 Control group bronchiole(HE)
圖5 對(duì)照組肺泡HE染色Fig 5 Control group alveolar(HE)
圖2 實(shí)驗(yàn)組小血管HE染色Fig 2 Experience group small vessel(HE)
圖4 實(shí)驗(yàn)組細(xì)支氣管HE染色Fig 4 Experience group bronchiole(HE)
圖6 實(shí)驗(yàn)組肺泡HE染色Fig 6 Experience group alveolar(HE)
有7.14%的哮喘患者和11.71%的過(guò)敏性鼻炎并發(fā)哮喘患者對(duì)交鏈孢霉提取物呈現(xiàn)皮膚試驗(yàn)陽(yáng)性反應(yīng)[5]。
動(dòng)物模型是研究哮喘發(fā)病機(jī)制和新的治療方法的重要工具。用作哮喘模型的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物先后有狗、兔、羊、豚鼠、大鼠等,直到最近小鼠以其便于飼養(yǎng),繁殖能力強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn)成為模型制作最佳的備選動(dòng)物而普遍使用,其中又以SPF級(jí)6~8周齡Balb/c小鼠最為多見(jiàn),因Balb/c小鼠易產(chǎn)生針對(duì)卵白蛋白(ovalbumin,OVA)和花粉的高滴度IgE和氣道高反應(yīng)性,其實(shí)驗(yàn)結(jié)果相對(duì)穩(wěn)定[10]。小鼠免疫遺傳背景較為清楚,免疫系統(tǒng)認(rèn)識(shí)已較全面深入,加上基因技術(shù)及生物測(cè)定技術(shù)的迅猛發(fā)展,小鼠在國(guó)內(nèi)外已成為最主要的哮喘動(dòng)物模型[10]。
盡管交鏈孢霉是重要的吸入性過(guò)敏原之一,但目前國(guó)內(nèi)外對(duì)交鏈孢霉誘導(dǎo)的小鼠哮喘模型研究甚少[11],僅有極少數(shù)文章提及使用交鏈孢霉建立哮喘模型方法,且多是沿用OVA的致敏方法進(jìn)行研究[13],但OVA并不是人體接觸誘發(fā)哮喘的自然致敏原,不能完全模擬人體接觸天然過(guò)敏原后的反應(yīng)。有研究顯示致敏過(guò)程中單獨(dú)經(jīng)鼻腔給予OVA不能誘發(fā)氣道高反應(yīng)性及肺部嗜酸性粒細(xì)胞浸潤(rùn)、Th2型細(xì)胞因子增加、氣道黏液高分泌等哮喘特征[14]。然而作為天然變應(yīng)原的交鏈孢霉是直接通過(guò)呼吸道途徑進(jìn)入人體致敏的,這點(diǎn)與OVA不同。本實(shí)驗(yàn)選擇經(jīng)鼻腔途徑致敏小鼠,這也更符合哮喘發(fā)病的自然過(guò)程。而且有研究顯示,相對(duì)于霧化吸入的方式,經(jīng)鼻滴入方式可以引起肺部更加明顯的炎癥浸潤(rùn)及細(xì)胞因子表達(dá),為哮喘研究提供更好的選擇[15]。本實(shí)驗(yàn)選取交鏈孢霉提取液滴鼻誘導(dǎo)建立小鼠過(guò)敏性哮喘模型,操作簡(jiǎn)單,控制性高,可重復(fù)性強(qiáng),能模擬臨床上哮喘發(fā)展和過(guò)敏性哮喘的發(fā)作過(guò)程,其缺點(diǎn)是麻醉過(guò)程中小鼠容易窒息致死。
驗(yàn)證小鼠哮喘模型是否建立成功往往采用復(fù)合指標(biāo)。小鼠過(guò)敏性哮喘的實(shí)質(zhì)是由IgE介導(dǎo)的Ⅰ型超敏反應(yīng),其IgE水平是變態(tài)反應(yīng)性炎癥發(fā)生的重要決定因素。小鼠變態(tài)反應(yīng)性炎癥的重要特征指標(biāo)是Th1細(xì)胞與Th2細(xì)胞比例失衡,相應(yīng)的IL- 4等Th2型細(xì)胞因子增高,IFN-γ等Th1型細(xì)胞因子降低。此外小鼠出現(xiàn)呼吸困難的癥狀,肺泡灌洗液嗜酸性粒細(xì)胞增加,血清IgE升高,肺組織病理學(xué)檢查也出現(xiàn)炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)等也作為小鼠哮喘模型成功的指標(biāo)[10- 12]。本研究實(shí)驗(yàn)組小鼠相對(duì)于對(duì)照組小鼠,在行為學(xué)上有哮喘的癥狀出現(xiàn),尤其是抓耳撓鼻,點(diǎn)頭呼吸,呼吸加快明顯,持續(xù)時(shí)間久,符合哮喘的表現(xiàn);氣道阻力增加,氣道順應(yīng)性降低符合哮喘氣道反應(yīng)性特征;肺泡灌洗液中總細(xì)胞和嗜酸性粒細(xì)胞比例增加符合哮喘的變化;血清總IgE和特異性IgE水平明顯升高,符合哮喘發(fā)生的基本機(jī)制;BALF中IL- 4水平明顯升高,IFN-γ水平明顯下降,亦符合哮喘發(fā)病機(jī)制中Th1/Th2失衡且Th2型細(xì)胞因子占優(yōu)勢(shì)的論斷;肺組織病理學(xué)檢查表現(xiàn)為支氣管和血管黏膜下和周圍肺組織有明顯的炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),管腔內(nèi)黏液分泌增多,符合哮喘的病理變化。最近研究表明,IL- 25和IL- 33分別不同程度地影響了氣道的功能和重塑[16- 19]。本實(shí)驗(yàn)還對(duì)肺組織的IL- 25和IL- 33 mRNA表達(dá)水平進(jìn)行了檢測(cè)。研究發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組IL- 25 mRNA均表達(dá)過(guò)低,而IL- 33 mRNA的升高,可能提示IL- 33參與過(guò)敏性哮喘的發(fā)生。研究結(jié)果還證實(shí)了交鏈孢霉可單獨(dú)誘發(fā)過(guò)敏性哮喘的發(fā)生,提示其對(duì)人群哮喘的發(fā)生可能具有重要的影響。上述變化提示使用交鏈孢霉滴鼻激發(fā)致敏的Balb/c小鼠哮喘動(dòng)物模型建立成功。但本實(shí)驗(yàn)亦存在不足之處:小鼠肺功能的檢測(cè)采用的是國(guó)際上通用的有創(chuàng)檢測(cè)方法[20],有創(chuàng)小鼠氣道反應(yīng)性測(cè)定法需通過(guò)氣管插管和機(jī)械通氣來(lái)完成,能準(zhǔn)確地反映氣道阻力變化[21],但無(wú)法對(duì)同一只小鼠進(jìn)行重復(fù)檢測(cè)來(lái)比較交鏈孢霉激發(fā)前后肺功能的改變,只能通過(guò)比較實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組過(guò)敏原激發(fā)后氣道阻力的差異判斷小鼠的氣道反應(yīng)性。檢測(cè)小鼠氣道反應(yīng)性的其他方法包括離體氣道平滑肌收縮力測(cè)定法和無(wú)創(chuàng)的整體體積描記法,由于離體方法不能反映由氣道內(nèi)黏液分泌、黏膜水腫以及小氣道病變所引起的肺通氣功能障礙,而無(wú)創(chuàng)的整體體積描記法不能直接反映氣道阻力[21],因此本研究未采用后兩種方法。
綜上所述,采用交鏈孢霉滴鼻致敏、激發(fā)的方法能夠成功誘導(dǎo)Balb/c小鼠產(chǎn)生過(guò)敏性哮喘反應(yīng)的模型,為后續(xù)交鏈孢霉誘發(fā)的哮喘研究打下了基礎(chǔ)。
[1]Prester L. Indoor exposure to mould allergens[J]. Arh Hig Rada Toksikol, 2011, 62: 371- 380.
[2]Lyons TW, Wakefield DB, Cloutier MM. Mold andAlternariaskin test reactivity and asthma in children in Connecticut[J]. Ann Allergy Asthma Immunol, 2011, 106: 301- 307.
[3]Mari A, Schneider P, Wally V, et al. Sensitization to fungi: epidemiology, comparative skin test, and IgE reactivity of fungal extracts[J]. Clin Exp Allergy, 2003,33: 1429- 1438.
[4]張華,鄭卓. 廣州市氣傳真菌散布規(guī)律與氣候的關(guān)系[J]. 中山大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)科學(xué)版),2006, 27: 596- 600.
[5]祝戎飛. 武漢市氣傳花粉和真菌監(jiān)測(cè)及臨床意義[D]. 武漢: 華中科技大學(xué),2011:5- 98.
[6]Leino MS, Loxham M, Blume C, et al. Barrier disrupting effects ofAlternariaalternate extract on bronchial epithelium from asthmatic donors[J]. PLoS One, 2013, 8: e72178.
[7]Salo PM, Arbes SJ Jr., Sever M, et al. Exposure to Altetnaria alternate in US homes is associated with asthma symptoms[J]. J Allergy Clin Immunol, 2006, 118: 892- 898.
[8]Katotomichelakis M, Anastassakis K, Gouveris H, et al. Clinical significance ofAlternariaalternate sensitization in patients with allergic rhinitis[J]. Am J Otolaryngol, 2012, 33: 232- 238.
[9]Lloyd CM. Building better mouse models of asthma[J]. Curr Allergy Asthma Rep, 2007, 7: 231- 236.
[10] 朱艷芬, 宋澤慶. 小鼠支氣管哮喘模型的研究現(xiàn)狀[J].中華哮喘雜志, 2009, 3: 311- 314.
[11] 杜軍, 郭宏偉. 哮喘小鼠模型研究現(xiàn)狀分析[J]. 中國(guó)免疫學(xué)雜志, 2011, s1: 1209- 1211.
[12] Jutel M, Jaeger L, Suck R, et al. Allergen-specific immunotherapy with recombinant grass pollen allergens[J]. J Allergy Clin Immunol, 2005, 116: 608- 613.
[13] 譚杰軍. 哮喘動(dòng)物模型建立的思考與體會(huì)[J]. 中國(guó)中醫(yī)急癥, 2016, 25: 816- 817.
[14] Zhang Y, Lamm WJ, Albert RK, et al. Influence of the route of allergen administration and genetic background on the murine allergic pulmonary response[J]. Am J Respir Crit Care Med, 1997, 155: 661- 669.
[15] 程勝. 滴鼻和霧化兩種不同激發(fā)方式對(duì)小鼠支氣管哮喘模型氣道炎癥的影響[J]. 華中科技大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2014, 2: 121- 124.
[16] Barlow JL, Peel S, Fox J, et al. IL- 33 is more potent than IL- 25 in provoking IL- 13-producing nuocytes (type 2 innate lymphoid cells) and airway contraction[J]. J Allergy Clin Immunol, 2013, 132: 933- 941.
[17] Kurokawa M, Matsukura S, Kawaguchi M, et al. Expression and effects of IL- 33 and ST2 in allergic bronchial asthma: IL- 33 induces eotaxin production in lung fibroblasts[J]. Int Arch Allergy Immunol, 2011, 155: 12- 20.
[18] Liew FY, Pitman NI, McInnes IB. Disease-associated functions of IL- 33: the new kid in the IL- 1 family[J]. Nat Rev Immunol, 2010, 10: 103- 110.
[19] Nabe T. Interleukin (IL)- 33: new therapeutic target for atopic diseases[J]. J Pharmacol Sci, 2014, 126: 85- 91.
[20] Kim HK, Lee CH, Kim JM, et al. Biphasic late airway hyperresponsiveness in a murine model of asthma[J]. Int Arch Allergy Immunol, 2013, 160: 173- 183.
[21] 何勝東.小鼠哮喘模型氣道反應(yīng)性檢測(cè)方法的建立[J]. 廣東醫(yī)學(xué), 2006, 27: 1659- 1661.
中華臨床免疫和變態(tài)反應(yīng)雜志2017年4期