鐘長江, 李建華, 岳喜磊, 許繼德△, 楊春濤, 鄧?yán)蜴?/p>
(1廣州醫(yī)科大學(xué)生理學(xué)教研室,廣東 廣州 511436; 2廣州市花都區(qū)人民醫(yī)院,廣東 廣州 510800; 3黃石市中心醫(yī)院,湖北 黃石 435000)
Caveolin-1在TGF-β1誘導(dǎo)人支氣管上皮細(xì)胞間質(zhì)化中的作用*
鐘長江2, 李建華1, 岳喜磊3, 許繼德1△, 楊春濤1, 鄧?yán)蜴?
(1廣州醫(yī)科大學(xué)生理學(xué)教研室,廣東 廣州 511436;2廣州市花都區(qū)人民醫(yī)院,廣東 廣州 510800;3黃石市中心醫(yī)院,湖北 黃石 435000)
目的: 探究小窩蛋白1(caveolin-1)在轉(zhuǎn)化生長因子β1(TGF-β1)誘導(dǎo)的人支氣管上皮細(xì)胞(16HBE細(xì)胞)上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)中的作用。方法: 以16HBE細(xì)胞株為研究對象,免疫熒光、RT-qPCR和Western blot實(shí)驗(yàn)檢測16HBE細(xì)胞EMT過程中caveolin-1的mRNA和蛋白表達(dá);Western blot檢測siRNA干擾caveolin-1對16HBE細(xì)胞EMT的影響。結(jié)果: Caveolin-1廣泛存在于16HBE細(xì)胞膜上,TGF-β1刺激后,caveolin-1的mRNA和蛋白表達(dá)減少(P<0.05)。與TGF-β1組比較,caveolin-1 siRNA和TGF-β1共同作用促進(jìn)了細(xì)胞形態(tài)的轉(zhuǎn)化,抑制了E-鈣黏蛋白的蛋白表達(dá)而促進(jìn)了α-SMA的蛋白表達(dá)(P<0.05)。TGF-β1刺激16HBE細(xì)胞后,AKT和Smad3在30 min磷酸化水平最高,與0 min對照組比較顯著增加(P<0.05);用siRNA干擾caveolin-1基因后再用TGF-β1刺激16HBE細(xì)胞30 min,下游信號蛋白分子AKT和Smad3的磷酸化水平增高,與TGF-β1組比較顯著增加(P<0.05)。結(jié)論: TGF-β1 能下調(diào) 16HBE 細(xì)胞的caveolin-1表達(dá)水平; caveolin-1可能參與了TGF-β1誘導(dǎo)的16HBE 細(xì)胞EMT過程中TGF-β1/Smad通路和PI3K-AKT通路的活化。
轉(zhuǎn)化生長因子β1; 人支氣管上皮細(xì)胞; 上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化; 小窩蛋白1; 氣道重塑
支氣管哮喘是由包括支氣管上皮細(xì)胞等細(xì)胞和細(xì)胞組份參與的呼吸系統(tǒng)常見慢性多發(fā)病。氣道上皮細(xì)胞脫落、胞間黏附結(jié)構(gòu)喪失和上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)是哮喘氣道重塑的重要特征。EMT主要表現(xiàn)為上皮細(xì)胞極性喪失,上皮表型標(biāo)志物E-鈣黏蛋白表達(dá)減少,胞間及細(xì)胞-基質(zhì)間的黏附性喪失,并且獲得間充質(zhì)細(xì)胞的特性如細(xì)胞獲得遷移能力和表型標(biāo)志物α-平滑肌肌動蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)的表達(dá)增多等。轉(zhuǎn)化生長因子β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)是一種調(diào)節(jié)細(xì)胞生長、存活、分化和轉(zhuǎn)移的轉(zhuǎn)化生長因子,參與組織的纖維化、自身免疫性疾病和腫瘤的形成。研究發(fā)現(xiàn)TGF-β1可誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生EMT,如使I型肺泡上皮細(xì)胞、眼晶狀體上皮細(xì)胞等多種上皮細(xì)胞向間質(zhì)肌纖維母細(xì)胞轉(zhuǎn)分化,促進(jìn)組織纖維化的發(fā)展[1]。TGF-β1調(diào)節(jié)EMT發(fā)生的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路主要為Smad 通路、非 Smad 通路、磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)/蛋白激酶B(protein kinase B,PKB,即AKT)通路等信號調(diào)節(jié)通路[2]。小窩是細(xì)胞表面大小50~100 nm的向細(xì)胞膜內(nèi)凹陷的微區(qū)域,小窩上富含如小窩蛋白1(ca-veolin-1,Cav-1)、TGF-β受體、瞬時受體電位通道和絲裂原激活蛋白激酶激酶1/2(mitogen-activated protein kinase kinase 1/2,MEK1/2)等信號傳導(dǎo)分子[3]。Cav-1是小窩的主要組成部分,參與調(diào)節(jié)許多信號傳導(dǎo)和生化過程,并能在許多膜啟動信號級聯(lián)中起著負(fù)性調(diào)控作用。但在目前未見caveolin-1參與TGF-β1誘導(dǎo)的氣道上皮細(xì)胞發(fā)生EMT過程及其信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的報道。本實(shí)驗(yàn)研究caveolin-1是否參與TGF-β1誘導(dǎo)的支氣管上皮細(xì)胞EMT發(fā)生和有關(guān)機(jī)制,為哮喘預(yù)防和臨床治療提供新的靶點(diǎn)。
1 材料
1.1 細(xì)胞系 人支氣管上皮細(xì)胞系16HBE由廣州醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)醫(yī)學(xué)研究中心保存和復(fù)蘇。
1.2 主要試劑 胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)和RPMI-1640培養(yǎng)基購自Gibco;rhTGF-β1購自R&D;牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)和抗E-鈣黏蛋白、p-AKT、AKT、Smad3、p-Smad3、GAPDH多克隆抗體購自CST;兔抗人caveolin-1多克隆抗體購自Bioworld;抗α-SMA多克隆抗體購自Abcam;抗β-actin抗體和ECL試劑盒購自杭州聯(lián)科生物科技有限公司;PrimeScriptTMRT Master Mix Kit 和 SYBR?Premix Ex TaqTMPerfect Real Time 試劑盒購自 TaKaRa;Cav-1基因的siRNA序列由上海吉瑪公司合成,正義鏈為5’-GCGACCCUAAACCUCAATT-3’,反義鏈為5’-UUGAGGUGUUUAGGGUCGCTT-3’。
2 方法
2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 含10% FBS的1640培養(yǎng)基體外培養(yǎng)16HBE細(xì)胞,置于 37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。選擇對數(shù)生長期細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
2.2 間接免疫熒光法檢測caveolin-1在16HBE 細(xì)胞上的表達(dá) 將各組細(xì)胞用 含10% FBS的1640培養(yǎng)基培養(yǎng) 48 h 后,4% 多聚甲醛溶液固定,室溫下 0.3% Triton X-100 通透,5% BSA 37 ℃封閉 30 min 后分別加入稀釋比例為 1∶100 兔抗人caveolin-1的I 抗100 μL,以 PBS 為對照,4 ℃孵育過夜。次日,于 37 ℃復(fù)溫 30 min,分別加入稀釋比例為 1∶ 100 的 FITC 標(biāo)記的山羊抗兔Ⅱ抗 100 μL,37 ℃避光孵育 1 h,DAPI 溶液室溫孵育 5~10 min,熒光顯微鏡下觀察并拍片。
2.3 Real-time PCR 和Western blot實(shí)驗(yàn)檢測caveolin-1的mRNA和蛋白表達(dá) 實(shí)驗(yàn)分組為: FBS(1%) 對照組和10 μg/L TGF-β1組。細(xì)胞分組培養(yǎng) 24 h、48 h 和 72 h 后按Trizol 法提取總RNA,按照PrimeScriptTMRT Master Mix (Perfect Real Time)試劑盒說明書操作,合成cDNA。Caveolin-1的上游引物序列為5’-AACCTTGGGGGATGTGCCTAGA-3’, 下游引物序列為5’-CCGCCAAAGGTTTGTTCGC-3’。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)條件為: 37 ℃ 15 min, 85 ℃ 5 s。然后再按照SYBR? Premix Ex TaqTMⅡPerfect Real Time試劑盒說明書在ABI7500熒光定量PCR儀中進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng)。反應(yīng)條件為: 95 ℃ 30 s; 95 ℃ 5 s, 60 ℃ 34 s,重復(fù)循環(huán)40次;熔解曲線分析95 ℃ 15 s; 60 ℃ 1 min, 95 ℃ 15 s。以18S為內(nèi)參照,以2-ΔΔCt法計算各組caveolin-1的mRNA相對表達(dá)量。
相同分組細(xì)胞處理24 h、48 h 和 72 h后按細(xì)胞裂解液(RIPA) 說明書提取細(xì)胞蛋白。提取蛋白定量后加入SDS-PAGE 蛋白上樣緩沖液,煮沸變性;選用5% 濃縮膠,12% 分離膠進(jìn)行電泳,分別用80 V和100 V電壓。然后在200 mA恒流、4 ℃條件下電轉(zhuǎn)2 h;5%脫脂奶粉室溫封閉1 h;TBST洗膜 10 min×3次;分別孵育1∶3 000的兔抗人caveolin-1的 I 抗及1∶2 000小鼠β-actin單克隆抗體,4 ℃孵育過夜。TBST 洗膜10 min×3次;再室溫分別孵育與其Ⅰ抗相對應(yīng)的HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG及HRP標(biāo)記的羊抗小鼠IgG 1 h;TBST 洗膜10 min×3次;加入ECL反應(yīng),用凝膠成像系統(tǒng)曝光成像,并用ImageJ軟件對所得到的條帶進(jìn)行分析。以β-actin為內(nèi)參照,分析各組caveolin-1的相對含量。
2.4 倒置顯微鏡和 Western blot實(shí)驗(yàn)檢測siRNA 轉(zhuǎn)染對 EMT 的影響 第 3 代細(xì)胞接種于 6 孔板中,用含10% FBS 的1640培養(yǎng)基培養(yǎng) 12~18 h,細(xì)胞密度 30%~50% 時,再分為轉(zhuǎn)染試劑(mock transfection)對照組、mock transfection+caveolin-1 siRNA組、 TGF-β1 (10 μg/L)組、 TGF-β1+mock transfection+caveolin-1 siRNA組、mock transfection+negative siRNA陰性對照組、TGF-β1+mock transfection + negative siRNA組和GAPDH siRNA+mock transfection 陽性對照組。按轉(zhuǎn)染試劑盒說明書操作進(jìn)行轉(zhuǎn)染 48 h 后,提取細(xì)胞總 RNA,RT-qPCR 檢測各組細(xì)胞中 mRNA 的表達(dá)情況,結(jié)果提示轉(zhuǎn)染組 mRNA 抑制率達(dá) 80% 左右,合成的 siRNA 序列有效。接種第 3 代細(xì)胞,實(shí)驗(yàn)分為對照(control)組、siRNA-caveolin-1組、TGF-β1 (10 μg/L)組和caveolin-1 siRNA+TGF-β1 組,處理 48 h后在顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)變化,并提取細(xì)胞蛋白,Western blot實(shí)驗(yàn)分析各組 E-鈣黏蛋白以及 α-SMA 蛋白的相對含量。
2.5 Western blot實(shí)驗(yàn)檢測TGF-β1刺激對16HBE細(xì)胞中磷酸化蛋白的水平 實(shí)驗(yàn)分組同上,取第3代細(xì)胞用TGF-β1 (10 μg/L)作用細(xì)胞0 min、15 min、30 min和60 min后立即收集細(xì)胞提取蛋白,分別檢測AKT和Smad3的磷酸化水平,根據(jù)前面實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以TGF-β1刺激以后信號蛋白磷酸化最高的時間點(diǎn)作為觀察點(diǎn),分別檢測AKT和Smad3的磷酸化水平,各使用Ⅰ抗比例為1∶1 000孵育,以GAPDH為內(nèi)參照,分析各組蛋白的相對含量。
3 統(tǒng)計學(xué)處理
采用 SPSS 17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析。實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,計量資料間的比較在確定方差齊性后采用單因素方差分析(one-way ANOVA),如果方差不齊則采用 Welch 法,組間多重比較采用 Dunnett’s T3 檢驗(yàn)。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
1 Caveolin-1在16HBE細(xì)胞中的表達(dá)
免疫熒光檢測結(jié)果示,caveolin-1主要存在于16HBE細(xì)胞膜上,見圖1。實(shí)時熒光定量PCR檢測結(jié)果示,TGF-β1 (10 μg/L) 刺激細(xì)胞24 h、48 h和72 h后,與對照組比較caveolin-1 mRNA的表達(dá)明顯減少(P<0.05),且減少的程度具有時間依賴性,見圖2。
2 Caveolin-1 蛋白在16HBE細(xì)胞中的表達(dá)
Western blot法檢測結(jié)果示,與對照組比較,TGF-β1刺激24 h、48 h和72 h后,caveolin-1蛋白表達(dá)量明顯減少(P<0.05),且減少程度具呈時間依賴性,見圖3。
Figure 1.Immunofluorescence staining for Cav-1 (×200). Cav-1 expression in the 16HBE cells was positive.
圖1 Caveolin-1在16HBE細(xì)胞的定位
Figure 2.The mRNA expression of Cav-1 in 16HBE cells. 16HBE cells were treated with TGF-β1 for 24 h, 48 h and 72 h. The relative mRNA expression level of Cav-1 was normalized to 18S mRNA in the same sample. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol group.
圖2 16HBE細(xì)胞中caveolin-1的mRNA表達(dá)
Figure 3.The protein expression of Cav-1 in the 16HBE cells. The 16HBE cells were treated with TGF-β1 for 24 h, 48 h and 72 h. The relative protein expression level of Cav-1 was normalized to β-actin protein in the same sample. Mean±SD.n=4.*P<0.05,**P<0.01vscontrol group.
圖3 16HBE細(xì)胞中caveolin-1蛋白的表達(dá)
3 siRNA沉默Cav-1基因抑制TGF-β1誘導(dǎo)的16HBE細(xì)胞的形態(tài)改變
倒置顯微鏡下可見正常16HBE細(xì)胞培養(yǎng)48 h后呈貼壁生長,胞間連接緊密,長滿后呈鋪路石樣分布。siRNA沉默Cav-1基因48 h后,部分細(xì)胞伸長變細(xì),細(xì)胞胞間隙增大。TGF-β1 刺激細(xì)胞48 h 后,細(xì)胞變細(xì)伸長呈梭形,細(xì)胞間隙增大,喪失鋪路石樣特征。用siRNA沉默Cav-1基因24 h再加入TGF-β1刺激細(xì)胞48 h,促進(jìn)了TGF-β1誘導(dǎo)的16HBE細(xì)胞形態(tài)改變,見圖4。
Figure 4.The effect ofCav-1 silencing on the morphologic changes of 16HBE cells induced by TGF-β1 (×100). A: the 16HBE cells cultured for 48 h showed a pebble-like shape and clear cell-cell adhesion; B: the 16HBE cells treated withCav-1 siRNA for 48 h showed a pebble-like shape and loss cell-cell adhesion; C: the 16HBE cells treated with TGF-β1 for 48 h showed a decrease in cell-cell contacts and a morphologic shape; D: the 16HBE cells treated withCav-1 siRNA for 24 h and then TGF-β1 for 48 h showed the morphologic changes of the 16HBE cells induced by TGF-β1 was promoted.
圖4 siRNA沉默Cav-1基因促進(jìn)TGF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞的形態(tài)改變
4 siRNA沉默Cav-1基因?qū)GF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞E-鈣黏蛋白和α-SMA mRNA表達(dá)的影響
實(shí)時熒光定量PCR檢測結(jié)果示,用siRNA沉默Cav-1基因24 h再用TGF-β1刺激細(xì)胞48 h,與單純TGF-β1組比較, E-鈣黏蛋白的mRNA表達(dá)量顯著減少(P<0.05),但α-SMA的mRNA表達(dá)量顯著增加(P< 0.05),見圖5、6。
5 siRNA沉默Cav-1基因?qū)GF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞E-鈣黏蛋白和α-SMA 蛋白表達(dá)的影響
Western blot法檢測結(jié)果示,與單純TGF-β1組相比,用siRNA沉默Cav-1基因24 h再用TGF-β1刺激細(xì)胞48 h, E-鈣黏蛋白表達(dá)量顯著減少(P<0.05),而α-SMA蛋白的表達(dá)量則顯著增加(P<0.05),見圖7、8。
Figure 5.The effectt ofCav-1 silencing on the mRNA expression of E-cadherin induced by TGF-β1. The relative mRNA expression level of E-cadherin was normalized to 18S mRNA in the same sample. Mean±SD.n=4.**P<0.01vscontrol group;#P<0.05vsTGF-β1 group.
圖5 siRNA沉默Cav-1基因促進(jìn)TGF-β1誘導(dǎo)16HBE E-鈣黏蛋白mRNA表達(dá)的減少
Figure 6.The effect ofCav-1 silencing on the α-SMA mRNA expression induced by TGF-β1. The relative mRNA expression level of α-SMA was normalized to 18S mRNA in the same sample. Mean±SD.n=4.**P<0.01vscontrol group;#P<0.05vsTGF-β1 group.
圖6 siRNA沉默Cav-1基因促進(jìn)TGF-β1誘導(dǎo)16HBE α-SMA mRNA表達(dá)的增加
Figure 7.The effect ofCav-1 silencing on the E-cadherin protein expression induced by TGF-β1. The relative protein expression level of E-cadherin was normalized to GAPDH in the same sample. Mean±SD.n=4.**P<0.01vscontrol group;#P<0.05vsTGF-β1 group.
圖7 siRNA沉默Cav-1基因促進(jìn)了TGF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞E-鈣黏蛋白表達(dá)的減少
Figure 8.The effect ofCav-1 silencing on the α-SMA protein expression induced by TGF-β1. The relative protein expression level of α-SMA was normalized to GAPDH in the same sample. Mean±SD.n=4.**P<0.01vscontrol group;#P<0.05vsTGF-β1 group.
圖8 siRNA沉默Cav-1基因促進(jìn)TGF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞α-SMA蛋白表達(dá)的增加
6 siRNA沉默Cav-1基因?qū)GF-β1誘導(dǎo)的16HBE細(xì)胞AKT和Smad3磷酸化水平的影響
Western blot法檢測結(jié)果顯示,在TGF-β1(10 μg/L)刺激16HBE細(xì)胞0 min、15 min、30 min和60 min后,下游信號蛋白分子AKT和Smad3在15 min、30 min和60 min均發(fā)生磷酸化,以30 min時磷酸化水平最高,與0 min對照組比較顯著增加(P<0.05),見圖9、10。用siRNA沉默Cav-1基因24 h再用TGF-β1刺激16HBE細(xì)胞30 min,下游信號蛋白分子AKT和Smad3的磷酸化水平與TGF-β1組比較顯著增加(P<0.05),見圖11、12。
Figure 9.The effect of TGF-β1 stimulation on the phosphorylation level of AKT protein in the 16HBE cells at diffe-rent time points. Mean±SD.n=4.**P<0.01vs0 min group.
圖9 TGF-β1在不同時點(diǎn)對AKT蛋白磷酸化水平的影響
哮喘是當(dāng)今威脅人類健康與生活最主要的慢性疾病之一,預(yù)計到2025年會增至4億,并且發(fā)病率和死亡率逐年升高,給世界各國帶來了沉重的社會和經(jīng)濟(jì)的負(fù)擔(dān),對人類健康構(gòu)成了嚴(yán)重挑戰(zhàn)。
Figure 10.The effect of TGF-β1 stimulation on the phosphorylation level of Smad3 protein in the 16HBE cells at different time points. Mean±SD.n=4.*P<0.05,**P<0.01vs0 min group.
圖10 TGF-β1在不同時點(diǎn)對Smad3蛋白磷酸化水平的影響
Figure 11.The effect ofCav-1 silencing on the phosphorylation level of AKT protein in the 16HBE cells stimulated with TGF-β1. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsTGF-β1 group.
圖11 siRNA沉默Cav-1基因?qū)GF-β1刺激的16HBE細(xì)胞中AKT 蛋白磷酸化的影響
Figure 12.The effect ofCav-1 silencing on the phosphorylation level of Smad3 protein in the 16HBE cells stimulated with TGF-β1. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsTGF-β1 group.
圖12 siRNA沉默Caveolin-1基因?qū)GF-β1刺激的16HBE細(xì)胞中Smad3蛋白磷酸化的影響
支氣管哮喘包括氣道炎癥、氣道高反應(yīng)性和氣道重構(gòu)3種主要病理特征性改變。氣道重構(gòu)的主要變化為氣道上皮損傷、脫落、上皮下纖維化和氣道壁網(wǎng)狀基底膜增厚等,從而導(dǎo)致氣道順應(yīng)性下降和肺功能的降低。近年來,大量研究指出,哮喘患者肺功能下降與氣道重塑密切相關(guān)[4]。研究表明氣道上皮細(xì)胞在發(fā)生局部損傷或者缺氧或者生長因子等作用下,上皮細(xì)胞的黏附分子如E-鈣黏蛋白表達(dá)減少,間質(zhì)細(xì)胞特征性α-SMA表達(dá)增加,即發(fā)生了上皮細(xì)胞間質(zhì)轉(zhuǎn)化。EMT是氣道重塑的重要特征。
氣道上皮受到損傷后,受損的上皮細(xì)胞能分泌TGF-β1和EGF等細(xì)胞因子,刺激上皮修復(fù)和上皮下成纖維細(xì)胞及平滑肌細(xì)胞的增殖,后2種細(xì)胞亦分泌多種細(xì)胞因子,它們共同作用最終導(dǎo)致氣道重構(gòu)。TGF-β1是一種已知的具有多重功能的轉(zhuǎn)化生長因子,在多種腫瘤細(xì)胞中可以誘導(dǎo)EMT的發(fā)生[5]。Ward等[6]在肺移植慢性排斥反應(yīng)的閉塞性支氣管炎中發(fā)現(xiàn)EMT發(fā)生在支氣管氣道上皮細(xì)胞中,認(rèn)為氣道損傷與氣道重構(gòu)相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)中我們用TGF-β1作用于人支氣管上皮細(xì)胞,引致16HBE細(xì)胞失去典型的上皮細(xì)胞鋪路石樣特征,伸長呈梭形,細(xì)胞間隙增大,胞間E-鈣黏蛋白表達(dá)減少,而α-SMA蛋白表達(dá)增加[7]。
小窩是Georgre palade首次從電鏡下觀察內(nèi)皮細(xì)胞時發(fā)現(xiàn),當(dāng)時稱為“外胞漿囊泡”,小窩蛋白是從小窩中分離的一種分子量為21~25 kD的膜整合蛋白質(zhì)。它包括3 種小窩蛋白家族成員小窩蛋白1、小窩蛋白2和小窩蛋白3。小窩蛋白1和小窩蛋白2存在哺乳動物大部分細(xì)胞中如上皮細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞等。小窩蛋白2能和小窩蛋白1形成穩(wěn)定的異源寡聚體復(fù)合物,并通過其相互結(jié)合,從而作為小窩蛋白1的輔助蛋白而發(fā)揮作用。小窩蛋白3特異性的表達(dá)于骨骼肌與心肌中,其表達(dá)異??赡芘c一些肌肉營養(yǎng)不良癥有關(guān)。小窩蛋白1作為小窩的支架蛋白,在許多細(xì)胞內(nèi)高表達(dá),并主要位于這些細(xì)胞的胞質(zhì)膜上。如在肺組織的各種細(xì)胞膜上,小窩蛋白1表達(dá)約70%[8]。本實(shí)驗(yàn)中我們用免疫熒光定位小窩蛋白1,發(fā)現(xiàn)在人支氣管上皮細(xì)胞中小窩蛋白1主要定位于細(xì)胞膜上。研究報道氯化鎘(CdCl2)和TGF-β1處理肺組織后,肺上皮細(xì)胞中小窩蛋白1的表達(dá)明顯減少[9]。在肺纖維化的肺組織與對照組肺組織相比,發(fā)現(xiàn)小窩蛋白1蛋白及mRNA水平較對照組明顯降低。本實(shí)驗(yàn)證實(shí)了TGF-β1作用于16HBE后小窩蛋白1的mRNA和蛋白表達(dá)明顯減少,并且具有時間依賴性,說明TGF-β1刺激16HBE細(xì)胞后,引起了小窩蛋白1的減少。
肺泡上皮細(xì)胞和氣道上皮細(xì)胞在外界刺激因子的刺激下均能發(fā)生EMT。E-鈣黏蛋白是上皮表型中一種重要的標(biāo)志物,主要存在于胞間黏附結(jié)構(gòu)中。研究表明E-鈣黏蛋白能抑制上皮細(xì)胞發(fā)生遷移和侵襲[10]。細(xì)胞發(fā)生癌變后,E-鈣黏蛋白的表達(dá)明顯減少,引起胞間黏附結(jié)構(gòu)的喪失而發(fā)生遷移;相反,增強(qiáng)E-鈣黏蛋白的表達(dá)卻能穩(wěn)定腫瘤細(xì)胞間的黏附結(jié)構(gòu)從而抑制細(xì)胞的遷移和侵襲。研究顯示在轉(zhuǎn)基因小鼠的腫瘤模型和細(xì)胞培養(yǎng)模型中可通過敲除掉E-鈣黏蛋白基因誘導(dǎo)EMT的發(fā)生[11]??梢奅-鈣黏蛋白表達(dá)的下調(diào)是EMT的一個重要組成部分,E-鈣黏蛋白的缺失也與上皮極性與細(xì)胞黏附結(jié)構(gòu)的降解密切相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)中我們用TGF-β1作用于16HBE細(xì)胞后E-鈣黏蛋白的mRNA和蛋白均明顯下降,用siRNA干擾caveolin-1后發(fā)現(xiàn),E-鈣黏蛋白也出現(xiàn)了明顯的下降;并且我們先用siRNA干擾caveolin-1后再用TGF-β1刺激16HBE細(xì)胞后發(fā)現(xiàn),caveolin-1的缺失進(jìn)一步促進(jìn)了TGF-β1刺激后E-鈣黏蛋白的表達(dá)下降,提示caveolin-1可能參與EMT中細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)穩(wěn)定的維持和極性改變。
EMT的另一特征是間充質(zhì)標(biāo)志物如α-SMA蛋白的表達(dá)增加,而α-SMA是肌成纖維細(xì)胞的主要標(biāo)記物。表達(dá)α-SMA的肌成纖維細(xì)胞是造成細(xì)胞外基質(zhì)異常沉積的主要效應(yīng)細(xì)胞,其合成膠原纖維的能力約是成纖維細(xì)胞的4~5倍;成纖維細(xì)胞灶越多說明纖維化越嚴(yán)重。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,TGF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞后α-SMA表達(dá)明顯增多,干擾caveolin-1后,TGF-β1刺激后α-SMA的表達(dá)量進(jìn)一步增多,提示caveolin-1的缺失促進(jìn)了EMT中肺上皮細(xì)胞向肌成纖維細(xì)胞的轉(zhuǎn)化。
Caveolin-1下調(diào)與EMT的發(fā)生和發(fā)展的機(jī)制涉及多條信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,包括TGF-β1/Smad途徑和非依賴Smad的途徑如PI3K/AKT。研究發(fā)現(xiàn)caveolin-1能阻斷TGF-β1/Smad信號通路[12],抑制Smad2的磷酸化,從而使得傳導(dǎo)至核的信號減少,影響了EMT相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄和表達(dá)。而caveolin-1的這些功能主要通過其“腳手架”結(jié)構(gòu)域與TGF-β1受體結(jié)合而發(fā)揮作用。本實(shí)驗(yàn)中當(dāng)16HBE細(xì)胞用TGF-β1處理后,發(fā)現(xiàn)下游通路中的Smad3蛋白發(fā)生磷酸化,且在30 min達(dá)到高水平,干擾caveolin-1的表達(dá)后,發(fā)現(xiàn)TGF-β1處理后的Smad3蛋白磷酸化明顯增強(qiáng),提示caveolin-1參與了EMT信號通路中的TGF-β1-Smad途徑。
在經(jīng)歷EMT的上皮細(xì)胞中,TGF-β1通過PI3K激活A(yù)KT,導(dǎo)致哺乳動物雷帕霉素靶蛋白復(fù)合體1(mammalian target of rapamycin complex 1,mTORC1)和mTORC2的活化。PI3K的抑制劑能阻止TGF-β1誘導(dǎo)EMT,表明了PI3K-AKT途徑在這一過程中也起著重要的作用。在TGF-β誘導(dǎo)EMT的過程中,mTORC1有助于增加細(xì)胞體積,促進(jìn)蛋白質(zhì)合成及細(xì)胞遷移和侵襲;而mTORC2是上皮到間充質(zhì)形態(tài)轉(zhuǎn)化過渡過程所必需的。AKT的抑制能降低Snail1 的表達(dá)水平[13],減弱對E-鈣黏蛋白表達(dá)的抑制和MMP9表達(dá)的激活,抑制mTORC2能阻礙侵襲和轉(zhuǎn)移潛能。Zundel等[14]的研究表明caveolin-1表達(dá)下調(diào)抑制了PI3K信號,能增強(qiáng)了成纖維細(xì)胞抗凋亡的能力。Caveolin-1的腳手架區(qū)域能負(fù)性調(diào)控MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中的AKT信號,抑制肌腱蛋白C和膠原蛋白集聚,從而抑制纖維化;而用caveolin-1能治療博來霉素誘導(dǎo)的肺纖維化反應(yīng)[15]。我們推測在TGF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞發(fā)生EMT的過程中亦涉及caveolin-1-PI3K/AKT 途徑。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:當(dāng)16HBE細(xì)胞用TGF-β1處理,在30 min時AKT磷酸化水平最強(qiáng),干擾Cav-1基因后,TGF-β1誘導(dǎo)的磷酸化 AKT蛋白明顯增多,說明caveolin-1的缺失促進(jìn)了AKT信號分子的激活,推測caveolin-1可能對TGF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞的EMT有抑制作用,其抑制作用可能涉及到PI3K/AKT信號通路。
綜上所述,caveolin-1主要表達(dá)于16HBE細(xì)胞膜上,TGF-β1誘導(dǎo)16HBE細(xì)胞caveolin-1的表達(dá)明顯降低,并具有時間依賴性;干擾caveolin-1的表達(dá)后,更進(jìn)一步促進(jìn)了TGF-β1誘導(dǎo)的16HBE細(xì)胞EMT的發(fā)展;其中caveolin-1參與TGF-β1誘導(dǎo)的EMT可能是通過TGF-β1受體通路中的經(jīng)典TGF-β1/Smad通路和非Smad通路中PI3K/AKT通路??傊琓GF-β1誘導(dǎo)16HBE 中caveolin-1的表達(dá)降低可能是支氣管上皮細(xì)胞發(fā)生EMT的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。作為氣道重構(gòu)、纖維化和炎癥的負(fù)性調(diào)節(jié)因子,探討caveolin-1在EMT的表達(dá)及作用機(jī)制,對于進(jìn)一步認(rèn)識哮喘氣道重構(gòu)具有重要意義,為臨床治療哮喘提供了新的方向。
[1] Fu MM, Chin YT, Fu E, et al. Role of transforming growth factor-β1 in cyclosporine-induced epithelial-to-mesenchymal transition in gingival epithelium[J]. Am J Pathol, 2015, 86(1):1187-1192.
[2] Lamouille S, Xu J, Derynck R. Molecular mechanisms of epithelial-mesenchymal transition[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2014, 15(3):178-196.
[3] Tamai O, Oka N, Kikuchi T, et al. Caveolae in mesangial cells and caveolin expression in mesangial proliferative glomerulonephritis[J]. Kidney Int, 2001, 59(2):471-480.
[4] Kristiina MM, Pelkonen AS, Makela MJ. Remodeling, inflammation and airway responsiveness in early childhood asthma[J]. Curr Opin Allergy Clin Immunol, 2013, 13(2):203-210.
[5] Laberge RM, Awad P, Campisi J, et al. Epithelial-me-senchymal transition induced by senescent fibroblasts[J]. Cancer Microenviron, 2011, 5(1):39-44.
[6] Ward C, Forrest IA, Murphy DM, et al. Phenotype of airway epithelial cells suggests epithelial to mesenchymal cell transition in clinically stable lung transplant recipients[J]. Thorax, 2005, 60(10):865-871.
[7] 岳喜磊, 成 瑩, 許繼德, 等. TRPC1在TGF-β1誘導(dǎo)支氣管上皮細(xì)胞間充質(zhì)轉(zhuǎn)化中的作用[J]. 中國病理生理雜志, 2015, 31(3):492-498.
[8] Razani B, Woodman SE, Lisanti MP. Caveolae: from cell biology to animal physiology[J]. Pharmacol Rev, 2002, 54(3):431-467.
[9] Reese C, Dyer S, Perry B, et al. Differential regulation of cell functions by CSD peptide subdomains[J]. Respir Res, 2013, 14(1):1-18.
[10] Liang X. EMT: new signals from the invasive front[J]. Oral Oncol, 2011, 47(8):686-687.
[11]Techasen A, Loilome W, Namwat N, et al. Loss of E-cadherin promotes migration and invasion of cholangiocarcinoma cells and serves as a potential marker of metastasis[J]. Tumour Biol, 2014, 35(9):8645-8652.
[12]Lee EK, Lee YS, Han IO, et al. Expression of caveolin-1 reduces cellular responses to TGF-β1 through down-regulating the expression of TGF-β type II receptor gene in NIH3T3 fibroblast cells[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2007, 359(2):385-390.
[13]Lamouille S, Connolly E, Smyth JW, et al. TGF-β-induced activation of mTOR complex 2 drives epithelial-mesenchymal transition and cell invasion[J]. J Cell Sci, 2012, 125(Pt 5):1259-1273.
[14]Zundel W, Swiersz LM, Giaccia A. Caveolin 1-mediated regulation of receptor tyrosine kinase-associated phosphatidylinositol 3-kinase activity by ceramide[J]. Mol Cell Biol, 2000,20(5):1507-1514.
[15]Elena T, Mathieu R, Pal GZ, et al. Antifibrotic properties of caveolin-1 scaffolding domaininvitroandinvivo[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2008, 294(5):L843-L861.
(責(zé)任編輯: 陳妙玲, 羅 森)
Effect of caveolin-1 on TGF-β1-induced epithelial-mesenchymal transition of human bronchial epithelial cells
ZHONG Chang-jiang2, LI Jian-hua1, YUE Xi-lei3, XU Ji-de1, YANG Chun-tao1, DENG Li-ting1
(1DepartmentofPhysiology,GuangzhouMedicalUniversity,Guangzhou511436,China;2HuaduDistrictPeople’sHospitalofGuangzhou,Guangzhou510800,China;3HuangshiCentralHospital,Huangshi435000,China.E-mail:xujide@163.com)
AIM: To investigate the role of caveolin-1 on epithelial-mesenchymal transition (EMT) in human bronchial epithelial (HBE) cells induced by transforming growth factor beta 1 (TGF-β1). METHODS: Immunofluorescence, real-time PCR and Western blot were applied to detect the mRNA and the protein expression of caveolin-1 in the 16HBE cells during EMT. The influence of siRNA-mediated silencing of caveolin-1 on EMT in the 16HBE cells was detected by Western blot.RESULTS: Caveolin-1 was widely present on the cell membrane of the 16HBE cells. The expression of caveolin-1 at mRNA and protein levels was significantly decreased in a time-dependent manner in the 16HBE cells compared with control group (P<0.05) after stimulation with TGF-β1. The morphologic changes of the 16HBE cells induced by TGF-β1 were promoted by caveolin-1 silencing compared with TGF-β1 group. The protein expression of E-cadherin and α-SMA induced by TGF-β1 was promoted by caveolin-1 silencing compared with TGF-β1 group (P<0.05). The phosphorylation levels of AKT and Smad3 were the highest at 30 min and increased significantly compared with control group (P<0.05) after stimulated with TGF-β1. Treatment of the 16HBE cells with TGF-β1 for 30 min after silencing caveolin-1 gene for 24 h significantly increased the phosphorylation levels of AKT and Smad3 compared with TGF-β1 group (P<0.05). CONCLUSION: TGF-β1 down-regulates the expression of caveolin-1 in the 16HBE cells. Caveolin-1 may participate in TGF-β1/Smad pathway and PI3K-AKT pathway, which are the signal transduction pathways for TGF-β1 inducing EMT.
Transforming growth factor β1; Human bronchial epithelial cells; Epithelial-mesenchymal transition; Caveolin-1; Airway remodeling
1000- 4718(2017)06- 1091- 07
2016- 09- 26
2017- 02- 15
國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No. 81470205)
R332; R562.25
A
10.3969/j.issn.1000- 4718.2017.06.022
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