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      運動對2,3,7,8-四氯二苯并二噁英持續(xù)暴露大鼠肝臟氧化應(yīng)激的影響

      2017-06-27 08:12:54閆會萍宋小波李飛霏陸一帆彭朋王娟娟胡兵張弛
      生態(tài)毒理學報 2017年2期
      關(guān)鍵詞:染毒氧化應(yīng)激機體

      閆會萍,宋小波,2,李飛霏,陸一帆, *,彭朋,王娟娟,胡兵,張弛

      1. 北京體育大學運動康復(fù)系,北京 1000842. 華中師范大學,武漢 4300793. 中國人民武裝警察部隊后勤學院,天津 300309

      運動對2,3,7,8-四氯二苯并二噁英持續(xù)暴露大鼠肝臟氧化應(yīng)激的影響

      閆會萍1,宋小波1,2,李飛霏1,陸一帆1, *,彭朋3,王娟娟1,胡兵1,張弛1

      1. 北京體育大學運動康復(fù)系,北京 1000842. 華中師范大學,武漢 4300793. 中國人民武裝警察部隊后勤學院,天津 300309

      為探索運動對2,3,7,8-四氯二苯并二噁英(2,3,7,8-TCDD)持續(xù)暴露大鼠肝臟氧化應(yīng)激的影響,本研究將7周齡雄性SD大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,隨機分為對照(NC)、運動對照(EC)、染毒1(NT1)、運動染毒1(ET1)、染毒2(NT2)、運動染毒2(ET2)、染毒3(NT3)、運動染毒3(ET3)、染毒4(NT4)及運動染毒4(ET4)共10組。染毒組(NTs、ETs)腹腔注射TCDD(溶于玉米油),對照組及各染毒組首次劑量依次為0、0.4、1.6、6.4、25.6 μg·kg-1(以單位體重計),之后每周給予上述劑量的21%作為維持劑量,持續(xù)染毒8周;運動組尾部負重5%游泳,每周5 d,每次30 min。實驗結(jié)束取材,測定血清丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)、天冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(AST)、肝組織超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)活性及丙二醛(MDA)、活性氧(ROS)含量。結(jié)果顯示:1)染毒可升高各染毒組大鼠血清AST活性及NT4組大鼠血清ALT活性,增加NT2、NT3組肝臟MDA含量,而降低NT1、NT2組大鼠血清ALT活性;2)運動可升高大鼠血清AST及ALT活性,增加大鼠肝組織GSH-Px活性;3)運動可升高染毒大鼠血清AST活性(T1劑量),降低染毒大鼠血清ALT活性(T1劑量),降低染毒大鼠血清AST活性(T3劑量),升高染毒大鼠血清ALT活性(T3、T4劑量),增加染毒大鼠肝組織SOD活性(T2、T3劑量)、CAT活性(T1、T2、T3劑量)及GSH-Px活性(T2、T3、T4劑量),降低染毒大鼠肝組織MDA含量(T2、T3、T4劑量)及ROS含量(T1、T3劑量)。結(jié)果表明,2,3,7,8-TCDD持續(xù)暴露8周可引起大鼠肝細胞氧化應(yīng)激損傷,并產(chǎn)生劑量依賴效應(yīng);而有氧運動可增加2,3,7,8-TCDD持續(xù)暴露(T2、T3劑量)大鼠肝組織抗氧化酶活性,有效降低氧化應(yīng)激損傷而減輕肝毒性。

      2,3,7,8-四氯二苯并二噁英(2,3,7,8-TCDD);大鼠;肝臟氧化應(yīng)激;運動

      持久性有機污染物(persistent organic pollutants, POPs)因其高毒、持久、生物積累和遠距離遷移性,易對人類健康造成有害影響。二噁英類(dioxins)是POPs中毒性最強、對生態(tài)環(huán)境影響最大的污染物之一,而2,3,7,8-四氯二苯并二噁英(2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin,2,3,7,8-TCDD)是二噁英家族中毒性最強的物質(zhì),其結(jié)構(gòu)穩(wěn)定、半衰期長,僅需暴露一次就可長期留存體內(nèi),長期接觸則引起體內(nèi)蓄積,并造成嚴重的機體毒害作用,影響內(nèi)分泌系統(tǒng)、免疫系統(tǒng)、生殖系統(tǒng)等的生理功能,從而導(dǎo)致慢性病(包括癌癥)等[1-5]。氧化應(yīng)激反應(yīng)是2,3,7,8-TCDD發(fā)揮毒性作用的重要環(huán)節(jié)。研究表明,2,3,7,8-TCDD不僅可引起機體產(chǎn)生過量的活性氧(reactive oxidative species,ROS),誘發(fā)機體氧化損傷,而且可以抑制超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)、過氧化氫酶(catalase, CAT)、和谷胱甘肽過氧化物酶( glutathione peroxidase, GSH-Px)等抗氧化酶的活性,減弱機體清除活性氧的能力。同時,伴隨代謝產(chǎn)物丙二醛(malondialdehyde,MDA)增多,加重對機體的不利影響[6-7]。

      運動作為一種可被調(diào)整的生活方式,對機體最根本的作用是使其產(chǎn)生適應(yīng)的過程。研究發(fā)現(xiàn),長期有氧運動通過適當?shù)卣T導(dǎo)細胞抗氧化酶的增加,可削弱自由基對機體的氧化損傷[8]。本研究前期成果表明,10 μg·kg-1(以單位體重計)2,3,7,8-TCDD急性暴露可導(dǎo)致大鼠肝細胞抗氧化能力減弱,引發(fā)氧化應(yīng)激反應(yīng),造成大鼠肝細胞功能受損,而8周有氧運動能有效改善2,3,7,8-TCDD急性暴露所引起的肝細胞氧化應(yīng)激損傷[9]。目前,機體少量、反復(fù)或持續(xù)接觸有機污染物的現(xiàn)象比較突出,2,3,7,8-TCDD低劑量持續(xù)暴露對機體的潛在影響更為顯著,而運動對2,3,7,8-TCDD持續(xù)暴露造成的機體毒害作用的預(yù)防效果并不明確。本研究擬通過研究運動對不同劑量TCDD持續(xù)暴露后大鼠肝細胞氧化應(yīng)激的影響,探討運動預(yù)防的有效性,為探索環(huán)境健康風險的有效控制方法和手段提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法(Materials and methods)

      1.1 實驗對象與分組

      7周齡VAF/SPF級雄性SD大鼠100只,體重(285.43±14.28) g,購自中國人民解放軍軍事醫(yī)學科學院(許可證編號:SCXK-(軍)2012-0004)。實驗已由北京體育大學實驗動物福利倫理委員會批準。將大鼠在北京體育大學實驗動物房適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后分組,實驗共分10組,每組10只(見表1),分籠飼養(yǎng),每籠5只,飼養(yǎng)溫度(22.75±1.33) ℃,濕度為50.57%±7.53%,晝夜交替時間為12 h,自由飲用純凈水(高壓滅菌)和食物,以國家標準嚙齒類動物常規(guī)飼料喂養(yǎng)。飼養(yǎng)室、用具等定期消毒滅菌。

      1.2 給藥劑量、用藥方法及運動強度的選擇

      將2,3,7,8-TCDD溶于玉米油中,所有染毒組(NTs、ETs)均腹腔注射2,3,7,8-TCDD(購自美國Cambridge Isotope Laboratories Inc,純度99%),首次劑量分別為0、0.4、1.6、6.4、25.6 μg·kg-1(以單位體重計),之后每周給予上述劑量的21%作為維持劑量[10],持續(xù)染毒8周。正式實驗開始,尾部負重5%進行游泳(尾根套負重螺絲)[11],每周游泳5 d,每天游泳30 min,游泳池中水的溫度為(32±2) ℃。游泳水桶直徑150 cm,水深75 cm。每組大鼠游泳時間每天基本固定,于每周稱重后調(diào)整負重。

      1.3 實驗取材及指標測試

      取材前大鼠禁食10 h,稱重并記錄,用5%的水合氯醛,以600 mg·kg-1(以單位體重計)劑量進行腹腔注射麻醉大鼠,取血提血清待測;并快速剝離肝臟組織,用0.9%生理鹽水浸洗,吸干,用手術(shù)剪分成100~200 mg左右小塊,裝入事先標號的Eppendorf管中,投入液氮,血清及組織均在-80 ℃冰箱中保存。

      采用比色法測試血清丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(alanine aminotransferase, ALT)與天冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(aspartate aminotransferase, AST)活性,取100 mg肝臟組織,加入1 mL生理鹽水,在玻璃勻漿器中制成10%的勻漿液。采用比色法測試肝臟勻漿液中SOD、CAT和GSH-Px的活性,及MDA、ROS含量。所用試劑盒購自北京華英生物技術(shù)研究所,操作步驟均按說明書進行。

      表1 動物分組及體重情況Table 1 Animal grouping and mean weight in each group

      1.4 統(tǒng)計學分析

      2 研究結(jié)果(Results)

      2.1 血清AST、ALT活性

      大鼠血清AST活性結(jié)果顯示(表2),與NC組相比,各染毒組(NTs)大鼠血清AST活性均升高,其中NT1、NT4組顯著升高(P<0.05),NT2、NT3組也顯著升高(P<0.01),EC組大鼠血清AST活性相對NC組顯著升高(P<0.05);與各染毒組(NTs)相比,ET1組大鼠血清AST活性相對NT1組顯著升高(P<0.05),ET3組大鼠血清AST活性相對NT3組顯著降低(P<0.05),ET2、ET4組大鼠血清AST活性相對NT2、NT4組無顯著變化(P>0.05)。

      表2 運動對TCDD染毒大鼠血清AST、ALT活性的影響Table 2 The effect of exercise on the activities of serum AST and ALT of rats after exposure to TCDD

      注:與NC組相比,*P<0.05,**P<0.01;與NTs相比,#P<0.05,##P<0.01。

      Note: compared with NC,*P<0.05,**P<0.01;compared with NTs,#P<0.05,##P<0.01.

      大鼠血清ALT活性結(jié)果顯示(表2),與NC組相比,NT1組大鼠血清ALT活性顯著升高(P<0.05),NT2組大鼠血清ALT活性也顯著升高(P<0.01),NT3組大鼠血清ALT活性無顯著變化(P>0.05),NT4組大鼠血清ALT活性顯著降低(P<0.05),EC組大鼠血清ALT活性顯著升高(P<0.05);與各染毒組(NTs)相比,ET1組大鼠血清ALT活性相對NT1組顯著降低(P<0.05),ET2組大鼠血清ALT活性相對NT2組也顯著降低(P<0.01),ET3組大鼠血清ALT活性相對NT3組顯著升高(P<0.05),ET4組大鼠血清ALT活性相對NT4組也顯著升高(P<0.01)。

      2.2 肝組織SOD、CAT及GSH-Px活性

      大鼠肝組織SOD活性結(jié)果顯示(圖1),與NC組相比,各染毒組(NTs)及EC組肝組織SOD活性均無顯著變化(P>0.05);與各染毒組(NTs)相比,ET2組大鼠肝組織SOD活性相對NT2組顯著升高(P<0.05),ET3組大鼠肝組織SOD活性相對NT3組也顯著升高(P<0.01),ET1、ET4組大鼠肝組織SOD活性相對NT1、NT4組均無顯著變化(P>0.05)。

      圖1 運動對TCDD染毒大鼠肝組織SOD活性的影響Fig. 1 The effect of exercise on the activity of liver SOD of rats after exposure to TCDD

      大鼠肝組織CAT活性結(jié)果顯示(圖2),與NC組相比,各染毒組(NTs)及EC組肝組織CAT活性均無顯著變化(P>0.05);與各染毒組(NTs)相比,ET1組大鼠肝組織CAT活性顯著升高(P<0.05),ET2組大鼠肝組織CAT活性相對NT2組顯著升高(P<0.05),ET3組大鼠肝組織CAT活性相對NT3組也顯著升高(P<0.01),ET4組大鼠肝組織CAT活性相對NT4組無顯著變化(P>0.05)。

      圖2 運動對TCDD染毒大鼠肝組織CAT活性的影響Fig. 2 The effect of exercise on the activity of liver CAT of rats after exposure to TCDD

      大鼠肝組織GSH-Px活性結(jié)果顯示(圖3),與NC組相比,各染毒組(NTs)大鼠肝組織GSH-Px活性無顯著變化(P>0.05), EC組大鼠肝組織GSH-Px活性顯著升高(P<0.05);與各染毒組(NTs)相比,ET1組大鼠肝組織GSH-Px活性相對NT1組無顯著性變化(P>0.05),ET2組大鼠肝組織GSH-Px活性相對NT2組顯著升高(P<0.05),ET3、ET4組大鼠肝組織GSH-Px活性相對NT3、NT4組也顯著升高(P<0.01)。

      圖3 運動對TCDD染毒大鼠肝組織GSH-Px活性的影響Fig. 3 The effect of exercise on the activity of liver GSH-Px of rats after exposure to TCDD

      2.3 肝組織MDA、ROS含量

      大鼠肝組織MDA含量結(jié)果顯示(圖4),與NC組相比,NT1、NT4組大鼠肝組織MDA含量無顯著變化(P>0.05),NT2組大鼠肝組織MDA含量相對NC組顯著升高(P<0.05),NT3組大鼠肝組織MDA含量也顯著升高(P<0.01),EC組大鼠肝組織MDA含量無顯著變化(P>0.05);與各染毒組(NTs)相比,ET1組大鼠肝組織MDA含量相對NT1組無顯著變化(P>0.05),ET2、ET4組大鼠肝組織MDA含量相對NT2、NT4組顯著降低(P<0.05),ET3組大鼠肝組織MDA含量相對NT3組也顯著降低(P<0.01)。

      圖4 運動對TCDD染毒大鼠肝組織MDA含量的影響Fig. 4 The effect of exercise on the liver MDA content of rats after exposure to TCDD

      圖5 運動對TCDD染毒大鼠肝組織ROS含量的影響Fig. 5 The effect of exercise on the liver ROS content of rats after exposure to TCDD

      大鼠肝組織ROS含量結(jié)果顯示(圖5),與NC組相比,各染毒組(NTs)及EC組大鼠肝組織ROS含量無顯著變化(P>0.05);與各染毒組(NTs)相比,ET1組大鼠肝組織ROS含量相對NT1組顯著降低(P<0.05),ET3組大鼠肝組織ROS含量相對NT3組顯著降低(P<0.05),ET2、ET4組大鼠肝組織ROS含量相對NT2、NT4組無顯著變化(P>0.05)。

      3 討論(Discussion)

      3.1 運動對TCDD持續(xù)暴露大鼠血清AST、ALT活性的影響

      ALT與AST是反映肝細胞受損的靈敏指標,其活性與肝臟氨基酸代謝有關(guān)。ALT主要存在于細胞漿中,AST主要存在于細胞漿的線粒體中。本研究結(jié)果顯示,TCDD持續(xù)暴露8周,導(dǎo)致大鼠血清AST活性及NT1、NT2組ALT活性升高,NT4組ALT活性降低;AST的變化與前期急性暴露結(jié)果一致[9],在低劑量時ALT活性升高,而高劑量時則抑制了其活性,說明TCDD對ALT的影響是短暫的[12],具有劑量依賴效應(yīng)。ALT、AST的變化提示肝細胞損傷嚴重,發(fā)生了氧化應(yīng)激反應(yīng),尤其是AST活性的升高說明肝細胞受損嚴重,已累及到粒線體,細胞膜破裂,AST從細胞進入血清的含量升高;在T3、T4劑量時,AST的升高幅度明顯大于ALT,進一步證明肝細胞損傷嚴重,并破壞到線粒體膜。

      本研究中,運動可升高大鼠血清AST和ALT活性,該結(jié)果與前人研究結(jié)果[13-14]基本一致,說明該運動方式和強度是有效的。運動可使染毒大鼠AST活性升高(T1劑量),ALT活性降低(T1、T2劑量),而運動又可使染毒大鼠AST活性降低(T3劑量),ALT活性升高(T3、T4劑量),提示運動使受損肝細胞產(chǎn)生適應(yīng)性變化,有效抵抗染毒引起的肝細胞損傷,尤其在T2劑量染毒時運動可使ALT活性接近對照組水平,具有劑量依賴效應(yīng),提示運動對T2劑量TCDD暴露誘導(dǎo)的肝細胞損傷的拮抗作用尤其明顯。

      3.2 運動對TCDD持續(xù)暴露大鼠肝臟氧化應(yīng)激指標的影響

      TCDD發(fā)揮毒性作用并非直接與機體蛋白質(zhì)、核酸等形成加合物或直接引起脂質(zhì)過氧化的結(jié)果,其高度脂溶性的特點使其極易透過細胞膜進入細胞漿,在胞漿內(nèi)作為配體與轉(zhuǎn)錄因子芳香烴受體(aryl hydrocarbon receptor, AhR)結(jié)合后誘導(dǎo)相應(yīng)基因的表達,改變酶活性和蛋白質(zhì)[15-16]。氧化應(yīng)激是自由基的累積在體內(nèi)產(chǎn)生的負面作用,機體內(nèi)完整的抗氧化體系可維持機體內(nèi)自由基的代謝平衡,使ROS水平控制在很低范圍內(nèi),TCDD可誘導(dǎo)機體ROS生成加速,刺激肝臟內(nèi)的抗氧化酶清除過量的ROS,緩解其氧化損傷[14,17]。本研究中,TCDD染毒8周后對大鼠肝組織SOD、CAT、GSH-Px活性及ROS含量無明顯影響,而使肝組織MDA含量增加(T2、T3劑量);前期急性暴露可致抗氧化酶活性明顯降低[9],而本研究中抗氧化酶活性及ROS均無明顯變化??赡茉驗門CDD持續(xù)暴露過程中,隨著ROS產(chǎn)生的增加,刺激肝組織II相代謝酶(SOD、CAT、GSH-Px)增加,增加的抗氧化酶用以清除體內(nèi)多余的ROS。因此,ROS與抗氧化酶活性變化不明顯,除劑量不同和周持續(xù)暴露方式外,具體原因有待進一步深入研究。MDA含量的變化,提示持續(xù)染毒(T2、T3劑量)8周使肝臟內(nèi)氧化-抗氧化系統(tǒng)失衡,脂質(zhì)過氧化水平升高,對細胞膜的結(jié)構(gòu)和功能產(chǎn)生不利影響,使細胞膜間隙增大,通透性增加。該結(jié)果可解釋本研究中低劑量以上染毒8周后血清ALT和AST的變化。

      運動方式和運動強度不同對機體氧化應(yīng)激的影響是不同的[18-23]:長時間劇烈運動時體內(nèi)的代謝過程加強,氧自由基生成增多,乳酸等代謝產(chǎn)物的堆積抑制了清除自由基酶的活性,使自由基清除率降低,導(dǎo)致抗氧化應(yīng)激反應(yīng)系統(tǒng)失衡。主要表現(xiàn)在引起脂質(zhì)過氧化,及DNA、蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的破壞;而適宜的運動強度可降低機體的氧化應(yīng)激水平。急性暴露時,該運動強度對大鼠肝組織SOD、CAT及GSH-Px活性無明顯影響[9]。本研究中,8周的有氧運動運動可使大鼠肝組織GSH-Px活性增高,SOD、CAT活性有增高趨勢,但無顯著性差異,說明該運動方式和運動強度能影響肝臟抗氧化能力。運動可增加染毒大鼠肝組織SOD活性(T2、T3劑量)、CAT活性(T1、T2、T3劑量)及GSH-Px活性(T2、T3、T4劑量),降低肝組織MDA含量(T2、T3、T4劑量)及ROS含量(T1、T3劑量);8周有氧運動可提高SOD活性,說明機體清除氧自由基的能力提高,機體的抗氧化能力增強;CAT活性的升高,增強了其催化過氧化氫分解為水和氧的能力,可防止過氧化氫含量過高對機體組織造成損傷,對細胞起到保護作用;而GSH-Px活性的增加,不僅可以增強其清除體內(nèi)過氧化氫的能力,同時還可以清除體內(nèi)的脂質(zhì)過氧化物。以上研究結(jié)果提示,8周的有氧運動可增強TCDD染毒(T2、T3劑量)大鼠機體對應(yīng)激反應(yīng)適應(yīng)性,增強機體抗氧化能力,降低其氧化應(yīng)激水平,從而減輕肝毒性。研究表明,nuclear factor-E2-related factor 2(Nrf2)轉(zhuǎn)錄因子是細胞抗氧化應(yīng)激反應(yīng)的重要調(diào)節(jié)者,在細胞介導(dǎo)的抗氧化應(yīng)激防御反應(yīng)中具有重要的作用[24];而運動可通過Nrf2調(diào)節(jié)小鼠腎臟抗氧化酶含量及活性[25];結(jié)合前人研究成果,本研究認為Nrf2可能參與了運動對TCDD肝毒性的緩解作用,具體機制有待進一步研究。

      綜上所述,不同劑量2,3,7,8-TCDD持續(xù)暴露8周可引起大鼠肝細胞程度不等的氧化應(yīng)激損傷,并具有劑量依賴效應(yīng);而有氧運動可增加2,3,7,8-TCDD持續(xù)暴露大鼠肝組織抗氧化酶活性,有效降低氧化應(yīng)激損傷而減輕肝毒性。

      致謝:特別感謝環(huán)境保護部華南環(huán)境科學研究所許振成研究員、北京體育大學張培珍副教授和方子龍教授的支持和幫助。

      [1] Iszatt N, Stigum H, Govarts E, et al. Perinatal exposure to dioxins and dioxin-like compounds and infant growth and body mass index at seven years: A pooled analysis of three European birth cohorts [J]. Environment International, 2016, 94: 399-407

      [2] Schiavon M, Torretta V, Rada E C, et al. State of the art and advances in the impact assessment of dioxins and dioxin-like compounds[J]. Environmental Monitoring & Assessment, 2016, 188(1): 57. doi:10.1007/s10661-015-5079-0

      [3] Fukushi J, Tokunaga S, Nakashima Y, et al. Effects of dioxin-related compounds on bone mineral density in patients affected by the Yusho incident[J]. Chemosphere, 2016, 145: 25-33

      [4] Sofo V, G?tte M, Laganà A S, et al. Correlation between dioxin and endometriosis: An epigenetic route to unravel the pathogenesis of the disease [J]. Archives of Gynecology and Obstetrics, 2015, 292(5): 973-986

      [5] Lu D, Lin Y, Feng C, et al. Levels of polychlorinated dibenzo-p-dioxins/furans (PCDD/Fs) and dioxin-like polychlorinated biphenyls (DL-PCBs) in breast milk in Shanghai, China: A temporal upward trend[J]. Chemosphere, 2015, 137: 14-24

      [6] Ciftci O, Ozdemir I, Tanyildizi S, et al. Antioxidative effects of curcumin, β-myrcene and 1,8-cineole against 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin-induced oxidative stress in rats liver [J]. Toxicology & Industrial Health, 2011, 27(5): 447-453

      [7] Ciftci O, Vardi N, Ozdemir I. Effects of quercetin and chrysin on 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin induced hepatotoxicity in rats [J]. Environmental Toxicology, 2013, 28(3): 146-154

      [8] Bouzid M A, Hammouda O, Matran R, et al. Low intensity aerobic exercise and oxidative stress markers in older adults [J]. Journal of Aging & Physical Activity, 2014, 22(4): 536-542

      [9] 張馳, 閆會萍, 陸一帆, 等. 運動對2,3,7,8-四氯二苯并二惡英急性暴露大鼠肝臟抗氧化能力的影響[J]. 生態(tài)毒理學報, 2016, 11(2): 300-306

      Zhang C, Yan H P, Lu Y F, et al. Effect of exercise on the activity of liver antioxiant ability in 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD)-exposed rats [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2016, 11(2): 300-306 (in Chinese)

      [10] Croutch C R, Lebofsky M, Schramm K, et al. 2, 3, 7, 8-Tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD) and 1, 2, 3, 4, 7, 8-hexachlorodibenzo-p-dioxin (HxCDD) alter body weight by decreasing insulin-like growth factor I (IGF-I) signaling [J]. Toxicological Sciences, 2005, 85(1): 560-571

      [11] 嚴翊,謝敏豪. 大鼠游泳運動的最大乳酸穩(wěn)態(tài)負荷的確定——乳酸最小試驗[J]. 北京體育大學學報, 2010, 33(9): 43-45

      Yan Y, Xie M H. The selection of rat swimming training load in maximal lactate steady state—Lactate minimum test [J]. Journal of Beijing Sport University, 2010, 33(9): 43-45 (in Chinese)

      [12] Seefeld M D, Albrecht R M, Peterson R E. Effects of 2, 3, 7, 8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin on indocyanine green blood clearance in rhesus monkeys[J]. Toxicology,1979,14(3): 263-272

      [13] 畢秋蕓, 彭莉, 王啟榮. 遞增負荷訓練后大鼠血清 CK及其同工酶, LDH, ALT, AST 活性變化[J]. 中國運動醫(yī)學雜志, 2006, 25(5): 593-595

      Bi Q Y, Peng L, Wang Q R. The effect of the incremental load training on the activity of serum CK isoenzymes, LDH, ALT and AST of the eats[J]. Chinese Journal of Sports Medicine, 2006, 25(5): 593-595 (in Chinese)

      [14] Shon Y H, Park I K, Moon I S, et al. Effect of chitosan oligosaccharide on 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin-induced oxidative stress in mice [J]. Biological & Pharmaceutical Bulletin, 2002, 25(9): 1161-1164

      [15] Schneider A J, Branam A M, Peterson R E. Intersection of AHR and Wnt signaling in development, health, and disease [J]. International Journal of Molecular Sciences, 2014, 15(10): 17852-17885

      [16] Nebert D W, Dalton T P. The role of cytochrome P450 enzymes in endogenous signaling pathways and environmental carcinogenesis[J]. Nature Reviews Cancer, 2006, 6: 947-960

      [17] Turkez H, Geyikoglu F, Yousef M I, et al. Ameliorative effect of supplementation with l-glutamine on oxidative stress, DNA damage, cell viability and hepatotoxicity induced by 2,3,7,8-tetrachlorodibenzop-dioxin in rat hepatocyte cultures[J]. Cytotechnology, 2012, 64(6): 687-699

      [18] Hammeren J, Powers S, Lawler J, et al. Exercise training-induced alterations in skeletal muscle oxidative and antioxidant enzyme activity in senescent rats [J]. International Journal of Sports Medicine, 1992, 13(5): 412-416

      [19] Manfredi T G, Fielding R A, O'Reilly K P, et al. Plasma creatine kinase activity and exercise-induced muscle damage in older men [J]. Medicine & Science in Sports & Exercise, 1991, 23(9): 1028-1034

      [20] Poblete A C E, Russell G J A, Soto M M E, et al. Effects of high intensity interval training versus moderate intensity continuous training on the reduction of oxidative stress in type 2 diabetic adult patients: CAT [J]. Medwave, 2015, 15(7): e6212. doi:10.1007/s10661-015-5079-0

      [21] Tromm C B, Pozzi B G, Paganini C S, et al. The role of continuous versus fractionated physical training on muscle oxidative stress parameters and calcium-handling proteins in aged rats [J]. Aging Clinical and Experimental Research, 2016, 28(5): 833-841

      [22] Barcelos R P, Souza M A, Amaral G P, et al. Caffeine supplementation modulates oxidative stress markers in the liver of trained rats [J]. Life Sciences, 2014, 96(1-2): 40-45

      [23] Hu X, Duan Z, Hu H, et al. Proteomic profile of carbonylated proteins in rat liver: Exercise attenuated oxidative stress may be involved in fatty liver improvement [J]. Proteomics, 2013, 13(10-11): 1755-1764

      [24] Mukhopadhyay D, Srivastava R, Chattopadhyay A. Sodium fluoride generates ROS and alters transcription of genes for xenobiotic metabolizing enzymes in adult zebrafish (Danio rerio) liver: Expression pattern of Nrf2/Keap1 (INrf2) [J]. Toxicology Mechanisms & Methods, 2015, 25(5): 364-373

      [25] George L, Lokhandwala M F, Asghar M. Exercise activates redox-sensitive transcription factors and restores renal D1 receptor function in old rats [J]. American Journal of Physiology Renal Physiology, 2009, 297(5): 1174-1180

      Effect of Exercise on Liver Redox Status in Continuously 2,3,7,8-Tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD)-Exposed Rats

      Yan Huiping1, Song Xiaobo1,2, Li Feifei1, Lu Yifan1,*, Peng Peng3, Wang Juanjuan1, Hu Bing1, Zhang Chi1

      1. Sports Rehabilitation College, Beijing Sport University, Beijing 100084, China2. Central China Normal University, Wuhan 430079, China3. Department of Military Training Medicine, Logistics University of Chinese People's Armed Police Force, Tianjin 300309, China

      21 March 2017 accepted 29 March 2017

      The aim of this study is to investigate the effects of exercise on liver redox status in continuously 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin(TCDD)-exposed rats. Seven-week-old male SD rats were randomly divided into ten groups: normal control (NC), exercise control (EC), normal toxic 1 (NT1), exercise toxic1 (ET1), normal toxic 2 (NT2), exercise toxic 2 (ET2), normal toxic 3 (NT3), exercise toxic 3 (ET3), normal toxic 4 (NT4), and exercise toxic 4 (ET4). 2,3,7,8-TCDD (dissolved in corn oil) were intraperitoneally injected in the first week at the dose of 0, 0.4, 1.6, 6.4 and 25.6 μg·kg-1in control and toxic groups respectively. Then, a maintenance dosage by 21% of the first dose for the following 2rd-8th weeks were injected. The rats of exercise groups swam 30 min·d-1with 5% weights attached to tails. Serum were collected to determine the activities of the aspartate aminotransferase (AST) and the alanine aminotransterase (ALT). Liver was obtained to determine the activities of the superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GSH-Px), and the concentration of reactive oxidative species (ROS) and malondialdehyde (MDA). The results showed that 1) TCDD increased the activities of serum AST in NTs groups and ALT in NT4 group, decreased the activitivies of serum ALT in NT1 and NT2 groups, and increased the content of liver MDA in NT2 and NT3 groups significantly; 2)Exercise increased the activities of serum AST and ALT, and liver GSH-Px; 3)Exercise could effectively increase the activities of serum AST (T1 dose) and ALT (T3,T4 dose), liver SOD (T2,T3 dose), CAT (T1,T2,T3 dose) and GSH-Px (T2,T3,T4 dose) induced by TCDD, and decreased the activities of serum ALT (T1 dose) and AST (T3 dose), and the content of liver MDA (T2,T3,T4 dose) and ROS (T1,T3 dose) induced by TCDD. It is suggested that 8 weeks’ continuous exposure to TCDD could induce the imbalance of the liver redox status and oxidative stress injury which depended on the dosage of toxic exposure. Aerobic exercise could increase the activities of the liver antioxidant enzyme in continuously TCDD-exposed rats (T2,T3), and reduce the oxidative stress injury effectively.

      2,3,7,8-TCDD; rat; liver redox status; exercise

      中央高?;究蒲袠I(yè)務(wù)費專項資金資助課題(2016RB016);全國重點地區(qū)環(huán)境與健康專項調(diào)查(21111011101EHH(2011)-505)

      閆會萍(1975-),女,博士,研究方向為運動與健康,E-mail: yanhp000@126.com

      *通訊作者(Corresponding author), E-mail: fanluyi@hotmail.com

      10.7524/AJE.1673-5897.20170321001

      2017-03-21 錄用日期:2017-03-29

      1673-5897(2017)2-081-07

      X171.5

      A

      陸一帆(1963—),男,運動生理學博士,教授,博士研究生導(dǎo)師,主要研究方向為運動訓練監(jiān)控、社區(qū)體育健身、運動與健康。

      閆會萍, 宋小波, 李飛霏, 等. 運動對2,3,7,8-四氯二苯并二噁英持續(xù)暴露大鼠肝臟氧化應(yīng)激的影響[J]. 生態(tài)毒理學報,2017, 12(2): 81-87

      Yan H P, Song X B, Li F F, et al. Effect of exercise on liver redox status in continuously 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD)-exposed rats [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2017, 12(2): 81-87 (in Chinese)

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