程筱雯
1948年,法國科學(xué)家Mandel首次描述了人類血液中存在游離的無細(xì)胞核酸片段(cell-free DNA,cfDNA)。1977年,Leon等[1]第一次報告了腫瘤患者血清中cfDNA水平增高,遠(yuǎn)高于健康人群。隨后不久研究者[2-4]就在腫瘤患者血液中發(fā)現(xiàn)了與結(jié)直腸癌、胰腺癌及肺癌相關(guān)的KRAS突變,而且在血漿中發(fā)現(xiàn)的KRAS突變與患者腫瘤組織中發(fā)現(xiàn)的KRAS突變相同,證實了血漿中的突變DNA片段來源于腫瘤,突變的cfDNA是腫瘤高度特異性的生物學(xué)標(biāo)志物,研究者從而提出了“循環(huán)腫瘤DNA”(circulating tumor DNA,ctDNA)的概念,ctDNA是一些從腫瘤細(xì)胞釋放至血液中的DNA片段。
Vogelstein[5]在 1999 年利用數(shù)字 PCR(digital PCR,dPCR)技術(shù)實現(xiàn)了罕見突變片段的準(zhǔn)確識別和絕對量化,使在不同病情階段的結(jié)直腸癌患者血漿中突變的等位基因比例得以量化。2012年,F(xiàn)orshew等[6]使用標(biāo)記的擴增子片段對cfDNA中多個基因進(jìn)行了深度測序,證明了直接在癌癥患者血漿中鑒定突變的可能性,且能夠在單個測定中監(jiān)測多種腫瘤特異性突變。此后不久,血漿cfDNA的全基因組測序(whole genome sequencing,WGS)被證明能夠識別腫瘤衍生的染色體畸變、聚焦擴增和基因重組[7-8]。2013年新英格蘭醫(yī)學(xué)雜志指出,無創(chuàng)ctDNA檢測能夠真實反映實體瘤組織中基因突變頻率及圖譜,是療效評估及預(yù)后監(jiān)測的重要指標(biāo)[9]。
本文主要從ctDNA檢測方法、ctDNA在腫瘤精準(zhǔn)醫(yī)療中的應(yīng)用及ctDNA檢測分析面臨的挑戰(zhàn)等方面進(jìn)行綜述,以期進(jìn)一步探討ctDNA切實可行的臨床應(yīng)用方向。
微流控平臺上的dPCR被廣泛用于量化ctDNA 水平[10]。dPCR 是分配擴增,終點檢測,先將樣品稀釋到單分子水平,再平均分配到20 000個單元中進(jìn)行反應(yīng),每個單元包含一個或多個拷貝DNA模板,在每個反應(yīng)單元中分別對靶分子進(jìn)行PCR擴增,擴增結(jié)束后對每個反應(yīng)單元的熒光信號進(jìn)行收集,利用泊松分布的數(shù)學(xué)模型計算目標(biāo)片段拷貝數(shù),可以實現(xiàn)單分子DNA絕對定量。dPCR可更好地檢測稀有突變,且常用于癌癥熱點突變分析,其缺點是僅檢測已知突變且通量低,如樣品需分成多個反應(yīng),會增加采樣誤差,并損害極低拷貝數(shù)突變體DNA檢測的整體性能。
該法檢測已知突變,利用模板和引物堿基錯配有效抑制PCR反應(yīng)區(qū)分等位基因。根據(jù)已知點突變設(shè)計引物,其3′端堿基分別與突變和正常模板堿基互補,堿基與模板互補后,則引物不間斷延伸,PCR正常進(jìn)行得到特定長度擴增帶。反之,則不能延伸,從而區(qū)分有某種點突變的模板與正常模板。該法檢測靈敏度高,檢測限可達(dá)100 copies/mL,對腫瘤組織檢測限可達(dá)到0.1%的突變率[11]。ARMS結(jié)合實時PCR可實現(xiàn)閉管擴增,步驟簡便,產(chǎn)物無需后處理,從而最大程度地防止了擴增產(chǎn)物污染,現(xiàn)已成為國際上腫瘤個體化分子檢測最重要、最先進(jìn)的技術(shù)之一,臨床應(yīng)用認(rèn)可率高[12]。
該方法結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)和dPCR,利用特異性引物擴增靶突變區(qū),與磁珠混合進(jìn)行油包水單分子擴增反應(yīng)。磁珠上固定有特異PCR引物,每一類DNA分子專一與磁性珠相連。反乳化過程使得顏色各異的熒光探針結(jié)合磁珠上的PCR產(chǎn)物,發(fā)出綠色或紅色熒光,使用流式細(xì)胞儀分析磁珠顏色來確定突變情況。這種方法是基于小珠(bead)、乳濁液(emulsion)、擴增(amplification)、磁性(magnetic)這4個主要組分來構(gòu)建的,故被稱為BEAMing。該法用于檢測血液樣品中低拷貝數(shù)的已知基因突變效果較好。但此技術(shù)成本高、操作復(fù)雜,且成功率偏低,目前臨床應(yīng)用率低[13]。
NGS技術(shù)的出現(xiàn)使得在保證敏感性的基礎(chǔ)上檢測出盡可能多的ctDNA中腫瘤特異性的基因突變或是拷貝數(shù)異常成為可能,包括未知突變的檢出。NGS的優(yōu)勢是能一次性對幾十萬到幾百萬條DNA分子進(jìn)行序列測定,通過增加測序深度可使靈敏度達(dá)到0.01%甚至更高的水平,是目前公認(rèn)最有效的分析方法[14-16]。
標(biāo)記擴增深度測序(tagged-amplicatiom deep sequencing,TAM-Seq)技術(shù)利用定制化突變位點庫作為篩選器,對樣本進(jìn)行靶向捕獲后再進(jìn)行深度測序,其對腫瘤靈敏度更高,特異性更強,與全外顯子測序相比經(jīng)濟可行。腫瘤個體化深度測序(cancer personalized protiling by deep sequence,CAPP-Seq)技術(shù)的基本原理是先利用特異性引物進(jìn)行15個循環(huán)目標(biāo)區(qū)域預(yù)擴增,再利用不同特性的接頭標(biāo)簽進(jìn)行二次擴增,通過雙向重復(fù)測序提高了測序精度,特異性和敏感性較高,成本較低,適于臨床應(yīng)用[17]。TAM-Seq和 CAPP-Seq主要針對已知突變檢測,而全基因組測序、全外顯子測序技術(shù)則可檢出未知突變。然而,上述測序在臨床實際應(yīng)用中尚存在諸多問題,由這些技術(shù)帶來的昂貴費用和龐大數(shù)據(jù),及如何獲取高質(zhì)量DNA樣本是目前需要克服的問題[15,18]。
一項包括有640例不同類型和分期的癌癥患者的研究發(fā)現(xiàn),Ⅳ期癌癥患者的ctDNA濃度與Ⅰ期患者相比增加了100倍[19],表明血漿中ctDNA的濃度可能與腫瘤發(fā)展階段相關(guān)。ctDNA濃度變異主要由癌癥轉(zhuǎn)移擴散程度或疾病負(fù)荷的差異造成。有實驗提示復(fù)發(fā)性高級漿液性卵巢癌患者ctDNA水平與腫瘤體積顯著相關(guān),腫瘤體積每增加1立方厘米,每毫升血漿則增加6個突變體拷貝[20]。ctDNA濃度顯著變化可能與個體差異相關(guān),如腫瘤血管形成可能阻礙ctDNA釋放入血液,或者可通過產(chǎn)生缺氧和細(xì)胞死亡來促進(jìn)ctDNA釋放。ctDNA水平與癌癥分期關(guān)系表明ctDNA可作為預(yù)后指標(biāo)[21-22]。具有可檢測ctDNA的結(jié)直腸癌患者的2年總體生存率為48%,而沒有ctDNA的患者則為100%[23],相比常規(guī)蛋白質(zhì)類腫瘤標(biāo)志物,ctDNA是具有更好監(jiān)測效果的預(yù)后預(yù)測因子,ctDNA濃度越高,影像學(xué)檢查結(jié)果和臨床療效就越差。一項對轉(zhuǎn)移性乳腺癌的研究發(fā)現(xiàn)ctDNA濃度與總體存活率間存在顯著相反關(guān)系,ctDNA濃度高于2 000 copies/mL的患者預(yù)后均很差[24]。
癌癥的早期干預(yù)可明顯改善患者生存質(zhì)量,許多研究已證明了無創(chuàng)技術(shù)進(jìn)行疾病早期診斷的潛在價值[25-26]。有研究顯示82%Ⅳ期癌癥患者檢測到ctDNA,而Ⅰ期患者檢出率在47%[19]。50%Ⅰ期非小細(xì)胞肺癌(non small-cell lung cancer,NSCLC)患者可檢測到ctDNA[27]。使用dPCR技術(shù)在早期乳腺癌患者血漿中顯示了93.3%的突變敏感性[28]。一種基于無創(chuàng)產(chǎn)前檢測(noninvasive prenatal testing,NIPT)技術(shù)改編的淺層全基因組測序(shallow whole-genome sequencing,sWGS)方法最近被應(yīng)用于臨床研究,檢測出了16例早期卵巢癌病例中的6例(37.5%)[29]。這些研究提示了早期癌癥中ctDNA檢測的可能性。
cfDNA中的甲基化和核小體占有模式可以編碼組織特異性和細(xì)胞特異性信息,研究血漿中組織特異性甲基化信號,使每個組織對整個cfDNA池的相對貢獻(xiàn)量子化,這使得今后通過測定組織特異性ctDNA來確定癌癥轉(zhuǎn)移擴散部位或位點成為可能[30-31],即提示了來自液體活檢的原始組織信息可能有助于腫瘤定位。
ctDNA半衰期短以及可重復(fù)采樣的特點,使液體活檢能夠?qū)崟r監(jiān)測腫瘤負(fù)荷對治療效果的反應(yīng)程度。在治療期間對患者進(jìn)行的研究顯示[6,32],ctDNA 動力學(xué)與治療反應(yīng)相關(guān),并且可以比臨床檢測更早地識別反應(yīng)。在復(fù)發(fā)性卵巢癌中,化療后ctDNA減少程度與進(jìn)展時間顯著相關(guān),并且比CA125水平更有價值[20]。
最近的一項研究表明[33],在黑素瘤患者免疫治療開始后的第一周,ctDNA水平的早期尖峰可能反映出細(xì)胞死亡數(shù)目的短暫增加,然而,這種細(xì)胞死亡峰值可能會根據(jù)所使用的藥物的藥理學(xué)特性和對它們的生物反應(yīng)而變化。在結(jié)直腸癌患者化療早期以及NSCLC患者接受表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGER)抑制劑治療后早期,未發(fā)現(xiàn)早期尖峰的出現(xiàn),如果在治療開始后立即對血漿進(jìn)行分析可以可靠地檢測出敏感性癌細(xì)胞的破壞,這表明也許可以利用突變的早期動力學(xué)差異來快速鑒定抗性亞克隆的存在[34]。在免疫治療的背景下,液體活檢可以通過從不同的T細(xì)胞克隆釋放的cfDNA的分析來提供監(jiān)測ctDNA和免疫系統(tǒng)反應(yīng)的機會[35]。另外,在手術(shù)或治療后,沒有任何其他臨床證據(jù)時,ctDNA的存在可識別可能患有復(fù)發(fā)風(fēng)險的患者,即ctDNA的檢測有助于微小殘留?。╩inimal residual disease,MRD)的診斷[36]。
在對腫瘤的深入研究中,人們逐漸認(rèn)識到腫瘤異質(zhì)性的潛在混雜效應(yīng),但對患者行多次腫瘤活檢通常既不可行也不可取。單獨活檢的分析可能無法準(zhǔn)確反映患者基因組結(jié)構(gòu),進(jìn)而會對個性化藥物的選擇和療效產(chǎn)生錯誤判斷。ctDNA從多個腫瘤區(qū)域釋放,從而可以反映腫瘤異質(zhì)性和空間分離的病灶,ctDNA分析可檢測到在相應(yīng)組織樣品中已經(jīng)漏掉的突變[37],比傳統(tǒng)活檢更全面地分析腫瘤異質(zhì)性。有一項晚期胃癌ctDNA的研究分析了70例晚期胃癌患者ctDNA和配對腫瘤組織中人類表皮生長因子受體2(human epidermal growth factor recepter,HER2)擴增的一致性,比較了其中30例晚期胃癌患者的ctDNA和原發(fā)腫瘤的突變譜,其中5例患者多次組織活檢以對腫瘤突變進(jìn)行綜合分析,結(jié)果顯示ctDNA中大多數(shù)突變也顯示在成對的腫瘤組織中,ctDNA與腫瘤組織的HER2擴增具有高度一致性(91.4%,Kappa指數(shù)=0.784,P<0.001),這意味著基于ctDNA的評估可以部分克服腫瘤的異質(zhì)性,并可能成為胃癌HER2分析的潛在替代指標(biāo)[38]。
多區(qū)域腫瘤測序數(shù)據(jù)顯示[39-40],腫瘤原發(fā)灶和轉(zhuǎn)移灶組織中存在相同的固有突變,這種固有突變在血漿ctDNA中的檢出率高于區(qū)域腫瘤的個體突變檢出率,因此檢測這種固有突變對于跟蹤血漿腫瘤負(fù)荷(腫瘤負(fù)荷是指人體中腫瘤細(xì)胞的數(shù)量、腫瘤的大小或腫瘤病灶的總量)將是一種可靠的方法。
盡管ctDNA與臨床表型的相關(guān)性已得到證實,但要提高其在臨床應(yīng)用的準(zhǔn)確性,仍需大規(guī)模人群隊列研究,而提高ctDNA分析質(zhì)量是成功應(yīng)用的關(guān)鍵。提高ctDNA分析質(zhì)量需考慮的重要因素之一是血液樣品預(yù)分析處理,目前ctDNA分離程序涉及將血液樣品送到實驗室,通過離心分離血漿和從血漿中純化ctDNA,程序復(fù)雜且耗時,且需對樣品進(jìn)行強烈處理,這可能導(dǎo)致ctDNA降解或血細(xì)胞溶解引起基因組釋放,從而對樣本造成污染。檢測ctDNA的血液樣本可通過含有獨特抗凝劑和細(xì)胞穩(wěn)定劑的特殊采血管進(jìn)行采集、運輸和保存,但在抽血后如能立即進(jìn)行ctDNA純化,最大限度地縮短處理樣品和純化所需總時間,將有利于進(jìn)一步提高ctDNA分析質(zhì)量,包括濃度和含量。ctDNA檢測能否成為實現(xiàn)腫瘤早期篩查的特異性生物標(biāo)記物取決于更高靈敏度的ctDNA濃度檢測技術(shù)的發(fā)現(xiàn)。目前關(guān)于ctDNA的檢測尚缺乏統(tǒng)一的行業(yè)質(zhì)控檢測標(biāo)準(zhǔn),而對罕見變異的臨床界定也仍需大量臨床信息積累,同時測序技術(shù)的高成本及結(jié)果的解讀還有待于完善等,這些都是現(xiàn)階段ctDNA檢測分析所面臨的挑戰(zhàn)。
目前我們對cfDNA釋放和清除機制的理解有限,不清楚不同部位腫瘤細(xì)胞釋出的ctDNA或同一部位腫瘤的不同亞克隆體釋出的ctDNA的種類、性質(zhì)和數(shù)量是否與總ctDNA池(即血液中所有的ctDNA)呈現(xiàn)出正相關(guān)?腫瘤血管分布和代謝特性是否會影響ctDNA在血流中的分布?但現(xiàn)有研究充分表明ctDNA可能是藥物開發(fā)、腫瘤異質(zhì)性和克隆進(jìn)化研究的有利研究工具。
ctDNA的臨床應(yīng)用將取決于患者和臨床醫(yī)生的實際情況、所需基礎(chǔ)設(shè)施及其成本效益。組織活檢對于癌癥的組織學(xué)診斷來說依然是“金標(biāo)準(zhǔn)”。2016年,美國食品藥品監(jiān)督管理局(Food and Drug Administration,F(xiàn)DA)批準(zhǔn)了血漿突變檢測試劑的應(yīng)用,而新興的ctDNA突變檢測臨床試驗也在積極進(jìn)行,這是個性化腫瘤學(xué)檢測的里程碑,表明ctDNA檢測目前正在擴大臨床應(yīng)用,以使患者更大程度地受益。進(jìn)一步探索ctDNA的生物學(xué)特性,改進(jìn)技術(shù)使腫瘤無創(chuàng)分子分析的范圍越來越廣,為基因組研究開辟新途徑,這將有助于大大提高臨床診療的決策水平。