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      半乳糖流加對(duì)CHO細(xì)胞生長代謝及其表達(dá)的Fc融合蛋白糖基化的影響

      2019-08-08 03:32:06肖政范里譚文松
      生物技術(shù)通報(bào) 2019年8期
      關(guān)鍵詞:唾液酸半乳糖糖基化

      肖政 范里 譚文松

      (華東理工大學(xué)生物反應(yīng)器工程國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200237)

      哺乳動(dòng)物細(xì)胞尤其是CHO細(xì)胞因具備完善的糖基化等翻譯后修飾系統(tǒng),成為目前表達(dá)藥用蛋白最重要的宿主細(xì)胞[1]。葡萄糖作為最主要的碳源物質(zhì)被廣泛運(yùn)用于CHO細(xì)胞的培養(yǎng)過程。作為主要負(fù)責(zé)CHO細(xì)胞中轉(zhuǎn)運(yùn)葡萄糖的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,Glut-1具有很高的跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)活性(Km=1-2 mmol/L),因此培養(yǎng)液中的葡萄糖會(huì)被快速轉(zhuǎn)運(yùn)至胞漿內(nèi),經(jīng)糖酵解途徑生成大量丙酮酸。但丙酮酸進(jìn)入線粒體受到細(xì)胞的嚴(yán)格調(diào)控,因此多余的丙酮酸會(huì)經(jīng)乳酸脫氫酶作用轉(zhuǎn)化為乳酸[2]。乳酸的累積對(duì)細(xì)胞的生長、代謝和產(chǎn)物表達(dá)都會(huì)造成不利的影響[3]。糖基化作為一種重要的蛋白質(zhì)翻譯后修飾,對(duì)藥用蛋白的生物學(xué)活性、溶解性以及半衰期等均發(fā)揮著重要作用[4]。唾液酸是蛋白類藥物糖基化修飾的一種重要形式。糖代謝過程中產(chǎn)生的UDP-半乳糖作為糖基單元參與唾液酸前體合成,隨后在細(xì)胞質(zhì)中合成唾液酸并經(jīng)載體轉(zhuǎn)運(yùn)到高爾基體中,在唾液酸轉(zhuǎn)移酶的作用下將唾液酸連接到蛋白糖鏈末端的半乳糖上[5]。

      半乳糖結(jié)構(gòu)與葡萄糖類似,不過它主要通過細(xì)胞膜上的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白Glut-4(Km=10 mmol/L)進(jìn)入胞內(nèi),在半乳糖激酶和1-磷酸半乳糖尿嘧啶轉(zhuǎn)移酶的作用下生成UDP-半乳糖[6]。UDP-半乳糖可以通過異構(gòu)酶的作用生成6-磷酸葡萄糖,作為碳源進(jìn)入糖酵解和TCA循環(huán)供給能量。由于轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白Glut-4的轉(zhuǎn)運(yùn)活性遠(yuǎn)低于Glut-1,因此半乳糖進(jìn)入細(xì)胞的速率也遠(yuǎn)小于葡萄糖進(jìn)入細(xì)胞的速率,培養(yǎng)液中乳酸的累積濃度也低于采用葡萄糖作為碳源的培養(yǎng)過程。由此可見,半乳糖是葡萄糖理想的碳源替代物,具有顯著改善細(xì)胞代謝和提高蛋白質(zhì)量的可能。

      本研究在補(bǔ)料分批培養(yǎng)過程中,通過將補(bǔ)料培養(yǎng)基中的葡萄糖用等摩爾的半乳糖進(jìn)行替換考察以半乳糖為碳源的培養(yǎng)過程中CHO細(xì)胞的生長代謝和Fc融合蛋白的合成特性,了解營養(yǎng)物消耗和代謝副產(chǎn)物累積的規(guī)律,認(rèn)識(shí)半乳糖濃度對(duì)細(xì)胞生長、營養(yǎng)物消耗、乳酸代謝、產(chǎn)物合成和產(chǎn)物糖基化的影響,旨為建立高產(chǎn)、高質(zhì)的流加培養(yǎng)過程。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      實(shí)驗(yàn)用細(xì)胞為表達(dá)Fc融合蛋白的CHO細(xì)胞株。傳代及基礎(chǔ)培養(yǎng)基由21.21 g/L的EX-CELL 302無血清培養(yǎng)基配制而成,并添加1.6 g/L的NaHCO3和2 mmol/L的Glutamine;補(bǔ)料培養(yǎng)基由我室自主研發(fā),由多種氨基酸、維生素以及葡萄糖組成,從接種第2天起每天補(bǔ)加初始培養(yǎng)體積的3%,補(bǔ)料培養(yǎng)基中半乳糖等摩爾替代葡萄糖的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)如表1所示。本文中提到的試劑如未特殊說明均購自Sigma公司。

      1.2 方法

      1.2.1 種子細(xì)胞培養(yǎng) 從細(xì)胞庫中復(fù)蘇CHO細(xì)胞,以5.0×105cells/mL的活細(xì)胞密度接種于125 mL搖瓶中(Corning),接種體積為30 mL,置于37℃、5%CO2飽和濕度的培養(yǎng)箱中進(jìn)行懸浮培養(yǎng),搖床轉(zhuǎn)速為110 r/min。每隔2 d進(jìn)行種子細(xì)胞傳代擴(kuò)增,傳代后活細(xì)胞密度控制在5.0×105cells/mL左右。

      1.2.2 搖瓶內(nèi)補(bǔ)料培養(yǎng) 取指數(shù)生長期的CHO種子細(xì)胞經(jīng)1 000 r/min離心5 min,棄上清,用新鮮基礎(chǔ)培養(yǎng)基進(jìn)行重懸并以1.0×106cells/mL的起始密度接種于125 mL搖瓶內(nèi),初始工作體積為40 mL,搖床轉(zhuǎn)速設(shè)置為110 r/min,培養(yǎng)箱條件設(shè)置為5%的CO2濃度和37℃的溫度,每個(gè)條件重復(fù)3次。每天取0.8 mL細(xì)胞液用于細(xì)胞計(jì)數(shù)、生長代謝和產(chǎn)物表達(dá)的檢測(cè)分析。

      1.2.3 反應(yīng)器內(nèi)補(bǔ)料培養(yǎng) 反應(yīng)器內(nèi)的流加培養(yǎng)過程于 2 L的 BIOSTAT?B(B.Braun,Germany)反應(yīng)器中進(jìn)行。接種密度為1×106cells/mL,初始工作體積為1 L。培養(yǎng)條件設(shè)置:攪拌轉(zhuǎn)速設(shè)置為80 r/min,溶氧為40%,pH設(shè)置為7.0,采用通入CO2或補(bǔ)加NaOH的方式進(jìn)行pH控制,培養(yǎng)溫度設(shè)定為37℃。

      1.2.4 細(xì)胞計(jì)數(shù) 取樣0.1 mL 置于48孔板內(nèi),稀釋到適宜密度后,加入等體積0.4%臺(tái)盼藍(lán)溶液進(jìn)行染色,吹打均勻后,用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),每個(gè)樣品計(jì)數(shù)3次,結(jié)果取平均值。

      1.2.5 Fc融合蛋白表達(dá)量的檢測(cè) 采用的高效液相系統(tǒng)為Waters 2487 HPLC System(1525 Binary HPLC Pump ;717 plus Autosampler,2487 UV Detector,Waters), 色 譜 柱 為 PA immune detection sensor cartridge(2.1 mm×3 cm,Applied Biosystem,USA),流動(dòng)相為A相:pH為7.4的PBS緩沖液,B相:pH為3的磷酸緩沖液。進(jìn)樣量為20 μL,檢測(cè)波長為280 nm,A相前3 min以1 mL/min的流速平衡,第3分鐘到第12分鐘以1 mL/min的B相進(jìn)行等梯度洗脫。

      1.2.6 培養(yǎng)液中氨基酸濃度的檢測(cè) 氨基酸濃度采用高效液相色譜(1525 Binary HPLC Pump;717 plus Autosampler;2475 Multi λ Fluorescence Detector,Waters)測(cè)定。樣品采用AccQ·Fluor 試劑(Waters)按使用說明進(jìn)行柱前衍生和檢測(cè)。

      1.2.7 培養(yǎng)液中葡萄糖、氨和乳酸濃度的測(cè)定 葡萄糖、乳酸和氨濃度采用全自動(dòng)生化分析儀BioProfile 400 Analyzer(Nova Bio-medical,USA)測(cè)定。

      1.2.8 培養(yǎng)液中半乳糖濃度的檢測(cè) 采用EnzyChromTMGalactose Assay Kit(BioAssay System),分別按相應(yīng)使用說明進(jìn)行測(cè)定。

      1.2.9 Fc融合蛋白的純化 Fc融合蛋白采用親和層析的方法進(jìn)行純化,層析柱為HiTrap Protein A HP(GE Healthcare),具體方法步驟見產(chǎn)品說明書。

      1.2.10 總唾液酸含量的檢測(cè) 總唾液酸含量依據(jù)《中國藥典》(第三部)中間苯二酚的方法進(jìn)行檢測(cè)。

      1.2.11 N -連接糖基化分布的檢測(cè) N-連接的糖基化分布采用Kim等[7]檢測(cè)方法。

      1.2.12 數(shù)據(jù)分析 Fc融合蛋白的比生成速率qFcfusionprotein(mg/109cells/day)通過以下公式進(jìn)行計(jì)算:

      其中P為Fc融合蛋白濃度(mg/L);IVCC為活細(xì)胞密度對(duì)時(shí)間的積分(109cells·day/L)。

      2 結(jié)果

      2.1 半乳糖替代葡萄糖補(bǔ)料培養(yǎng)對(duì)細(xì)胞生長代謝和產(chǎn)物表達(dá)的影響

      2.1.1 對(duì)CHO細(xì)胞生長的影響 以1×106cells/mL的密度接種后細(xì)胞立即進(jìn)入指數(shù)生長期,6個(gè)培養(yǎng)過程在前期體現(xiàn)出相似的生長趨勢(shì),平均比生長速率約為0.73 day-1,96 h后細(xì)胞生長明顯減慢(圖1)。96 h后,GF5細(xì)胞出現(xiàn)快速死亡,168 h后其活細(xì)胞密度跌至3.88×106cells/mL,活性降為28.8%。同樣,GF4過程(80%替代比例)在192 h也出現(xiàn)了快速死亡的現(xiàn)象,240 h時(shí)其活細(xì)胞密度僅為2.16×106cells/mL,活性僅為26.3%,而其他培養(yǎng)過程細(xì)胞均維持較好的活性,同時(shí)培養(yǎng)終點(diǎn)時(shí)的活細(xì)胞密度也維持在9×106cells/mL左右。

      圖1 補(bǔ)料培養(yǎng)基中半乳糖替代對(duì)細(xì)胞生長的影響

      2.1.2 對(duì)CHO細(xì)胞代謝的影響 代謝方面,GF5過程葡萄糖在接種后48 h即消耗至零。隨著半乳糖替代比例的降低,葡萄糖耗竭的時(shí)間依次推后,GF4在96 h時(shí)葡萄糖濃度跌至0 mmol/L,GF3在120 h時(shí)葡萄糖濃度跌至0 mmol/L。而0%-60%半乳糖替代范圍內(nèi)由于補(bǔ)料培養(yǎng)基中的葡萄糖被替代程度更低,足以滿足細(xì)胞對(duì)葡萄糖的需求,因此GF2的葡萄糖濃度在整個(gè)培養(yǎng)過程中都維持在10-15 mmol/L之間,Con和GF1的葡萄糖濃度則是隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長而不斷升高,出現(xiàn)逐漸累積的現(xiàn)象(圖2-A)。

      與葡萄糖代謝對(duì)應(yīng)的,48 h葡萄糖濃度跌至0 mmol/L后,GF5的乳酸生成速率比開始明顯降低,72 h后乳酸由生成轉(zhuǎn)化為消耗狀態(tài),最終到144 h其濃度跌至16.4 mmol/L。GF4也是當(dāng)96 h葡萄糖耗竭時(shí),乳酸被重新利用,最終減少至20 mmol/L左右。雖然GF3后期的葡萄糖濃度也跌至0 mmol/L,但并沒有引起的乳酸的再利用。其他幾組由于未出現(xiàn)葡萄糖耗竭的情況,乳酸濃度都隨著培養(yǎng)過程的進(jìn)行而不斷升高,最終達(dá)到了45 mmol/L左右,3組之間的乳酸代謝沒有顯著性差異(圖2-B)。以上結(jié)果說明,在葡萄糖充足的情況下,CHO細(xì)胞以利用葡萄糖為主,當(dāng)葡萄糖耗竭后,乳酸會(huì)被細(xì)胞重新利用[8]。

      半乳糖的替代流加也引起了CHO細(xì)胞氨代謝的變化。GF5的氨濃度從96 h開始快速累積,最終達(dá)到了12 mmol/L左右,GF4過程中氨的濃度從120 h開始同樣有明顯升高,終濃度也達(dá)到了10 mmol/L以上。與乳酸代謝類似,Con、GF1、GF2和GF3最終的氨濃度也都隨著培養(yǎng)過程的進(jìn)行而緩慢升高,最終達(dá)到了6 mmol/L左右(圖2-C)。

      通過生化分析儀對(duì)各個(gè)培養(yǎng)過程的pH進(jìn)行離線檢測(cè)(圖2-D),從對(duì)應(yīng)過程的pH變化趨勢(shì)來看,GF4和GF5過程中pH值的升高很有可能與氨濃度的升高密切相關(guān)[9]。GF5的pH值從48 h開始快速上升,到120 h達(dá)到最高為7.8。同樣,GF4的pH值在96 h后開始快速升高,后期維持在7.6左右。而其他各組在整個(gè)培養(yǎng)過程中的pH均維持在6.7-7.0之間,在CHO細(xì)胞的正常耐受范圍內(nèi)。

      因?yàn)镚F5的細(xì)胞較早地出現(xiàn)了死亡,因此只考察了其他過程的氨基酸代謝情況。圖3所示為244 h時(shí)培養(yǎng)液中各氨基酸的濃度情況。由圖可知,244 h時(shí)各過程下氨基酸的濃度基本一致,只有Glu、Gln和Ala三者顯示出了較大的區(qū)別。隨著半乳糖替代比例的增加,Glu的濃度不斷升高,其中GF5過程達(dá)到了2 146 μmol/L,是Con過程的1.7倍。同時(shí),隨著半乳糖濃度的升高,胞外Gln的濃度逐步減少,其中GF5的最終濃度僅為112 μmol/L,幾乎消耗殆盡。結(jié)合各個(gè)過程中Gln和Glu的濃度趨勢(shì)以及氨代謝,說明在半乳糖替代比例較高的情況下,可能是葡萄糖代謝提供的能量有限,細(xì)胞轉(zhuǎn)向消耗Gln以提高能量供應(yīng),因此其胞外的Gln濃度會(huì)隨著半乳糖替代比例的增加而逐步降低,而Gln的代謝產(chǎn)物Glu和氨會(huì)逐漸增加。此外,Ala濃度隨著半乳糖替代比例的增加而升高,這可能與乳酸代謝有關(guān)。

      圖2 補(bǔ)料培養(yǎng)基中半乳糖替代對(duì)細(xì)胞代謝和pH的影響

      2.1.3 半乳糖替代補(bǔ)料培養(yǎng)對(duì)Fc融合蛋白表達(dá)的影響 蛋白表達(dá)方面,在較低半乳糖替代范圍內(nèi)(0%-

      圖3 補(bǔ)料培養(yǎng)基中半乳糖替代對(duì)氨基酸代謝的影響

      40%),隨著半乳糖替代程度的增加蛋白表達(dá)量逐步增加,其中GF2最終達(dá)到了853 mg/L,是Con的1.21倍(圖4-A)。隨著替代比例的進(jìn)一步增加,F(xiàn)c融合蛋白的表達(dá)量反而逐漸下降,其中GF4僅為633 mg/L,是Con的85%,這可能是由于后期細(xì)胞的代謝出現(xiàn)更大的轉(zhuǎn)變,細(xì)胞維持能力變差引起的。

      唾液酸是Fc融合蛋白最重要的質(zhì)量屬性之一,半乳糖的流加對(duì)其影響趨勢(shì)與其對(duì)蛋白表達(dá)量的影響十分一致(圖4-B)。同樣是在較低半乳糖替代比例(0-40%)內(nèi),F(xiàn)c融合蛋白的唾液酸含量隨著半乳糖濃度的升高而升高,其中GF2達(dá)到了57.02 μg/mg,比對(duì)照組提高了30%左右。但進(jìn)一步增加半乳糖的替代比例,并沒有增加Fc融合蛋白的唾液酸含量,其中GF4過程反而比對(duì)照組減少了16%(圖4-B)。結(jié)合對(duì)應(yīng)過程的氨代謝及pH,很有可能是在更高半乳糖的替代情況下,氨的過量生成抑制了胞內(nèi)GDP-GNAc的合成,造成了Fc融合蛋白唾液酸合成前體的缺乏。

      2.2 全部半乳糖替代對(duì)培養(yǎng)過程的影響

      圖4 補(bǔ)料培養(yǎng)基中半乳糖替代對(duì)Fc融合蛋白表達(dá)的影響

      為排除pH對(duì)培養(yǎng)過程的影響,在反應(yīng)器內(nèi)將pH控制在7.0左右,進(jìn)一步考察了全部半乳糖替代對(duì)細(xì)胞生長和產(chǎn)物唾液酸的影響。結(jié)果顯示,全部半乳糖替代的情況下,并未對(duì)細(xì)胞的生長造成不利影響,其最大活細(xì)胞密度甚至達(dá)到了1.41×107cells/mL(圖5-A),比搖瓶中的Con提高了40%,雖然其活細(xì)胞密度從192 h后開始明顯下降,最終僅為8.7×106cells/mL,但其細(xì)胞活性仍維持在99%左右。葡萄糖相對(duì)搖瓶內(nèi)更晚出現(xiàn)耗竭,第96小時(shí)葡萄糖濃度才跌至0 mmol/L(圖5-B)。從半乳糖的代謝趨勢(shì)來看,在0-192 h期間,細(xì)胞持續(xù)消耗半乳糖,其比消耗速率達(dá)到了0.54 mmol/(109cells·day),但是在192 h后,可能由于細(xì)胞狀態(tài)的改變,其并未進(jìn)一步消耗半乳糖。乳酸代謝可以分為3個(gè)階段,0-120 h內(nèi)乳酸持續(xù)生成,最高達(dá)到了27.5 mmol/L,其比成速率為1.96 mmol/(109cells·day)。隨后轉(zhuǎn)為消耗階段,比消耗速率為1.23 mmol/(109cells·day),當(dāng)培養(yǎng)到192 h時(shí),乳酸濃度也跌至0 mmol/L。氨濃度相對(duì)于搖瓶過程有明顯減少,最終濃度為9.36 mmol/L。雖然全部半乳糖替代對(duì)細(xì)胞生長代謝沒有不利影響,但其產(chǎn)物的比生成速率僅為10.3 pg/(cell·day),比搖瓶中的對(duì)照組減少了50%(圖5-C)。同時(shí),雖然將整個(gè)培養(yǎng)過程的pH控制在適合產(chǎn)物表達(dá)和唾液所修飾的范圍內(nèi),但是和搖瓶的Con相比,最終產(chǎn)物的唾液酸含量仍然有所下降,僅為40.8 μg/mg(圖5-D)。以上結(jié)果說明,雖然在半乳糖全部替代的情況下,將pH控制在細(xì)胞的生理范圍內(nèi),有效地降低了乳酸的生成,充分地支持了細(xì)胞的生長,但對(duì)于產(chǎn)物的表達(dá)和糖基化修飾會(huì)造成不利影響,可能是由于胞內(nèi)能量供應(yīng)不足引起的。

      2.3 40%比例半乳糖替代對(duì)培養(yǎng)過程的影響

      圖5 反應(yīng)器內(nèi)全部半乳糖替代對(duì)細(xì)胞生長和產(chǎn)物糖基化的影響

      為了平衡細(xì)胞的代謝和糖基化的合成,進(jìn)一步在反應(yīng)器內(nèi)考察了40%比例半乳糖替代對(duì)培養(yǎng)過程的影響。將補(bǔ)料中40%比例的葡萄糖用半乳糖替代后,雖然最高活細(xì)胞密度較搖瓶內(nèi)更低一些,只有7.9×106cells/mL,但后期卻一直維持在6×106cells/mL以上,活性也在98%左右(圖6-A)。最終Fc融合蛋白的表達(dá)量達(dá)到了1 106 mg/L,比搖瓶的Con提高了43%。此外,培養(yǎng)過程中Fc融合蛋白的總唾液酸含量在168 h前呈上升趨勢(shì),最高達(dá)到了71.2 μg/mg,隨后總唾液酸含量隨培養(yǎng)時(shí)間的延長而下降,最終維持在60 μg/mg左右(圖6-B),但仍比搖瓶的Con提高了37%。對(duì)N-連接的糖基化分布檢測(cè)結(jié)果顯示,使用40%的半乳糖替代葡萄糖后,G0F(不帶半乳糖和唾液酸的糖型結(jié)構(gòu))的含量從15.6%減少到了10.8%,而唾液酸含量則從35.6%提高到了42.2%,減少的G0F糖型都轉(zhuǎn)化為帶唾液酸化修飾的糖基結(jié)構(gòu)(圖6-C)。說明在Fc融合蛋白的表達(dá)過程中,半乳糖化修飾可能是限制蛋白唾液酸修飾的重要因素,因此半乳糖的加入可以有效地增加胞內(nèi)糖基前體的合成,提高了最終唾液酸的含量。

      3 討論

      作為CHO細(xì)胞重要的能源物質(zhì),糖代謝在細(xì)胞的生長、代謝、蛋白的表達(dá)以及質(zhì)量等方面都發(fā)揮著重要的作用。本研究以一株表達(dá)Fc融合蛋白的CHO細(xì)胞為對(duì)象,綜合考察了半乳糖替代流加對(duì)細(xì)胞生長、蛋白表達(dá)以及糖基化的影響。

      細(xì)胞生長方面,在pH沒有控制的搖瓶中,60%比例以上的半乳糖替代條件下,細(xì)胞后期的活率出現(xiàn)了顯著的下降,這可能與過高的氨濃度直接有關(guān)[10],也可能是由于過高的氨濃度引起了搖瓶內(nèi)pH的上升,進(jìn)而引起細(xì)胞的死亡[11]。在后續(xù)的反應(yīng)器實(shí)驗(yàn)中,通過對(duì)pH的穩(wěn)定控制,氨濃度得到了有效控制,細(xì)胞活率也得到有效維持,可見使用半乳糖替代葡萄糖的流加培養(yǎng)并不會(huì)對(duì)細(xì)胞生長造成不利影響。

      圖6 反應(yīng)器內(nèi)40%替代半乳糖對(duì)細(xì)胞生長和產(chǎn)物糖基化的影響

      代謝方面,60%以上半乳糖替代比例情況下,會(huì)出現(xiàn)葡萄糖耗竭的現(xiàn)象,細(xì)胞進(jìn)而轉(zhuǎn)向利用半乳糖和乳酸,因此GF4和GF5過程中的代謝副產(chǎn)物乳酸濃度有明顯的下降。60%替代比例的GF3過程雖然葡萄糖也控制在0 mmol/L左右,但是乳酸并沒有降低,和0-60%替代比例內(nèi)維持一致,說明葡萄糖和半乳糖的代謝相互關(guān)聯(lián)。糖酵解階段,氧化還原力平衡引起的ATP能力維持對(duì)于乳酸的代謝十分重要[12],本研究中在60%以上半乳糖替代比例下,當(dāng)半乳糖提供的ATP的速率未能彌補(bǔ)葡萄糖濃度降低帶來的ATP損失時(shí),乳酸開始明顯減少[13-14]。此外,結(jié)合TCA循環(huán)相關(guān)的氨基酸代謝,隨著半乳糖替代比例的增加,Glu的濃度不斷升高,胞外Gln的濃度則逐步減少。說明在半乳糖替代比例增大的情況下,可能是葡萄糖提供的能量代謝有限,細(xì)胞轉(zhuǎn)向消耗Gln以提高能量供應(yīng),因此其胞外的Gln濃度會(huì)隨著半乳糖替代比例的增加而逐步降低,而其代謝產(chǎn)物Glu和氨會(huì)逐漸增加。

      蛋白表達(dá)和糖基化方面,0-40%以內(nèi)半乳糖替代比例情況下,蛋白的表達(dá)量和總唾液酸含量都會(huì)隨著替代比例的增加而升高,而較高半乳糖替代范圍內(nèi)(60%-100%),兩者反而隨著替代比例的增加而有所減少。蛋白表達(dá)也與代謝緊密相連,較高替代范圍內(nèi),基于TCA能量供應(yīng)有所減少,會(huì)進(jìn)一步降低線粒體的ATP勢(shì)能,從而造成產(chǎn)量的降低[15]。唾液酸方面,雖然更多半乳糖的加入可以增加唾液酸前體的合成,但是同時(shí)細(xì)胞有可能并不能對(duì)其進(jìn)行有效吸收。在全部添加半乳糖的情況下,半乳糖出現(xiàn)了大量的累積,在能量供給不充分的情況下,全部替代半乳糖的情況反而降低了唾液酸的含量,同時(shí)由于代謝的遷移,過多的氨的生成也會(huì)抑制糖基化的合成[10-11]。Gramer等[16]的研究結(jié)果表明適量的半乳糖添加可以有效增加抗體半乳糖化,Liu等[17]通過寡糖分析表明半乳糖化是融合蛋白唾液酸合成的限制步驟,20 mmol/L半乳糖使Fc融合蛋白的半乳糖化糖型和唾液酸化糖型比分別提高23.5%和20.3%,Lee等[18]添加 40 mmol/L半乳糖則使凝血因子Ⅱ的唾液酸含量提高了26%。因此在本研究中40%比例替代情況下,當(dāng)唾液酸前體的合成和能量供應(yīng)達(dá)到有效平衡,部分G0F糖型轉(zhuǎn)化為半乳糖型,進(jìn)而轉(zhuǎn)化為帶唾液酸化修飾的糖基結(jié)構(gòu),最終總唾液酸含量得到了有效提高。

      4 結(jié)論

      本研究以表達(dá)Fc融合蛋白的CHO細(xì)胞為對(duì)象,通過補(bǔ)料培養(yǎng)基中用半乳糖替代葡萄糖的方式有效地提高了最終的蛋白表達(dá)量和總唾液酸含量,但機(jī)制仍值得進(jìn)一步研究,以利于建立高產(chǎn)高質(zhì)的培養(yǎng)過程。

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