胡騰惠 徐興祥
端粒是位于真核生物染色體末端的線性結(jié)構(gòu),具有抑制染色體末端進(jìn)行重組及融合的功能,從而維持染色體的穩(wěn)定性,端粒在細(xì)胞復(fù)制的過程中會(huì)不斷縮短,而端粒酶能夠維持端粒長(zhǎng)度,從而促使細(xì)胞不斷進(jìn)行復(fù)制[1]。研究表明,超過90%的惡性腫瘤具有端粒酶活性,而在正常細(xì)胞與組織中,則只能在淋巴細(xì)胞、造血細(xì)胞、生殖細(xì)胞等具有增殖潛能的細(xì)胞中檢測(cè)到端粒酶活性[2-4]。這就充分表明端粒酶可以作為一種腫瘤分子標(biāo)志物來進(jìn)行廣泛應(yīng)用。非整倍體是指?jìng)€(gè)別染色體減少或增加一條或幾條而導(dǎo)致染色體數(shù)目非整倍數(shù),所以稱為非整倍體,是細(xì)胞分裂時(shí)染色體分離、染色體丟失、染色體易位異常的結(jié)果。非整倍體嚴(yán)重威脅人類的健康:某些先天性畸形綜合征、自發(fā)性流產(chǎn)、死胎形成的主要原因就同非整倍體相關(guān),90%的實(shí)體瘤和50%的血液腫瘤也是非整倍體所致[5]。研究發(fā)現(xiàn),端粒酶及非整倍體在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中起重要作用,但端粒酶在整倍體與非整倍體細(xì)胞中的表達(dá)是否具有差異,端粒酶抑制劑疊氮脫氧胸苷(azidothymidine, AZT)對(duì)整倍體和非整倍體細(xì)胞端粒酶hTERT基因的表達(dá)及活性有何影響,目前尚不清楚,本研究擬對(duì)這些問題進(jìn)行探討。
人HCT116細(xì)胞來源于蘇北醫(yī)院實(shí)驗(yàn)中心,胎牛血清購(gòu)于杭州四季青公司,AZT購(gòu)于TCI公司,鹽酸強(qiáng)力霉素及吉姆薩染液購(gòu)于索萊寶公司,nocodazole及Eukitt? 快速硬化封片劑購(gòu)于sigma公司,MG132購(gòu)于selleckchem公司,端粒酶活性試劑盒購(gòu)于Roche公司,MAD2L1購(gòu)于R&D Systems公司。
取人HCT 116細(xì)胞培養(yǎng)于含10%滅活胎牛血清、100 U/ml青鏈霉素DMEM 培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的HCT116細(xì)胞加入1/1 000的0.2 mg/ml 鹽酸強(qiáng)力霉素(doxycycline),作用16 h后,撤掉鹽酸強(qiáng)力霉素,設(shè)為非整倍體組,并設(shè)立不加鹽酸強(qiáng)力霉素的HCT116細(xì)胞作為對(duì)照組,稱為整倍體組,撤藥當(dāng)天為第1天,在撤藥后第11天,采用0、100、250 μmol/L的AZT處理兩組細(xì)胞72 h,設(shè)立空白對(duì)照組和AZT處理組。
1. 檢測(cè)指標(biāo): 在鹽酸強(qiáng)力霉素撤掉后第6、8、11天檢測(cè)整倍體組和非整倍體組細(xì)胞hTERT基因及端粒酶活性。在撤藥后第11天對(duì)整倍體組和非整倍體組細(xì)胞進(jìn)行染色體滴定,取撤藥后第3天、第6天、第11天的細(xì)胞,檢測(cè)MAD2L1蛋白表達(dá),檢測(cè)AZT處理組hTERT mRNA基因及端粒酶活性表達(dá)。
2. hTERT mRNA基因表達(dá): 在撤藥后第6、8、11天采用RT-PCR檢測(cè)整倍體組和非整倍體細(xì)胞中hTERT mRNA基因表達(dá)差異,RT-PCR檢測(cè)空白對(duì)照組及其AZT處理組hTERT mRNA基因的表達(dá)hTERT正向引物:5′-AAGTTCCTGCACTGGCTGATG-3′,反向引物:5′-GCTTTGCAACTTGCTCCAGAC-3′。使用GAPDH作為內(nèi)參。按照RNA提取步驟提取總RNA,采用酶標(biāo)儀進(jìn)行定量,逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)采用thermo逆轉(zhuǎn)錄試劑盒,逆轉(zhuǎn)錄完畢后,采用vazyme公司的SYBR Green熒光定量試劑,進(jìn)行熒光定量擴(kuò)增。設(shè)置反應(yīng)體系為95.0 ℃ 5 min,95.0 ℃ 10 s和60 ℃ 30 s共40個(gè)循環(huán),95.0 ℃ 15 s, 60 ℃ 1 min,95.0 ℃ 15 s終止反應(yīng)。
3. 端粒酶活性檢測(cè): 在撤藥后第6、8、11天采用端粒酶活性試劑盒(TRAP-PCR-ELISA)對(duì)整倍體組和非整倍體組細(xì)胞端粒酶活性進(jìn)行檢測(cè),采用0、100、250 μmol/L的AZT處理兩組細(xì)胞72 h后,采用TRAP-PCR-ELISA檢測(cè)端粒酶活性的變化。收集待測(cè)細(xì)胞(2.5×103個(gè)),制備端粒酶提取液,并進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR條件:引物延伸 25 ℃ 15 min,端粒酶滅活 94 ℃ 5 min,擴(kuò)增共30個(gè)循環(huán):變性 94 ℃ 30 s,退火 50 ℃ 30 s,延伸 72 ℃ 90 s。72 ℃延伸 10 min,4 ℃保存 PCR 產(chǎn)物。取擴(kuò)增產(chǎn)物2.5 μl,進(jìn)行ELISA反應(yīng)。從酶標(biāo)儀上讀取其在 450 nm 處的 OD 值,以690 nm處作為參考波長(zhǎng)。端粒酶活性(RTA)計(jì)算公式為RTA=(AS-ASO)/AS.IS/[(ATS8-ATS8.0)/ATS8.IS]×100%,ΔA=AS-ASO,若ΔA大于兩倍的ASO則判定為端粒酶陽(yáng)性;AS:樣品吸光度;ASO:熱處理后樣品吸光度;AS.IS︰IS樣品吸光度;ATS8:對(duì)照模板吸光度;ATS8.0:裂解液吸光度;ATS8.IS:對(duì)照模板的IS吸光度;由試劑盒提供陽(yáng)性對(duì)照(為含有端粒重復(fù)序列的DNA片段),陰性對(duì)照為將端粒酶提取物在85 ℃環(huán)境中處理10 min。
4. 染色體滴定: 取撤藥后生長(zhǎng)至第11天的整倍體組和非整倍體組細(xì)胞加入80 ng/ml的有絲分裂抑制劑nocodazole和10 μmol/L的蛋白酶抑制劑MG132,在37 ℃孵箱中孵育6 h后,按照染色體滴定的步驟進(jìn)行處理,然后滴于玻片上,待玻片晾干后使用吉姆薩染液進(jìn)行染色,待晾干后采用Eukitt? 快速硬化封片劑進(jìn)行封片,封片后在100×的油鏡下進(jìn)行觀察計(jì)數(shù),選取150個(gè)細(xì)胞進(jìn)行拍照并對(duì)其染色體數(shù)目進(jìn)行計(jì)數(shù)。將染色體數(shù)目為45條或46條定義為整倍體(根據(jù)ATCC細(xì)胞庫(kù)中關(guān)于HCT116細(xì)胞染色體核型的描述),將染色體數(shù)目不是45或46條的細(xì)胞定義為非整倍體。
5. MAD2L1蛋白表達(dá)測(cè)定: Western blot 檢測(cè)兩組細(xì)胞撤藥后第3天、第6天、第11天MAD2L1蛋白表達(dá)變化。在撤藥后第3天、第6天、第11天分別收集整倍體組和非整倍體細(xì)胞,采用裂解液裂解細(xì)胞后獲得總蛋白。采用bio-rad法于575 nm處測(cè)定總蛋白濃度。然后,配制12%的SDS-PAGE分離蛋白樣品,上樣量60 μg,采用PVDF膜進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,恒壓2 h,5%的脫脂奶粉封閉1.5 h,一抗MAD2L1(1︰200稀釋)4 ℃封閉過夜。TBST洗滌3次后,室溫孵育二抗(1︰2 000稀釋)1 h,采用ECL化學(xué)發(fā)光劑進(jìn)行顯色,采用凝膠成像系統(tǒng)進(jìn)行顯影并拍照。目的蛋白的灰度值與內(nèi)參α-Tublin灰度值的比值代表樣品中目的蛋白的相對(duì)含量。
所有數(shù)據(jù)采用SPSS18.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,兩樣本均數(shù)比較采用t檢驗(yàn),兩獨(dú)立樣本率比較采用χ2檢驗(yàn),組內(nèi)比較及組間比較采用雙因素方差分析,P<0.05為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。
整倍體組中的150個(gè)細(xì)胞中,有10個(gè)是非整倍體,其整倍體率為93.3%,在非整倍體組的150個(gè)細(xì)胞中,共有117個(gè)細(xì)胞為非整倍體,非整倍體率為78%,見表1。
表1 整倍體組和非整倍體組細(xì)胞第11天染色體滴定結(jié)果比較
在加入鹽酸強(qiáng)力霉素第3天后非整倍體組MAD2L1蛋白表達(dá)明顯下降,兩組比較具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。第6天時(shí),MAD2L1逐漸恢復(fù),第11天時(shí),MAD2L1完全恢復(fù)正常,見圖1。
整倍體組和非整倍體組細(xì)胞在第6、8、11天hTERT mRNA基因的表達(dá)量分別為(1︰1.19±0.05、1︰1.21±0.02、1︰1.46±0.04)。非整倍體hTERT mRNA基因表達(dá)明顯高于整倍體,兩組細(xì)胞在第6、8、11天比較具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。整倍體組和非整倍體組細(xì)胞在第6、8、11天端粒酶活性分別為(2.87±0.01︰3.14±0.10、2.89±0.01︰3.25±0.03、2.79±0.03︰4.26±0.15),非整倍體組細(xì)胞的端粒酶活性明顯高于整倍體,兩組細(xì)胞在第6、8、11天比較具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05),見圖2。
圖1 加入鹽酸強(qiáng)力霉素后不同時(shí)間MAD2L1蛋白的表達(dá)變化
圖2 hTERT基因表達(dá)及端粒酶活性;注:A:整倍體組和非整倍體組細(xì)胞hTERT基因表達(dá);B:整倍體組和非整倍體組細(xì)胞第11天端粒酶活性比較
采用100、250 μmol/L的AZT作用整倍體和非整倍體細(xì)胞后,兩組細(xì)胞hTERT mRNA基因表達(dá)及端粒酶活性均出現(xiàn)不同程度的下降。與空白對(duì)照組相比,整倍體組hTERT mRNA基因表達(dá)在250 μmol/L處具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05);端粒酶活性表達(dá)在100、250 μmol/L處具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。與空白對(duì)照組相比,非整倍體組hTERT mRNA基因表達(dá)及端粒酶活性在100、250 μmol/L處均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。非整倍體組hTERT mRNA基因及端粒酶活性下降程度較整倍體組更明顯,整倍體組細(xì)胞在100、250 μmol/L處的hTERT mRNA基因下降率分別為5%、32%,端粒酶活性下降率為14.69%、25.40%;非整倍體組細(xì)胞在100、250 μmol/L處的hTERT mRNA基因下降率分別為38.46%、51.28%,端粒酶活性下降率為17.00%、54.27%,兩組細(xì)胞hTERT mRNA基因下降率在100、250 μmol/L處具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。兩組細(xì)胞端粒酶活性下降率在250 μmol/L處具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。見圖3。
圖3 hTERT基因表達(dá)及端粒酶活性;注:A:不同濃度AZT作用后hTERT基因表達(dá)情況;B:不同濃度AZT作用下端粒酶活性表達(dá)情況
非整倍體與腫瘤形成之間的關(guān)系一直以來備受關(guān)注,一些研究者認(rèn)為非整倍體只是腫瘤形成過程中的一個(gè)產(chǎn)物,另外一些研究者認(rèn)為非整倍體可以促進(jìn)腫瘤形成。Duesberg等[6]提出的非整倍體假說認(rèn)為,非整倍體可以促進(jìn)腫瘤形成,他認(rèn)為致癌物使細(xì)胞形成非整倍染色體,非整倍體導(dǎo)致有絲分裂相關(guān)基因異常表達(dá),產(chǎn)生異常數(shù)目的中心粒及異常比例的紡錘體。不均衡的紡錘體可引起有絲分裂過程中染色體的隨機(jī)獲得或丟失,非整倍染色體隨機(jī)分配到子代細(xì)胞中,經(jīng)過不斷的惡性循環(huán),非整倍體催化自身細(xì)胞核型的不斷變化及進(jìn)化,最終產(chǎn)生腫瘤細(xì)胞核型。大量研究發(fā)現(xiàn)非整倍體可以促進(jìn)腫瘤形成,具有3條8號(hào)染色體會(huì)促進(jìn)血液方面的腫瘤發(fā)生,25%的慢性粒細(xì)胞白血病及10%~15%的急性粒細(xì)胞白血病以及5%的急性淋巴細(xì)胞白血病患者都會(huì)出現(xiàn)3條8號(hào)染色體[7-9]。
研究表明一系列細(xì)胞壓力因子可以導(dǎo)致非整倍體的形成[10-11],Meena等[3]通過采用慢病毒敲除GJB3、RXFP1(LGR7)、OSBPL、STARD9等基因獲得非整倍體,這些基因與腫瘤形成及整倍體形成的相關(guān)通路有關(guān)[12-16]。Li等[17]通過運(yùn)用siRNA敲低MAD2L1獲得非整倍體,MAD2L1(MAD2)是紡錘體組裝檢查位點(diǎn)(SAC)的成分,SAC具有促使減數(shù)分裂過程中同源染色體或有絲分裂中姐妹染色單體間張力的形成[18]。如果SAC在有絲分裂過程中出現(xiàn)異常,則會(huì)導(dǎo)致染色體的錯(cuò)誤分離,形成非整倍體。既往研究中尚未有人采用鹽酸強(qiáng)力霉素誘導(dǎo)非整倍體,據(jù)相關(guān)報(bào)道表明,鹽酸強(qiáng)力霉素可能具有誘導(dǎo)非整倍體的作用,本研究就這一問題進(jìn)行嘗試,證實(shí)鹽酸強(qiáng)力霉素可以誘導(dǎo)非整倍體。我們就鹽酸強(qiáng)力霉素誘導(dǎo)非整倍體的機(jī)制進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),在撤藥后第3天,非整倍體細(xì)胞MAD2L1表達(dá)完全消失,表明鹽酸強(qiáng)力霉素能夠破壞SAC的成分MAD2L1,導(dǎo)致染色體的錯(cuò)誤分離,繼而形成非整倍體,而隨著撤藥時(shí)間的增加,細(xì)胞MAD2L1逐漸恢復(fù)正常,表明不健康的非整倍體細(xì)胞大量死亡,而存活下來的非整倍體則可以繼續(xù)生長(zhǎng)及增殖。與既往通過shRNA敲除相關(guān)基因或采用siRNA敲低MAD2等方法相比,采用藥物誘導(dǎo)非整倍體的方法操作簡(jiǎn)便,價(jià)格便宜,為之后非整倍體的獲得提供了一個(gè)簡(jiǎn)單易行的方法。
端粒酶由hTERT、端粒酶RNA組分、端粒酶相關(guān)蛋白組成,是一種核糖蛋白復(fù)合物,能以自身RNA為模板,合成端粒重復(fù)序列,將端粒DNA送至真核細(xì)胞染色體末端,使端粒延長(zhǎng)。hTERT在端粒酶的激活過程中起關(guān)鍵作用,端粒酶活性的表達(dá)與其密切相關(guān)[19]。研究表明,部分腫瘤細(xì)胞由于端粒酶的作用,能無限增殖,從而成為永生化細(xì)胞。Zhang等[20]通過在羊胚胎成纖維細(xì)胞中導(dǎo)入hTERT基因,可以使羊胚胎成纖維細(xì)胞獲得無限增殖,從而成為永生化細(xì)胞。Meena等[3]研究發(fā)現(xiàn),端粒酶可以拯救非整倍體誘導(dǎo)的端粒DNA的損傷、p53的激活、細(xì)胞早衰和耗竭。而關(guān)于整倍體與非整倍體之間端粒酶活性及hTERT基因表達(dá)的差異及作用,尚未有人進(jìn)行相關(guān)研究,本研究發(fā)現(xiàn)非整倍體的端粒酶活性及hTERT基因表達(dá)明顯高于整倍體。本研究分別在第6、8、11天檢測(cè)hTERT基因及端粒酶活性,發(fā)現(xiàn)非整倍體hTERT基因及端粒酶活性表達(dá)逐漸升高,表明非整倍體的形成是一個(gè)不斷變化及進(jìn)化的過程,在撤藥初期,不健康的非整倍體大量死亡,一部分非整倍體逃脫P(yáng)53介導(dǎo)的凋亡作用,催化自身功能的不斷進(jìn)化,某些細(xì)胞產(chǎn)生促進(jìn)腫瘤形成的核型,從而發(fā)揮促腫瘤形成作用。
AZT是應(yīng)用最廣的一種端粒酶抑制劑,能阻斷端粒復(fù)制模板與單核苷酸之間的結(jié)合,使腫瘤細(xì)胞維持端粒長(zhǎng)度的機(jī)制遭到破壞,從而導(dǎo)致端粒隨著自身染色體復(fù)制而逐漸縮短,最終促進(jìn)腫瘤細(xì)胞發(fā)生衰老凋亡[21-26]。研究表明,AZT可以對(duì)多種腫瘤細(xì)胞的端粒酶活性產(chǎn)生抑制作用,干擾細(xì)胞的正常生長(zhǎng)及增殖[27-30]。本研究?jī)山M細(xì)胞加入AZT后,hTERT基因表達(dá)及端粒酶活性均出現(xiàn)不同程度下降,表明AZT可以下調(diào)hTERT基因表達(dá)及端粒酶活性,非整倍體組細(xì)胞下降程度較整倍體明顯,表明非整倍體對(duì)AZT更敏感。
綜上所述,鹽酸強(qiáng)力霉素可以通過破壞紡錘體組裝檢查位點(diǎn)(SAC)的成分MAD2L1來誘導(dǎo)非整倍體形成,非整倍體細(xì)胞的端粒酶活性及hTERT基因表達(dá)高于整倍體,加入AZT后,整倍體細(xì)胞和非整倍體細(xì)胞hTERT基因表達(dá)及端粒酶活性均出現(xiàn)不同程度下降,非整倍體下降程度較整倍體明顯,非整倍體對(duì)AZT更敏感。而關(guān)于AZT對(duì)整倍體及非整倍體細(xì)胞功能的影響及其機(jī)制尚有待進(jìn)一步研究。
1 Kumar M, Lechel A, Gunes C. Telomerase: the Devil inside[J]. Genes (Basel), 2016, 7(8): 245-250.
2 Effros RB. Telomere/telomerase dynamics within the human immune system: effect of chronic infection and stress[J]. Exp Gerontol, 2011, 46(2-3): 135-140.
3 Meena JK, Cerutti A, Beichler C, et al. Telomerase abrogates aneuploidy-induced telomere replication stress, senescence and cell depletion[J]. EMBO J, 2015, 34(10): 1371-1384.
4 Shekhani MT, Barber JR, Bezerra SM, et al. High-resolution telomere fluorescence in situ hybridization reveals intriguing anomalies in germ cell tumors[J]. Hum Pathol, 2016, 54(23): 106-112.
5 Santaguida S, Amon A. Short-and long-term effects of chromosome mis-segregation and aneuploidy[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2015, 16(8): 473-485.
6 Duesberg P, Li R, Fabarius A, et al. Aneuploidy and cancer: from correlation to causation[J]. Contrib Microbiol, 2006, 13(5): 16-44.
7 Wang JH, Yao B, Guo M, et al. Characteristics and Prognosis of 24 Cases of Primary Acute Myeloid Leukemia with Trisomy 8[J]. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi, 2016, 24(3): 655-661.
8 Paulsson K, Johansson B. Trisomy 8 as the sole chromosomal aberration in acute myeloid leukemia and myelodysplastic syndromes[J]. Pathol Biol (Paris), 2007, 55(1): 37-48.
9 Jones L, Wei G, Sevcikova S, et al. Gain of MYC underlies recurrent trisomy of the MYC chromosome in acute promyelocytic leukemia[J]. J Exp Med, 2010, 207(12): 2581-2594.
10 Duijf PH, Benezra R. The cancer biology of whole-chromosome instability[J]. Oncogene, 2013, 32(40): 4727-4736.
11 Orr B, Compton DA. A double-edged sword: how oncogenes and tumor suppressor genes can contribute to chromosomal instability[J]. Front Oncol, 2013, 3(7): 164.
12 Lehto M, Mayranpaa MI, Pellinen T, et al. The R-Ras interaction partner ORP3 regulates cell adhesion[J]. J Cell Sci, 2008, 121(Pt 5): 695-705.
13 Feng S, Agoulnik IU, Truong A, et al. Suppression of relaxin receptor RXFP1 decreases prostate cancer growth and metastasis[J]. Endocr Relat Cancer, 2010, 17(4): 1021-1033.
14 Bathgate RA, Halls ML, van der Westhuizen ET, et al. Relaxin family peptides and their receptors[J]. Physiol Rev, 2013, 93(1): 405-480.
15 Zhang D, Chen C, Li Y, et al. Cx31.1 acts as a tumour suppressor in non-small cell lung cancer (NSCLC) cell lines through inhibition of cell proliferation and metastasis[J]. J Cell Mol Med, 2012, 16(5): 1047-1059.
16 King TJ, Lampe PD. The gap junction protein connexin32 is a mouse lung tumor suppressor[J]. Cancer Res, 2004, 64(20): 7191-7196.
17 Li M, Fang X, Baker DJ, et al. The ATM-p53 pathway suppresses aneuploidy-induced tumorigenesis[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2010, 107(32): 14188-14193.
18 Vleugel M, Hoek TA, Tromer E, et al. Dissecting the roles of human BUB1 in the spindle assembly checkpoint[J]. J Cell Sci, 2015, 128(16): 2975-2982.
19 Avin BA, Umbricht CB, Zeiger MA. Human telomerase reverse transcriptase regulation by DNA methylation, transcription factor binding and alternative splicing (Review) [J]. Int J Oncol, 2016, 49(6): 2199-2205.
20 Zhang N, Li J, Zhong X, et al. Reversible immortalization of sheep fetal fibroblast cells by tetracycline-inducible expression of human telomerase reverse transcriptase[J]. Biotechnol Lett, 2016, 38(8): 1261-1268.
21 Rotella DP. The Critical Role of Organic Chemistry in Drug Discovery [J]. ACS Chem Neurosci, 2016, 7(10): 1315-1316.
22 Ganellin CR, Mitscher LA, Clement B, et al. University education of medicinal chemists: comparison of eight countries[J]. Eur J Med Chem, 2000, 35(1): 163-174.
23 MacCoss M, Baillie TA. Organic chemistry in drug discovery[J]. Science, 2004, 303(5665): 1810-1813.
24 Itoh Y, Suzuki T. “Drug” Discovery with the Help of Organic Chemistry[J]. Yakugaku Zasshi, 2017, 137(3): 283-292.
25 Pors K, Goldberg FW, Leamon CP, et al. The changing landscape of cancer drug discovery: a challenge to the medicinal chemist of tomorrow[J]. Drug Discov Today, 2009, 14(21-22): 1045-1050.
26 Rafferty MF. No Denying It: Medicinal Chemistry Training Is in Big Trouble[J]. J Med Chem, 2016, 59(24): 10859-10864.
27 Mariano D, de Souza D, Meinerz DF, et al. The potential toxicological insights about the anti-HIV drug azidothymidine-derived monoselenides in human leukocytes: Toxicological insights of new selenium-azidothymidine analogs[J]. Hum Exp Toxicol, 2016, 7(9): 467-477.
28 Armando RG, Gomez DM, Gomez DE. AZT exerts its antitumoral effect by telomeric and non-telomeric effects in a mammary adenocarcinoma mode[J]l. Oncol Rep, 2016, 36(5): 2731-2736.
29 Dwyer JM, Liu JP. Ets2 transcription factor, telomerase activity and breast cancer[J]. Clin Exp Pharmacol Physiol, 2010, 37(1): 83-87.
30 Martínez P, Blasco MA. Telomeric and extra-telomeric roles for telomerase and the telomere-binding proteins[J]. Nat Rev Cancer, 2011, 11(3): 161-176.