• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      TTP減輕大鼠蛛網(wǎng)膜下腔出血后早期腦損傷*

      2018-03-01 18:25:04陳朝暉洪溪屏
      中國病理生理雜志 2018年2期
      關(guān)鍵詞:腦細(xì)胞腦損傷造模

      陳朝暉, 洪溪屏, 蘭 頻, 潘 鋒

      (麗水市中心醫(yī)院急診科, 浙江 麗水 323000)

      蛛網(wǎng)膜下腔出血(subarachnoid hemorrhage,SAH)作為一種危害極其嚴(yán)重的神經(jīng)系統(tǒng)疾病,其病死率和致殘率非常高,大約12.4%的患者在出血后立即死亡,50%左右的幸存者遺留不同程度的神經(jīng)功能障礙[1-2]。近年來研究表明,早期腦損傷(early brain injury,EBI)是SAH患者出現(xiàn)急性神經(jīng)功能損害最主要的原因,腦細(xì)胞凋亡、腦水腫、炎性反應(yīng)和血腦屏障損傷是早期腦損傷關(guān)鍵的病理改變,自SAH發(fā)生起持續(xù)72 h[3-4]。Tristetraprolin (TTP)作為串聯(lián)CCCH(半胱氨酸-半胱氨酸-半胱氨酸-組氨酸)型鋅指蛋白家族的成員,可在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控白細(xì)胞介素(interleuklin,IL)-6、IL-33、核因子κB(nuclear factor-κB,NF-κB)和低氧誘導(dǎo)因子α(hypoxia-inducible factor-α,HIF-α)等多種細(xì)胞因子的表達(dá)[5],還參與了包括細(xì)胞分化、凋亡和癌變在內(nèi)的諸多病理生理過程[6]。但TTP在SAH中作用尚不明確,本研究旨在探討TTP在大鼠SAH后EBI中的作用機(jī)制,為臨床SAH的防治提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

      材 料 和 方 法

      1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物和分組

      健康清潔級成年雄性SD大鼠116只, 體質(zhì)量290~340 g,購自中科院上海動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,合格證號為SCXK(滬)2012-0002,所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)均依照“NIH Guidelines of Care and Use of Laboratory Animals (2011)”標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行,動(dòng)物飼養(yǎng)于18~24 ℃恒溫恒濕環(huán)境中,12 h/12 h光暗周期,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物均自由進(jìn)食飲水。實(shí)驗(yàn)分為2部分,在第1部分實(shí)驗(yàn)中,56只大鼠經(jīng)隨機(jī)數(shù)字表法分為7組:sham組及SAH造模后0、12、24、48、72 h和1 周這6個(gè)時(shí)點(diǎn)組,每組8只;在第2部分實(shí)驗(yàn)中,60只大鼠被隨機(jī)分成sham組、SAH組、SAH+對照質(zhì)粒(vector)組和SAH+TTP組,每組15只,SAH+vector組和SAH+TTP組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物在SAH建模前經(jīng)腦室注射對照質(zhì)粒和TTP過表達(dá)質(zhì)粒。在實(shí)驗(yàn)過程中,sham組大鼠無一例死亡,10只大鼠在SAH造模手術(shù)中死亡,死亡率為7.9%。

      2主要實(shí)驗(yàn)儀器和試劑

      外科手術(shù)器械由華東醫(yī)藥公司提供;LKB-2088型冰凍切片機(jī)由LKB提供;垂直轉(zhuǎn)移電泳儀由Bio-Rad提供;組織勻漿儀器由Prosolution提供;自動(dòng)恒溫箱由山東菏澤生化儀器廠提供。

      細(xì)胞蛋白提取試劑盒購自TaKaRa;大鼠TTP基因過表達(dá)慢病毒載體及陰性對照載體購自上海吉?jiǎng)P基因化學(xué)公司;ELISA試劑盒購自Bender MedSystems;抗TTP、Bax、Bcl-2、cleaved-caspase-3和β-actin抗體購自Epitomics。

      3方法

      3.1大鼠SAH模型建立 參考Bederson等[7]的血管內(nèi)穿刺法制備大鼠SAH模型,應(yīng)用10%水合氯醛對大鼠進(jìn)行腹腔麻醉,置于實(shí)驗(yàn)臺上固定,頸部皮膚備皮并消毒后于頸部正中縱向切開,顯露右側(cè)頸總動(dòng)脈、頸外動(dòng)脈和頸內(nèi)動(dòng)脈,用血管夾臨時(shí)阻斷頸總動(dòng)脈和頸內(nèi)動(dòng)脈,在頸外動(dòng)脈切一個(gè)小口,自切口將導(dǎo)管和鎢絲插入頸外動(dòng)脈,將導(dǎo)管緩緩?fù)七M(jìn)至大腦前動(dòng)脈和中動(dòng)脈分叉處,將鎢絲繼續(xù)推進(jìn)1~2 mm,穿破動(dòng)脈建立SAH模型。Sham組大鼠進(jìn)行相似手術(shù)操作,但不穿破動(dòng)脈。手術(shù)結(jié)束后,將大鼠置于恒溫箱內(nèi)并標(biāo)記。慢病毒液在SAH建模前24 h通過立體定向儀經(jīng)右側(cè)側(cè)腦室注射。注射坐標(biāo)為:向后1.0 mm,右側(cè)旁開1.0 mm,深度為4.5 mm。慢病毒注射量為10 μL(濃度為1×1011TU/L),注射完成后繼續(xù)留針5 min。

      3.2IL-6和腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)的檢測 嚴(yán)格按照ELISA試劑盒操作步驟進(jìn)行,分別檢測各組大鼠腦組織樣本中IL-6和TNF-α的水平,用酶標(biāo)儀測定650 nm波長處吸光度(A650),實(shí)驗(yàn)重復(fù)5次,取平均值。

      3.3神經(jīng)功能缺損的評價(jià) 在SAH造模48 h后根據(jù)Sugawara等[8]的評分方法對各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物進(jìn)行神經(jīng)功能缺損評分。改良Garicia評分標(biāo)準(zhǔn)包括:自發(fā)活動(dòng)、四肢對稱運(yùn)動(dòng)、前掌運(yùn)動(dòng)、攀爬能力、身體本體感受及胡須刺激反應(yīng)6個(gè)項(xiàng)目,每個(gè)項(xiàng)目0~3分,得分越高,表明神經(jīng)功能缺損越輕。

      3.4腦組織含水量的測定 每組大鼠各取5只在造模48 h后處死,斷頭取全腦組織,擦去表面血跡后稱重(濕重),然后將腦組織放置于110 ℃烤箱內(nèi)烘干72 h至恒重,并稱量其干重,計(jì)算腦組織含水量,腦含水量(%)=(濕重-干重)/濕重×100%。

      3.5腦血管通透性的測定 每組大鼠各取5只在處死前1 h經(jīng)尾靜脈注射2%的伊文思藍(lán)(Evans blue,EB)溶液(5 mL/kg),全身循環(huán)1 h后開胸,去除心臟包膜后暴露心臟,用輸液器針頭刺入左心室并插入升主動(dòng)脈,用彎鉗固定,用生理鹽水自左心室行心臟灌注,維持灌注壓在100 mmHg左右,待灌注液為清亮液體后斷頭取腦組織,將左、右半腦組織稱重后按10 mL/kg比例浸入甲酰胺溶液后勻漿,將勻漿液置入60 ℃恒溫水浴箱內(nèi)孵育24 h,待EB浸出后將浸出液于酶標(biāo)儀630 nm波長處測定吸光度(A630)值,實(shí)驗(yàn)重復(fù)5次,取平均值。

      3.6Western blot檢測蛋白的表達(dá) 取各組大鼠顳葉皮質(zhì)腦組織加入細(xì)胞裂解液中,置于冰上反應(yīng)30 min,4 ℃條件下以12 000 r/min離心20 min,收集上清后使用BCA蛋白檢測試劑盒對蛋白質(zhì)濃度進(jìn)行定量分析。蛋白質(zhì)樣品(30 μg)行10% SDS-PAGE后轉(zhuǎn)移到0.45 μm的硝酸纖維素膜上,并使用5%脫脂奶粉于4℃下孵育過夜,該膜在4 ℃與 I 抗在室溫下反應(yīng)30min后,在室溫下與 II 抗再次孵育1 h。以目的蛋白與內(nèi)參照β-actin蛋白條帶灰度值的比值來表示蛋白的相對表達(dá)量。

      3.7TUNEL法檢測腦細(xì)胞凋亡 各組大鼠腦組織石蠟切片經(jīng)脫蠟水化,按TUNEL試劑盒說明書操作,切片經(jīng)3%過氧化氫室溫封閉15 min,滴加含0.1% Triton X-100的0.1%檸檬酸溶液于冰上反應(yīng)3 min,每個(gè)樣本滴加 50 μL TUNEL反應(yīng)混合液,置于濕盒中37 ℃孵育1 h,再添加100 μg/L的DAPI核染8 min,置于熒光顯微鏡(OLYMPUS, BX51TF型)下選擇視野拍片,凋亡細(xì)胞核為綠色,凋亡細(xì)胞的計(jì)數(shù)由一位對分組不了解的病理醫(yī)師觀察,每張切片隨機(jī)計(jì)數(shù)5個(gè)視野。

      4統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

      采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,多組樣本均數(shù)之間比較采用單因素(one-way ANOVA)方差分析,各組均數(shù)間的兩兩比較用Bonferroni法,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1TTP在SAH大鼠中的表達(dá)

      Western blot檢測結(jié)果顯示,與sham組相比較,TTP在SAH造模術(shù)后12 h開始下降(P<0.01),在SAH后48 h達(dá)到最低點(diǎn),隨著時(shí)間的延續(xù),SAH造模1周后,TTP開始表達(dá)上調(diào)(P<0.05),見圖1A;將慢病毒注射入大鼠腦室后,利用Western blot檢測TTP在各組大鼠腦組織中的表達(dá),與SAH+vector組相比較,SAH+TTP組腦組織中TTP蛋白的表達(dá)明顯上調(diào),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見圖1B。

      Figure 1. The changes of TTP protein expression in the brain tissues of SAH rats. A: the expression of TPP in the brain tissues after SAH determined by Western blot; B: the protein level of TTP in rat brains after transfected withTPPover-expression vector. Mean±SD.n=3.**P<0.01vssham group;##P<0.01vsSAH 0 h group;▲P<0.05vsSAH 48 h group;△△P<0.01vsSAH+vector group.

      圖1SAH大鼠腦組織中TTP表達(dá)的變化

      2TTP對大鼠SAH后EBI的影響

      ELISA法分析IL-6和TNF-α在各組腦組織中的表達(dá),結(jié)果顯示, IL-6和TNF-α在SAH組大鼠腦組織中的表達(dá)較sham組明顯上調(diào),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);與SAH+vector組相比較,SAH+TTP組大鼠腦組織中IL-6和TNF-α的表達(dá)顯著下降(P<0.05),見圖2A、B。

      如圖2C所示,與sham組相比較,SAH組大鼠出現(xiàn)嚴(yán)重神經(jīng)功能缺損的表現(xiàn),Garcia評分顯著降低(P<0.01);而SAH+TTP組大鼠神經(jīng)缺損評分顯著高于SAH+vector組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P<0.01)。

      如圖2D所示, SAH建模48 h后大鼠腦組織含水率較sham組上升(P<0.01);上調(diào)TTP在大鼠腦組織中的表達(dá)可顯著降低腦組織含水率,與SAH+vector組相比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

      如圖2E所示,SAH組大鼠腦組織中EB滲出較sham組顯著增加(P<0.01),表明SAH可增強(qiáng)腦血管通透性;而SAH+TTP組大鼠在SAH建模48 h后腦組織中EB含量低于SAH+vector組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

      Figure 2. The effects of TTP on early brain injury following SAH in the rats. A and B: ELISA analysis was performed to evaluate the effect ofTTPover-expression on the levels of IL-6 and TNF-α in the brain tissues of SAH rats; C, D and E: the changes of neurological deficit score, brain water content and EB extravasation were also measured 48 h after SAH. Mean±SD.n=3.**P<0.01vssham group;#P<0.05,##P<0.01vsSAH+vector group.

      圖2TTP對大鼠SAH后EBI的影響

      3TTP對大鼠SAH后腦細(xì)胞凋亡的影響

      TUNEL法檢測各組大鼠腦細(xì)胞凋亡結(jié)果顯示,SAH組大鼠腦細(xì)胞凋亡數(shù)較sham組明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);過表達(dá)TTP可顯著減少SAH導(dǎo)致的腦細(xì)胞凋亡(P<0.01),見圖3。

      Figure 3. Over-expression of TTP significantly inhibited the number of TUNEL-positive neural cells compared with SAH+vector group (×200). Mean±SD.n=3.**P<0.01vssham group;##P<0.01vsSAH+vector group.

      圖3TTP對大鼠SAH后腦細(xì)胞凋亡的影響

      Western blot檢測結(jié)果表明,與sham組相比較,SAH建模48 h后大鼠腦組織中Bax的表達(dá)明顯上調(diào),同時(shí)上調(diào)cleaved caspase-3的水平,而Bcl-2的表達(dá)下調(diào)(P<0.01);上調(diào)TTP在腦組織中的表達(dá)可上調(diào)Bcl-2的表達(dá),同時(shí)Bax和cleaved caspase-3的水平明顯下調(diào)(P<0.01),見圖4。

      討 論

      SAH作為一種常見的出血性腦血管疾病,具有極大的危害性[1-2]。SAH后72 h內(nèi)可發(fā)生腦水腫、腦血管痙攣、炎性反應(yīng)、血腦屏障破壞和肺水腫等一系列并發(fā)癥,從而引發(fā)早期腦損傷,而腦水腫和血腦屏障的破壞是引起早期腦損傷最關(guān)鍵的病理生理反應(yīng)。研究表明早期腦損傷是導(dǎo)致SAH患者致死致殘的最主要原因。目前,大鼠SAH模型的建立有枕大池注血法、視交叉注血法和血管內(nèi)穿刺法3種[9],而血管內(nèi)穿刺法更適合研究大鼠SAH后早期腦損傷,為此,本研究通過血管內(nèi)穿刺法建立大鼠SAH模型,觀察到假手術(shù)組大鼠術(shù)后蛛網(wǎng)膜下腔未見明顯出血及血凝塊,而SAH造模后在顱底腦組織表面可見大量彌漫性出血及血凝塊,包繞腦底部主要血管。既往研究表明,SAH后引起腦細(xì)胞炎癥反應(yīng)和免疫反應(yīng)在導(dǎo)致腦水腫和腦細(xì)胞凋亡反應(yīng)中發(fā)揮了重要作用。在顱內(nèi)壓增加和腦血流減少的雙重影響下,外周免疫細(xì)胞滲入腦組織并釋放大量促炎因子,這些促炎因子不僅損傷周圍腦細(xì)胞,同時(shí)損傷神經(jīng)細(xì)胞并導(dǎo)致腦水腫的發(fā)生,本次研究也觀察到大鼠SAH后可誘導(dǎo)諸如IL-6和TNF-α在腦組織中的表達(dá),與既往研究相仿[10]。

      TTP作為一種當(dāng)今研究得較為透徹的富含AU元件(AU-rich elements,AREs)結(jié)合蛋白,可通過有效降解炎癥和腫瘤相關(guān)基因mRNA,從而在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控機(jī)體多種病理生理反應(yīng)[5-6]。近年來,越來越多證據(jù)表明TTP在惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程中也發(fā)揮了一定作用。研究表明,TNF-α、IL-6和GM-CSF等多種mRNA在特異性沉默TTP的裸鼠體內(nèi)保持穩(wěn)定狀態(tài),同時(shí)這些炎癥相關(guān)因子的過度表達(dá)導(dǎo)致裸鼠惡液質(zhì)、侵蝕性關(guān)節(jié)炎、皮膚炎、結(jié)膜炎和腎小球腎炎等多種炎癥反應(yīng);另外改變TTP在機(jī)體中的表達(dá)對諸如類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、全身性紅斑狼瘡和潰瘍性結(jié)腸炎等疾病的發(fā)生和嚴(yán)重程度起到非常重要的作用[10-13]。但目前尚未有TTP與SAH的相關(guān)性研究報(bào)道,在本研究中,我們觀察到TTP在SAH造模后12 h即開始表達(dá)下調(diào),在48 h達(dá)到最低值,表明TTP有可能作為SAH后EBI發(fā)生的早期預(yù)測因子及治療靶點(diǎn)。為進(jìn)一步研究TTP在大鼠SAH中的作用,我們通過慢病毒干擾技術(shù)上調(diào)大鼠腦組織中TTP的表達(dá),功能性實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,過表達(dá)TTP不僅可抑制促炎因子在大鼠SAH后腦組織中的表達(dá),同時(shí)首次觀察到TTP可有效改善SAH后腦水腫、神經(jīng)功能缺損和腦血管通透性增加等EBI表現(xiàn),從而表明TTP作為SAH治療靶點(diǎn)的潛在價(jià)值。

      Figure 4. Over-expression of TTP markedly decreased the levels of cleaved caspase-3 and Bax, and elevated the diminished level of Bcl-2. Mean±SD.n=3.**P<0.01vssham group;##P<0.01vsSAH+vector group.

      圖4Westernblot檢測TTP對大鼠腦細(xì)胞中Bax、Bcl-2和cleavedcaspase-3水平的影響

      細(xì)胞凋亡作為一種細(xì)胞程序性死亡方式,在SAH后早期腦損傷中扮演著重要角色,凋亡細(xì)胞可通過釋放諸如TNF-α和IL-6等炎性因子從而影響周圍正常細(xì)胞發(fā)生壞死,因此,抑制SAH后腦細(xì)胞凋亡被認(rèn)為是SAH治療策略中重要的一環(huán)[14]。Caspase-3作為一種在凋亡線粒體通路和死亡受體通路中均發(fā)揮作用的關(guān)鍵蛋白酶,被稱為細(xì)胞凋亡發(fā)生的執(zhí)行者[15]。在本研究中,SAH可誘導(dǎo)大鼠腦細(xì)胞凋亡,同時(shí)促進(jìn)caspase-3的活化形式cleaved caspase-3在腦細(xì)胞中的表達(dá),而TTP不僅可有效抑制SAH誘導(dǎo)產(chǎn)生的腦細(xì)胞凋亡,還能抑制caspase-3的活化,從而表明抑制腦細(xì)胞凋亡在TTP的SAH后腦細(xì)胞保護(hù)作用中扮演了重要角色。研究表明促凋亡蛋白Bax可通過編碼產(chǎn)物從而使得抗凋亡蛋白Bcl-2失活,從而在細(xì)胞凋亡過程中發(fā)揮重要調(diào)控作用[16]。在本研究中,過表達(dá)TTP可抑制Bax在腦細(xì)胞中的表達(dá),同時(shí)促進(jìn)Bcl-2的表達(dá),表明降低Bax/Bcl-2比值在TTP發(fā)揮腦細(xì)胞保護(hù)作用中可能起到關(guān)鍵作用。

      綜上所述,本研究表明TTP可有效保護(hù)大鼠SAH后早期腦損傷的發(fā)生,同時(shí)抑制腦細(xì)胞凋亡,其抑制腦細(xì)胞凋亡的機(jī)制可能與降低Bax/Bcl-2比值有關(guān),但TTP是否對體外神經(jīng)元細(xì)胞具有保護(hù)作用尚未可知,同時(shí)TTP發(fā)揮SAH后腦細(xì)胞保護(hù)作用的具體作用機(jī)制仍需進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)明確,另外TTP在本次實(shí)驗(yàn)造模晚期出現(xiàn)表達(dá)上調(diào),可能與機(jī)體免疫反應(yīng)有關(guān),其具體調(diào)節(jié)機(jī)制有待進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)。但本次研究為臨床SAH治療提供一個(gè)新的作用靶點(diǎn),在揭示SAH的發(fā)病機(jī)制及治療上具有一定積極意義。

      [1] 王 軒, 賈麗麗, 孫保亮, 等. 腦淋巴引流阻滯后蛛網(wǎng)膜下腔出血兔腦脊液對PC12細(xì)胞的損傷作用[J]. 中國病理生理雜志, 2010, 26(1):91-95.

      [2] 孫保亮, 張?zhí)K明, 夏作理, 等. 枕大池動(dòng)脈血溶血物注入法建立大鼠蛛網(wǎng)膜下腔出血模型[J]. 中國病理生理雜志, 2007, 23(2):411-412.

      [3] Gu H, Fei ZH, Wang YQ, et al. Angiopoietin-1 and angiopoietin-2 expression imbalance influence in early period after subarachnoid hemorrhage[J]. Int Neurourol J, 2016, 20(4):288-295.

      [4] Tao C, Fan C, Hu X, et al. The effect of fenestration of the lamina terminalis on the incidence of shunt-dependent hydrocephalus after aneurysmal subarachnoid hemorrhage (FISH): study protocol for a randomized controlled trial[J]. Medicine (Baltimore), 2016, 95(52):e5727.

      [5] Blackshear PJ. Tristetraprolin and other CCCH tandem zinc-finger proteins in the regulation of mRNA turnover[J]. Biochem Soc Trans, 2002, 30(Pt 6):945-952.

      [6] Xiao J, Gao H, Jin Y, et al. The abnormal expressions of tristetraprolin and the VEGF family in uraemic rats with peritoneal dialysis[J]. Mol Cell Biochem, 2014, 392(1-2):229-238.

      [7] Bederson JB, Germano IM, Guarino L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat[J]. Stroke, 1995, 26(6):1086-1091.

      [8] Sugawara T, Ayer R, Jadhav V, et al. A new grading system evaluating bleeding scale in filament perforation subarachnoid hemorrhage rat model[J]. J Neurosci Methods, 2008, 167(2):327-334.

      [9] Jin Q, Cai Y, Li S, et al. Edaravone-encapsulated agonistic micelles rescue ischemic brain tissue by tuning blood-brain barrier permeability[J]. Theranostics, 2017, 7(4):884-898.

      [10] Zhao XD, Zhou YT. Effects of progesterone on intestinal inflammatory response and mucosa structure alterations following SAH in male rats[J]. J Surg Res, 2011, 171(1):e47-e53.

      [11] Clark AR, Dean JL. The control of inflammation via the phosphorylation and dephosphorylation of tristetraprolin: a tale of two phosphatases[J]. Biochem Soc Trans, 2016, 44(5):1321-1337.

      [12] Ryu J, Seong H, Yoon NA, et al. Tristetraprolin regulates the decay of the hypoxia-induced vascular endothelial growth factor mRNA in ARPE-19 cells[J]. Mol Med Rep, 2016, 14(6):5395-5400.

      [13] Berglund AE, Scott KE, Li W, et al. Tristetraprolin disables prostate cancer maintenance by impairing proliferation and metabolic function[J]. Oncotarget, 2016, 7(50):83462-83475.

      [14] Liu H, Yang M, Pan L, et al. Hyperbaric oxygen intervention modulates early brain injury after experimental subarachnoid hemorrhage in rats: possible involvement of TLR4/NF-κB-mediated signaling pathway[J]. Cell Physiol Biochem, 2016, 38(6):2323-2336.

      [15] Li G, Wang QS, Lin TT. Alterations in the expression of protease-activated receptor 1 and tumor necrosis factor-α in the basilar artery of rats following a subarachnoid hemorrhage[J]. Exp Ther Med, 2016, 11(3):717-722.

      [16] Kordezangeneh M, Irani S, Mirfakhraie R, et al. Regualtion ofBAX/BCL2 gene expression in breast cancer by docetaxel-loaded human serum albumin nanopaticles[J]. Med Oncol, 2015, 32(7):208.

      猜你喜歡
      腦細(xì)胞腦損傷造模
      為大鼠移植人腦細(xì)胞
      腎陽虛證動(dòng)物模型建立方法及評定標(biāo)準(zhǔn)研究進(jìn)展
      脾腎陽虛型骨質(zhì)疏松癥動(dòng)物模型造模方法及模型評價(jià)
      濕熱證動(dòng)物模型造模方法及評價(jià)研究
      腦細(xì)胞消失記
      腦損傷 與其逃避不如面對
      幸福(2019年21期)2019-08-20 05:39:10
      為什么在睡覺時(shí)會(huì)做夢?
      新青年(2017年4期)2017-04-15 21:36:30
      認(rèn)知行為療法治療創(chuàng)傷性腦損傷后抑郁
      睡眠不足會(huì)永久損傷腦細(xì)胞
      科學(xué)家(2014年4期)2014-07-11 17:07:44
      潤腸通便功能試驗(yàn)中造模劑的選擇
      佛学| 安塞县| 车致| 成都市| 汽车| 岳普湖县| 克拉玛依市| 富川| 漳浦县| 博罗县| 临沭县| 平江县| 丰都县| 天水市| 平罗县| 堆龙德庆县| 平凉市| 庆元县| 丰镇市| 阿尔山市| 怀安县| 吉木乃县| 柞水县| 周口市| 北票市| 寻甸| 米易县| 顺昌县| 安国市| 南充市| 宁津县| 九龙坡区| 松江区| 昂仁县| 大田县| 彭阳县| 襄垣县| 内黄县| 秦安县| 舟曲县| 健康|