趙明明,余 強(qiáng),王 輝,向全丹,聶少平,謝明勇,*
(1.南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國家重點(diǎn)實驗室,江西 南昌 330047;2.南昌大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,江西 南昌 330047)
腸道是將機(jī)體內(nèi)部與外界環(huán)境分隔開的生物屏障,是機(jī)體消化吸收營養(yǎng)物質(zhì)的主要場所,同時也是機(jī)體最大的免疫器官[1]。腸上皮是機(jī)體最大的黏膜表面,上皮細(xì)胞減少,腸絨毛變短,導(dǎo)致腸道黏膜面積減少,不利于營養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收[2]。腸道黏膜系統(tǒng)受損導(dǎo)致內(nèi)部環(huán)境紊亂,不利于微生物定植,增加腸道疾病的風(fēng)險。細(xì)胞因子分泌于免疫應(yīng)答效應(yīng)階段,介導(dǎo)免疫應(yīng)答、炎癥反應(yīng)并進(jìn)行有效的調(diào)節(jié),決定T、B細(xì)胞的分化[3]。腸道黏膜的免疫活性主要通過分泌細(xì)胞因子及其他途徑發(fā)揮體液免疫及細(xì)胞免疫的功能。腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、干擾素-γ(interferon-γ,IFN-γ)、白細(xì)胞介素(interlrukin,IL)-6、IL-10是幾種重要的免疫調(diào)節(jié)相關(guān)細(xì)胞因子,TNF-α、IFN-γ主要由參與機(jī)體細(xì)胞免疫的T細(xì)胞亞群分泌,IL-6、IL-10主要由介導(dǎo)機(jī)體體液免疫的T細(xì)胞亞群分泌,通過檢測不同細(xì)胞因子的分泌水平可間接衡量機(jī)體不同T細(xì)胞亞群的平衡狀態(tài)[4-5]。嚴(yán)勝澤等[6]發(fā)現(xiàn)太子參多糖能顯著提高免疫抑制小鼠小腸組織中IL-6含量。Xu Xiaofei等[7]通過建立體外模擬小腸模型,發(fā)現(xiàn)香菇多糖能顯著促進(jìn)TNF-α、IFN-γ的分泌。
靈芝作為一種藥食兩用資源,在中國、韓國、日本等國家已經(jīng)有兩千多年的使用歷史[8]。黑靈芝又稱玄芝,是靈芝中的極品,長期食用可調(diào)節(jié)機(jī)體多種機(jī)能,其中多糖被證明是靈芝的主要活性成分,而靈芝多糖的免疫調(diào)節(jié)活性被認(rèn)為是多種藥理學(xué)作用的基礎(chǔ)。靈芝多糖通過活化胸腺、脾臟等免疫器官改善機(jī)體免疫力;通過促進(jìn)脾淋巴細(xì)胞增殖、提高自然殺傷細(xì)胞活性,發(fā)揮免疫抑制腫瘤作用;通過提高腹腔巨噬細(xì)胞中環(huán)磷腺苷濃度引起蛋白激酶活化,增加蛋白激酶C的活性;通過提高三磷酸肌醇含量促進(jìn)二?;视偷暮铣桑せ罹奘杉?xì)胞[9-10],誘導(dǎo)NO、活性氧及細(xì)胞因子的產(chǎn)生,進(jìn)而增強(qiáng)先天免疫和適應(yīng)性免疫。本實驗室前期采集江西贛南地區(qū)人工栽培的黑靈芝,分離純化其多糖組分,證明其具有抗氧化[11]、抗腫瘤[12]、心肌保護(hù)[13]、降血糖[14]等生物活性。前期研究發(fā)現(xiàn),黑靈芝多糖可有效促進(jìn)環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的免疫抑制小鼠T、B淋巴細(xì)胞增殖,提高機(jī)體血清IL-2、TNF-α分泌水平,通過體液免疫和細(xì)胞免疫功能發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)作用[15-16]。但目前黑靈芝多糖對腸道黏膜免疫的損傷修復(fù)作用還鮮有相關(guān)研究,因此本實驗以腹腔注射環(huán)磷酰胺構(gòu)建免疫抑制小鼠模型,探究黑靈芝多糖對免疫抑制小鼠腸道黏膜免疫的調(diào)節(jié)作用,為進(jìn)一步研究其可能機(jī)制提供理論依據(jù)。
48 只SPF級BALB/c雌性小鼠,體質(zhì)量18~22 g,周齡6~8 周,購自北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司,許可證號:SCXK(京)2012-0001。實驗過程中所有動物實驗嚴(yán)格遵守南昌大學(xué)動物管理條例,倫理委員會鑒定許可。實驗墊料、飼料經(jīng)過輻照殺菌處理,飲用水經(jīng)高壓滅菌處理,符合SPF級動物使用標(biāo)準(zhǔn)。
黑靈芝多糖由食品科學(xué)與技術(shù)國家重點(diǎn)實驗室提取,原料采自江西贛州贛南靈芝基地,分離純化得到的黑靈芝多糖的主要單糖組分為葡萄糖、半乳糖、甘露糖及半乳糖醛酸,其物質(zhì)的量比為4.91∶1.28∶1∶0.71,平均分子質(zhì)量1 013 kDa[17]。
環(huán)磷酰胺一水合物 美國Sigma公司;鹽酸左旋咪唑 山東仁和堂藥業(yè)有限公司;小鼠IL-6、IL-10、TNF-α、IFN-γ酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒 武漢博士德生物工程有限公司;蘇木精-伊紅(hematoxylineosin,HE)染色液 上海碧云天生物技術(shù)有限公司;PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser (Perfect Real Time)、SYBR?Premix Ex Taq? II (Tli RNaseH Plus) 日本TaKaRa公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
自動組織脫水機(jī)、組織包埋機(jī)、生物組織攤烤片機(jī)、輪轉(zhuǎn)式切片機(jī) 金華市科迪儀器設(shè)備有限公司;3K15冷凍離心機(jī) 德國Sigma公司;Primo Vert倒置顯微鏡德國Carl Zeiss公司;Varioskan Flash多功能酶標(biāo)儀美國Thermo公司;LDZX-50KB立式壓力蒸汽滅菌器上海申安醫(yī)療器械廠;SHP-150生化培養(yǎng)箱 上海森信實驗儀器有限公司;V123530聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀 美國Bio-Rad公司;7900 HT實時定量PCR儀 日本Applied Biosystems公司。
1.3.1 動物分組及處理
小鼠在SPF級動物房自由飲食、飲水適應(yīng)環(huán)境一周后,苦味酸標(biāo)記,8 只一組,隨機(jī)分為:正常對照組、模型組、陽性對照組及黑靈芝多糖低、中、高劑量組。黑靈芝多糖劑量組及陽性對照組小鼠按1%體質(zhì)量連續(xù)3 d于上午9:30腹腔注射環(huán)磷酰胺80 mg/(kg·d),正常對照組注射等量生理鹽水,建立免疫抑制小鼠模型,造模結(jié)束后從正常對照組及模型組各隨機(jī)選擇3 只小鼠計算脾臟指數(shù)、檢測血清中IFN-γ的含量,結(jié)果顯示模型組小鼠脾臟指數(shù)、血清中IFN-γ的含量均顯著低于正常對照組小鼠,確定模型建造成功。依據(jù)本實驗室前期黑靈芝多糖的實驗研究[15-16],造模結(jié)束24 h后黑靈芝多糖低、中、高劑量組分別灌胃25、50、100 mg/(kg·d)的黑靈芝多糖,陽性對照組灌胃40 mg/(kg·d)的鹽酸左旋咪唑,正常對照組、模型組灌胃等體積的生理鹽水,每天上午9:30開始灌胃,連續(xù)灌胃7 d。小鼠飼喂環(huán)境:溫度(21±1)℃、相對濕度(50±10)%,12 h光照12 h黑暗交替,自由飲水、飲食,籠子、水瓶定期換洗消毒。
1.3.2 體質(zhì)量測定
小鼠造模及灌胃前半個小時每天觀察小鼠狀態(tài)、稱取并記錄體質(zhì)量變化。
1.3.3 空腸組織病理學(xué)觀察
取適量空腸組織用生理鹽水沖洗后,按照體積比1∶10在體積分?jǐn)?shù)10%的中性福爾馬林溶液中充分固定,參照Chen Changying等[18]的方法,空腸組織經(jīng)脫水、包埋、切片及HE染色處理后,使用100 倍倒置光學(xué)顯微鏡選取視野范圍內(nèi)5 根最長腸絨毛拍照觀察并比較空腸黏膜形態(tài)的變化,應(yīng)用圖像分析系統(tǒng),測量空腸絨毛長度(絨毛頂部到腸腺絨毛連接處)和隱窩深度(腸腺絨毛連接處到腸腺基底),取平均值,并計算絨毛長度/隱窩深度比值(V/C值)。
1.3.4 小腸組織細(xì)胞因子含量測定
以預(yù)冷磷酸鹽緩沖液為勻漿液,取適量小腸組織,在冰浴條件下制成10%組織勻漿液,4 ℃、3 000 r/min離心15 min,收集并分裝小腸組織上清液,于-80 ℃保存?zhèn)溆?。分別按照IL-6、IL-10、TNF-α和IFN-γ ELISA試劑盒操作說明,檢測相應(yīng)細(xì)胞因子的含量。
1.3.5 小腸組織RT-qPCR分析
表1 RT-qPCR引物序列Table1 Primer sequences used for RT-qPCR
取適量小腸組織樣品,參照Trizol提取法的詳細(xì)說明提取總RNA并定量,瓊脂糖凝膠電泳對總RNA質(zhì)量進(jìn)行檢測后,使用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)試劑盒逆轉(zhuǎn)錄獲得cDNA。使用SYBR Premix Ex Taq? II(Tli RNaseH Plus)試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄定量PCR(reverse transcription-quantitative PCR,RT-qPCR)擴(kuò)增,擴(kuò)增程序為:95 ℃預(yù)變性1 min 30 s;95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,72 ℃ 30 s,共40 次循環(huán),引物序列見表1。同時檢測SYBR Green Ⅱ和校正染料ROX Reference Dye的熒光信號。
以β-actin為內(nèi)參基因,使用2-△△Ct計算T-bet和GATA-3 mRNA的相對表達(dá)水平,△△Ct按下式計算。
表2 小鼠體質(zhì)量變化Table2 Change in body mass g
實驗期間,腹腔注射環(huán)磷酰胺后小鼠食欲下降,毛色暗淡且伴有脫毛現(xiàn)象,精神不佳,糞便干澀,說明免疫抑制模型建造成功。體質(zhì)量變化如表2所示,腹腔注射環(huán)磷酰胺第2天開始,所有免疫抑制組小鼠體質(zhì)量急劇下降。末次腹腔注射環(huán)磷酰胺24 h后(第4天),相比正常對照組,各組免疫抑制小鼠體質(zhì)量顯著下降(P<0.05);相比腹腔注射第1天,各組免疫抑制小鼠末次腹腔注射環(huán)磷酰胺24 h后,體質(zhì)量顯著下降(P<0.05)。第5天開始,各組小鼠體質(zhì)量基本停止下降,相比模型組,灌胃黑靈芝多糖劑量組及陽性對照組小鼠體質(zhì)量回升速度較快。
圖1 小鼠空腸組織切片病理學(xué)觀察(×100)Fig.1 Pathological observation of jejunal tissue sections from mice (× 100)
絨毛長度、隱窩深度及絨毛長度/隱窩深度(V/C值)是反映小腸消化吸收功能和機(jī)體健康狀況的重要指標(biāo)[19]。倒置顯微鏡下觀察并比較空腸組織黏膜形態(tài)結(jié)構(gòu)的變化,相比正常對照組(圖1A),模型組(圖1B)腸絨毛較短且伴有腫脹現(xiàn)象,隱窩變淺。相比模型組(圖1B),黑靈芝多糖劑量組小鼠(圖1C、D、E)絨毛較為細(xì)長,腫脹現(xiàn)象得以改善。
圖2 小鼠空腸絨毛長度、隱窩深度(A)和V/C值(B)Fig.2 Villus length, crypt depth (A) and V/C value (B) in the jejunum of mice
對各組小鼠空腸組織黏膜形態(tài)進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,如圖2A所示,相比模型組,黑靈芝多糖劑量組與陽性對照組絨毛長度均有顯著性增加(P<0.05),隱窩深度有上升趨勢,除黑靈芝多糖高劑量組有顯著性增加外(P<0.05),其余各組與對照組均無顯著性差異。如圖2B所示,相比模型組,黑靈芝多糖中、高劑量組小鼠V/C值顯著性增加(P<0.05),低劑量組V/C值無顯著性增加,V/C值呈劑量依賴性增加。
表3 各組小鼠小腸細(xì)胞因子質(zhì)量濃度Table3 Levels of small intestinal cytokines in mice
由表3可知,與正常對照組相比,模型組小腸組織IL-6、IL-10、TNF-α和IFN-γ分泌水平都顯著降低(P<0.05)。相比模型組,黑靈芝多糖低、中、高劑量組IL-10和IFN-γ質(zhì)量濃度均顯著增加(P<0.05);黑靈芝多糖中、高劑量組的IL-6和TNF-α質(zhì)量濃度相比模型組顯著增加(P<0.05),但低劑量組并無顯著性差異。
圖3 小腸T-bet和GATA-3的mRNA相對表達(dá)水平Fig.3 Relative mRNA expression levels of T-bet and GATA-3 in small intestine of mice
T-bet、GATA-3是不同T細(xì)胞亞群細(xì)胞核內(nèi)的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子。如圖3所示,相比模型組,灌胃黑靈芝多糖劑量組T-bet和GATA-3基因的相對表達(dá)水平均顯著增加(P<0.05),GATA-3基因的相對表達(dá)呈劑量依賴性增加。相對模型組,灌胃不同劑量的黑靈芝多糖T-bet/GATA-3比值均有所提高,且低、高劑量組呈顯著性增加(P<0.05)。
環(huán)磷酰胺屬化療類抗腫瘤藥物,目前作為免疫毒理學(xué)中常用的陽性藥物,其介導(dǎo)的細(xì)胞毒作用會損傷DNA,對機(jī)體具有免疫抑制效果[20-21]。正常小鼠過量攝入環(huán)磷酰胺導(dǎo)致免疫抑制,表現(xiàn)為體質(zhì)量下降,精神萎靡,食欲下降[22]。本實驗結(jié)果顯示,相比模型組,灌胃黑靈芝多糖后各劑量組小鼠體質(zhì)量回升顯著,表明黑靈芝多糖對免疫抑制小鼠體質(zhì)量下降有改善作用。
腸道作為機(jī)體最大的免疫器官,小腸是機(jī)體消化吸收的最大場所,絨毛是小腸的特有結(jié)構(gòu),良好的黏膜形態(tài)結(jié)構(gòu)能夠保障營養(yǎng)物質(zhì)的充分消化吸收[23]。腸絨毛上的杯狀細(xì)胞分泌的黏蛋白構(gòu)成防止微生物入侵的第一道防線,腸上皮細(xì)胞不斷從隱窩深處分化,向絨毛頂部遷徙,彌補(bǔ)正常的細(xì)胞凋亡,具有吸收功能,在介導(dǎo)腸道微生物和免疫平衡中具有重要作用[2,24]。石玉祥等[25]通過連續(xù)7 d給小鼠灌胃枸杞多糖發(fā)現(xiàn),枸杞多糖可有效改善小腸黏膜屏障,促進(jìn)屏障結(jié)構(gòu)趨于完整。陳凌鋒等[26]研究發(fā)現(xiàn)太子參莖葉多糖能夠增加斷奶仔豬腸絨毛長度,維持腸道微生態(tài)平衡。小腸絨毛腫脹、變短,不利于機(jī)體的消化吸收功能,本實驗結(jié)果表明,黑靈芝多糖能在一定程度上增長環(huán)磷酰胺致免疫低下小鼠的腸絨毛長度,提高V/C值,改善腸道絨毛形態(tài),促進(jìn)營養(yǎng)物質(zhì)的吸收。
黏膜免疫系統(tǒng)是機(jī)體免疫的重要組成部分,細(xì)胞因子廣泛存在腸道黏膜中,參與機(jī)體的免疫調(diào)節(jié)作用,細(xì)胞因子的質(zhì)量濃度與腸黏膜的免疫狀態(tài)息息相關(guān)。IL-6是重要的促炎因子,分泌途徑多樣,T淋巴細(xì)胞和單核巨噬細(xì)胞的活化,促進(jìn)IL-6的分泌,進(jìn)而反饋調(diào)節(jié)活化的T細(xì)胞增殖[27]。IL-10是重要的抗炎因子,通過抑制抗原提呈細(xì)胞降低免疫應(yīng)答,防止機(jī)體過度免疫[28]。TNF-α屬重要的促炎因子,是TNF超家族成員,來源單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞及T淋巴細(xì)胞,調(diào)節(jié)自身免疫[29-30]。IFN-γ由活化的T淋巴細(xì)胞和NK細(xì)胞產(chǎn)生,是巨噬細(xì)胞的激活劑,在適應(yīng)性細(xì)胞介導(dǎo)的免疫應(yīng)答中起重要作用[31]。王君巧等[16]的研究表明,黑靈芝多糖能有效提高免疫抑制小鼠脾細(xì)胞TNF-α質(zhì)量濃度。孫曉雨等[32]的研究也表明枸杞多糖和茯苓多糖對提高免疫抑制小鼠小腸及血清中IFN-γ的質(zhì)量濃度有明顯促進(jìn)作用。本實驗結(jié)果顯示,相比模型組,灌胃黑靈芝多糖小鼠的IL-10和IFN-γ質(zhì)量濃度均顯著升高,且呈劑量依賴性;黑靈芝多糖高、中劑量組IL-6、TNF-α質(zhì)量濃度顯著增加,低劑量組質(zhì)量濃度有上升趨勢,表明黑靈芝多糖能通過增加IL-6、IL-10、TNF-α及IFN-γ等細(xì)胞因子的分泌正向調(diào)節(jié)機(jī)體的免疫活性,對維持腸道黏膜免疫內(nèi)穩(wěn)態(tài)有促進(jìn)作用。
T細(xì)胞參與機(jī)體適應(yīng)性免疫應(yīng)答,是淋巴細(xì)胞中具有復(fù)雜功能的一類細(xì)胞,根據(jù)功能的不同分為眾多亞群,Th1、Th2是免疫功能下T淋巴細(xì)胞分化的兩個重要亞群。Th1細(xì)胞主要介導(dǎo)細(xì)胞免疫,分泌TNF-α和IFN-γ等細(xì)胞因子;Th2細(xì)胞刺激B細(xì)胞增殖,主要介導(dǎo)體液免疫,分泌IL-6和IL-10等細(xì)胞因子[33]。機(jī)體在正常情況下Th1/Th2細(xì)胞維持動態(tài)平衡狀態(tài),T-bet和GATA-3分別為Th1型細(xì)胞和Th2型細(xì)胞核內(nèi)關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子,T-bet/GATA-3的比值可用來衡量機(jī)體Th1/Th2細(xì)胞的平衡狀態(tài)[34]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),黑靈芝多糖能顯著提高T-bet和GATA-3相對表達(dá)水平,且低、中、高劑量組T-bet/GATA-3的比率均高于模型組,提示黑靈芝多糖可能通過調(diào)節(jié)Th1/Th2細(xì)胞的平衡來調(diào)控機(jī)體免疫應(yīng)答。
綜上所述,黑靈芝多糖有利于環(huán)磷酰胺誘導(dǎo)的免疫低下小鼠體質(zhì)量的恢復(fù),改善腸道黏膜形態(tài)結(jié)構(gòu),促進(jìn)腸道組織中重要細(xì)胞因子分泌,提高Th1和Th2細(xì)胞核轉(zhuǎn)錄因子基因相對表達(dá)水平,表明黑靈芝多糖能夠調(diào)節(jié)環(huán)磷酰胺導(dǎo)致的小鼠腸道黏膜免疫。本實驗結(jié)果可為進(jìn)一步研究黑靈芝多糖對腸道黏膜免疫的機(jī)制提供理論依據(jù)。