李春龍
(成都農(nóng)業(yè)科技職業(yè)學(xué)院現(xiàn)代農(nóng)業(yè)分院,四川成都 611130)
目前,我國受重金屬污染的耕地面積近2 000萬hm2,約占耕地總面積的1/5,重金屬污染是當(dāng)今污染面積最廣、危害最大的環(huán)境問題之一,汞(Hg)這種毒性極強(qiáng)的重金屬造成的污染正在受到全球關(guān)注[1]。汞進(jìn)入農(nóng)田后主要沉積在土壤表層,大部分以HgCl2形態(tài)進(jìn)入土壤的Hg都可被土壤中的有機(jī)質(zhì)和黏土礦物吸附,在土壤中的移動性很小[2]。汞可抑制植物細(xì)胞分裂和根系伸長,刺激和抑制一些酶的活性[3],植物受汞污染時間越長,傷害越嚴(yán)重,最后可導(dǎo)致植物枯萎死亡[4]。有關(guān)汞對植物生長發(fā)育影響的研究很多[5-6],而有關(guān)汞脅迫對幼苗根際土壤酶活性、土壤微生物數(shù)量影響的相關(guān)研究很少。因此,本研究分析不同濃度Hg2+對蘿卜種子萌發(fā)、幼苗根際土壤酶活性及土壤微生物數(shù)量的影響,旨在揭示Hg2+脅迫下蘿卜幼苗根際微生物區(qū)系和酶活性的變化規(guī)律。
參試的蘿卜種子品種為滿身紅,購于四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院。供試的HgCl2為分析純,購自泉州萬眾化工有限公司。
1.2.1 室內(nèi)檢測(即種子萌發(fā)試驗) 參照李春龍的方法[7],挑選粒大、飽滿、大小一致的蘿卜種子,用蒸餾水清洗,晾干后備用。先用5.25 g/L NaClO溶液對受試的蘿卜種子進(jìn)行消毒,時間為15 min,然后用蒸餾水清洗4 次,每次清洗1 min;將蘿卜種子放置在直徑為9 cm的皮氏培養(yǎng)皿中,內(nèi)墊2層濾紙,每個培養(yǎng)皿內(nèi)放30粒蘿卜種子,分別將8 mL不同濃度的HgCl2溶液(處理濃度分別為0、12.5、25.0、50.0、100.0、150.0和200.0 mg/L,以Hg2+濃度計)注入培養(yǎng)皿中,對照為蒸餾水,每個處理3次重復(fù)。然后將培養(yǎng)皿放置在恒溫恒濕培養(yǎng)箱(25±1)℃ 內(nèi),于黑暗條件下進(jìn)行種子萌發(fā)試驗。待蘿卜種子萌芽3 d后記錄其萌發(fā)的種子數(shù),計算蘿卜種子的發(fā)芽率,記錄完測定所有萌發(fā)幼苗的根長、苗長,求其平均值。
1.2.2 幼苗盆栽試驗 2013年5月上旬取盆栽土(土壤取自成都農(nóng)業(yè)科技職業(yè)學(xué)院校外實訓(xùn)基地),取回后先過2遍 2 cm 篩,篩去較大的石塊及粗枝等,再過細(xì)篩,用350 g 45%對二甲胺基苯重氮磺酸鈉(俗稱敵克松)進(jìn)行土壤消毒處理,然后將土混勻,最后隨機(jī)裝盆。每盆土均裝至花盆的2/3處,每盆裝土10 kg,每盆(上口徑 28 cm,深25 cm)播蘿卜種子10粒。待蘿卜幼苗生長約1個月后,挑選長勢一致的蘿卜壯苗進(jìn)行處理。用30 mL不同濃度的Hg2+(12.5、25.0、50.0、100.0、150.0和200.0 mg/L)溶液澆灌豌豆幼苗,每個處理4次重復(fù),以等量的蒸餾水處理作為對照(即0 mg/L)。此后每隔10 d澆30 mL Hg2+溶液處理蘿卜幼苗,處理1個月后取蘿卜幼苗根際土,用土鉆鉆取深度20 cm、質(zhì)量約300 g的蘿卜幼苗根際土,輕輕抖動后仍然黏附在蘿卜幼苗根系上的土壤用于根際微生物數(shù)量的測定,裝袋、封口并作好標(biāo)簽,立即帶回實驗室進(jìn)行分析處理,本操作參照韓春梅等的方法[8]實施。
1.3.1 蘿卜種子萌發(fā)指標(biāo)測定方法 蘿卜幼苗根長、苗長用直尺測定。
1.3.2 土壤酶及土壤酸價度測定方法 各土壤酶活性的測定均參照關(guān)松蔭的方法[9]。土壤反硝化酶活性采用硝態(tài)氮剩余量法測定,以單位質(zhì)量、單位時間生成的氨態(tài)氮(NH3-N)計;纖維素酶活性采用硝基水楊酸比色法測定,以單位質(zhì)量、單位時間土壤葡萄糖的量計;脲酶、蛋白酶、多酚氧化酶及蔗糖酶活性的測定均采用比色法,脲酶活性以NH3-N計,蛋白酶活性以單位質(zhì)量、單位時間土壤氨基酸(甘氨酸)的量計,多酚氧化酶活性以單位質(zhì)量、單位時間(2 h)土壤沒食子酸的量計,蔗糖酶活性以單位質(zhì)量、單位時間土壤葡萄糖的量計。
1.3.3 土壤微生物分析 土壤微生物采用平板涂抹法[10]測定,細(xì)菌培養(yǎng)采用牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基,真菌培養(yǎng)采用馬丁氏培養(yǎng)基,放線菌培養(yǎng)采用改良的高氏1號培養(yǎng)基。
采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行單因素方差分析、LSD和相關(guān)性分析(α=0.05)。
由表1可見,隨著Hg2+濃度的增大,蘿卜種子萌發(fā)及幼苗生長均不同程度地受到抑制。當(dāng)Hg2+濃度達(dá)到50.0 mg/L時,蘿卜種子的發(fā)芽率較對照顯著下降,降低了31.60%;蘿卜幼苗的根長和苗長均在Hg2+濃度達(dá)到12.5 mg/L時較對照顯著受到抑制,分別較對照下降了22.11%和7.41%。
由表2可見,所測6種土壤酶活性均隨著Hg2+濃度的增加呈遞減趨勢, 其中土壤脲酶、纖維素酶、多酚氧化酶活性均在Hg2+濃度達(dá)到25.0 mg/L時顯著受到抑制,分別較對照下降了32.00%、25.68%、27.87%;土壤反硝化酶活性在Hg2+濃度最低時(即12.5 mg/L)就顯著受到抑制,降低了24.78%;土壤蛋白酶活性在Hg2+濃度達(dá)到100.0 mg/L時較對照顯著受到抑制,降低了13.33%;土壤蔗糖酶活性在Hg2+濃度最大時(即200.0 mg/L)才較對照顯著受到抑制,降低了25.07%。由此可見,土壤反硝化酶活性對Hg2+脅迫最敏感。
表1不同Hg2+濃度對蘿卜種子萌發(fā)特性的影響
注:表中數(shù)值為“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”(n=3);同列數(shù)據(jù)后標(biāo)有不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。表2同。
表2不同Hg2+濃度對蘿卜幼苗根際土壤酶活性的影響
由圖1可知,隨著Hg2+濃度的增加,蘿卜幼苗根際土壤中細(xì)菌、真菌和放線菌的數(shù)量均呈遞減的趨勢。與對照相比,Hg2+濃度在50.0 mg/L時較對照顯著降低了蘿卜幼苗根際土壤細(xì)菌數(shù)量,降低了54.18%;Hg2+濃度僅在最低時(即 12.5 mg/L)就較對照顯著抑制了蘿卜幼苗根際土壤內(nèi)真菌、放線菌的數(shù)量,分別較對照降低了25.07%、24.74%。
由表3可知,在不同Hg2+濃度的處理下,蘿卜幼苗根際細(xì)菌數(shù)量與土壤蔗糖酶活性不呈顯著正相關(guān),其相關(guān)系數(shù)為0.216;蘿卜幼苗根際細(xì)菌、真菌、放線菌數(shù)量均與所測土壤酶活性呈極顯著正相關(guān)關(guān)系。其中,蘿卜幼苗根際真菌數(shù)量與根際土壤脲酶活性的相關(guān)系數(shù)最大,為0.931。
表3土壤微生物數(shù)量與土壤酶活性的相關(guān)關(guān)系
注:“**”表示在0.01水平上顯著相關(guān);“*”表示在0.05水平上顯著相關(guān)。
本研究表明,隨著Hg2+濃度的增加,蘿卜種子萌發(fā)及幼苗生長均受到了抑制。這一研究結(jié)果與鐘士傳的研究結(jié)果[1]一致,不同的只是Hg2+濃度的設(shè)置。
本研究表明,隨著Hg2+濃度的增大,6種所測土壤酶活性均呈遞減的趨勢,這一研究結(jié)果與高大翔等的研究結(jié)果[11]一致,不同的只是Hg2+濃度的設(shè)置。
隨著Hg2+濃度的增加,蘿卜幼苗根際土壤中細(xì)菌、真菌和放線菌的數(shù)量均呈遞減的趨勢, 這一研究結(jié)果與荊延德等的研究結(jié)果[12]不一致,其研究結(jié)果表明,低濃度的Hg2+會促進(jìn)土壤微生物數(shù)量的增加,這可能歸因于Hg2+濃度的設(shè)置不同以及受試植物的種類不同。
本研究表明,在不同濃度的Hg2+處理下,蘿卜幼苗根際細(xì)菌、真菌、放線菌數(shù)量均與所測土壤酶活性呈極顯著正相關(guān)關(guān)系(除蘿卜幼苗根際細(xì)菌數(shù)量與土壤蔗糖酶活性呈不顯著正相關(guān)外),說明Hg2+的處理改變了土壤微生物區(qū)系,進(jìn)而影響土壤酶活性,使得土壤環(huán)境條件向著不利于蘿卜植株的生長方向演變。本研究結(jié)果同時也證實了Aon等的理論,即特定的土壤酶活性與細(xì)菌、真菌等類群密切相關(guān)[13]。
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