鄧春梅,何蘭珍,張國光,李思東,溫燕梅,吳育廉,黃燈威,康信煌
(廣東海洋大學化學與環(huán)境學院,廣東 湛江 524088)
?
紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的提取工藝優(yōu)化及抗氧化活性研究
鄧春梅,何蘭珍,張國光,李思東,溫燕梅,吳育廉,黃燈威,康信煌*
(廣東海洋大學化學與環(huán)境學院,廣東 湛江 524088)
通過正交實驗對紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的提取工藝進行優(yōu)化,用Sevage試劑脫蛋白并純化多糖,用DPPH 自由基清除能力和總抗氧化能力評價多糖的體外抗氧化活性。結(jié)果表明,紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的最佳提取工藝為:提取溫度75 ℃、提取時間3 h、料液比1∶30(g∶mL),在此條件下,多糖提取率達到3.14%;在實驗濃度范圍內(nèi),多糖清除DPPH自由基的能力及總抗氧化能力與其濃度呈正相關關系。表明紅樹林土曲霉GX7-3B多糖是一種天然抗氧化劑。
紅樹林;土曲霉;多糖;提??;抗氧化活性
紅樹林是生長于熱帶、亞熱帶海岸灘涂上的特殊森林植物,是陸地向海洋過渡的特殊生態(tài)系,兼具海洋與陸地的性質(zhì)[1-2],具有豐富獨特的真菌資源。紅樹林共附生真菌能產(chǎn)生許多藥用活性次級代謝產(chǎn)物,是崛起的一類新型藥用真菌[3-8]。作者[9-10]前期研究發(fā)現(xiàn),紅樹林土曲霉GX7-3B能產(chǎn)生具有抗腫瘤活性的次級代謝產(chǎn)物以及新的活性化合物。在此基礎上,作者進一步提取其中的多糖,對提取工藝進行優(yōu)化并研究多糖的體外抗氧化活性,以期擴大紅樹林土曲霉GX7-3B的藥用范圍、提高其藥用價值。
1.1 菌種、試劑與儀器
紅樹林土曲霉GX7-3B:GenBankID為KC461499。
蒽酮、丙酮、濃硫酸、30%雙氧水等均為國產(chǎn)分析純試劑,市售。
80-2B型離心沉淀機,江蘇新康醫(yī)療器械有限公司; 722S型紫外可見分光光度計,上海元析儀器有限公司; 電熱鼓風干燥箱,上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設備公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,上海亞榮生化設備公司;小型粉碎機;水浴搖床;三用恒溫水箱。
1.2 菌種的培養(yǎng)
將紅樹林土曲霉GX7-3B接種于GPY培養(yǎng)基上,于25 ℃恒溫培養(yǎng)28d,過濾,分離菌體與培養(yǎng)液;將菌體在甲醇中浸泡清洗3次后取出,自然晾干,待用。
1.3 多糖的提取與純化
紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的提取與純化工藝:菌體粉碎→熱水提取→旋轉(zhuǎn)濃縮→加入95%乙醇,冰箱靜置過夜→離心→干燥→粗多糖→溶解→Sevage法[11]脫蛋白→離心→取上清液→加95%乙醇,冰箱靜置過夜→離心→干燥→多糖。
1.4 多糖提取率的計算
參照文獻[12],采用苯酚-硫酸法繪制葡萄糖標準曲線;測定多糖溶液在490nm處吸光度(A490),依標準曲線計算多糖含量,再按式(1)計算多糖提取率。
(1)
式中:D490為多糖含量;n為提取液稀釋倍數(shù);V為提取液的體積;m為菌體質(zhì)量。
1.5 多糖抗氧化活性評價
1.5.1 DPPH自由基清除能力的測定
用移液槍取2.8 mL 1.0 mg·mL-1多糖溶液于24孔板中;再用移液槍從中移取1.4 mL多糖溶液于下一個孔中,加蒸餾水1.4 mL,混勻;再從中取1.4 mL多糖溶液于下一個孔中,按此法稀釋得到5個梯度濃度多糖溶液,每個濃度做3個平行,空白對照為1.4 mL蒸餾水與1.4 mL無水乙醇混合液;然后用移液槍取1.4 mL 0.2 μmol·L-1DPPH溶液于多糖溶液及空白對照中,快速混勻,在黑暗中反應30 min后測定517 nm處吸光度,按式(2)計算清除率。
(2)
式中:A0為無水乙醇+DPPH溶液的吸光度;A1為多糖+DPPH溶液的吸光度。
1.5.2 總抗氧化能力的測定
稱取6.1 mg FeSO4,配成水溶液;加入0.25 mL 18 mol·L-1H2SO4,定容后放入還原鐵;取5.00 mL上述冷卻溶液于50 mL容量瓶中,再加入蒸餾水配制成800 μmol·L-1FeSO4標準溶液;繼續(xù)用蒸餾水稀釋,制備25 μmol·L-1、50 μmol·L-1、100 μmol·L-1、200 μmol·L-1、400 μmol·L-1FeSO4標準溶液,測定593 nm處吸光度,繪制FeSO4標準曲線;采用FRAP法[13]測定總抗氧化能力。
2.1 葡萄糖標準曲線
以葡萄糖標準溶液濃度為橫坐標、吸光度(A490)為縱坐標繪制葡萄糖標準曲線,如圖1所示。
圖1 葡萄糖標準曲線
從圖1可以看出,葡萄糖濃度在0.1~0.5 mg·mL-1范圍內(nèi)與A490呈線性關系。回歸方程為y=1.059x-0.0167,R2=0.9988。
2.2 多糖提取工藝優(yōu)化
在單因素實驗的基礎上,綜合多糖提取過程中各個單因素的相互關系,以提取溫度、提取時間及料液比為考察因素,以多糖提取率為評價指標,采用L9(34)正交實驗優(yōu)化多糖提取工藝。正交實驗因素與水平見表1,結(jié)果與分析見表2。
由表2可知,各因素對多糖提取率的影響大小為:C>B>A,即影響最大的是料液比,其次是提取時間,提取溫度影響最小,最優(yōu)提取條件為A1B1C1,即提取溫度75 ℃、提取時間3 h、料液比1∶30(g∶mL,下同),在此條件下,多糖提取率達到3.14%。
表1 正交實驗的因素與水平Tab.1 Factors and levels of orthogonal experiment
表2 正交實驗結(jié)果與分析Tab.2 Results and analysis of orthogonal experiment
2.3 多糖的抗氧化活性評價
2.3.1 對DPPH自由基的清除能力
處于DPPH自由基中心位置的氮原子上的單電子對517 nm波長有強吸收,使得DPPH自由基醇溶液呈紫色。當存在自由基清除劑時,醇溶液褪色的程度與氮原子上單電子接受的電子數(shù)目呈劑量關系。本實驗參照文獻[14],采用紫外分光光度法測定了多糖對DPPH自由基的清除能力,結(jié)果如圖2所示。
從圖2可以看出,隨著多糖濃度的增大,DPPH自由基清除率逐漸升高。表明,土曲霉GX7-3B多糖對DPPH自由基的清除能力與其濃度呈正相關關系。
2.3.2 總抗氧化能力
人體自由基的量在代謝正常的情況下是處于一種動態(tài)平衡中,當外界環(huán)境(如太陽光的輻射、吸入污染的氣體、吸煙等)發(fā)生變化時,這種動態(tài)平衡極易被破壞,導致自由基積累,傷害人體正常組織,甚至引發(fā)腫瘤、心臟病和老年癡呆等。為了防止和減輕自由基造成的損害,需要合適的自由基清除劑。研究顯示[15-16],大多數(shù)真菌多糖能通過增強谷胱甘肽過氧化物酶活性來清除自由基。為此,本實驗采用FRAP法研究紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的總抗氧化能力,F(xiàn)eSO4標準曲線見圖3,多糖總抗氧化能力見圖4。
圖2 多糖對DPPH自由基的清除能力
圖3 FeSO4標準曲線
圖4 多糖的總抗氧化能力
從圖4可以看出,在實驗濃度范圍內(nèi),當多糖濃度每增加一倍,總抗氧化能力會顯著增強(P<0.01);當多糖濃度達到最大,即1 mg·mL-1時,F(xiàn)RAP值可以達到103.2,總抗氧化能力最強。表明,紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的總抗氧化能力與其濃度呈正相關關系。
通過正交實驗確定紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的最佳提取條件為:提取溫度75 ℃、提取時間3 h、料液比1∶30(g∶mL),在此條件下,多糖提取率達到3.14%。紅樹林土曲霉GX7-3B多糖清除DPPH自由基的能力和總抗氧化能力與其濃度呈正相關關系。表明,紅樹林土曲霉GX7-3B多糖是一種較好的天然抗氧化劑,具有開發(fā)成為藥物或功能食品的潛力。
[1] 林鵬.中國紅樹林生態(tài)系[M].北京:北京科學出版社,1997:167.
[2] LIN P.Mangrove Ecosystems in China[M].Beijing and New York:Science Press,1999:142-167.
[3] 丘柳明,左文健,王輝.角果木內(nèi)生真菌Penicilliunsp.J54 代謝產(chǎn)物及活性研究[J].中國海洋藥物,2015,34(2):17-21.
[4] HUANG C H,PAN J H,CHEN B,et al.Three bianthraquinone derivatives from the mangrove endophytic fungusAlternariasp.ZJ9-6B from the South China Sea[J].Marine Drugs,2011,9:832-843.
[5] XUE C B,WANG A L,MELONI D,et al.Discovery of INCB3344,a potent,selective and orally bioavailable antagonist of hunman and murine CCR2[J].Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters,2010,20(24):7473-7478.
[6] HUANG Z,CAI X,SHAO C,et al.Chemistry and weak antimicrobial activities of phomopsins produced by mangrove endophytic fungusPhomopsissp.ZSU-H76[J].Phytochemistry,2008,69(7):1604-1608.
[7] XU J,KIER J,SENDKER J,et al.Cytosporones,coumarins,and an alkaloid from the endophytic fungusPestalotiopsissp.isolated from the Chinese mangrove plantRhizophoramucronata[J].Bioorganic and Medicinal Chemistry,2009,17(20):7362-7367.
[8] 胡谷平,佘志剛,吳耀文,等.南海海洋紅樹林內(nèi)生真菌胞外多糖的研究[J].中山大學學報(自然科學版),2002,41(1):121-122.
[9] DENG C M,LIU S X,HUANG C H,et al.Secondary metabolites of a mangrove endophytic fungusAspergillusterreus(No.GX7-3B) from the South China Sea[J].Marine Drugs,2013,11(7):2616-2624.
[10] DENG C M,HUANG C H,WU Q L,et al.A new sesquiterpene from the mangrove endophytic fungusAspergillusterreus(No.GX7-3B)[J].Natural Product Research,2013,27(20):1882-1887.
[11] 王思蘆,汪開毓,彭艷伶.野生雞樅菌多糖的提取及其免疫活性[J].中國獸醫(yī)科學,2011,41(12):1276-1281.
[12] 鄭必勝,唐芳勇,閆文娟,等.苯酚-硫酸法測定廣東蟲草菌絲體多糖含量的研究[J].農(nóng)產(chǎn)品加工·學刊,2008(8):17-21.
[13] 趙文恩,李茜倩.FRAP法測定大棗棗皮紅色素的總抗氧化能力[J].鄭州大學學報(工學版),2011,32(3):29-30.
[14] 羅萍,師莉莎,劉華忠.烏賊墨多糖的體外抗氧化作用[J].食品研究與開發(fā),2013,34(8):1-4.
[15] HUA Y L,YANG B,TANG J,et al.Structural analysis of water-soluble polysaccharides in the fruiting body ofDictyophoraindusiataand theirinvivoantioxidant activities[J].Carbohydrate Polymers,2012,87(1):343-347.
[16] WANG Q,LI H,CHEN T T,et al.Yield,polysaccharides content and antioxidant properties ofPleurotusabalonusandPleurotusgeesteranusproduced on asparagus straw as substrate[J].Scientia Horticulturae,2012,134:222-226.
打擊非法集資 共創(chuàng)社會和諧
——《化學與生物工程》編輯部
Optimization on Extraction Process of Polysaccharides from Mangrove EndophyticAspergillusterreusGX7-3B and Their Antioxidant Activity
DENG Chun-mei,HE Lan-zhen,ZHANG Guo-guang,LI Si-dong,WEN Yan-mei,WU Yu-lian,HUANG Deng-wei,KANG Xin-huang*
(SchoolofChemistryandEnvironment,GuangdongOceanUniversity,Zhanjiang534088,China)
TheextractionprocessofpolysaccharidesfrommangroveendophyticAspergillus terreusGX7-3Bwasoptimizedthroughanorthogonalexperiment.ThepolysaccharideswerepurifiedbydeproteinizationusingSevagereagent.Theantioxidantactivityin vitrowasevaluatedbythescavengingabilityofDPPHfreeradicalandthetotalantioxidantability.Resultsindicatedthattheoptimumextractionconditionsofpolysaccharideswereasfollows:extractiontemperatureof75 ℃,extractiontimeof3h,solid-liquidratioof1∶30(g∶mL).Theextractionrateofpolysaccharidesreached3.14%underaboveconditions.ThescavengingabilityofDPPHfreeradicalandthetotalantioxidantabilityshowedapositiverelationshipwiththeconcentrationofpolysaccharidesinrangeoftestingconcentrations,whichsuggestedthatpolysaccharidefrommangroveendophyticAspergillus terreusGX7-3Bwasanaturalantioxidant.
mangrove;Aspergillus terreus;polysaccharide;extraction;antioxidantactivity
湛江市科技局自然科學基金項目(A15445,A14457),廣東海洋大學自然科學基金項目(E13503,Q14176)
2016-12-15
鄧春梅(1968-),女,江西南昌人,博士,高級實驗師,研究方向:天然藥物化學,E-mail:dcm2382405@163.com;通訊作者:康信煌,副教授,E-mail:kang.xinhuang@gmail.com。
10.3969/j.issn.1672-5425.2017.06.009
O636.1 R931
A
1672-5425(2017)06-0041-04
鄧春梅,何蘭珍,張國光,等.紅樹林土曲霉GX7-3B多糖的提取工藝優(yōu)化及抗氧化活性研究[J].化學與生物工程,2017,34(6):41-44.