組蛋白去乙?；冈跅顦?shù)根再生和生長(zhǎng)中的功能

張冰+夏德安+馬旭俊

摘要：組蛋白去乙?；福℉DAC）在植物生長(zhǎng)和發(fā)育過(guò)程中具有十分重要的調(diào)控作用。目前，關(guān)于HDAC的研究主要集中在草本植物，而關(guān)于木本植物的HDAC功能研究鮮有報(bào)道。以84 K楊（銀白楊×腺毛楊）和小黑楊2種楊樹(shù)組培苗為供試材料，在培養(yǎng)基中添加0、1、5 μmol/L濃度的組蛋白去乙?；敢种苿┣乓志兀═SA），研究TSA對(duì)楊樹(shù)根再生和生長(zhǎng)的影響。結(jié)果表明，TSA處理明顯抑制2種楊樹(shù)根的再生和生長(zhǎng)，TSA濃度越高，對(duì)組培苗根的再生和生長(zhǎng)的抑制作用越大。研究結(jié)果對(duì)于通過(guò)根系改良提高楊樹(shù)對(duì)水分和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的利用率、增強(qiáng)楊樹(shù)抗逆性具有十分重要的意義。

關(guān)鍵詞：組蛋白去乙?；福℉DAC）；曲古抑菌素（TSA）；根再生；生長(zhǎng)

中圖分類(lèi)號(hào)： S792.110.5文獻(xiàn)標(biāo)志碼： A

文章編號(hào)：1002-1302（2017）05-0040-04

表觀(guān)遺傳調(diào)控是基因表達(dá)調(diào)控的一種重要方式，是在不改變DNA序列的情況下，通過(guò)DNA或組蛋白修飾來(lái)影響基因的轉(zhuǎn)錄。組蛋白修飾包括組蛋白乙?；⒘姿峄?、甲基化、泛素化、糖基化等[1]，其中組蛋白乙酰化是研究得最早、最清楚的一種組蛋白翻譯后修飾[2]。組蛋白乙酰化修飾主要發(fā)生在組蛋白N末端的賴(lài)氨酸殘基上，包括組蛋白乙酰化、組蛋白去乙?；?個(gè)動(dòng)態(tài)的、可逆的過(guò)程。組蛋白乙?；軌驕p弱組蛋白與帶負(fù)電荷的DNA之間的相互作用，使染色質(zhì)處于伸展?fàn)顟B(tài)[3]；又可以改變核小體的表面結(jié)構(gòu)，形成有利于轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子結(jié)合的位點(diǎn)[3-4]，進(jìn)而對(duì)基因的轉(zhuǎn)錄具有促進(jìn)作用。相關(guān)研究表明，在轉(zhuǎn)錄活化區(qū)域內(nèi)，組蛋白多表現(xiàn)出高度的乙酰化狀態(tài)。組蛋白去乙酰化常常引起染色質(zhì)的凝縮，與基因轉(zhuǎn)錄抑制或基因沉默有關(guān)。組蛋白乙?；⑷ヒ阴；^(guò)程分別由組蛋白乙?；D(zhuǎn)移酶（histone acetyltransferase，簡(jiǎn)稱(chēng)HAT）、組蛋白去乙?；福╤istone deacetylase，簡(jiǎn)稱(chēng)HDAC）催化完成，二者共同作用保證細(xì)胞內(nèi)組蛋白乙?；教幱趧?dòng)態(tài)平衡。HDAC是1個(gè)基因超家族，在真核生物包括真菌、植物和動(dòng)物中廣泛分布。1996年第1個(gè)HDAC基因從哺乳動(dòng)物細(xì)胞中得到克隆[5]，1988年在豌豆中首次發(fā)現(xiàn)植物組蛋白去乙?；傅拇嬖赱6]。近十幾年來(lái)，植物HDAC越來(lái)[CM（25]越受到重視，HDAC基因從玉米、擬南芥、水稻、大麥、馬鈴[CM）][LM]薯、葡萄、煙草等多種植物中得以鑒定和分析。根據(jù)與酵母HDAC序列同源性比較，這些植物HDAC可分為3個(gè)亞家族：RPD3/HDA1、HD2、SIR2，其中HD2是植物所特有的一類(lèi)組蛋白去乙?；浮DAC在植物生長(zhǎng)、發(fā)育、脅迫反應(yīng)和基因沉默過(guò)程中具有十分重要的調(diào)控作用。

雖然相關(guān)報(bào)道不多，但在擬南芥等草本植物中的研究表明，HDAC在根系發(fā)育（包括根毛發(fā)育、側(cè)根形成和主根生長(zhǎng)）過(guò)程中發(fā)揮著十分重要的調(diào)節(jié)作用。HDAC與根毛發(fā)育有密切關(guān)系。早在2000年，Murphy等研究發(fā)現(xiàn)，HDAC特異性抑制劑如組蛋白去乙酰化酶抑制劑曲古抑菌素（trichostatin A，簡(jiǎn)稱(chēng)TSA）、丁酸鈉（sodium butyrate）能夠抑制豌豆（Pisum sativum）根分生組織細(xì)胞的有絲分裂[7]。2005年，Xu等研究發(fā)現(xiàn)，TSA處理能夠改變根模式形成相關(guān)基因[WTBX][STBX]CPC、GL2、WER[WTBZ][STBZ]的表達(dá)，并引起根毛細(xì)胞在非根毛形成部位的出現(xiàn)和發(fā)育[8]。2011年，Zhu等研究發(fā)現(xiàn)擬南芥RPD3/HDA1亞家族另一個(gè)成員HDA6能夠抑制根發(fā)育調(diào)節(jié)因子EIN3（ethylene insensitive 3）所調(diào)節(jié)基因的表達(dá)，并抑制茉莉酸（JA）信號(hào)反應(yīng)；TSA處理會(huì)誘導(dǎo)擬南芥幼苗產(chǎn)生大量根毛[9]。擬南芥HDA19也與根毛發(fā)育有關(guān)，HDA19促進(jìn)低磷（Pi）條件下根毛的產(chǎn)生[10]。除了調(diào)節(jié)根毛發(fā)育，HDAC對(duì)側(cè)根發(fā)育也有十分重要的作用。側(cè)根的發(fā)育受到生長(zhǎng)素以及生長(zhǎng)素應(yīng)答因子（auxin response factor，簡(jiǎn)稱(chēng)ARF）的調(diào)節(jié)。HDAC對(duì)生長(zhǎng)素介導(dǎo)的擬南芥?zhèn)雀陌l(fā)育具有負(fù)調(diào)控作用[11]。在根發(fā)育過(guò)程中，生長(zhǎng)素到達(dá)主根根尖需要生長(zhǎng)素轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白如PIN（pin-formed）家族、ABC（ATP-binding cassette）超家族的運(yùn)輸[12]。2013年，Nguyen等研究發(fā)現(xiàn)，在HDAC抑制劑如TSA、NaB存在下，PIN1蛋白被26S蛋白酶降解，導(dǎo)致PIN蛋白不能在根尖部位積累，進(jìn)而顯著抑制了擬南芥主根的生長(zhǎng)[13]。在水稻中，OsHDAC1與根生長(zhǎng)有關(guān)，[WTBX][STBX]OsHDAC1[WTBZ][STBZ]基因過(guò)量表達(dá)能夠促進(jìn)水稻根的生長(zhǎng)[14]。近期的關(guān)于玉米的研究表明，HDAC抑制劑NaB處理引起玉米根分生組織細(xì)胞有絲分裂停滯在早前期，根的生長(zhǎng)受到嚴(yán)重抑制[15]。雖然HDAC在根生長(zhǎng)發(fā)育中的功能研究較少，但已有研究充分說(shuō)明，HDAC對(duì)植物根系形成和發(fā)育十分重要。

目前，關(guān)于木本植物HDAC基因在根生長(zhǎng)發(fā)育中的功能研究鮮有報(bào)道。楊樹(shù)在世界范圍內(nèi)廣泛分布，不僅是重要的造林和工業(yè)用材樹(shù)種，也是木本植物研究的模式植物。本研究分析了HDAC在楊樹(shù)根再生和生長(zhǎng)過(guò)程中的功能，這一研究不僅在理論上有利于人們了解楊樹(shù)根系生長(zhǎng)發(fā)育的表觀(guān)遺傳調(diào)控機(jī)制，而且對(duì)于通過(guò)根系改良提高楊樹(shù)對(duì)水分、營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的利用率以及提高楊樹(shù)抗逆性具有一定的意義。

1材料與方法

1.1供試材料

本研究所用的植物材料84K楊、小黑楊無(wú)菌苗，由東北林業(yè)大學(xué)林木遺傳育種國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供。

1.2試驗(yàn)方法

1.2.1楊樹(shù)無(wú)菌苗的繼代培養(yǎng)84K楊、小黑楊無(wú)菌苗在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)4～5周，切莖段，將含有腋芽的莖段插入WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周，至腋芽萌發(fā)、長(zhǎng)出幼苗。然后將幼苗從莖段上切下，并放到含有0.1 mg/L IBA的WPM培養(yǎng)基上進(jìn)行生根培養(yǎng)。WPM培養(yǎng)基含有2%蔗糖、0.1 mg/L IBA、0.6%瓊脂，用1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH值至5.8。組培苗在溫度為（23±2）℃、光—暗周期16 h—8 h的條件下培養(yǎng)。

1.2.2楊樹(shù)幼苗的TSA處理將4～5周齡84K楊、小黑楊組培幼苗切莖段，莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周，然后將楊樹(shù)莖段上由腋芽萌發(fā)長(zhǎng)出的幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上進(jìn)行生根培養(yǎng)，培養(yǎng)溫度為（23±2）℃，光—暗周期為16 h—8 h。

1.2.3植株根長(zhǎng)、高度的測(cè)定將84K楊、小黑楊組培幼苗在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根1、2周時(shí)，分別測(cè)量并記錄84K楊、小黑楊再生幼苗的主根長(zhǎng)度、植株高度，利用Prism 6軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理，并通過(guò)多重比較法分析差異顯著性。當(dāng)P<0.05時(shí)，表示存在顯著性差異。

2結(jié)果與分析

2.1TSA抑制楊樹(shù)根的再生

2.1.1TSA抑制84K楊根的再生84K楊含腋芽的莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周后，腋芽長(zhǎng)出高1.5 cm左右的幼苗；將幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根培養(yǎng)。生根培養(yǎng)1周時(shí)，在含有不同濃度TSA的培養(yǎng)基上再生出的不定根長(zhǎng)度存在明顯差別（圖1）。在含有0 μmol/L TSA的培養(yǎng)基上，84K楊幼苗基部能夠再生出不定根，不定根平均長(zhǎng)度為6.3 mm；在含有1 μmol/L TSA的培養(yǎng)基上，84K楊組培幼苗再生出的不定根平均長(zhǎng)度為 2 mm；在含有5 μmol/L TSA的培養(yǎng)基上，84K楊組培幼苗不能再生出不定根。結(jié)果表明，TSA處理抑制不定根的再生，TSA濃度越高，對(duì)根再生的抑制作用越強(qiáng)。

2.1.2TSA抑制小黑楊根的再生與84K楊相似，小黑楊幼苗不定根的再生受TSA的明顯抑制。小黑楊在含有0 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生長(zhǎng)1周時(shí)，在幼苗

2.2TSA抑制楊樹(shù)根的生長(zhǎng)

2.2.1TSA抑制84K楊根的生長(zhǎng)84K楊含腋芽的莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周后，腋芽長(zhǎng)出高1.5 cm左右的幼苗，將幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根培養(yǎng)。TSA處理抑制了再生根的生長(zhǎng)，而且隨著TSA濃度的增加，其根生長(zhǎng)受到的抑制作用越大。84K楊幼苗在含有0

2.2.2TSA抑制小黑楊根的生長(zhǎng)小黑楊含腋芽的莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周后，腋芽萌發(fā)長(zhǎng)出高1.5 cm左右的幼苗，將幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根培養(yǎng)。在含有不同濃度TSA的培養(yǎng)基上生長(zhǎng)2周時(shí)，小黑楊再生根的根長(zhǎng)度存在明顯差異，TSA濃度越高，根的長(zhǎng)度越短，呈負(fù)相關(guān)趨勢(shì)。當(dāng)TSA濃度為0 μmol/L時(shí)，植株根的長(zhǎng)度平均為5.3 cm；當(dāng)TSA濃度為1 μmol/L時(shí)，植株根的長(zhǎng)度明顯比0 μmol/L處理時(shí)短小，根長(zhǎng)平均為1.3 3結(jié)論與討論

組織培養(yǎng)是木本植物快速繁殖的一種有效方式，一些樹(shù)種在組織培養(yǎng)過(guò)程中不定芽或根的再生十分困難。通過(guò)改變培養(yǎng)基成分（如營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)或激素含量和比例）或培養(yǎng)條件（如溫度、光照度）仍不能有效獲得再生植株。因此，亟需一種方法來(lái)實(shí)現(xiàn)和提高植物的再生率。表觀(guān)遺傳學(xué)是基因表達(dá)調(diào)控的一種重要方式，對(duì)植物生是目前關(guān)于表觀(guān)遺傳調(diào)控在木本植物不定芽或根再生中的功能鮮有報(bào)道。

本研究分析了組蛋白去乙?；敢种苿㏕SA對(duì)84K楊、小黑楊2種楊樹(shù)根再生和生長(zhǎng)的影響，結(jié)果顯示，TSA處理能夠顯著抑制這2種楊樹(shù)根的再生和生長(zhǎng)，TSA濃度越大，根再

生和生長(zhǎng)受到的抑制作用越大。結(jié)果表明，HDAC的存在對(duì)于楊樹(shù)根的再生、生長(zhǎng)發(fā)育具有十分重要的調(diào)節(jié)作用，也說(shuō)明楊樹(shù)根的再生、生長(zhǎng)受表觀(guān)遺傳調(diào)控。

參考文獻(xiàn)：

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張冰 夏德安 馬旭俊

摘要：組蛋白去乙酰化酶（HDAC）在植物生長(zhǎng)和發(fā)育過(guò)程中具有十分重要的調(diào)控作用。目前，關(guān)于HDAC的研究主要集中在草本植物，而關(guān)于木本植物的HDAC功能研究鮮有報(bào)道。以84 K楊（銀白楊×腺毛楊）和小黑楊2種楊樹(shù)組培苗為供試材料，在培養(yǎng)基中添加0、1、5 μmol/L濃度的組蛋白去乙?；敢种苿┣乓志兀═SA），研究TSA對(duì)楊樹(shù)根再生和生長(zhǎng)的影響。結(jié)果表明，TSA處理明顯抑制2種楊樹(shù)根的再生和生長(zhǎng)，TSA濃度越高，對(duì)組培苗根的再生和生長(zhǎng)的抑制作用越大。研究結(jié)果對(duì)于通過(guò)根系改良提高楊樹(shù)對(duì)水分和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的利用率、增強(qiáng)楊樹(shù)抗逆性具有十分重要的意義。

關(guān)鍵詞：組蛋白去乙酰化酶（HDAC）；曲古抑菌素（TSA）；根再生；生長(zhǎng)

中圖分類(lèi)號(hào)： S792.110.5文獻(xiàn)標(biāo)志碼： A

文章編號(hào)：1002-1302（2017）05-0040-04

表觀(guān)遺傳調(diào)控是基因表達(dá)調(diào)控的一種重要方式，是在不改變DNA序列的情況下，通過(guò)DNA或組蛋白修飾來(lái)影響基因的轉(zhuǎn)錄。組蛋白修飾包括組蛋白乙?；?、磷酸化、甲基化、泛素化、糖基化等[1]，其中組蛋白乙酰化是研究得最早、最清楚的一種組蛋白翻譯后修飾[2]。組蛋白乙?；揎椫饕l(fā)生在組蛋白N末端的賴(lài)氨酸殘基上，包括組蛋白乙?；⒔M蛋白去乙?；?個(gè)動(dòng)態(tài)的、可逆的過(guò)程。組蛋白乙?；軌驕p弱組蛋白與帶負(fù)電荷的DNA之間的相互作用，使染色質(zhì)處于伸展?fàn)顟B(tài)[3]；又可以改變核小體的表面結(jié)構(gòu)，形成有利于轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子結(jié)合的位點(diǎn)[3-4]，進(jìn)而對(duì)基因的轉(zhuǎn)錄具有促進(jìn)作用。相關(guān)研究表明，在轉(zhuǎn)錄活化區(qū)域內(nèi)，組蛋白多表現(xiàn)出高度的乙?；癄顟B(tài)。組蛋白去乙?；３Ｒ鹑旧|(zhì)的凝縮，與基因轉(zhuǎn)錄抑制或基因沉默有關(guān)。組蛋白乙?；?、去乙?；^(guò)程分別由組蛋白乙?；D(zhuǎn)移酶（histone acetyltransferase，簡(jiǎn)稱(chēng)HAT）、組蛋白去乙?；福╤istone deacetylase，簡(jiǎn)稱(chēng)HDAC）催化完成，二者共同作用保證細(xì)胞內(nèi)組蛋白乙?；教幱趧?dòng)態(tài)平衡。HDAC是1個(gè)基因超家族，在真核生物包括真菌、植物和動(dòng)物中廣泛分布。1996年第1個(gè)HDAC基因從哺乳動(dòng)物細(xì)胞中得到克隆[5]，1988年在豌豆中首次發(fā)現(xiàn)植物組蛋白去乙?；傅拇嬖赱6]。近十幾年來(lái)，植物HDAC越來(lái)[CM（25]越受到重視，HDAC基因從玉米、擬南芥、水稻、大麥、馬鈴[CM）][LM]薯、葡萄、煙草等多種植物中得以鑒定和分析。根據(jù)與酵母HDAC序列同源性比較，這些植物HDAC可分為3個(gè)亞家族：RPD3/HDA1、HD2、SIR2，其中HD2是植物所特有的一類(lèi)組蛋白去乙?；?。HDAC在植物生長(zhǎng)、發(fā)育、脅迫反應(yīng)和基因沉默過(guò)程中具有十分重要的調(diào)控作用。

雖然相關(guān)報(bào)道不多，但在擬南芥等草本植物中的研究表明，HDAC在根系發(fā)育（包括根毛發(fā)育、側(cè)根形成和主根生長(zhǎng)）過(guò)程中發(fā)揮著十分重要的調(diào)節(jié)作用。HDAC與根毛發(fā)育有密切關(guān)系。早在2000年，Murphy等研究發(fā)現(xiàn)，HDAC特異性抑制劑如組蛋白去乙酰化酶抑制劑曲古抑菌素（trichostatin A，簡(jiǎn)稱(chēng)TSA）、丁酸鈉（sodium butyrate）能夠抑制豌豆（Pisum sativum）根分生組織細(xì)胞的有絲分裂[7]。2005年，Xu等研究發(fā)現(xiàn)，TSA處理能夠改變根模式形成相關(guān)基因[WTBX][STBX]CPC、GL2、WER[WTBZ][STBZ]的表達(dá)，并引起根毛細(xì)胞在非根毛形成部位的出現(xiàn)和發(fā)育[8]。2011年，Zhu等研究發(fā)現(xiàn)擬南芥RPD3/HDA1亞家族另一個(gè)成員HDA6能夠抑制根發(fā)育調(diào)節(jié)因子EIN3（ethylene insensitive 3）所調(diào)節(jié)基因的表達(dá)，并抑制茉莉酸（JA）信號(hào)反應(yīng)；TSA處理會(huì)誘導(dǎo)擬南芥幼苗產(chǎn)生大量根毛[9]。擬南芥HDA19也與根毛發(fā)育有關(guān)，HDA19促進(jìn)低磷（Pi）條件下根毛的產(chǎn)生[10]。除了調(diào)節(jié)根毛發(fā)育，HDAC對(duì)側(cè)根發(fā)育也有十分重要的作用。側(cè)根的發(fā)育受到生長(zhǎng)素以及生長(zhǎng)素應(yīng)答因子（auxin response factor，簡(jiǎn)稱(chēng)ARF）的調(diào)節(jié)。HDAC對(duì)生長(zhǎng)素介導(dǎo)的擬南芥?zhèn)雀陌l(fā)育具有負(fù)調(diào)控作用[11]。在根發(fā)育過(guò)程中，生長(zhǎng)素到達(dá)主根根尖需要生長(zhǎng)素轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白如PIN（pin-formed）家族、ABC（ATP-binding cassette）超家族的運(yùn)輸[12]。2013年，Nguyen等研究發(fā)現(xiàn)，在HDAC抑制劑如TSA、NaB存在下，PIN1蛋白被26S蛋白酶降解，導(dǎo)致PIN蛋白不能在根尖部位積累，進(jìn)而顯著抑制了擬南芥主根的生長(zhǎng)[13]。在水稻中，OsHDAC1與根生長(zhǎng)有關(guān)，[WTBX][STBX]OsHDAC1[WTBZ][STBZ]基因過(guò)量表達(dá)能夠促進(jìn)水稻根的生長(zhǎng)[14]。近期的關(guān)于玉米的研究表明，HDAC抑制劑NaB處理引起玉米根分生組織細(xì)胞有絲分裂停滯在早前期，根的生長(zhǎng)受到嚴(yán)重抑制[15]。雖然HDAC在根生長(zhǎng)發(fā)育中的功能研究較少，但已有研究充分說(shuō)明，HDAC對(duì)植物根系形成和發(fā)育十分重要。

目前，關(guān)于木本植物HDAC基因在根生長(zhǎng)發(fā)育中的功能研究鮮有報(bào)道。楊樹(shù)在世界范圍內(nèi)廣泛分布，不僅是重要的造林和工業(yè)用材樹(shù)種，也是木本植物研究的模式植物。本研究分析了HDAC在楊樹(shù)根再生和生長(zhǎng)過(guò)程中的功能，這一研究不僅在理論上有利于人們了解楊樹(shù)根系生長(zhǎng)發(fā)育的表觀(guān)遺傳調(diào)控機(jī)制，而且對(duì)于通過(guò)根系改良提高楊樹(shù)對(duì)水分、營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的利用率以及提高楊樹(shù)抗逆性具有一定的意義。

1材料與方法

1.1供試材料

本研究所用的植物材料84K楊、小黑楊無(wú)菌苗，由東北林業(yè)大學(xué)林木遺傳育種國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供。

1.2試驗(yàn)方法

1.2.1楊樹(shù)無(wú)菌苗的繼代培養(yǎng)84K楊、小黑楊無(wú)菌苗在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)4～5周，切莖段，將含有腋芽的莖段插入WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周，至腋芽萌發(fā)、長(zhǎng)出幼苗。然后將幼苗從莖段上切下，并放到含有0.1 mg/L IBA的WPM培養(yǎng)基上進(jìn)行生根培養(yǎng)。WPM培養(yǎng)基含有2%蔗糖、0.1 mg/L IBA、0.6%瓊脂，用1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH值至5.8。組培苗在溫度為（23±2）℃、光—暗周期16 h—8 h的條件下培養(yǎng)。

1.2.2楊樹(shù)幼苗的TSA處理將4～5周齡84K楊、小黑楊組培幼苗切莖段，莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周，然后將楊樹(shù)莖段上由腋芽萌發(fā)長(zhǎng)出的幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上進(jìn)行生根培養(yǎng)，培養(yǎng)溫度為（23±2）℃，光—暗周期為16 h—8 h。

1.2.3植株根長(zhǎng)、高度的測(cè)定將84K楊、小黑楊組培幼苗在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根1、2周時(shí)，分別測(cè)量并記錄84K楊、小黑楊再生幼苗的主根長(zhǎng)度、植株高度，利用Prism 6軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理，并通過(guò)多重比較法分析差異顯著性。當(dāng)P<0.05時(shí)，表示存在顯著性差異。

2結(jié)果與分析

2.1TSA抑制楊樹(shù)根的再生

2.1.1TSA抑制84K楊根的再生84K楊含腋芽的莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周后，腋芽長(zhǎng)出高1.5 cm左右的幼苗；將幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根培養(yǎng)。生根培養(yǎng)1周時(shí)，在含有不同濃度TSA的培養(yǎng)基上再生出的不定根長(zhǎng)度存在明顯差別（圖1）。在含有0 μmol/L TSA的培養(yǎng)基上，84K楊幼苗基部能夠再生出不定根，不定根平均長(zhǎng)度為6.3 mm；在含有1 μmol/L TSA的培養(yǎng)基上，84K楊組培幼苗再生出的不定根平均長(zhǎng)度為 2 mm；在含有5 μmol/L TSA的培養(yǎng)基上，84K楊組培幼苗不能再生出不定根。結(jié)果表明，TSA處理抑制不定根的再生，TSA濃度越高，對(duì)根再生的抑制作用越強(qiáng)。

2.1.2TSA抑制小黑楊根的再生與84K楊相似，小黑楊幼苗不定根的再生受TSA的明顯抑制。小黑楊在含有0 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生長(zhǎng)1周時(shí)，在幼苗

2.2TSA抑制楊樹(shù)根的生長(zhǎng)

2.2.1TSA抑制84K楊根的生長(zhǎng)84K楊含腋芽的莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周后，腋芽長(zhǎng)出高1.5 cm左右的幼苗，將幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根培養(yǎng)。TSA處理抑制了再生根的生長(zhǎng)，而且隨著TSA濃度的增加，其根生長(zhǎng)受到的抑制作用越大。84K楊幼苗在含有0

2.2.2TSA抑制小黑楊根的生長(zhǎng)小黑楊含腋芽的莖段在WPM培養(yǎng)基上培養(yǎng)3周后，腋芽萌發(fā)長(zhǎng)出高1.5 cm左右的幼苗，將幼苗用剪刀剪下，分別放在含有0、1、5 μmol/L TSA的WPM培養(yǎng)基上生根培養(yǎng)。在含有不同濃度TSA的培養(yǎng)基上生長(zhǎng)2周時(shí)，小黑楊再生根的根長(zhǎng)度存在明顯差異，TSA濃度越高，根的長(zhǎng)度越短，呈負(fù)相關(guān)趨勢(shì)。當(dāng)TSA濃度為0 μmol/L時(shí)，植株根的長(zhǎng)度平均為5.3 cm；當(dāng)TSA濃度為1 μmol/L時(shí)，植株根的長(zhǎng)度明顯比0 μmol/L處理時(shí)短小，根長(zhǎng)平均為1.3 3結(jié)論與討論

組織培養(yǎng)是木本植物快速繁殖的一種有效方式，一些樹(shù)種在組織培養(yǎng)過(guò)程中不定芽或根的再生十分困難。通過(guò)改變培養(yǎng)基成分（如營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)或激素含量和比例）或培養(yǎng)條件（如溫度、光照度）仍不能有效獲得再生植株。因此，亟需一種方法來(lái)實(shí)現(xiàn)和提高植物的再生率。表觀(guān)遺傳學(xué)是基因表達(dá)調(diào)控的一種重要方式，對(duì)植物生是目前關(guān)于表觀(guān)遺傳調(diào)控在木本植物不定芽或根再生中的功能鮮有報(bào)道。

本研究分析了組蛋白去乙?；敢种苿㏕SA對(duì)84K楊、小黑楊2種楊樹(shù)根再生和生長(zhǎng)的影響，結(jié)果顯示，TSA處理能夠顯著抑制這2種楊樹(shù)根的再生和生長(zhǎng)，TSA濃度越大，根再

生和生長(zhǎng)受到的抑制作用越大。結(jié)果表明，HDAC的存在對(duì)于楊樹(shù)根的再生、生長(zhǎng)發(fā)育具有十分重要的調(diào)節(jié)作用，也說(shuō)明楊樹(shù)根的再生、生長(zhǎng)受表觀(guān)遺傳調(diào)控。

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