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      雞傳染性貧血病毒衣殼蛋白的截短表達(dá)及其兔抗血清制備

      2018-10-11 06:23:46孫芬芬高玉龍王笑梅
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2018年17期
      關(guān)鍵詞:效價(jià)質(zhì)粒測(cè)序

      孫芬芬, 高玉龍, 潘 偉, 王笑梅

      (1.徐州醫(yī)科大學(xué)形態(tài)學(xué)實(shí)驗(yàn)教學(xué)中心,江蘇徐州 221004; 2.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所獸醫(yī)生物技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江哈爾濱 150001; 3.徐州醫(yī)科大學(xué)病原生物學(xué)與免疫學(xué)教研室/江蘇省免疫與代謝重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇徐州 221004

      雞傳染性貧血病毒(chicken infectious anemia virus,CIAV)是雞傳染性貧血病(chicken infectious anemia,CIA)的病原,主要侵害雛雞,造成雞體造血器官和淋巴組織受損,出現(xiàn)再生障礙性貧血、全身淋巴組織萎縮為特征的免疫抑制性傳染病[1-2]。該病毒感染引起免疫抑制,易導(dǎo)致雞群對(duì)其他病毒、細(xì)菌和真菌易感,以及繼發(fā)感染;亦可干擾其他禽病疫苗的免疫效應(yīng),導(dǎo)致免疫失敗。自Yuasa等于1979年首次報(bào)道該病毒后[3],該病在德國(guó)、法國(guó)等多國(guó)陸續(xù)有報(bào)道,我國(guó)于1992年由崔現(xiàn)蘭等首次分離到[4]。目前,CIA在國(guó)內(nèi)蔓延并呈流行趨勢(shì),對(duì)養(yǎng)禽業(yè)造成重大的經(jīng)濟(jì)損失。因此,需要深入探討CIAV的生物學(xué)功能,以期為該病的防治策略提供新思路。

      CIAV基因組編碼VP1蛋白、VP2蛋白[5]和VP3蛋白[6]。其中,VP1蛋白被認(rèn)為是主要的免疫原蛋白,可刺激機(jī)體產(chǎn)生抗體。值得關(guān)注的是,VP1與VP2共表達(dá)能有效刺激機(jī)體產(chǎn)生中和抗體,并誘導(dǎo)對(duì)雞群的免疫保護(hù)作用,而單獨(dú)表達(dá)VP1、VP2時(shí)不具此效應(yīng)[7-8]。這提示VP1、VP2蛋白之間可能存在相互作用,研究其互作關(guān)系對(duì)于解析CIAV中和抗體產(chǎn)生機(jī)制有著重要的理論意義。

      為深入研究VP1和VP2之間的相互作用,需要制備出相應(yīng)的VP1和VP2抗血清。Pallister等將全長(zhǎng)VP1以谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶融合蛋白的形式在大腸桿菌進(jìn)行表達(dá),但其表達(dá)量極低,無(wú)法滿足抗體制備的要求[9]。本研究對(duì)CIAV VP1的N端129個(gè)AA進(jìn)行剪切,構(gòu)建原核表達(dá)重組質(zhì)粒pET-28a-VP1Nd129,成功進(jìn)行了截短VP1的原核表達(dá),提高了VP1的表達(dá)量;此外,制備的兔抗VP1血清能特異性地結(jié)合真核細(xì)胞表達(dá)的全長(zhǎng)VP1蛋白,為進(jìn)一步研究該蛋白與病毒其他奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 菌株與主要試劑

      CIAV M9905株、pET-28a、DH5a及BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,均由筆者所在實(shí)驗(yàn)室保存;DNA Marker、蛋白Marker,均購(gòu)自大連寶生物工程有限公司;Primer star高保真酶、限制性內(nèi)切酶EcoR Ⅰ、SalⅠ及T4DNA連接酶,均購(gòu)自TaKaRa公司;IPTG、Ni2+親合層析柱、質(zhì)粒抽提試劑盒,購(gòu)自Invitrogen公司;辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記的羊抗兔IgG、弗氏完全佐劑及弗氏不完全佐劑,均購(gòu)自Sigma公司。

      1.2 VP1基因的擴(kuò)增

      根據(jù)《分子克隆指南》,抽提CIAV M9905株DNA,采用PCR方法擴(kuò)增VP1Nd129基因。PCR反應(yīng)條件:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,61 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min 10 s,共30個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min;4 ℃保溫。PCR產(chǎn)物用0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

      VP1Nd129擴(kuò)增的上游引物為5′-TCGAATTCATGGCC GGTGAGTTGATTGCG-3′;下游引物為5′-CGGTCGAC ACAGGGCTGCGTCCCCC-3′。引物兩端分別設(shè)計(jì)有EcoRⅠ和SalⅠ酶切位點(diǎn),并引入2個(gè)保護(hù)堿基。

      1.3 原核表達(dá)載體的構(gòu)建及鑒定

      將PCR產(chǎn)物回收后,用EcoRⅠ和SalⅠ進(jìn)行雙酶切,再與經(jīng)相同酶切處理的pET-28a(+)質(zhì)粒連接,轉(zhuǎn)化入DH5a感受態(tài)中,在Kan+平板上篩選陽(yáng)性重組質(zhì)粒。將獲得的重組質(zhì)粒用EcoRⅠ和SalⅠ酶進(jìn)行酶切鑒定,并送Invitrogen公司測(cè)序,命名為pET-28a-VP1Nd129。

      1.4 VP1蛋白的表達(dá)

      將測(cè)序正確的陽(yáng)性重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入BL21感受態(tài)中,其轉(zhuǎn)化后的菌命名為E.coliBL21/pET-28-VP1Nd129。挑取單一菌落接種于含Kan+的LB培養(yǎng)基,搖床培養(yǎng)過(guò)夜,次日將菌液按1 ∶100比例接種入上述培養(yǎng)基中,37 ℃搖床培養(yǎng);至D600 nm=0.4~0.6,加入1 mmol/L IPTG,繼續(xù)誘導(dǎo)5 h。收集菌體,并對(duì)其進(jìn)行超聲破碎,12 000 r/min離心15 min后,收集上清和沉淀,進(jìn)行SDS-PAGE分析。

      1.5 His-VP1融合蛋白的純化與復(fù)性

      將上述經(jīng)超聲破碎的沉淀,重懸于pH值為7.8的 8 mol/L 尿素溶液中,根據(jù)Ni2+離子親合層析柱試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行變性純化,獲得純化的His-VP2融合蛋白。后者透析過(guò)夜以除去尿素,濃縮后進(jìn)行蛋白定量,-80 ℃保存,備用。

      1.6 VP1重組蛋白兔抗血清的制備和鑒定

      1.6.1 兔抗血清的制備 將純化蛋白與等體積弗氏完全佐劑進(jìn)行乳化,免疫新西蘭白兔,免疫劑量為1 mg/只,初次免疫后3周進(jìn)行二次免疫,免疫劑量及方式同前。于第2 次免疫接種后14 d耳緣靜脈采血,檢測(cè)抗體效價(jià)。

      1.6.2 ELISA法測(cè)定抗體效價(jià) 將純化的融合蛋白以 4 mg/L 包被ELISA板,利用ELISA法進(jìn)行抗體效價(jià)測(cè)定。以未免疫陰性兔血清為陰性對(duì)照組。

      1.6.3 間接免疫熒光 以真核表達(dá)VP1蛋白的Vero細(xì)胞作為抗原,制備的兔抗VP1按1 ∶100稀釋作為一抗,37 ℃孵育1 h,洗滌3次后,加入FITC標(biāo)記的羊抗兔IgG(1 ∶150稀釋),37 ℃繼續(xù)孵育1 h,用熒光顯微鏡觀察。同時(shí),以正常Vero細(xì)胞作為陰性對(duì)照。

      1.6.4 Western blot 將真核表達(dá)VP1蛋白的Vero細(xì)胞裂解后,加入1×Loading Buffer,煮沸5 min,進(jìn)行SDS-PAGE電泳;電泳結(jié)束后,轉(zhuǎn)PDVF膜,以兔抗VP1血清(1 ∶100稀釋)作為一抗,HRP-羊抗兔IgG(1 ∶5 000稀釋)作為二抗,進(jìn)行Western blot檢測(cè)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 VP1基因的擴(kuò)增及鑒定

      PCR擴(kuò)增出1 029 bp的VP1Nd129基因,與預(yù)期大小相符,見(jiàn)圖1。將其與pET-28a(+)載體連接,酶切鑒定為陽(yáng)性的重組質(zhì)粒送Invitrogen公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果表明,插入序列正確,表明pET-28a-VP1Nd129質(zhì)粒構(gòu)建成功。

      2.2 VP1蛋白的融合表達(dá)及純化

      將測(cè)序正確的重組表達(dá)載體pET-28a-VP1Nd129轉(zhuǎn)入大腸桿菌BL21(DE3)中,通過(guò)IPTG誘導(dǎo)表達(dá)目的蛋白。由圖2可知,表達(dá)產(chǎn)物經(jīng)SDS-PAGE分析,清晰可見(jiàn)目的蛋白條帶,大小約40 ku。蛋白經(jīng)變性純化、復(fù)性后,純度較高。

      2.3 兔抗VP1血清的效價(jià)測(cè)定

      以4 mg/L純化融合蛋白作為包被抗原,利用間接ELISA法檢測(cè)兔抗VP1Nd129血清效價(jià)。設(shè)未免疫兔血清為陰性對(duì)照,VP1單克隆抗體作陽(yáng)性對(duì)照。結(jié)果顯示,制備的VP1Nd129抗體效價(jià)可達(dá)1 ∶1 600。

      2.4 兔抗VP1血清與真核表達(dá)的VP1蛋白反應(yīng)原性檢測(cè)

      2.4.1 IFA 轉(zhuǎn)染pCAGG-VP1入Vero細(xì)胞,用兔抗VP1Nd129血清進(jìn)行IFA檢測(cè)(圖3),可見(jiàn)轉(zhuǎn)染細(xì)胞發(fā)出綠色特異性熒光,而正常細(xì)胞無(wú)熒光。

      2.4.2 Western blot 將轉(zhuǎn)染pCAGG-VP1的Vero細(xì)胞裂解后,進(jìn)行SDS-PAGE電泳,用制備的兔抗VP1血清做一抗,進(jìn)行Western-blot試驗(yàn),可見(jiàn)有單一條帶形成,其大小為 52 ku(圖4)。

      3 討論

      作為病毒的主要結(jié)構(gòu)蛋白,VP1在誘導(dǎo)雞體免疫保護(hù)及診斷CIAV中均起著重要作用[10-11]。一些學(xué)者嘗試對(duì)VP1進(jìn)行表達(dá)后發(fā)現(xiàn)無(wú)法表達(dá)其全長(zhǎng),這是由于VP1的N端氨基酸中富含精氨酸以及密集的稀有密碼子,致使完整的VP1基因在大腸桿菌中的表達(dá)水平極低且易被降解,這為該蛋白在大腸桿菌中的表達(dá)造成了一定得困難[12]。因此,目前均采用截短策略表達(dá)VP1蛋白。國(guó)內(nèi)王英等表達(dá)了VP1 C端基因[13];劉岳龍等將VP1分成了2個(gè)小片段后,即VP1片段1(23.5 ku)和VP1片段2(26.5 ku)[14];此外,余樹(shù)培等表達(dá)了VP1抗原富集片段[12]。本研究中將VP1 N端截短129個(gè)氨基酸,其長(zhǎng)度為1 029 bp,最大限度地保留了其長(zhǎng)度,將其重組于His融合蛋白表達(dá)載體pET28a(+)中,表達(dá)出的融合蛋白主要以包涵體的形式存在。將該融合蛋白純化后免疫兔,獲得了特異性強(qiáng)、效價(jià)較高的抗血清,并具有良好的免疫原性。

      綜上所述,本研究成功地對(duì)N端截短129個(gè)氨基酸的VP1蛋白進(jìn)行了原核表達(dá),并制備出了兔抗血清,表達(dá)物保留天然VP1相關(guān)的抗原性,將為CIAV的VP1蛋白生物學(xué)功能研究提供物質(zhì)基礎(chǔ)。

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