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      副溶血性弧菌的檢測研究

      2017-05-30 10:43:08劉小青李日升黃靜敏陳晶蘭全學
      安徽農業(yè)科學 2017年32期
      關鍵詞:溶血性食源性弧菌

      劉小青 李日升 黃靜敏 陳晶 蘭全學

      摘要[目的]對toxR進行副溶血性弧菌特異性檢測,探討toxR靶基因能否準確檢測副溶血性弧菌,從而消除其他研究者對該基因特異性的疑慮。[方法]采用SN/T1870—2016中副溶血性弧菌toxR的引物探針對副溶血性弧菌和其親緣關系接近的弧菌標準菌株進行檢測。[結果]采用實時熒光PCR方法證實該引物探針只能擴增出副溶血性弧菌,其他弧菌諸如溶藻弧菌、創(chuàng)傷弧菌、霍亂弧菌等未得到擴增。[結論] 證實SN/T1870—2016中toxR的引物探針特異性高。該研究可為各檢測機構提供數(shù)據支持,為副溶血性弧菌的檢測與研究奠定更為堅實的基礎。

      關鍵詞副溶血性弧菌;SN/T1870—2016;toxR;弧菌

      中圖分類號TS201.3文獻標識碼

      A文章編號0517-6611(2017)32-0079-02

      Detection Research of Vibrio parahaemolyticus

      LIU Xiaoqing,LI Risheng,HUANG Jingmin,LAN Quanxue* et al(Shenzhen Institute of Measurement Quality Inspection,Shenzhen,Guangdong 518131)

      Abstract[Objective]The specific detection of toxR in Vibrio parahaemolyticus was used to investigate whether the toxR target gene can detect Vibrio parahaemolyticus accurately,thus it eliminates doubts among other researchers about the specificity of the gene.[Method] The primer and probe of toxR in SN/T 1870—2016 was used to detect Vibrio parahaemolyticus and its Vibrio related standard strain.[Result] The realtime fluorescent PCR method proved that the primer and probe could only amplify Vibrio parahaemolyticus,and other Vibrio species such as Vibrio vulnificus,Vibrio vulnificus and Vibrio cholerae were not amplified.[Conclusion] The specificity of toxR primers and probe in SN/T1870—2016 was confirmed high.This study can provide data support for the testing organization,and lay a more solid foundation for the detection and research of V.Parahaemolyticus.

      Key wordsVibrio parahaemolyticus;SN/T1870-2016;toxR;Vibrio spp

      作者簡介劉小青(1983—),女,江西萬載人,工程師,碩士,從事微生物研究。*通訊作者,高級工程師,碩士,從事食品微生物學研究。

      收稿日期2017-08-28

      副溶血性弧菌(Vibrio parahaemolyticus)是一種革蘭陰性細菌[1],具有嗜鹽性,屬于弧菌科弧菌屬的食源性致病菌,主要分布在海水和魚、貝類、蝦、海蜇等海產品中,其次為鹽腌漬品中,另外畜禽肉、咸蛋、淡水魚等也會由于交叉污染而傳播該菌。由副溶血性弧菌引起的食品安全事故逐年增加,已成為導致食源性疾病的主要致病菌,其對人類的危害已經超過沙門氏菌,因此檢測副溶血性弧菌極為重要[2]。

      隨著分子生物學技術的飛速發(fā)展,研究人員和學者們逐漸意識到,對病原微生物的鑒定不能僅局限于對它的外部形態(tài)結構及生理特征等一般檢驗上,而要從分子生物學水平上研究其核酸結構和組成成分。為此,國內外眾多的研究人員開始建立起多種以分子生物學技術為手段的食源性致病菌檢測技術,這些技術包括常規(guī)PCR技術、實時熒光定量PCR 技術、基因芯片技術和以環(huán)介導等溫擴增技術(LAMP)、重組酶聚合酶擴增(RPA)為代表的等溫擴增技術。在我國,一些從實時熒光PCR技術上對致病菌進行快速檢測的方法也逐漸被研究應用,其中《出口食品中食源性致病菌檢測方法 實時熒光PCR法》SN/T1870—2016是各檢測機構最為常用的一個檢測方法[3],該標準涵蓋了副溶血性弧菌等12種致病菌的檢測。由于副溶血性弧菌與弧菌屬其他弧菌的親緣關系近,有研究者質疑副溶血性靶基因的選擇,筆者以SN/T1870—2016為基礎,就SN/T1870—2016中副溶血性弧菌的引物探針的特異性進行鑒別,深入研究探討該標準在副溶血性弧菌的實際應用中的檢測效果,以期為各檢測機構提供數(shù)據支撐。

      1材料與方法

      1.1材料標準菌株購自各菌種保藏中心等;培養(yǎng)基購自北京陸橋技術有限責任公司;細菌基因組DNA提取試劑盒購自Promega公司;實時熒光PCR反應試劑Premix酶等購自寶生物工程(大連)有限公司;引物、探針由上海生物工程有限公司合成;Mx3005P實時熒光PCR儀,美國安捷倫公司;試驗中所用引物見表1[3],由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

      1.2方法

      1.2.1細菌的培養(yǎng)。副溶血性弧菌標準菌株在3%氯化鈉堿性蛋白胨水37 ℃振蕩培養(yǎng)18 h復活,其他弧菌在營養(yǎng)肉湯中37 ℃振蕩培養(yǎng)18 h復活。

      1.2.2菌株DNA模板的制備。

      取1.0 mL菌液于1.5 mL離心管中,12 000 r/min離心10 min,去除上清液,收集菌體。加入100 μL滅菌超純水懸浮,100 ℃沸水中水浴10 min。12 000 r/min離心2 min,取上清液作為PCR反應DNA模板。

      1.2.3樣品DNA模板的制備。取1.0 mL菌液于1.5 mL離心管中,按照細菌基因組DNA提取試劑盒提取基因組DNA。

      1.2.4特異性試驗。

      將副溶血性弧菌和其他弧菌的標準菌株采用增菌液增菌后,按“1.2.3”方法制備DNA模板,采用25 μL 體系進行特異性試驗,體系為2× premix 12.5 μL,上下游引物各1.0 μL,探針0.5 μL, ddH2O 8.0 μL, DNA模板2.0 μL。PCR擴增條件:95 ℃ 3 min;95 ℃ 5 s, 60 ℃ 40 s 并收集FAM熒光,進行40個循環(huán)。

      2結果與分析

      擴增結果見圖1和表2。SN/T1870—2016中的副溶血性弧菌PCR體系特異地檢出了副溶血性弧菌,而其他與其親緣關系鄰近種屬的弧菌未見到非特異擴增現(xiàn)象,這表明該引物探針的特異性高。

      采用分子方法尤其是SN/T1870—2016對其進行快速檢測已是常規(guī)檢測手段。但由于副溶血性弧菌與弧菌屬其他

      弧菌的親緣關系極為相近,有研究者質疑副溶血性toxR靶基因的選擇,認為toxR基因無法區(qū)分副溶血性弧菌與非副溶血性弧菌,而該研究所選用菌株均為與副溶血性弧菌親緣關系極為相近的菌株,結果證實SN/T1870—2016中toxR的引物探針特異性高,從而使上述質疑得到釋疑。

      3討論

      該研究結果證實,SN/T1870—2016中toxR的引物探針特異性高,可以有效地將副溶血性弧菌從親緣關系相近弧菌中區(qū)別開。然而,近些年以來,隨著分子生物學的發(fā)展,研究人員逐漸采用熒光PCR等分子生物學手段對副溶血性弧菌進行快速檢測,SN/T1870—2016采用toxR基因作為副溶血性弧菌的靶基因,它是弧菌中廣泛分布的基因,為霍亂毒素的調控子及其他基因的調控子,該基因主要與toxS構成兩成分系統(tǒng)(toxRS)對毒力基因進行表達調控,已有很多文獻報道利用toxR鑒定副溶血性弧菌,并表現(xiàn)出很高的特異性和靈敏度[4-6],但依然也有很多外國學者對該靶基因提出了質疑。Kim 對373株副溶血性弧菌和290株非副溶血弧菌屬采用toxR基因進行了菌落PCR,發(fā)現(xiàn)373株副溶血性弧菌全部陽性,但是弧菌屬的其他4個種(溶藻弧菌、坎氏弧菌、鯊魚弧菌、哈氏弧菌)有弱陽性出現(xiàn)。由于副溶血性弧菌與弧菌屬的其他弧菌如霍亂弧菌、溶藻弧菌、創(chuàng)傷弧菌等親緣關系極為密切,16sRNAR分析發(fā)現(xiàn),其與溶藻弧菌的的同源性高達99%[7]。也有文獻報道,副溶血性弧菌與氣單胞菌屬和發(fā)光桿菌屬毒素基因也有交叉反應[8]。因此在該研究中,筆者選取了2株副溶血性弧菌標準菌株、9株弧菌屬的其他弧菌、氣單胞菌屬和發(fā)光桿菌共12株菌作為非副溶血性弧菌的代表,對所選引物探針進行特異性試驗,著重探討其對臨近種屬的特異性。結果表明,SN/T1870—2016中副溶血性弧菌的特異性很高,僅擴增副溶血性弧菌,其他臨近種屬的菌未得到擴增。通過NCBI將引物和探針序列進行blast發(fā)現(xiàn),比對結果中只有副溶血性弧菌出現(xiàn),進一步證實該引物探針特異性高,與筆者的試驗結果一致。該研究解除了利用SN/T1870—2016中的副溶血性弧菌引物探針特異性不高的疑慮,可為各檢測機構提供數(shù)據支持,為副溶血性弧菌的檢測與研究奠定更為堅實的基礎。

      參考文獻

      [1]

      FUJINO T,OKUNO Y,NAKADA D,et al.On the bacteriological examination of shirasufood poisoning[J].Med J Osaka Univ,1953,4(2/3):299-304.

      [2] 陳晶,黃建飛,劉叢叢.食品來源副溶血性弧菌毒力基因分布及分子分型研究[J].食品工業(yè)科技,2016,37(6):239-249.

      [3] 中華人民共和國國家質量監(jiān)督檢驗檢疫總局.出口食品中食源性致病菌檢測方法 實時熒光PCR法:SN/T 1870—2016[S].北京:中國標準出版社,2016.

      [4]

      馬立芝,郭李平,邱業(yè)峰.副溶血弧菌的致病機制[J].生物技術通訊,2013,24(6):871-876.

      [5] 蘇靖華,章紅紅,傅慧琴,等.副溶血性弧菌160株血清群型分布和耐藥性分析[J].上海預防醫(yī)學,2012,24(3):135-138.

      [6] 林佳琪,蘇國成,黃建煒,等.四重PCR檢測副溶血性弧菌及其毒力基因方法的建立[J].微生物學通報,2016,43(11):2521-2529.

      [7] KIM Y B,OKUDA J,MATSUMOTO C,et al.Identification of Vibrio parahaemolyticus strains at the species level by PCR targeted to the toxR gene[J].Journal of clinical microbiology,1999,37(4):1173-1177.

      [8] KLEIN S L,GUTIERREZ WEST C K,MEJIA D M,et al.Genes similar to the Vibrio parahaemolyticus virulencerelated genes tdh,tlh and vscC2 occur in other Vibrionaceae species isolated from a pristine esturary[J].Applies and environmental microbiology,2014,80(2):595-602.

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