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      禽腺病毒Ⅰ群分離、鑒定方法

      2017-04-19 22:11楊作豐
      湖北畜牧獸醫(yī) 2017年2期
      關(guān)鍵詞:分離鑒定

      楊作豐

      摘要:禽腺病毒Ⅰ群(FAV-Ⅰ)是一種雙鏈DNA病毒,病毒對(duì)外界環(huán)境耐受較強(qiáng),并有水平傳播及垂直傳播兩種傳播方式,近年來(lái)在國(guó)內(nèi)呈暴發(fā)式流行,各地養(yǎng)殖場(chǎng)均有報(bào)道檢測(cè)到FAV-Ⅰ,F(xiàn)AV-Ⅰ對(duì)養(yǎng)殖業(yè)造成嚴(yán)重?fù)p失。分離、鑒定FAV-Ⅰ的毒株類(lèi)型是防控此病的基礎(chǔ)。除傳統(tǒng)的檢測(cè)方法外,近年新興了多種檢測(cè)技術(shù),對(duì)這些分離、鑒定方法進(jìn)行了概述。

      關(guān)鍵詞:禽腺病毒Ⅰ群;分離;鑒定

      中圖分類(lèi)號(hào):S858.3 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:B 文章編號(hào):1007-273X(2017)02-0005-03

      近年來(lái)禽腺病毒病在我國(guó)發(fā)病率日益升高,給養(yǎng)殖業(yè)造成巨大損失。感染禽腺病毒的家禽21 d內(nèi)死亡率高達(dá)30%,禽腺病毒病的防治成為迫要需要解決的問(wèn)題[1]。禽腺病毒是一種DNA病毒,能夠引起雞群禽腺病毒感染,是一種亞臨床性傳染病,感染雞群通常為癥狀不明顯的隱性感染,并長(zhǎng)期帶毒[2]。根據(jù)病毒群特異性抗原的不同將其分為三群:禽腺病毒Ⅰ群(FAV-Ⅰ)、禽腺病毒Ⅱ群、禽腺病毒Ⅲ群。FAV-Ⅰ主要包括傳統(tǒng)的腺病毒以及從其他禽類(lèi)分離出的腺病毒分離株,這些腺病毒毒株具有相同的抗原群;禽腺病毒Ⅱ群主要是包括火雞出血性腸炎及雞大脾病毒,這些病毒具有和FAV-Ⅰ不同的抗原群;禽腺病毒Ⅲ群主要是產(chǎn)蛋綜合征相關(guān)的病毒。

      據(jù)報(bào)道FAV-Ⅰ能引起心包涵體炎、心包積水-肝炎綜合征等傳染病[3]。FAV-Ⅰ病毒可分為A、B、C、D、E、F五個(gè)種和12個(gè)血清型[4]。禽腺病毒的潛伏期較短,雞日齡越小越易感染FAV-Ⅰ,成年雞也可感染,通常沒(méi)有明顯癥狀但是能夠作為混合感染時(shí)的條件性病原,在一定條件下部分禽腺病毒也能夠作為原發(fā)性病原,引發(fā)禽類(lèi)的多種病癥[5]。禽腺病毒能夠通過(guò)雞的排泄物排出,正常雞接觸后極易感染,并且禽腺病毒還能通過(guò)蛋垂直傳播。報(bào)道稱(chēng)FAV-Ⅰ對(duì)宿主具有高度的特異性,只有少數(shù)的病毒能夠感染宿主以外的動(dòng)物。FAV-Ⅰ對(duì)外界環(huán)境的耐受較強(qiáng),在室溫中依然能夠維持毒價(jià)長(zhǎng)達(dá)半年,對(duì)酸和熱的耐受也很強(qiáng),因此其經(jīng)過(guò)動(dòng)物胃腸道依然可以保持活性,這使得其危害更加嚴(yán)重[6-7]。因此FAV-Ⅰ病毒群的分離、鑒定更具有指導(dǎo)意義,本文對(duì)常用的FAV-Ⅰ分離、鑒定方法進(jìn)行了概述。

      1 分離方法

      禽腺病毒的分離通常是通過(guò)接種SPF雞胚來(lái)分離、增殖。接種位置有兩種,分別是卵黃囊接種及絨毛尿囊膜接種,接種雞胚后病變主要出現(xiàn)在肝臟部位,肝臟呈重度充血、出血及嚴(yán)重的彌漫性變性、壞死。卵黃囊、腎臟、脾臟也有一定的變性、壞死[8]。

      1.1 病料直接分離法

      無(wú)菌操作取發(fā)病雞肝臟,按照1∶5(W/V)的比例加入滅菌后的生理鹽水,于操作臺(tái)中研磨,生理鹽水中預(yù)先加入雙抗(青霉素2 000 U/mL;鏈霉素2 000 μg/mL)。充分研磨后,反復(fù)凍融3次,3 000 r/min離心20 min后取上清液,經(jīng)0.22 μm的濾器過(guò)濾除菌,過(guò)濾液經(jīng)無(wú)菌檢驗(yàn)后,卵黃囊接種6日齡SPF雞胚,每日照蛋兩次,棄掉3 d內(nèi)死掉的雞胚,收獲4~10 d死亡的雞胚的尿囊液,盲傳檢驗(yàn)所收獲病毒液,合格后冷凍保存。

      1.2 棉拭子分離法

      取病雞口腔及肛門(mén)拭子,用適量的生理鹽水浸泡拭子2 h,充分浸泡棉拭子后,反復(fù)凍融3次,3 000 r/min離心15 min,取上清液經(jīng)0.22 μm濾器除菌,經(jīng)無(wú)菌檢驗(yàn)后卵黃囊接種6日齡SPF雞胚,每日照蛋兩次,棄掉3 d內(nèi)死掉的雞胚,收獲4~10 d死亡的雞胚的尿囊液,盲傳檢驗(yàn)所收獲病毒液,合格后冷凍保存。

      2 鑒定方法

      禽腺病毒的鑒定方法有很多種,分別為免疫瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn)、中和試驗(yàn)、電子顯微鏡法、PCR反應(yīng)鑒定、酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)鑒定、環(huán)介導(dǎo)的等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(LAMP)、交叉引物擴(kuò)增技術(shù)(CPA)等,每種方法都有其優(yōu)缺點(diǎn),根據(jù)實(shí)際要求選擇合適的方法進(jìn)行鑒定,現(xiàn)對(duì)其中幾種實(shí)驗(yàn)室常用方法進(jìn)行概述。

      2.1 免疫瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn)

      根據(jù)沉淀試驗(yàn)原理,抗原、抗體在瓊脂中擴(kuò)散,相遇后可結(jié)合形成抗原-抗體復(fù)合物,外觀(guān)呈一條白色沉淀線(xiàn)。應(yīng)用免疫瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn)鑒定FAV-Ⅰ病毒是一種血清學(xué)診斷技術(shù),該方法具有操作簡(jiǎn)便、快捷、靈敏度高等特點(diǎn),將病毒分離、純化,用作免疫瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn)的抗原,稱(chēng)取一定量的瓊脂粉,按照1%濃度加入生理鹽水,加熱充分溶解,將溶解的瓊脂溶液倒入平皿中,冷卻,選擇合適打孔器進(jìn)行打孔,挑出孔內(nèi)瓊脂,小心加熱平皿底部使孔底瓊脂融化少許,起到封底的作用。加入陽(yáng)性血清和所制備的抗原,倒置放置在濕盤(pán)中,37 ℃自由擴(kuò)散24~48 h觀(guān)察結(jié)果,看是否觀(guān)察到白線(xiàn),如果有則證明此抗原是FAV-Ⅰ[9]。

      2.2 電鏡檢測(cè)鑒定

      根據(jù)腺病毒的特征形態(tài),該病毒為球形、無(wú)囊膜、二十面體對(duì)稱(chēng)、直徑約為80 nm??梢灾苯佑秒娮语@微鏡觀(guān)察病毒形態(tài),看是否吻合進(jìn)行初步確定。也有報(bào)道稱(chēng)禽腺病毒可以用電鏡負(fù)染法鑒定,用適量的水重懸病毒粒子,在載玻片上以1%磷鎢酸負(fù)染30 s,包埋于200目聚乙烯醇縮甲醛銅網(wǎng)上,用電子顯微鏡觀(guān)察病毒粒子形態(tài),看是否與禽腺病毒吻合[10]。

      2.3 PCR方法鑒定

      FAV-Ⅰ能夠在細(xì)胞核內(nèi)復(fù)制,產(chǎn)生嗜堿性包涵體,其結(jié)構(gòu)蛋白主要是Hexon蛋白,含有特異性抗原決定簇,能夠中和抗體,是病毒的一種保護(hù)基因,與病毒的致病性密切相關(guān)[11]。FAV-Ⅰ病毒有12個(gè)血清型,其中最具有代表性的病毒為雞胚致死孤兒病毒(CELOV),許多學(xué)者應(yīng)用PCR鑒定時(shí)會(huì)選擇Hexon基因或CELOV的序列進(jìn)行引物設(shè)計(jì)[12]。也有報(bào)道根據(jù)Hexon loop1基因及特意纖維蛋白原基因的同源性分析,可以將不同種的腺病毒進(jìn)行進(jìn)一步的分離鑒定,分析各種毒株的親緣性關(guān)系,對(duì)疾病的防控起到了積極作用[13]。

      PCR方法鑒定是常用的檢測(cè)手段,根據(jù)GenBank中公布的病毒的全基因組序列的保守區(qū)設(shè)計(jì)引物。無(wú)菌取病雞內(nèi)臟研磨,將研磨液8 000 r/min離心后取上清液,提取其中的病毒DNA作為模板,加入酶、引物等。瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)是否有目的條帶。用瓊脂凝膠回收試劑盒將目的條帶回收純化,測(cè)序。將測(cè)序結(jié)果用NCBI中的Nuclear acid blasting進(jìn)行序列比對(duì),確定是否為FAV-Ⅰ感染[14]。

      也有研究[14]將套式PCR應(yīng)用到鑒定中,套式PCR具有敏感性高、特異性強(qiáng)、快速、高效等特點(diǎn)。方法是根據(jù)GenBank中FAV-Ⅰ病毒的基因設(shè)計(jì)兩對(duì)引物,第一對(duì)引物擴(kuò)增片段和普通PCR相似,第二對(duì)引物(巢氏引物)應(yīng)在第一次PCR產(chǎn)物內(nèi)部。這樣經(jīng)過(guò)兩次PCR反應(yīng)后,根據(jù)目的條帶判斷所檢測(cè)病毒是否為FAV-Ⅰ病毒。

      2.4 ELISA方法鑒定

      酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)是在不影響酶活性的條件下,令酶分子與免疫球蛋白相結(jié)合,由標(biāo)記酶的放大作用,確保了ELISA反應(yīng)的靈敏性[15]。FAV-Ⅰ病毒的主要結(jié)構(gòu)蛋白是六鄰體蛋白,是該病毒粒子中含量最高的一種蛋白,含有240個(gè)殼粒,占了FAV-Ⅰ病毒全部殼粒的90%以上。了解六鄰體衣殼蛋白特性具有非常大的研究?jī)r(jià)值,無(wú)論是滅活疫苗制備還是ELISA抗原蛋白的制備[16]。100 K蛋白、33 K蛋白是FAV-Ⅰ的非結(jié)構(gòu)蛋白,在病毒感染的過(guò)程中起到了關(guān)鍵的作用,并且在鑒定的時(shí)候這兩種蛋白具有更高的敏感性及特異性,使檢測(cè)結(jié)果更加準(zhǔn)確[17]。羅絲絲[18]建立了一種簡(jiǎn)便、快速的檢測(cè)FAV-Ⅰ抗體的間接ELISA方法,構(gòu)建pGEX-penton質(zhì)粒,轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH5α,誘導(dǎo)表達(dá)、純化。利用表達(dá)和純化產(chǎn)物作為抗原,同時(shí)優(yōu)化了反應(yīng)條件,成功建立FAV-Ⅰ間接penton-ELISA檢測(cè)方法。Junnu等[19]利用大腸桿菌表達(dá)純化禽腺病毒中的六鄰體蛋白而研究出一種新的、快速的ELISA檢測(cè)試劑盒。

      2.5 LAMP鑒定方法

      LAMP技術(shù)是一種新的恒溫核酸擴(kuò)增技術(shù),該技術(shù)具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、操作簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn),該技術(shù)已經(jīng)被應(yīng)用到多種病原微生物的檢測(cè),如大腸桿菌、沙門(mén)氏菌、分枝桿菌、副溶血性弧菌等[20]。唐熠等[21]根據(jù)Ⅰ群禽腺病毒的Hexon基因的保守序列設(shè)計(jì)了一套特異性環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增的引物,從而建立了一種適用于Ⅰ群禽腺病毒的LAMP快速的檢測(cè)手段,該方法簡(jiǎn)便、快速、敏感性強(qiáng)、特異性高。

      2.6 CPA鑒定方法

      CPA是完全由中國(guó)優(yōu)思達(dá)公司獨(dú)立研發(fā)成功的一種新的核酸恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù),也是中國(guó)首個(gè)具有自主知識(shí)產(chǎn)權(quán)的核酸擴(kuò)增技術(shù),CPA與其他技術(shù)相結(jié)合是現(xiàn)在一個(gè)完整的快速分子檢測(cè)技術(shù)平臺(tái),目前CPA對(duì)禽腺病毒檢測(cè)的應(yīng)用才剛剛開(kāi)始,據(jù)報(bào)道稱(chēng)CPA檢測(cè)禽腺病毒hexon基因已經(jīng)研發(fā)出來(lái)[22],這將是比PCR技術(shù)更加快速、更加便宜的一項(xiàng)檢測(cè)技術(shù)。

      3 展望

      FAV-Ⅰ是近年危害較大的一種常見(jiàn)禽流行病,對(duì)養(yǎng)殖業(yè)造成較大損失,引起畜牧工作者較多關(guān)注,越來(lái)越多的分離、鑒定方法被應(yīng)用到檢測(cè)FAV-Ⅰ上。除本文上述常規(guī)、成熟檢測(cè)方法外,多種快捷、簡(jiǎn)便且精準(zhǔn)度更高的檢測(cè)方法,如I群腺病毒定向靶位檢測(cè)、腺病毒跨群定型檢測(cè)等也逐漸成為研究的熱點(diǎn)。隨著對(duì)檢測(cè)方法的不斷深入研究,將為腺病毒檢測(cè)及綜合防控提供基礎(chǔ)保障。

      參考文獻(xiàn):

      [1] ZHAO J,ZHONG Q,ZHAO Y,et al. Correction: Pathogenicity and complete genome charanterization of fowl adenoviruses isolated from chickens associated with inclusion body hepatitis and hydropericardium syndrome in China[J].Plos One,2016,11(8): e0161744.

      [2] ALVARADO I R, VILLEGAS P, ELATTRACHE J, et al. Genetic characterization, pathogenicity, and protection studies with an avian adenovirus isolate associated with inclusion body hepatitis[J]. Avian Diseases,2007,51(1):27-32.

      [3] 袁萬(wàn)哲,李玉寶,王建昌,等.雞心包積液-肝炎綜合征的初步研究[J].中國(guó)獸醫(yī)科學(xué),2016(2):157-160.

      [4] 趙 莉,周 潔,高 誠(chéng).禽腺病毒載體研究進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2012(11):99-103.

      [5] 王 慧,程小果,郭建友,等.近期雞群Ⅰ群禽腺病毒的流行與防治[J].上海畜牧獸醫(yī)通訊,2016(2):62-63.

      [6] 刁有祥.Ⅰ群禽腺病毒感染的流行情況與防控[J].北方牧業(yè), 2016(10):21.

      [7] LI C,LI H,WANG D,et al.Characterization of fowl adenoviruses isolated between 2007 and 2014 in China[J].Veterinary Microbiology,2016,197:62-67.

      [8] ALENMNESH W, HAIR-BEJO M, AINI I, et al. Pathogenicity of fowl adenovirus in specific pathogen free chicken embryos[J].Journal of Comparative Pathology,2012,146(2-3):223-229.

      [9] 智海東,解生亮,楊 志,等.禽腺病毒Ⅰ型瓊脂擴(kuò)散抗原的研制及應(yīng)用[J]. 中國(guó)獸醫(yī)科學(xué),2009(8):718-722.

      [10] 由 佳,朱應(yīng)民,李明舉.雞包涵體肝炎診斷及防治措施概述[J].山東畜牧獸醫(yī),2016(7):78-79.

      [11] 牛登云,沈 元,王 蕊,等. 2015年我國(guó)Ⅰ群禽腺病毒分子流行病學(xué)調(diào)查[J].中國(guó)家禽,2016(9):65-68.

      [12] LI Y, FU J, CHANG S, et al. Isolution, identification, and hexon gene characterization of fowl adenoviruses from a contaminated live Newcastle diease virus vaccine[J]. Poultry Science,2016:pew405.

      [13] SCHACHNER A,MAREK A,GRAFL B,et al. Setailed molecular analyses of the hexon loop-1 and fibers of fowl aviadenoviruses reveal new insights into the antigenic relationship and confirm that specific genotypes are involved in field outbreaks of inclusion body hepatitis[J]. Veterinary Microbiology,2016, 186:13-20.

      [14] MITTAL D,JINDAL N,TIWARI A K,et al. Characterization of fowl adenoviruses associated with hydropericardiu syndrome and inclusion body hepatitis in broiler chickens[J]. Indian Journal of Virology,2014,25(1):114-119.

      [15] R R, Roy P. Recombinant hexon antigen based single serum dilution ELISA for rapid serlolgical profiling against fowl adenovirus causing hydropericardium syndrome in chickens[J]. Journal of Virological Methods,2014,207(10):121-127.

      [16] DAR A,TIPU M,TOWNSEND H,et al. Administration of Poly[di(sodium carboxylatoethylphenoxy)phosphazene](PCEP) and avian beta defensin as adjuvants in inactivated inclusion body hepatitis virus and its hexon protein-based experimental vaccine formulations in chickens[J]. Avian Diseases,2015,59(4):518-524.

      [17] XIE Z,LUO S,F(xiàn)AN Q,et al. Detection of antibodies specific to the non-structural proteins of fowl adenoviruses in infected chickens but not in vaccinated chickens[J]. Avian Pathology,2013,42(5):491-496.

      [18] 羅絲絲. Ⅰ群腺病毒分離堅(jiān)定及重組蛋白ELISA鑒別診斷方法的研究[D]. 南寧:廣西大學(xué),2011.

      [19] JUNNU S,LERTWATCHARASARAKUL P,JALA S,et al. Developing an indirect ELISA based on recombinant hexon protein for serological detection of inclusion body hepatitis in chickens[J].Journal of Veterinary Medical Science,2014,76(2):289.

      [20] 李志強(qiáng). LAMP技術(shù)在微生物檢測(cè)中的應(yīng)用[J].生命科學(xué)儀器,2009(7):3-6.

      [21] 唐 熠,謝芝勛,熊文婕,等.Ⅰ群禽腺病毒環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)方法的建立[J]. 中國(guó)獸醫(yī)科學(xué),2010(7):713-716.

      [22] NICZYPORUK J S,WOZNIAKOWSKI G,SAMOREKSALAMONOWICZ E. Application of cross-priming amplification(CPA) for detection of fowl adenovirus(FadV) strains[J]. Archives of Virology,2015,160(4):1005-1013.

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