• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      瓊膠酶研究進(jìn)展

      2018-07-10 12:34:00許競男
      智富時(shí)代 2018年4期
      關(guān)鍵詞:綜述

      許競男

      【摘 要】瓊膠酶(Agarase)是一類可以水解瓊膠和瓊脂糖的糖苷水解酶。根據(jù)作用方式的不同,瓊膠酶可以分為α-瓊膠酶和β-瓊膠酶。本文從瓊膠酶的分布來源、酶學(xué)性質(zhì),應(yīng)用等方面綜述了瓊膠酶的研究進(jìn)展。

      【關(guān)鍵詞】瓊膠酶;糖苷水解酶;綜述

      瓊膠是紅藻的主要成分,又稱瓊脂,是一種一種海洋粘性多糖。瓊膠的有兩種主要組成成分,分別是是瓊脂糖(agarose)和硫瓊脂(agaropectin)[1]。瓊脂糖是瓊膠的最主要的組成成分,它是由3,6-內(nèi)醚-α-L-半乳糖和β- D -半乳糖通過α-1,3-糖苷鍵和β-1,4-糖苷件交替連接而成的線性多糖。瓊膠酶(Agarase)是一類可以水解瓊膠和瓊脂糖的糖苷水解酶。

      一、瓊膠酶的分類方式

      瓊膠酶(Agarase)是一類可以水解瓊膠和瓊脂糖的糖苷水解酶。根據(jù)作用方式的不同,瓊膠酶可以分為α-瓊膠酶和β-瓊膠酶。α-瓊膠酶(EC3.2.1.158)能夠水解瓊脂糖的α-1,3-糖苷鍵,所得的產(chǎn)物是瓊寡糖(agarooligosaccharides)。β-瓊膠酶(EC3.2.1.81)水解能夠瓊脂糖的β-1,4-糖苷鍵,所得的產(chǎn)物是新瓊寡糖(neo-agarooligosaccharades) [2]。目前,有大量的β-瓊膠酶被發(fā)現(xiàn)和報(bào)道。而α-瓊膠酶只有幾個(gè)。

      瓊膠酶的另一種分類方式是根據(jù)糖苷水解酶家族分類。它的分類依據(jù)主要是糖苷水解酶的氨基酸序列相似性,并且結(jié)合了三維結(jié)構(gòu)、底物特異性和催化反應(yīng)機(jī)制的相似性[3]。這種分類方式有利于反應(yīng)糖苷水解酶的進(jìn)化關(guān)系,對新發(fā)現(xiàn)的酶的分類有很好的預(yù)見作用。

      根據(jù)上述分類方式,瓊膠酶被劃分在五個(gè)糖苷水解酶家族中。其中,β-瓊膠酶分別被劃分在GH-16、GH-50、GH-86和GH-118家族,而α-瓊膠酶均被劃分在GH-96家族。目前發(fā)現(xiàn)并報(bào)道的α-瓊膠酶均歸屬于GH-96家族。

      二、瓊膠酶的來源及性質(zhì)

      瓊膠酶的來源于微生物,這些微生物主要分布在海水[4-6]、海泥[7, 8]、海藻[9-11]、海螺[12],海腸[13]等海洋軟體動(dòng)物體內(nèi),還有少量來源于淡水[14]、紅樹林沉積物[15]、動(dòng)物和人體糞便[12, 16]等。細(xì)菌的種類廣泛,包括革蘭氏陰性菌,如太平洋火色桿菌[17],嗜冷單胞菌[8]等。也包括革蘭氏陽性細(xì)菌,如淡紫灰鏈霉菌[18]。

      (一)野生β-瓊膠酶的性質(zhì)

      目前,隨著1902年第一個(gè)β-瓊膠酶[7],來自假單胞菌Pseudomonas galatica,被Groleau等發(fā)現(xiàn)并報(bào)道,人們陸陸續(xù)續(xù)發(fā)現(xiàn)了一系列β-瓊膠酶,并進(jìn)行了系統(tǒng)地深入研究。

      在發(fā)現(xiàn)的野生β-瓊膠酶中,酶活性的差別很大。自1992年,土壤來源細(xì)菌Acinetobacter sp. AGLSL-1 β-瓊膠酶酶活達(dá)到397 U/ml[19]和1998年海洋來源的Pseudoalteromonas sp. β-瓊膠酶酶活達(dá)到292 U/mL[10],沒有發(fā)現(xiàn)酶活更高的野生β-瓊膠酶。

      瓊膠酶的底物瓊脂糖具有膠凝性,在低于38℃的溫度下,瓊脂糖溶液會開始凝固,所以,大部分的瓊膠酶的最適反應(yīng)溫度高于38℃。比如,來自Stenotrophomonas sp. Nta的嗜堿性瓊膠酶[20]和來自Agarivorans gilvus WH0801的瓊膠酶的最適反應(yīng)溫度為40℃。部分的β-瓊膠酶最適反應(yīng)溫度特殊。來自來自Flammeovirga Sp. OC4.的β-瓊膠酶Aga4436[17]的最適溫度范圍廣泛,30-80℃;來源Bacillus sp. BI-3的耐熱瓊膠酶,最適反應(yīng)溫度高達(dá)70 ℃,在80 ℃是仍然保留最大酶活力的50%[21];來自Gayadomonas joobiniege G7的瓊膠酶Aga J9[22]的最適反應(yīng)溫度為25℃,在5℃的時(shí)候,仍能保留最大酶活的80%。

      根據(jù)已經(jīng)報(bào)道的β-瓊膠酶相關(guān)文獻(xiàn),大部分的瓊膠酶最適反應(yīng)pH在6.5-7.5之間,pH接近中性。部分β-瓊膠酶的最適反應(yīng)pH比較特殊,來源Gayadomonas joobiniege G7的瓊膠酶Aga J9[22]的最適反應(yīng)pH為5;來源Stenotrophomonas sp. Nta的嗜堿性瓊膠酶最適反應(yīng)pH為10.0[20];有的β-瓊膠酶的pH耐受范圍較廣,來自Flammeovirga Sp. OC4.的β-瓊膠酶Aga4436[17]最適pH在5-10,來源于Agarivorans sp. LQ48的瓊膠酶AgaA,其最適反應(yīng)pH在3.0-11.0之間[23]。

      (二)野生α-瓊膠酶的性質(zhì)

      相比較進(jìn)行大量研究報(bào)道的β-瓊膠酶,目前已經(jīng)報(bào)道的α-瓊膠酶僅有3例。1993年,法國人Potin等[4]從交替假單胞菌Altermonas agarlytics GJ1B中分離出第一個(gè)α-瓊膠酶AgaA,SDS-PAGE電泳顯示其分子量為180 kDa,Native-PAGE電泳顯示其分子量約360 kDa,表明該酶存在二聚體現(xiàn)象產(chǎn)物為瓊四糖。2005年,第二個(gè)α-瓊膠酶AgaA33由Ohta等[8]自嗜冷單胞菌Thalassomonas sp. JAMB-A33里分離得到。SDS-PAGE電泳顯示其分子量為85 kDa,但是其理論分子量為180 kDa,存在二聚體現(xiàn)象,降解終產(chǎn)物瓊四糖。第三個(gè)α-瓊膠酶AgaD[24]是于2017年報(bào)道的,分離自海洋細(xì)菌Thalassomonas sp. LD5。SDS-PAGE電泳顯示其分子量為180 kDa,Native-PAGE電泳顯示其分子量約360 kDa,也存在二聚體現(xiàn)象,最終產(chǎn)物為瓊四糖。

      (三)瓊膠酶編碼基因克隆及重組酶性質(zhì)

      目前,越來越多的瓊膠酶被重組表達(dá)。最早有關(guān)瓊膠酶重組表達(dá)報(bào)道是在1984年,是被表達(dá)在變鉛青鏈霉菌中的[25]。1988年,來自Pseudomonas atlantica的瓊膠酶被表達(dá)在大腸桿菌中。產(chǎn)量最大的重組酶是來海洋細(xì)菌JAMB-A94的β-瓊膠酶[26]。它被表達(dá)在枯草芽孢桿菌中,通過發(fā)酵優(yōu)化,產(chǎn)量達(dá)到81mg/ml。

      三、瓊膠酶的應(yīng)用

      (一)瓊膠酶在分子生物學(xué)中的應(yīng)用

      瓊膠酶在分子生物學(xué)領(lǐng)域,常用來在瓊脂糖凝膠回收過程中水解瓊脂糖凝膠,回收目的核酸分子。1993年,Y Sugano等[27]用瓊膠酶進(jìn)行了膠回收DNA的研究。至今,瓊膠酶在膠回收試驗(yàn)中的應(yīng)用已經(jīng)十分成熟。

      (二)瓊膠酶在水產(chǎn)養(yǎng)殖等工業(yè)方面的應(yīng)用

      瓊膠酶可以用于獲得海藻單細(xì)胞。在水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè),單細(xì)胞生物是水生生物育苗期間常用的餌料。紅藻細(xì)胞壁的主要成分是瓊膠,通過瓊膠酶制備海藻原生質(zhì)體[28]。這個(gè)方法簡單高效,有效提高單細(xì)胞生物餌料產(chǎn)量。

      瓊膠酶還可以用于生產(chǎn)生物乙醇[29]。由于海洋藻類不像木質(zhì)纖維素那樣難降解,應(yīng)用到生物乙醇的生產(chǎn)過程中,可以有效提高生產(chǎn)效率。

      (三)瓊膠酶在制備瓊膠寡糖方面的應(yīng)用

      近年來關(guān)于瓊膠寡糖的研究越來越多,為瓊膠寡糖的應(yīng)用提供了越來越多的方向,帶來了新的機(jī)遇。目前,瓊膠酶制備的瓊膠寡糖種類,穩(wěn)定性,酶活越來越好,為瓊膠寡糖的工業(yè)化應(yīng)用打好了基礎(chǔ)。

      【參考文獻(xiàn)】

      [1]von Hugo, R., et al., Complex formation of crosslinked fibrin oligomers with agarose-coupled fibrinogen and fibrin. Hoppe Seylers Z Physiol Chem, 1977. 358(10): p. 1359-63.

      [2]Arnott, S., et al., The agarose double helix and its function in agarose gel structure. J Mol Biol, 1974. 90(2): p. 269-84.

      [3]Henrissat, B., A classification of glycosyl hydrolases based on amino acid sequence similarities. Biochem J, 1991. 280 ( Pt 2): p. 309-16.

      [4]Potin, P., et al., Purification and characterization of the alpha-agarase from Alteromonas agarlyticus (Cataldi) comb. nov., strain GJ1B. Eur J Biochem, 1993. 214(2): p. 599-607.

      [5]Sugano, Y., et al., Purification and Characterization of a New Agarase from a Marine Bacterium, Vibrio Sp Strain Jt0107. Applied and Environmental Microbiology, 1993. 59(5): p. 1549-1554.

      [6]Duckworth, M. and J.R. Turvey, An extracellular agarase from a Cytophaga species. Biochem J, 1969. 113(1): p. 139-42.

      [7]Araki, T., et al., Purification and characterization of agarases from a marine bacterium, Vibrio sp. PO-303. Journal of Marine Biotechnology, 1998. 6(4): p. 260-265.

      [8]Ohta, Y., et al., Purification and characterization of a novel alpha-agarase from a Thalassomonas sp. Current Microbiology, 2005. 50(4): p. 212-216.

      [9]Wang, J.X., et al., Characterization of a novel beta-agarase from marine Alteromonas sp SY37-12 and its degrading products. Applied Microbiology and Biotechnology, 2006. 71(6): p. 833-839.

      [10] Vera, J., et al., Identification of a marine agarolytic Pseudoalteromonas isolate and characterization of its extracellular agarase. Applied and Environmental Microbiology, 1998. 64(11): p. 4378-4383.

      [11]Aoki, T., T. Araki, and M. Kitamikado, Purification and Characterization of a Novel Beta-Agarase from Vibrio Sp Ap-2. European Journal of Biochemistry, 1990. 187(2): p. 461-465.

      [12]Fu, X.T., H. Lin, and S.M. Kim, Purification and characterization of a novel beta-agarase, AgaA34, from Agarivorans albus YKW-34. Applied Microbiology and Biotechnology, 2008. 78(2): p. 265-273.

      [13]Su, Q., et al., Extracellular expression of a novel β-agarase from Microbulbifer sp. Q7, isolated from the gut of sea cucumber. AMB Express, 2017. 7.

      [14]Van der Meulen, H.J. and W. Harder, Production and characterization of the agarase of Cytoplaga flevensis. Antonie Van Leeuwenhoek, 1975. 41(4): p. 431-47.

      [15]Di, W., W. Qu, and R. Zeng, Cloning, expression, and characterization of thermal-stable and pH-stable agarase from mangrove sediments. 2018.

      [16]Li, M., et al., Isolation and characterization of an agaro-oligosaccharide (AO)-hydrolyzing bacterium from the gut microflora of Chinese individuals. PLoS One, 2014. 9(3): p. e91106.

      [17]Chen, X.L., et al., Expression and Characterization of a Novel Thermostable and pH-Stable beta-Agarase from Deep-Sea Bacterium Flammeovirga Sp. OC4. J Agric Food Chem, 2016. 64(38): p. 7251-8.

      [18]Wu, H., et al., Identification and characterization of a new agar-degrading strain with the novel properties of saccharides inhibition and nitrogen fixation. Journal of Microbiology, 2017. 55(6): p. 475-482.

      [19]Leon, O., et al., Purification and Properties of an Extracellular Agarase from Alteromonas Sp Strain-C-1. Applied and Environmental Microbiology, 1992. 58(12): p. 4060-4063.

      [20]Zhu, Y., et al., Characterization of an alkaline beta-agarase from Stenotrophomonas sp. NTa and the enzymatic hydrolysates. Int J Biol Macromol, 2016. 86: p. 525-34.

      [21]Li, J., et al., Purification and characterization of thermostable agarase from Bacillus sp. BI-3, a thermophilic bacterium isolated from hot spring. J Microbiol Biotechnol, 2014. 24(1): p. 19-25.

      [22]Jung, S., et al., Biochemical characterization of a novel cold-adapted GH39 β-agarase, AgaJ9, from an agar-degrading marine bacterium Gayadomonas joobiniege G7. Applied Microbiology and Biotechnology, 2017. 101(5): p. 1965-1974.

      [23]Long, M., Z. Yu, and X. Xu, A novel beta-agarase with high pH stability from marine Agarivorans sp. LQ48. Mar Biotechnol (NY), 2010. 12(1): p. 62-9.

      [24]Zhang, W., et al., Characterization of an α-agarase from Thalassomonas sp. LD5 and its hydrolysate. Applied Microbiology and Biotechnology, 2018. 102(5): p. 2203-2212.

      [25]Kendall, K. and J. Cullum, Cloning and expression of an extracellular-agarase from Streptomyces coelicolor A3(2) in Streptomyces lividans 66. Gene, 1984. 29(3): p. 315-21.

      [26]Ohta, Y., et al., Enzymatic properties and nucleotide and amino acid sequences of a thermostable beta-agarase from the novel marine isolate, JAMB-A94. Biosci Biotechnol Biochem, 2004. 68(5): p. 1073-81.

      [27]Sugano, Y., et al., Purification and characterization of a new agarase from a marine bacterium, Vibrio sp. strain JT0107. Applied and Environmental Microbiology, 1993.

      [28]Araki, T., Z. Lu, and T. Morishita, Optimization of parameters for isolation of protoplasts from Gracilaria verrucosa (Rhodophyta). J Mar Biotechnol, 1998. 6(3): p. 193-7.

      [29]Swain, M.R., V. Natarajan, and C. Krishnan, Marine Enzymes and Microorganisms for Bioethanol Production. Adv Food Nutr Res, 2017. 80: p. 181-197.

      猜你喜歡
      綜述
      2021年國內(nèi)批評話語分析研究綜述
      認(rèn)知需要研究綜述
      氫能有軌電車應(yīng)用綜述
      高速磁浮車載運(yùn)行控制系統(tǒng)綜述
      5G應(yīng)用及發(fā)展綜述
      電子制作(2019年10期)2019-06-17 11:45:16
      SEBS改性瀝青綜述
      石油瀝青(2018年6期)2018-12-29 12:07:04
      NBA新賽季綜述
      NBA特刊(2018年21期)2018-11-24 02:47:52
      深度學(xué)習(xí)認(rèn)知計(jì)算綜述
      JOURNAL OF FUNCTIONAL POLYMERS
      Progress of DNA-based Methods for Species Identification
      韶关市| 宜良县| 丰都县| 南昌县| 镇原县| 华坪县| 师宗县| 安宁市| 平果县| 天祝| 宿松县| 贵港市| 泸州市| 政和县| 沾益县| 南平市| 沅陵县| 定安县| 汤阴县| 枞阳县| 改则县| 兴海县| 花莲县| 宝鸡市| 加查县| 波密县| 永胜县| 武邑县| 晋江市| 金寨县| 奉贤区| 巴林左旗| 富裕县| 黄骅市| 易门县| 开封县| 湟源县| 渝北区| 竹山县| 拉孜县| 南陵县|