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      特發(fā)性男性不育患者精子DNA完整性和精漿氧化應激水平之間的相關性分析

      2019-01-30 02:23甄錦壯曹健欣麥福勁
      中國實用醫(yī)藥 2019年36期
      關鍵詞:氧化應激相關性

      甄錦壯 曹健欣 麥福勁

      【摘要】 目的 探析特發(fā)性男性不育患者的精子DNA完整性與精漿氧化應激水平之間的相關性。方法 148例特發(fā)性男性不育患者, 以精子DNA碎片指數(shù)(DFI)為分組依據(jù), DFI<30%為低DFI組(103例), DFI≥30%為高DFI組(45例), 對比兩組精漿中的丙二醛(MDA)含量、總抗氧化能力(TAC), 并分析精子DNA完整性與精液氧化應激指數(shù)的相關性。結果 高DFI組MDA含量(12.18±3.21)nmol/ml高于低DFI組的(8.02±2.16)nmol/ml, TAC水平(11.35±3.52)U/L低于低DFI組的(22.41±3.47)U/L, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。DFI與精漿MDA含量呈正相關(r=0.573, P<0.01), 與TAC呈負相關(r=-0.535, P<0.01)。結論 精漿氧化應激水平可影響精子DNA損傷, 精漿氧化應激可能是誘發(fā)特發(fā)性男性不育的重要機制。

      【關鍵詞】 精子DNA完整性;氧化應激;特發(fā)性男性不育;相關性

      DOI:10.14163/j.cnki.11-5547/r.2019.36.023

      男性生殖道中的生殖細胞在正常的生理活動過程中, 會產生活性氧(ROC)等代謝產物, ROC的產生與清除需要借助非酶性抗氧化物成分以及抗氧化酶系統(tǒng)保持動態(tài)平衡, 低水平ROC對精子生理功能發(fā)揮著重要的影響作用[1]。當生殖道存在感染等因素時代謝增強, 精漿中ROC異常升高, 則會誘導產生氧化應激, 使精子存活率、活力等質量指標降低, 精子功能下降, 同時產生MDA等脂質代謝產物, 因此MDA、TAC為被用于評價氧化應激水平的指標[2]。也有相關研究指出精子DNA損傷是導致男性不育的重要原因[3]。基于此, 本研究對特發(fā)性男性不育患者DNA完整性與精漿氧化應激水平所存在的相關性實施如下分析, 以期為抗氧化藥物治療特發(fā)性男性不育提供理論依據(jù)。現(xiàn)報告如下。

      1 資料與方法

      1. 1 一般資料 選取2017年5月~2018年5月本院收治的148例特發(fā)性男性不育患者為研究對象, 所有患者均接受精子DNA完整性檢測, 以DFI為分組依據(jù), DFI<30%為低DFI組(103例), DFI≥30%為高DFI組(45例), 低DFI組年齡28~41歲, 平均年齡(34.5±2.2)歲;高DFI組年齡26~43歲, 平均年齡(34.5±2.9)歲。所有患者均已排除患有生殖系統(tǒng)氧化損傷疾病, 兩組患者一般資料比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05), 具有可比性。

      1. 2 方法

      1. 2. 1 標本采集 入選研究對象在取精前須保證2~7 d的禁欲, 以手淫法采集精液, 并完整收集在專用取精杯中, 于37℃ 環(huán)境下孵育至液化, 1 h內進行檢測處理, 按照《世界衛(wèi)生組織人類精液檢查與處理實驗室手冊》[4]第5版標準行精液常規(guī)分析, 經離心分離精子、精漿, 分別用于檢測精子DNA碎片化指數(shù)和精漿MDA、TAC。

      1. 2. 2 檢測精子DNA碎片化指數(shù) 使用精子染色質擴散法對精子DNA碎片檢測, 采用深圳華康生物醫(yī)學工程有限公司生產的試劑盒, 在顯微鏡下計算400條精子, 統(tǒng)計大暈環(huán)、中暈環(huán)、小暈環(huán)、無暈環(huán)和退化的異常精子個數(shù), 大暈環(huán)和中暈環(huán)表示精子核DNA完整, 小暈環(huán)、無暈環(huán)和退化表示精子核DNA斷裂。精子DFI=(小暈環(huán)+無暈環(huán)+退化精子)/400 ×100%。

      1. 2. 3 精漿MDA含量與TAC測定 精漿MDA、TAC檢測所用試劑均由南京建成生物工程研究所生產。MDA檢測:取0.1 ml精液設為測定管, 并設置空白管, 使用硫代巴比妥酸比色法測定MDA含量, 并對所檢測的原始MDA值進行修正, 保證患者精子濃度均為20×106/ml。修正計算公式=原始MDA值/(精子濃度/20×106/ml)。TAC檢測:設定反應空白對照管, 采用比色法對TAC進行測定, 1個總抗氧化能力的表示:在37℃ 環(huán)境下, 每毫升樣本在每分鐘使反應體系的吸光度值每增加0.01時, 計算為1個總抗氧化能力單位。MDA與TAC的測定過程均嚴格按照試劑盒說明書實施操作。

      1. 3 觀察指標 對比兩組患者精漿中MDA含量與TAC水平, 對DFI與精漿氧化應激水平之間的相關性進行分析。

      1. 4 統(tǒng)計學方法 采用SPSS19.0統(tǒng)計學軟件處理數(shù)據(jù)。計量資料以均數(shù)±標準差( x-±s)表示, 采用t檢驗。精子DNA完整性和精漿氧化應激水平之間的相關性使用Pearson相關分析, P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結果

      2. 1 兩組精漿中的MDA含量、TAC水平對比 高DFI組MDA含量高于低DFI組, TAC水平低于低DFI組, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表1。

      2. 2 精子DNA完整性與精液氧化應激指數(shù)的相關性分析Pearson相關分析顯示DFI與精漿MDA含量呈正相關(r=0.573, P<0.01), 與TAC呈負相關(r=-0.535, P<0.01)。

      3 討論

      精子DNA是重要的遺傳信息載體, 而精子染色質結構的完整性是精卵正常受精以及胚胎發(fā)育的關鍵保證。精原細胞對各種應激因子十分敏感, 且精原細胞受損后的自我修復能力低下, 精子是高度簡化的細胞, 缺乏自我修復能力, 目前有大量研究證實, 精子DNA出現(xiàn)損傷的情況下, 對自然生育以及輔助生殖技術治療均會造成不良影響[5]。

      在本次研究結果中, 高DFI組MDA含量(12.18±3.21)nmol/ml高于低DFI組的(8.02±2.16)nmol/ml, TAC水平(11.35±3.52)U/L低于低DFI組的(22.41±3.47)U/L, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。DFI與精漿MDA含量呈正相關(r=0.573, P<0.01), 與TAC呈負相關(r=-0.535, P<0.01)。對此結果產生的原因分析認為, 人類精子對氧化應激的敏感性較高, 在ROC處于正常生理濃度狀態(tài)下, 使精子的正常生理功能得到有效維持, 而ROC極易對精子膜的高濃度不飽和脂肪酸(PURA)形成攻擊, 當ROC水平過高則會導致精子膜通透性顯著增加, 對精子細胞內參與精子運動能力的離子濃度調節(jié)能力顯著減弱, 甚至喪失, 同時精子膜PURA與ROC產生脂類過氧化反應, 使PURA失去雙鍵結構, 精子膜流動性減弱甚至喪失, 精子結構受損, 最終使精子活力下降, 造成精子功能障礙, 嚴重情況下導致男性不育[6]。同時精子膜受損還造成精子核結構的損傷, 破壞DNA雙鏈結構, 精子DNA碎片化指數(shù)升高[7], 使精子細胞凋亡率上升, 精子受精能力下降及受精后形成的胚胎染色質異常率升高, 影響胚胎發(fā)育潛能, 從而導致早期流產和不育。MDA屬于脂質過氧化后產生的分解產物, 其含量能夠反映出機體ROC含量以及其所造成的脂質過氧化程度;而TAC主要反映的是精漿抗氧化能力的總體水平, 由此表明DFI過高患者, 精液中脂質過氧化反應越強, MDA含量會相應升高, 同時TAC水平下降會導致精液氧化應激反應增強, 所以對精子膜結構造成破壞、完整性受損, 精子運動能力隨之下降, 精子正常功能也隨之受到影響[8-10]。

      綜上所述, 精漿氧化應激作用可增加精漿中MDA含量, 導致精子DNA損傷, 且DFI與MDA含量呈正相關, 與TAC呈負相關, 提示精漿氧化應激可能是誘發(fā)特發(fā)性男性不育的重要機制, 應當進一步對氧化應激治療特發(fā)性男性不育的開展深入研究。

      參考文獻

      [1] 吳蘆英, 朱衛(wèi)中. 45例弱精子癥患者精子存活率與總活力的相關性分析. 健康研究, 2016, 36(3):255-257.

      [2] 陳欣欣, 林松, 寸金濤. 精液不液化對精子總活力、存活率、精子總數(shù)及pH值的影響分析. 云南醫(yī)藥, 2015, 36(2):125-127.

      [3] 符浩, 宋汶珂, 凌曉輝, 等. 精索靜脈曲張不育患者氧化應激水平和精子DNA完整性及精液參數(shù)的相關性分析. 中華男科學雜志, 2016, 22(6):530-533.

      [4] 舒金輝. 參照第五版《世界衛(wèi)生組織人類精液檢查與處理實驗室手冊》標準分析誘發(fā)精子頂體反應與精液主要參數(shù)的相關性研究// 中華醫(yī)學會生殖醫(yī)學分會人類精子庫管理學組第三屆年會全國男性生殖醫(yī)學和精子庫管理新進展第四次研討會論文匯編, 2012:2.

      [5] Pourentezari M, Talebi A R, Mangoli E, et al. Additional deleterious effects of alcohol consumption on sperm parameters and DNA integrity in diabetic mice. Andrologia, 2016, 48(5):564-569.

      [6] 蔡文偉, 莫敦勝, 江楠, 等. 男性不育患者精子DNA完整性與精漿氧化應激水平的關系及其對體外受精的影響. 中華男科學雜志, 2016, 22(10):892-896.

      [7] 黃祝, 蔣超, 徐會茹, 等. 不育患者精子活力與精漿及精子核DNA完整性關系的初步研究. 臨床檢驗雜志, 2008(3):191-193.

      [8] 關小川, 孫剛, 姜力. 精子DNA完整性對男性不育癥患者精液常規(guī)參數(shù)和精子形態(tài)的影響. 中國性科學, 2018, 27(2):100-104.

      [9] Saleh RA, Agarwal A, Nada EA, et al. Seminal oxidative stress (OS) is highly correlated with sperm DNA damage in men with idiopathic and male-factor infertility. Fertility & Sterility, 2002, 78(supp1):S261-S262.

      [10] Abdul-Rasheed OF, Farid YY, Al-Nasiri US. Coenzyme Q10 and oxidative stress markers in seminal plasma of Iraqi patients with male infertility. Saudi Medical Journal, 2010, 31(5):501-506.

      [收稿日期:2019-03-27]

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