王凌晞,康 涵,呂康模
成都市婦女兒童中心醫(yī)院 產(chǎn)前診斷中心,四川成都 610091
TORCH是由弓形蟲(chóng)(toxoplasma,TOX)、其他病原微生物(others,O)、風(fēng)疹病毒(rubella virus,RV)、巨細(xì)胞病毒 (cytomegalo virus,CMV)、單純皰疹Ⅰ/Ⅱ型(herpes simplex virus,HSV)組成的病原微生物的縮寫(xiě),是胚胎期感染引起先天性異常最常見(jiàn)的因素。目前常用免疫球蛋白G(IgG)和免疫球蛋白M(IgM)作為T(mén)ORCH感染診斷重要依據(jù)。感染早期IgM可迅速升高,并持續(xù)2 ~ 3個(gè)月,隨后IgG升高,可維持終生。故常用IgM作為早期感染指標(biāo),IgG作為曾經(jīng)或既往感染指標(biāo)[1]。TORCH宮內(nèi)感染可引起胎兒畸形、發(fā)育遲緩、流產(chǎn)、死胎、中樞神經(jīng)系統(tǒng)損害等,受感染的孕婦一般無(wú)特異表現(xiàn),癥狀輕微甚至沒(méi)有臨床癥狀,一旦確定感染便可導(dǎo)致不良母嬰結(jié)局。2015年十八屆五中全會(huì)提出實(shí)施全面二孩政策以來(lái),我國(guó)又迎來(lái)新一輪的生育高峰,其中包括很多高齡孕婦。因此,應(yīng)重視育齡婦女孕前和孕期的TORCH檢查,評(píng)估其免疫狀態(tài),早發(fā)現(xiàn)早處理,實(shí)現(xiàn)優(yōu)生優(yōu)育,提高人口素質(zhì)。本研究對(duì)我院近兩年進(jìn)行TORCH檢查的育齡婦女進(jìn)行分析,為臨床TORCH感染提供參考。
1 資料來(lái)源 以我院2015年7月- 2017年7月40 986例進(jìn)行TORCH檢查的孕前和孕期育齡女性為研究對(duì)象,年齡18 ~ 45歲,平均年齡27.29歲。依照年齡分為低齡組(18 ~ 35歲)37 502例和高齡組(>35歲)3 484例。
2 儀器與試劑 全自動(dòng)化學(xué)發(fā)光分析儀(意大利DiaSorin,LIAISON),LIAISON配套試劑:包含病毒抗原磁微粒的試劑盒及相應(yīng)質(zhì)控品,光檢測(cè)試劑(319101),反應(yīng)杯(319130),洗液(319100),清洗試劑(310995),啟動(dòng)試劑(319102)。
3 TORCH檢測(cè) 采集受檢者外周靜脈血3 ml,離心后分離血清4℃保存,48 h內(nèi)檢測(cè)。采用化學(xué)發(fā)光免疫分析法定量檢測(cè)標(biāo)本中的TORCH特異性IgG和IgM抗體。病毒抗原被包被在磁微粒上,異魯米諾衍生物結(jié)合小鼠單克隆抗體形成復(fù)合物。反應(yīng)杯中加入樣本或質(zhì)控品,加入樣本稀釋液,加入磁微粒,溫育(樣本中抗體與磁微粒結(jié)合),加入異魯米諾復(fù)合物,溫育,與已結(jié)合在磁微粒上的待測(cè)抗體反應(yīng),加入啟動(dòng)試劑,引發(fā)瞬時(shí)化學(xué)發(fā)光反應(yīng),光電倍增器檢測(cè)光信號(hào),相對(duì)光單位(RLU)表示結(jié)合物數(shù)量,可代表待測(cè)樣本特異性抗體濃度。實(shí)驗(yàn)過(guò)程中所有試劑即開(kāi)即用,每次實(shí)驗(yàn)前都進(jìn)行光路檢測(cè)校準(zhǔn)和質(zhì)控。
4 陽(yáng)性判讀 TOX-IgG≥8 IU/ml,TOX-IgM≥8 IU/ml為陽(yáng)性;RV-IgG≥11 IU/ml,RV-IgM≥25 AU/ml為陽(yáng)性;CMV-IgG≥14 U/ml,CMV-IgM≥22 U/ml為陽(yáng)性;HSVⅠ/Ⅱ-IgG≥1.1 Index,HSVⅠ/Ⅱ-IgM≥1.51 Index判為陽(yáng)性。
5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS17.0統(tǒng)計(jì)軟件分析,計(jì)數(shù)資料以率表示,組間比較采用χ2檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1 TORCH-IgM陽(yáng)性率 40 986例中檢測(cè)TOX-IgM共40 726例,陽(yáng)性率1.02%;RV-IgM共40 626例,陽(yáng)性率1.10%;CMV-IgM共40 587例,陽(yáng)性率0.40%;HSVⅠ/Ⅱ-IgM共40 986例,陽(yáng)性率9.50%。HSVⅠ/Ⅱ-IgM陽(yáng)性率最高,CMVIgM陽(yáng)性率最低。不同年齡組TORCH-IgM陽(yáng)性率比較,低齡組HSVⅠ/Ⅱ-IgM陽(yáng)性率高于高齡組(P<0.05)。兩年齡組TOX-IgM、RV-IgM、CMVIgM陽(yáng)性率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。見(jiàn)表1。
2 TORCH-IgG陽(yáng)性率 40 986例中檢測(cè)TOX-IgG共40 726例,陽(yáng)性率為5.28%;RV-IgG共40 626例陽(yáng)性率為79.03%;CMV-IgG共40 587例,陽(yáng)性率為96.00%;HSVⅠ/Ⅱ-IgG共40 986例,陽(yáng)性率為83.96%。CMV-IgG陽(yáng)性率最高,TOX-IgG陽(yáng)性率最低。不同年齡組TORCH-IgG陽(yáng)性率比較,低齡組RV-IgG陽(yáng)性率高于高齡組(P<0.05);而高齡組HSVⅠ/Ⅱ-IgG、CMV-IgG陽(yáng)性率高于低齡組(P<0.05)。兩年齡組TOX-IgG陽(yáng)性率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。見(jiàn)表2。
表1 TORCH各項(xiàng)IgM檢出率比較Tab. 1 Comparison of seropositive rates of TORCH-IgM test (%, n/N)
表2 TORCH各項(xiàng)IgG檢出率比較Tab. 2 Comparison of seropositive rates in TORCH-IgG test (%, n/N)
胎兒先天性異常中因孕期不良接觸感染占2% ~3%,最常見(jiàn)的為T(mén)ORCH感染。而女性懷孕后一旦發(fā)生宮內(nèi)感染可引起流產(chǎn)、死胎、早產(chǎn)、畸形、發(fā)育遲緩以及出生后多個(gè)系統(tǒng)器官損害等[2]。大多數(shù)TORCH感染的孕婦只有輕微癥狀甚至沒(méi)有表現(xiàn),但會(huì)導(dǎo)致嚴(yán)重后果,如已經(jīng)造成胎兒損傷即使對(duì)母親治療也不能改變胎兒預(yù)后。因此,一旦發(fā)現(xiàn)感染,及時(shí)控制母體感染和胎兒監(jiān)測(cè)十分重要;另外了解TORCH感染情況也有助于醫(yī)生為已感染者胎兒的潛在結(jié)局提供咨詢。
本研究顯示,TORCH各項(xiàng)IgM檢出率中,HSVⅠ/Ⅱ-IgM陽(yáng)性率最高(9.50%),與文獻(xiàn)報(bào)道基本一致[3-4]。而HSVⅠ/Ⅱ-IgG陽(yáng)性率為83.96%,高于文獻(xiàn)報(bào)道的67.21%[4]。一般認(rèn)為HSV有兩型,HSVⅠ型主要引起眼睛、口腔、皮膚等處的黏膜感染,而HSVⅡ型主要引起生殖器部位感染。文獻(xiàn)報(bào)道我國(guó)成人HSV-IgG抗體陽(yáng)性率約95%,其中HSVⅠ型既往感染導(dǎo)致占70% ~ 80%,HSVⅡ型既往感染導(dǎo)致占20% ~ 30%[5]。與未感染正常孕婦相比,生殖道皰疹感染的孕婦流產(chǎn)和早產(chǎn)概率增加2 ~ 3倍,但孕期HSV感染大多為既往感染,且上行感染垂直傳播胎兒的風(fēng)險(xiǎn)相對(duì)較小,新生兒感染主要為分娩時(shí)經(jīng)產(chǎn)道接觸感染。我院進(jìn)行HSV檢測(cè)的40 986例育齡婦女中,雖HSVⅠ/Ⅱ-IgM陽(yáng)性率最高(9.50%),但一般伴隨HSVⅠ/Ⅱ-IgG陽(yáng)性,且在9.50%陽(yáng)性人群PCR檢測(cè)中HSVⅠ/Ⅱ-DNA陽(yáng)性者約為1%,并且生殖道一般伴隨有典型皰疹。故HSVⅠ/Ⅱ-IgM陽(yáng)性婦女應(yīng)于孕晚期再次檢測(cè)HSVⅠ/Ⅱ-IgG+IgM和HSVⅠ/Ⅱ-DNA,對(duì)于陽(yáng)性者行抗病毒治療,DNA拷貝數(shù)偏高或生殖道癥狀典型時(shí)應(yīng)由醫(yī)生根據(jù)各項(xiàng)結(jié)果和孕婦身體狀態(tài)評(píng)估是否剖宮產(chǎn),從而減少分娩時(shí)新生兒感染。
本研究結(jié)果顯示CMV-IgM檢出率最低(0.40%),而CMV-IgG檢出率最高(96.00%)。CMV-IgG檢出率接近非洲和拉丁美洲,高于歐洲和美國(guó)[2]。CMV一般通過(guò)密切接觸受感染者的血液、乳汁、尿液、精液等傳播,并且有28 ~ 60 d的潛伏期。大多數(shù)人在兒童或者成人期間首次感染,故而CMV-IgG檢出率最高。表明我國(guó)CMV原發(fā)感染少見(jiàn),以復(fù)發(fā)感染為主。文獻(xiàn)報(bào)道在血清學(xué)檢查陰性的孕婦中,2.5% ~ 6.8%可能感染巨細(xì)胞病毒,24%的感染者可能將病毒傳染給胎兒[6]。其中極少部分通過(guò)胎盤(pán)傳播,大部分是經(jīng)產(chǎn)道分娩時(shí)或母乳喂養(yǎng)感染[7],圍生期感染主要為后者,較少有神經(jīng)系統(tǒng)異常[8]。也有文獻(xiàn)報(bào)道在妊娠晚期感染對(duì)胎兒的危害與孕早期前3個(gè)月感染一樣,可造成部分流產(chǎn)或者死胎,而存活的新生兒中80%有智力低下、神經(jīng)性耳聾等[9]。在發(fā)達(dá)國(guó)家,CMV是最主要、最常見(jiàn)的先天性感染病原體,流行率為0.64%[10-11],在英國(guó)部分專(zhuān)家認(rèn)為懷孕中CMV檢測(cè)是必要的[12]。而國(guó)內(nèi)報(bào)道顯示新生兒CMV先天性感染與孕婦體內(nèi)CMV活化和CMV-IgG再次升高有密切關(guān)系[13]。孕早期和孕晚期都應(yīng)進(jìn)行CMV-DNA病毒復(fù)制監(jiān)測(cè)[14]。因此,建議孕晚期也應(yīng)進(jìn)行CMV-IgG和CMV-IgM檢查,且對(duì)于復(fù)發(fā)感染的病人,CMVIgG升高4倍以上有參考意義,必要時(shí)檢查孕婦血液和尿液中的巨細(xì)胞病毒DNA以輔助診斷。
弓形蟲(chóng)是一種寄生在細(xì)胞內(nèi)的人和動(dòng)物共患的寄生蟲(chóng),一般由于食用受感染或污染的食物、接觸牲畜而感染。本研究TOX-IgM陽(yáng)性率為1.02%,低于北京地區(qū)5%[15],接近于龍彥等[4]和石偉娟等[3]的報(bào)道,與張婷等[16]的報(bào)道一致。我國(guó)2005年寄生蟲(chóng)感染現(xiàn)狀調(diào)查顯示TOX-IgG陽(yáng)性率為7.88%,高于本研究的5.28%,可能是由于隨著時(shí)間和二胎政策開(kāi)放,孕婦受教育程度提高,優(yōu)生優(yōu)育宣傳普及,更注重懷孕后寵物飼養(yǎng)和飲食,降低了感染率;還可能與之前TORCH檢測(cè)方法ELISA法居多,而化學(xué)發(fā)光法較ELISA更穩(wěn)定,特異性、準(zhǔn)確性更高有關(guān)。
風(fēng)疹病毒是單鏈RNA病毒,成人感染臨床癥狀較輕,孕早期原發(fā)感染可引起嚴(yán)重后果,且損害是永久性的,如先天性風(fēng)疹綜合征(白內(nèi)障、神經(jīng)系統(tǒng)疾病、心臟病、耳聾等),且孕早期(9周內(nèi))感染風(fēng)險(xiǎn)最高(85%左右),隨著孕周增大,風(fēng)險(xiǎn)降低,9 ~ 12周降至52%,16周后更低[17]。RV-IgM檢出率1.10%,低于龍彥等[4]和石偉娟等[3]的報(bào)道。RV-IgG陽(yáng)性率(79.03%)接近于文獻(xiàn)報(bào)道[3-4,18]。雖然孕期感染風(fēng)疹病毒后果嚴(yán)重,但孕期初次感染孕婦較少,對(duì)于懷孕前RV-IgG陰性的婦女應(yīng)接種疫苗,且接種成功3個(gè)月后再備孕以降低感染率和出生缺陷率。
不同年齡組TORCH-IGM檢測(cè)各項(xiàng)目陽(yáng)性率雖有差異,但TOX-IgM、CMV-IgM和RV-IgM在不同年齡組的差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。而HSVⅠ/Ⅱ-IgM陽(yáng)性率18 ~ 35歲年齡組高于>35歲年齡組,可能與HSV病毒傳播方式有關(guān)(主要依靠性接觸傳播)。應(yīng)加強(qiáng)低齡婦女HSVⅠ/Ⅱ-IgM孕前檢測(cè)和預(yù)防HSV感染宣傳教育。不同年齡組TORCH-IgG檢測(cè)中,高齡組CMV-IgG和HSVⅠ/Ⅱ-IgG高于低齡組,可能由于年齡大,接觸病毒暴露時(shí)間長(zhǎng)于低齡組,而RV-IgG陽(yáng)性率低于低齡組,可能與低齡組孕婦接受衛(wèi)生宣傳教育接種風(fēng)疹病毒疫苗有關(guān)。
綜上所述,孕婦為T(mén)ORCH感染高危人群,感染癥狀隱匿且感染后果嚴(yán)重,應(yīng)加強(qiáng)衛(wèi)生宣傳力度,盡量孕前檢測(cè),以早發(fā)現(xiàn)、早干預(yù),提高人口素質(zhì),減少不良妊娠。
1 梁宇, 馬琳娜. 杭州地區(qū)育齡婦女和新生兒TORCH的檢測(cè)結(jié)果分析[J]. 中國(guó)衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志, 2017, 27(9): 1274-1275.
2 De Jong EP, Vossen AC, Walther FJ, et al. How to use... neonatal TORCH testing[J]. Arch Dis Child Educ Pract Ed, 2013, 98(3):93-98.
3 石偉娟, 徐秀葉, 潘繼美, 等. 孕婦TORCH感染篩查結(jié)果分析[J]. 中華醫(yī)院感染學(xué)雜志, 2015, 25(4): 925-927.
4 龍彥, 趙曉濤, 孫媛媛, 等. 北京地區(qū)育齡期婦女TORCH篩查結(jié)果調(diào)查分析[J]. 中國(guó)全科醫(yī)學(xué), 2014, 17(24): 2851-2854.
5 章錦曼, 阮強(qiáng), 張寧, 等. TORCH感染篩查、診斷與干預(yù)原則和工作流程專(zhuān)家共識(shí)[J]. 中國(guó)實(shí)用婦科與產(chǎn)科雜志, 2016, 32(6): 535-540.
6 Stegmann BJ, Carey JC. TORCH Infections. Toxoplasmosis,Other (syphilis, varicella-zoster, parvovirus B19), Rubella,Cytomegalovirus (CMV), and Herpes infections[J]. Curr Womens Health Rep, 2002, 2(4): 253-258.
7 Cline MK, Bailey-Dorton C, Cayelli M. Maternal infections:diagnosis and management[J]. Prim Care, 2000, 27(1): 13-33.
8 陳延斌, 呂祺. TORCH抗體檢測(cè)及其對(duì)優(yōu)生優(yōu)育的意義[J].中國(guó)優(yōu)生與遺傳雜志, 2011, 19(3): 107.
9 Guerra B, Lazzarotto T, Quarta S, et al. Prenatal diagnosis of symptomatic congenital cytomegalovirus infection[J]. Am J Obstet Gynecol, 2000, 183(2): 476-482.
10 Kenneson A, Cannon MJ. Review and meta-analysis of the epidemiology of congenital cytomegalovirus (CMV) infection[J].Rev Med Virol, 2007, 17(4): 253-276.
11 Manicklal S, Emery VC, Lazzarotto T, et al. The "silent" global burden of congenital cytomegalovirus[J]. Clin Microbiol Rev,2013, 26(1): 86-102.
12 Abdel-Fattah SA, Bhat A, Illanes S, et al. TORCH test for fetal medicine indications: only CMV is necessary in the United Kingdom[J]. Prenat Diagn, 2005, 25(11): 1028-1031.
13 王菊英, 姚琳芳, 李鋒. 新生兒先天性癥狀性巨細(xì)胞病毒感染與母源性原發(fā)及復(fù)發(fā)CMV感染的相關(guān)性[J]. 中國(guó)免疫學(xué)雜志,2017, 33(8): 1205-1208.
14 全軍計(jì)劃生育優(yōu)生優(yōu)育專(zhuān)業(yè)委員會(huì). 妊娠期ToRCH篩查指南[J]. 解放軍醫(yī)藥雜志, 2014, 26(1): 102-116.
15 閆存玲, 李志艷, 劉平, 等. 北京地區(qū)孕前及孕早期婦女TORCH感染情況調(diào)查[J]. 檢驗(yàn)醫(yī)學(xué), 2009, 24(11): 777-780.
16 張婷, 羅亮, 許飛, 等. 2461例孕婦TORCH感染情況及相關(guān)因素的調(diào)查研究[J]. 中華醫(yī)院感染學(xué)雜志, 2011, 21(11):2250-2252.
17 Vermillion MS, Klein SL. Pregnancy and infection : using disease pathogenesis to inform vaccine strategy[J]. NPJ Vaccines, 2018, 3:6.
18 Sharma HJ, Padbidri VS, Kapre SV, et al. Seroprevalence of rubella and immunogenicity following rubella vaccination in adolescent girls in India[J]. J Infect Dev Ctries, 2011, 5(12): 874-881.