楊紅霞 陳俊良 劉崴
摘要:綜述近年來(lái)鎘對(duì)植物的毒害及植物解毒機(jī)制的相關(guān)研究成果。主要從植物生長(zhǎng)、光合作用、植物酶活性、植物細(xì)胞分裂等方面闡述鎘的毒害機(jī)制,并從植物對(duì)鎘的吸收和轉(zhuǎn)運(yùn)、耐受機(jī)制、影響因素等方面討論植物的解毒機(jī)制。
關(guān)鍵詞:鎘;毒害;解毒;機(jī)制
中圖分類號(hào): Q948.12;X173 ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A ?文章編號(hào):1002-1302(2019)02-0001-08
鎘(Cd)是一種生物毒性很強(qiáng)的重金屬,是植物生長(zhǎng)、發(fā)育的非必需元素,當(dāng)植物體中Cd積累到一定程度時(shí),就會(huì)表現(xiàn)出各種毒害癥狀,如葉片枯黃、莖稈縮短、側(cè)根減少、葉綠素含量降低、抗氧化酶活性降低、細(xì)胞膜通透性發(fā)生改變,導(dǎo)致細(xì)胞損傷,從而對(duì)植物的生長(zhǎng)產(chǎn)生抑制作用[1-2]。當(dāng)Cd達(dá)到一定的濃度時(shí),不僅影響植物的正常生長(zhǎng),而且影響植物的生理活動(dòng),主要表現(xiàn)為影響植物的光合作用、植物酶活性、植物細(xì)胞分裂及膜活性、呼吸作用、蒸騰作用等。通常植株表現(xiàn)為發(fā)育緩慢、植株矮小、葉片失綠等癥狀。某些植物對(duì)鎘產(chǎn)生超累積作用,在重金屬鎘脅迫下,有一系列的耐性和解毒機(jī)制[3-6]。目前研究表明,植物的耐Cd機(jī)制主要包括螯合作用、區(qū)隔化作用、、抗氧化作用、排外作用、固定鈍化作用、應(yīng)激作用。本文著重討論了鎘對(duì)植物產(chǎn)生的毒害及植物對(duì)鎘吸收和耐性機(jī)制的研究進(jìn)展,從而為植物抗鎘性機(jī)制、防治鎘污染提供理論依據(jù),其超積累的生理生化機(jī)制對(duì)于Cd污染環(huán)境的植物修復(fù)研究具有重要意義。
1 植物受鎘的毒害
鎘對(duì)植物的毒害表現(xiàn)為2個(gè)方面:其一,鎘對(duì)植物生長(zhǎng)的影響;其二,鎘對(duì)植物生理活動(dòng)的影響。一般表現(xiàn)為植物細(xì)胞及整個(gè)植株的生長(zhǎng)受到抑制、根系活力降低、幼苗生長(zhǎng)緩慢、葉片縮卷甚至枯黃等。鎘影響植物的生理特性主要表現(xiàn)為影響植物的光合作用、抑制植物保護(hù)酶的活性、細(xì)胞膜通透性改變、硝酸還原酶活性下降等。
1.1 鎘對(duì)植物生長(zhǎng)的影響
Cd對(duì)植物生長(zhǎng)的影響主要表現(xiàn)出“低促高抑”現(xiàn)象。而Cd對(duì)植物生長(zhǎng)毒害的臨界濃度隨著不同土壤類型,不同植物種類而改變。何俊渝等研究結(jié)果表明,當(dāng)Cd2+濃度為5~15 mg/L 時(shí),Cd2+可以促進(jìn)玉米種子的萌發(fā),提高玉米的發(fā)芽勢(shì)和發(fā)芽率,促進(jìn)玉米芽與幼根的生長(zhǎng);當(dāng)Cd2+的濃度高于50 mg/L時(shí),明顯抑制了種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng)[7]。王明新等通過(guò)試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),隨著營(yíng)養(yǎng)液Cd濃度的增加,葉片光合色素含量呈先上升后下降趨勢(shì),丙二醛含量則呈線性遞增趨勢(shì),高濃度Cd處理(≥0.1 mmol/L)對(duì)孔雀草生長(zhǎng)產(chǎn)生了顯著的脅迫響應(yīng)[8]。郭智等研究發(fā)現(xiàn),鎘脅迫下龍葵幼苗地上部和根系生長(zhǎng)均受到嚴(yán)重抑制,其中根系受抑制程度更嚴(yán)重[9]。宋阿琳等研究表明,Cd脅迫下,小白菜體內(nèi)Cd含量和累積量隨處理濃度的上升而顯著增加,而且根系中的Cd含量顯著高于地上部[10]。Cd對(duì)植物根系的毒害主要通過(guò)加速根系細(xì)胞的老化,影響細(xì)胞分裂,從而改變RNA合成,抑制硝酸還原酶活性,減少根部對(duì)硝酸鹽和其他養(yǎng)分的吸收[11]。Cd對(duì)植物葉片發(fā)育的影響,主要表現(xiàn)為葉片光合作用降低,葉綠體含量減少,葉片縮卷,嚴(yán)重時(shí)甚至發(fā)黃。當(dāng)Cd2+濃度高時(shí),葉綠體內(nèi)基粒片層發(fā)生腫脹或結(jié)構(gòu)紊亂,線粒體內(nèi)膜脊腫脹或消失,細(xì)胞核核膜消失,從而導(dǎo)致植物生長(zhǎng)受到嚴(yán)重影響。張利紅等通過(guò)試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在Cd濃度為0.05、0.10、0.25、0.50 mmol/L的水培處理中,根系活力表現(xiàn)為先升高后降低的變化趨勢(shì),小麥生長(zhǎng)受到一定程度的抑制,并隨溶液中Cd濃度的增加,抑制加重[12]。張麗等通過(guò)盆栽試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),隨著土壤中重金屬鎘溶液處理濃度的增大,潤(rùn)草1號(hào)葉綠素和游離脯氨酸的含量均表現(xiàn)為先升高后降低,而根系活力則逐漸降低,細(xì)胞膜透性逐漸升高[13]。畢君等研究表明,雖然羽衣甘藍(lán)、華北景天、木槿地上部分的鎘含量大于10 mg/kg,但其生長(zhǎng)卻未出現(xiàn)異常,故此3種植物為鎘富集能力較強(qiáng)的植物;夾竹桃、木槿、紫穗槐根系的含鎘量均大于50 mg/kg,這對(duì)于污染土壤中Cd離子的固定和清除能起到一定的作用[14]。
1.2 鎘對(duì)植物生理活動(dòng)的影響
重金屬對(duì)植物生長(zhǎng)產(chǎn)生的不利影響可通過(guò)植物的一些生理活動(dòng)及其生理生化特征反映出來(lái)。
1.2.1 對(duì)植物光合作用的影響 植物的光合作用不僅能合成有機(jī)物,而且能釋放大量氧氣凈化空氣。而Cd對(duì)光合作用影響的機(jī)制目前還沒(méi)有一致的看法。有報(bào)道,Cd是通過(guò)影響葉綠素的生物合成,破壞葉綠體的結(jié)構(gòu)來(lái)影響植物的光合作用。張利紅等通過(guò)水培試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),葉綠素含量隨Cd濃度的增加而降低[12]。在過(guò)量Cd處理下,會(huì)影響植物體內(nèi)葉綠素的生物合成,使葉片葉綠素含量下降[15]。陳良等通過(guò)水培試驗(yàn)表明,在Cd脅迫下,南芋5號(hào)(NY5)和南芋2號(hào)2種菊芋幼苗凈光合速率(Pn)、氣孔導(dǎo)度(Gs)、蒸騰速率(Tr)均明顯下降[16]。滕振寧等研究結(jié)果表明,鎘處理后,敏感的水稻品種YZX和相對(duì)耐受的品種XY-12的凈光合速率均降低;鎘對(duì)2種水稻品種光響應(yīng)曲線參數(shù)的影響存在差異,其內(nèi)稟量子效率、最大凈光合速率、光飽和點(diǎn)與不添加鎘的對(duì)照相比均有所減小,而鎘處理后水稻劍葉光補(bǔ)償點(diǎn)卻大大增加[17]。張媛華研究表明,Cd顯著降低了綠豆幼苗的根長(zhǎng)、根數(shù)、株高及生物量,不僅降低了植物的光合速率,還降低了幼苗莖葉中微量礦質(zhì)元素鐵(Fe)、錳(Mn)、鋅(Zn)、銅(Cu)的含量,促進(jìn)根中Zn、Fe、Cu的積累,這說(shuō)明Cd可以通過(guò)改變植物對(duì)微量元素的積累影響植物的生長(zhǎng)發(fā)育和光合作用[18]。張永平等試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),鎘脅迫下,哈密綠和秀綠這2個(gè)甜瓜品種幼苗生長(zhǎng)量、凈光合速率、氣孔導(dǎo)度、蒸騰速率和氣孔限制值(Ls)均降低,且鎘濃度越高,下降幅度越大,胞間CO2濃度(Ci)隨著鎘濃度的增加而升高;哈密綠幼苗生長(zhǎng)和光合作用受鎘脅迫的影響小于秀綠[19]。
1.2.2 對(duì)植物保護(hù)酶系統(tǒng)的影響 Cd對(duì)植物的毒害首先是作用于細(xì)胞內(nèi)的氧化還原系統(tǒng),進(jìn)而引起一系列氧化還原反應(yīng),使抗氧化系統(tǒng)發(fā)生改變,且Cd易與細(xì)胞膜上蛋白體結(jié)合進(jìn)而破壞酶系統(tǒng)[20]。植物體內(nèi)各種抗氧化酶活性變化比較復(fù)雜,同時(shí)保護(hù)酶系統(tǒng)也用來(lái)保護(hù)植物免受氧化傷害。植物保護(hù)酶系統(tǒng)的組成主要有超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化物酶(POD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)。張利紅等通過(guò)試驗(yàn)表明,超氧化物歧化酶、過(guò)氧化物酶、丙二醛含量和細(xì)胞膜透性隨Cd濃度的增加而增加[12]。黃輝等進(jìn)行了水平玉米幼苗試驗(yàn),結(jié)果顯示在高濃度鎘脅迫下幼苗生長(zhǎng)幾乎停止;根部受到氧化損傷,SOD、CAT活性升高,POD、抗壞血酸過(guò)氧化物酶(ASA-POD)被明顯抑制,葉片中CAT、POD及ASA-POD活性顯著升高[21]。當(dāng)土壤鎘含量小于22.3 mg/kg時(shí),桑樹(shù)POD、SOD活性無(wú)明顯變化;當(dāng)其含量超過(guò)22.3 mg/kg時(shí),SOD活性降低;當(dāng)Cd含量超過(guò)145 mg/kg時(shí),POD活性才表現(xiàn)出明顯的降低趨勢(shì)[22]。此外,Cd還抑制固氮酶、脫氧核酸酶、核糖核酸酶、根系脫氫酶、淀粉酶、硝酸還原酶、多酚氧化酶、蛋白酶、抗壞血酸過(guò)氧化酶、乳酸脫氫酶等多種酶的活性[23]。Cd通過(guò)影響這些酶的活性,進(jìn)而影響植物的碳水化合物代謝、氮代謝、核酸代謝、呼吸作用等多種代謝活動(dòng)。
1.2.3 對(duì)植物細(xì)胞的影響 楊居榮發(fā)現(xiàn)在Cd脅迫條件下,煙草、萵苣、甜菜、胡蘿卜、紫花苜蓿5種植物細(xì)胞的生長(zhǎng)受到了明顯的抑制[24]。任安芝等用Cd處理青菜,隨著Cd濃度的提高,細(xì)胞膜的透性增強(qiáng),膜脂過(guò)氧化程度提高[25]。植物葉片細(xì)胞膜受到傷害后,細(xì)胞內(nèi)的大量離子和有機(jī)物外滲,同時(shí)外界有害有毒的物質(zhì)也容易進(jìn)入植物細(xì)胞體內(nèi),從而導(dǎo)致植物體生理活動(dòng)失調(diào)[26]。方繼宇等研究表明,Cd在馬纓丹根和葉細(xì)胞可溶性組分中的分配比例最高,分別占62.1%~54.2% 和59.8%~52.6%,其次在細(xì)胞壁中,分別占 23.8%~34.4%和28.7%~39.5%,在細(xì)胞器和細(xì)胞膜中的分配比例較低,表明鎘在馬纓丹根和葉細(xì)胞中的主要分布位點(diǎn)是可溶性組分和細(xì)胞壁,細(xì)胞壁固持和液泡區(qū)隔化可能是馬纓丹對(duì)鎘的重要解毒和耐性機(jī)制之一,對(duì)保持馬纓丹的細(xì)胞完整性具有重要意義[27]。隨著生物技術(shù)的發(fā)展,對(duì)細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)的研究越來(lái)越多。在低Cd濃度處理下,葉綠體基粒和線粒體內(nèi)腔峭突減少;在高Cd濃度脅迫下,葉綠體垛疊無(wú)規(guī)律,線粒體腫脹或消失[28-29]。
1.2.4 對(duì)其他生理特征的影響 另外,Cd脅迫還會(huì)造成植物其他生理特征的一些反應(yīng),如通過(guò)降低氮素吸收和硝酸還原酶活性來(lái)改變氨基酸組成、阻礙蛋白質(zhì)合成以及加速蛋白質(zhì)的分解。Vallee等研究表明,Cd使硝酸還原酶活性下降[30]。楊金鳳等研究表明,隨著Cd濃度的增加,油菜體內(nèi)硝酸還原酶活性及根系活力降低,油菜根內(nèi)游離脯氨酸含量逐漸增加[31]。陳愚等研究結(jié)果表明,一定濃度的鎘能夠改變沉水植物的硝酸還原酶活性,抑制超氧化物歧化酶活性,從而破壞其抗氧化防御系統(tǒng)[32]。趙天宏等試驗(yàn)結(jié)果表明,與硝態(tài)氮相比,Cd脅迫下,銨態(tài)氮能夠顯著提高小麥地上部干質(zhì)量、氮素積累量和小麥葉片的葉綠素含量;而當(dāng)施氮量在150~300 kg/hm2 范圍內(nèi),硝態(tài)氮對(duì)小麥葉片硝酸還原酶活性和可溶性蛋白含量的促進(jìn)作用高于銨態(tài)氮[33]。
2 植物對(duì)鎘的吸收及運(yùn)輸
植物的正常生長(zhǎng)除需要氮(N)、磷(P)、鉀(K)、硫(S)、鈣(Ca)、鎂(Mg)這些元素外,還需要鐵(Fe)、鋅(Zn)、錳(Mn)、鎳(Ni)、銅(Cu)和鉬(Mo)等微量元素。植物對(duì)金屬離子的吸收、運(yùn)輸、儲(chǔ)存有其對(duì)應(yīng)的機(jī)制,金屬的吸收和運(yùn)輸通過(guò)細(xì)胞膜上的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白來(lái)進(jìn)行,并且植物有著敏感的機(jī)制,使細(xì)胞內(nèi)金屬離子濃度在植物的生理活動(dòng)范圍內(nèi)[34-35]。
2.1 吸收機(jī)制
土壤中重金屬的有效態(tài)與植物生長(zhǎng)過(guò)程密切相關(guān)[36]。植物對(duì)金屬的吸收方式有以下2種:(1)通過(guò)根系分泌物螯合重金屬。例如,根系分泌物的羧基具有酸性,與重金屬結(jié)合是一種潛在的增加重金屬有效性的途徑[37-38]。(2)利用金屬的流動(dòng)性。金屬離子先通過(guò)植物根毛細(xì)胞膜上的通道進(jìn)入,再通過(guò)細(xì)胞膜的選擇通透性以共質(zhì)體途徑進(jìn)入植物根的表皮細(xì)胞[39-40]。植物根系吸收重金屬后向木質(zhì)部運(yùn)輸。大多數(shù)的金屬離子都是進(jìn)入到木質(zhì)部,少數(shù)金屬離子進(jìn)入到韌皮部。Zhao等研究表明,Cd超累積植物天藍(lán)遏藍(lán)菜(Thlaspi caerulescens)根細(xì)胞質(zhì)膜上有高選擇性的Cd轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng),對(duì)Cd吸收性較強(qiáng)[41]。植物體對(duì)重金屬轉(zhuǎn)運(yùn)還會(huì)受外部環(huán)境的影響。如Salt等報(bào)道,有機(jī)酸參與印度芥菜木質(zhì)部中Cd的運(yùn)輸,根系分泌的有機(jī)酸也參與了部分植物對(duì)Cd的吸收、運(yùn)輸[42]。Clemens研究表明,鎘作為植物的非必需元素,可通過(guò)鈣、鐵、錳、鋅等必需元素的吸收通道進(jìn)入植物體內(nèi)[43]。楊菲等研究了水稻對(duì)鎘的吸收情況,結(jié)果表明,鎘既可以以Cd-谷胱甘肽(GSH)、Cd-植物螯合肽(PC)等螯合形式,也可以以自由離子Cd2+的形式進(jìn)入根細(xì)胞內(nèi)[44]。
2.2 影響因素
影響植物對(duì)重金屬Cd的吸收有以下6個(gè)因素:(1)植物的種類。植物對(duì)重金屬的選擇性吸收與植物種類的特性有關(guān),根據(jù)不同物種對(duì)重金屬的選擇吸收和累積生物量的不同,來(lái)判斷是否可以作為該種重金屬的超累積植物。(2)植物生長(zhǎng)條件。不同生長(zhǎng)環(huán)境和種植條件會(huì)影響植物對(duì)重金屬的吸收,比如pH值、施用肥料品種、添加螯合劑的不同,都會(huì)影響到植物對(duì)重金屬的吸收。(3)植物根際。植物根系能吸收各種重金屬元素,并能進(jìn)行存儲(chǔ)和代謝,還能通過(guò)改變根系粗細(xì)和長(zhǎng)短來(lái)適應(yīng)重金屬的脅迫[45]。植物根際分泌物能夠活化土壤中的某些重金屬,從而增加植物的吸收。(4)環(huán)境因素。植物對(duì)重金屬的吸收會(huì)隨著土壤溫度、水分、光照等的變化而改變。(5)重金屬的有效性。不同土壤的pH值、Eh(土壤氧化還原電位)、植物根系分泌物、土壤的有機(jī)質(zhì)含量等因素都會(huì)影響重金屬的有效性,從而使植物可以選擇性地吸收不同形態(tài)的重金屬。(6)重金屬離子間的相互影響。不同種重金屬離子間存在相互競(jìng)爭(zhēng)的附著位點(diǎn),這會(huì)改變植物對(duì)重金屬離子的吸收能力,當(dāng)某一離子濃度過(guò)高時(shí),植物對(duì)其他離子的選擇性吸收將產(chǎn)生影響[46]。
2.3 累積及運(yùn)輸
能夠累積和運(yùn)輸Cd的植物主要具備以下幾個(gè)特點(diǎn):(l)植物根系具有較強(qiáng)的耐Cd能力和吸收能力;(2)根系吸收Cd后通過(guò)蒸騰作用能夠有效地運(yùn)輸?shù)街参锏牡厣喜?(3)葉片能對(duì)Cd區(qū)隔化,將大多數(shù)的Cd離子儲(chǔ)存在液泡中[6]。細(xì)胞膜上有運(yùn)輸重金屬離子的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白及高親和力結(jié)合位點(diǎn)[47-48]。為了讓植物更多地吸收重金屬,達(dá)到植物修復(fù)效果,研究者須清楚地理解重金屬的運(yùn)輸受哪些基因調(diào)控。張玉秀等研究表明,土壤微環(huán)境會(huì)使植物對(duì)Cd2+的吸收產(chǎn)生影響;植物根細(xì)胞壁會(huì)選擇性吸收、吸附和固定土壤中的Cd2+,其中大部分Cd2+被截留在細(xì)胞壁中,其余的則通過(guò)主動(dòng)運(yùn)輸或協(xié)助擴(kuò)散等方式透過(guò)細(xì)胞膜進(jìn)入根細(xì)胞中;部分Cd在根細(xì)胞液泡中積累,部分通過(guò)木質(zhì)部運(yùn)輸?shù)降厣喜糠?莖葉部的大部分Cd2+則通過(guò)絡(luò)合作用被固定在液泡中,僅少量在細(xì)胞壁和細(xì)胞質(zhì)中被截留[35]。
與植物累積運(yùn)輸Cd相關(guān)的基因有以下幾類:
(1)鋅鐵調(diào)控蛋白(ZRT,IRT-like protein,簡(jiǎn)稱ZIP)家族的基因。當(dāng)植物對(duì)Fe離子的吸收供不應(yīng)求時(shí),植物就會(huì)吸收更多的Cd離子[49-50]。Eide等對(duì)擬南芥的研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)缺少Fe時(shí),植物轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白Zip家族有關(guān)運(yùn)輸?shù)幕駻tIRT1會(huì)優(yōu)先吸收Fe2+到根表皮,同時(shí)運(yùn)輸Mn2+、Zn2+、Cd2+等二價(jià)態(tài)金屬離子[51]。另有報(bào)道稱,Zip家族的許多成員都參與了上述4種離子的運(yùn)輸[52]。(2)陽(yáng)離子擴(kuò)散促進(jìn)劑(cation diffusion facilitator ,簡(jiǎn)稱CDF)家族蛋白的基因。CDF是另一類轉(zhuǎn)運(yùn)運(yùn)輸?shù)鞍椎拇呋瘎?,其主要作用是促進(jìn)Zn2+的運(yùn)輸;另外,對(duì)Co2+、Fe2+、Cd2+、Ni2+、Mn2+的運(yùn)輸也起到了一定的作用[53-54]。(3)天然抗性相關(guān)巨噬細(xì)胞蛋白(natural resistance-associated macrophage protein 1,簡(jiǎn)稱NRAMP1) (一種膜內(nèi)在蛋白)的基因。NRAMP1基因在擬南芥中與Fe2+、Mn2+、Cd2+的運(yùn)輸有關(guān)[55-56]。(4)CPX型重金屬ATP酶(Cpx-type heavy metal ATPases)的基因。已證實(shí)大量有機(jī)體內(nèi)有該基因,且該基因也是Cu、Zn、Cd、Pb等重金屬橫跨細(xì)胞膜運(yùn)輸必不可少的調(diào)控基因[57]。
重金屬Cd被植物吸收后,大部分富集在根部,少量遷移到地上部,通常Cd在植物體內(nèi)積累的含量從大到小的順序是根>莖>葉>子實(shí)。有報(bào)道,印度芥菜在Cd濃度為 0.1 mg/L 的溶液中時(shí),在地上部植株干質(zhì)量中Cd的濃度達(dá)到110 mg/kg,而在根濃度干質(zhì)量中Cd的濃度達(dá)到 670 mg/kg。這主要是因?yàn)镃d在印度芥菜根系中能快速地螯合,形成 Cd-S4 的混合物,達(dá)到Cd的累積效果。在印度芥菜根系中,Cd的運(yùn)輸主要靠木質(zhì)部,而在植株地上部Cd的運(yùn)輸則是靠植物的蒸騰作用[58]。這表明印度芥菜具有在根部截留重金屬的能力,從而避免較高濃度的重金屬進(jìn)入地上部分,產(chǎn)生更為嚴(yán)重的生理毒害作用[59]。蘇徳純等研究發(fā)現(xiàn),印度芥菜能夠活化、吸收石灰性土壤中的難溶態(tài)Cd,隨著土壤中CdCO3加入量的增加,印度芥菜根系和地上部中的Cd含量顯著增加,印度芥菜吸收的Cd有71%~82%在地上部累積[60]。孫濤等研究發(fā)現(xiàn),在土壤重金屬含量較低的情況下,大多數(shù)重金屬離子先在印度芥菜根部富集,而只有少數(shù)運(yùn)輸?shù)降厣喜糠?,這可能表明印度芥菜在根部具有截留重金屬的能力,從而避免高濃度重金屬進(jìn)入地上部分產(chǎn)生更嚴(yán)重的生理毒害作用[59]。
3 植物耐鎘機(jī)制
在高濃度Cd的脅迫下,有些植物的生長(zhǎng)發(fā)育基本不受影響;而在輕微的重金屬污染條件下,有些植物就停止生長(zhǎng)發(fā)育,這表明植物對(duì)重金屬具有某種抗性機(jī)制。植物在重金屬脅迫下,有一系列的耐性和解毒機(jī)制[4-5,61]。有的植物是通過(guò)阻止重金屬進(jìn)入根系來(lái)耐Cd,還有些植物通過(guò)地上部對(duì)Cd的富集來(lái)耐Cd[62]。目前研究表明,植物的耐Cd機(jī)制主要包括以下幾個(gè)方面:螯合作用、區(qū)隔化作用、抗氧化作用、排外作用、固定鈍化作用、應(yīng)急作用。其中,植物的區(qū)隔化作用和螯合作用占主導(dǎo)地位,雖然大多數(shù)學(xué)者對(duì)其在重金屬的耐受機(jī)制中的作用進(jìn)行了廣泛的研究,但關(guān)于多變復(fù)雜的螯合肽的研究至今未達(dá)到共識(shí)。
3.1 螯合作用
螯合作用主要是指重金屬離子進(jìn)入植物體內(nèi)后,植物體內(nèi)的金屬硫蛋白(MTs)、植物螯合肽(PCs)、谷胱甘肽(GSH)、檸檬酸、草酸、蘋(píng)果酸等能和重金屬離子發(fā)生螯合作用,形成穩(wěn)定的螯合物,從而降低重金屬毒性或解毒作用[63]。重金屬的解毒機(jī)制一般是配合基通過(guò)螯合作用與重金屬離子形成配合物,然后儲(chǔ)存于植物液泡中[64]。不同的螯合肽物質(zhì)在重金屬解毒機(jī)制中的作用不同。重金屬通過(guò)細(xì)胞膜一般須要被配體螯合,以此減少與細(xì)胞復(fù)合物不必要的聯(lián)系。與重金屬非超積累物種相比,重金屬超積累物種中具有更高的植物螯合肽積累的能力,這表明植物螯合肽在重金屬隔離、重金屬解毒和重金屬排除等方面起著重要作用[65]。
3.1.1 谷胱甘肽 谷胱甘肽是一種非巰基蛋白,在細(xì)胞(線粒體、葉綠體、液泡、細(xì)胞質(zhì))中大量存在;由于結(jié)構(gòu)特殊,谷胱甘肽在有機(jī)體中能發(fā)揮較大的功能,在細(xì)胞的新陳代謝過(guò)程中起主要作用[66]。谷胱甘肽的高穩(wěn)定性和親水性在螯合重金屬、解毒外來(lái)污染物的過(guò)程中起防御作用[67-69]。在重金屬脅迫下,谷胱甘肽能結(jié)合重金屬離子形成復(fù)合物,而結(jié)合重金屬的離子主要受谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶支配,形成的這種復(fù)合物會(huì)被運(yùn)輸?shù)街参锶~片的液泡中,從而保護(hù)植物細(xì)胞,防止其受害[70]。單長(zhǎng)卷等研究表明,冰草能夠通過(guò)增強(qiáng)葉片中參與抗壞血酸、谷胱甘肽的合成和循環(huán)代謝的酶的活性,維持植物體內(nèi)谷胱甘肽、抗壞血酸水平及其氧化還原狀態(tài),從而抵御干旱造成的氧化脅迫[71]。谷胱甘肽生物合成物質(zhì)的增加可增強(qiáng)植物對(duì)Cd的耐性,并促進(jìn)Cd在一些植物地上部的積累,從而達(dá)到植物修復(fù)的目的[72]。與前述觀點(diǎn)不同的是,Cobbett等對(duì)擬南芥進(jìn)行試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),GSH的含量與植物耐重金屬有較強(qiáng)的關(guān)系,但并不是意味著GHS含量越高,對(duì)重金屬的耐性越強(qiáng)[73]。植物可能在耐重金屬脅迫時(shí),并非僅GSH單獨(dú)作用,而是有復(fù)雜的機(jī)制[74]。由于谷胱甘肽金屬配合物運(yùn)輸機(jī)制的研究鮮有報(bào)道,因此該方面有待于進(jìn)一步了解。
3.1.2 金屬硫蛋白 金屬硫蛋白分子量低,富含半胱氨酸的小分子蛋白質(zhì),能通過(guò)一連串的巰基來(lái)絡(luò)合重金屬,存在于絕大多數(shù)真核生物中[75]。在重金屬脅迫下,和其他螯合物相比,金屬硫蛋白在生物解毒方面發(fā)揮著重要作用,并且許多研究已證實(shí)其為重金屬脅迫的生物指示者[76-78]。植物金屬硫蛋白中半胱氨酸(Cys)存在形式有Cys-x-Cys,Cys-x-x-Cys,Cys-Cys(串),x代表Cys以外任何1種氨基酸;植物MTs分為6個(gè)亞家族:P1、P2、p2v,p3,pec、p21[79]。金屬硫蛋白最早在動(dòng)物組織內(nèi)被發(fā)現(xiàn),動(dòng)物接觸Cd后在肝臟合成Cd的金屬硫蛋白,匯集于腎臟,形成尿鎘排出[80-81]。張海燕等將大蒜的AsMT2b基因轉(zhuǎn)到擬南芥中表達(dá),使擬南芥對(duì)重金屬Cd的耐性明顯增強(qiáng),對(duì)Cd2+的累積量也隨即增加[82]。同樣的結(jié)果在Grispen等的研究[83]中也得到體現(xiàn),其在煙草中轉(zhuǎn)入AtMT2b基因,提高了煙草對(duì)砷(As)的耐性,增加了As向植株地上部的轉(zhuǎn)移。前面的研究很好地解釋了植物MTs能提高植物對(duì)重金屬的耐性,但其對(duì)重金屬的解毒機(jī)制尚不清楚,可能是單一作用,也可能有其他轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白和螯合肽的協(xié)同作用,包括運(yùn)輸轉(zhuǎn)移等。Guo等研究發(fā)現(xiàn),在擬南芥中,有6種MTs:MT1a,MT2a,MT2b,MT3,MT4a、MT4b。其中MT1a對(duì)Cd的耐性和累積在擬南芥中是必需的,PCs和MTs可以共同保護(hù)擬南芥免受鎘的毒害[84]。
3.1.3 植物螯合肽 PCs是一種由半胱氨酸、谷氨酸(Glu)和甘氨酸(Gly)組成的含巰基螯合多肽,其能和金屬離子結(jié)合形成重金屬PC螯合物[85]。植物螯合肽廣泛地存在于單子葉、雙子葉、裸子和藻類植物的細(xì)胞中,只要有微量的重金屬,就能在植物細(xì)胞中檢測(cè)到植物螯合肽。PCs是重金屬離子代謝,維持細(xì)胞體內(nèi)平衡不可缺少的[86-87]。PCs主要通過(guò)植物螯合態(tài)酶的作用,由谷胱甘肽合成。一些研究者報(bào)道,一定濃度的重金屬脅迫下,PCs能增加植物螯合肽的形成,其主要以(γ-Glu-Cys)n-Gly(n=2~11)的結(jié)構(gòu)存在,植物螯合肽將和重金屬Cd形成分子量為2 500~3 600的復(fù)合物[88]。雖然PCs在對(duì)重金屬Cd的解毒過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用,但其在生理或生態(tài)聯(lián)系上的機(jī)制還不是很清楚。Wagner認(rèn)為,在低濃度Cd污染的土壤中,Cd2+會(huì)與液泡中的檸檬酸發(fā)生螯合反應(yīng);而在高濃度Cd污染的土壤中,PCs扮演著相當(dāng)重要的角色[89]。Howden等認(rèn)為,即使在0.6 μmol/L的Cd濃度下,甚至無(wú)污染的土壤中,PCs含量也能被檢測(cè)到,其在金屬螯合體系中起到不可替代的作用[90]。張妍茹等研究發(fā)現(xiàn),植物螯合肽合成酶(phytochelatin synthase,簡(jiǎn)稱PCs)可在重金屬離子激活下,以谷胱甘肽及其巰醇鹽為雙底物催化合成植物螯合肽,從而解除生物體內(nèi)重金屬的毒性[91]。研究表明,在高等植物中分離最多的重金屬螯合肽是PCs,PCs具有解除重金屬對(duì)植物細(xì)胞的毒害以及維持細(xì)胞內(nèi)必需金屬離子濃度相對(duì)穩(wěn)定的作用[92]。
3.2 區(qū)隔化作用
區(qū)隔化作用在植物耐重金屬脅迫以及對(duì)重金屬解毒的過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用,其能阻止Cd2+在細(xì)胞質(zhì)中自由流通,將Cd2+限制在一定的區(qū)域內(nèi)。Salt等研究發(fā)現(xiàn),液泡內(nèi)積累的Cd濃度是液泡外濃度的38倍[93]。細(xì)胞質(zhì)和液泡對(duì)植物耐Cd的作用機(jī)制主要有以下3點(diǎn):(1)在鎘脅迫下,脅迫細(xì)胞質(zhì)溶液中形成植物螯合肽(主要是PC3)和谷胱甘肽,這些物質(zhì)或絡(luò)合Cd2+形成低分子量復(fù)合物,從而限制Cd2+在細(xì)胞質(zhì)特定區(qū)域活動(dòng)[94]。(2)Kneer等研究發(fā)現(xiàn),在液泡膜上存在著大量的S2-,能與大量的Cd2+結(jié)合[95]。(3)液泡內(nèi)部,存在著各種有機(jī)酸(檸檬酸、草酸、蘋(píng)果酸)和氨基酸,能與Cd2+結(jié)合形成各種高分子的復(fù)合物,使Cd2+的毒性降低并限制其流動(dòng)[96]。楊紅霞等研究發(fā)現(xiàn),印度芥菜幼苗分別用0.5、1.0、2.0、3.0、5.0 mg/L鎘脅迫1、5、7、10、14 d后收獲,采用電感耦合等離子體質(zhì)譜法測(cè)定印度芥菜根系和葉片亞細(xì)胞中的鎘含量[97]。結(jié)果表明,Cd含量在細(xì)胞壁中的比例為 50%~64%,細(xì)胞液中為22%~38%,細(xì)胞器中為7%~17%,Cd在細(xì)胞壁中所占比例顯著高于在細(xì)胞液和細(xì)胞器中,該結(jié)果證明了細(xì)胞壁區(qū)隔化在Cd的解毒機(jī)制中具有重要的作用。
另外,植物根系分泌物與根際形成的植物-微生物微系統(tǒng)能防御Cd2+等進(jìn)入植物根系,這與植物種類、分泌物組成及根系表皮的細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)密切相關(guān)[98]。因此,不僅是液泡起到了區(qū)隔化作用,細(xì)胞壁在區(qū)隔化作用中也發(fā)揮了很好的作用。在細(xì)胞水平上,重金屬超富集植物可使富集的重金屬暫時(shí)儲(chǔ)存于液泡中,緩解重金屬對(duì)細(xì)胞質(zhì)及細(xì)胞器的各種生理代謝活動(dòng)的傷害[99]。首先,可以直接結(jié)合Cd2+,該反應(yīng)短時(shí)間內(nèi)就可以完成;其次,細(xì)胞壁中的纖維素、果膠質(zhì)和糖蛋白極易形成網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),一方面阻止了Cd2+的流動(dòng),另一方面在一定程度上能固定Cd2+[77]。
3.3 抗氧化作用
重金屬污染能導(dǎo)致植物體內(nèi)產(chǎn)生大量的超氧陰離子自由基( O-2 · ?)、羥自由基(·OH)、一氧化氮自由基(NO·)、氫過(guò)氧自由基(HOO·)、烷氧基(RO·)、烷過(guò)氧基(ROO·)等活性氧自由基(ROS),使蛋白質(zhì)和核酸等生物大分子變性、膜脂過(guò)氧化,導(dǎo)致植物受傷害。據(jù)報(bào)道,植物的抗氧化系統(tǒng)在植物耐重金屬脅迫中起非常重要的作用,并能通過(guò)其被氧化的程度來(lái)指示重金屬的污染程度[100]。每個(gè)植物細(xì)胞都有合成抗氧化物質(zhì)的能力,為避免在脅迫條件下,自由基的產(chǎn)生被潛在地破壞,植物在重金屬脅迫下能合成各種抗氧化物質(zhì),以發(fā)揮防御作用[101]。為了應(yīng)對(duì)脅迫,植物會(huì)產(chǎn)生抗氧化劑,包括抗氧化酶[SOD、CAT、POD、抗壞血酸過(guò)氧化物酶(APX)]及非酶抗氧化劑(GSH、AsA等),以其來(lái)清除自由基,從而抵抗ROS對(duì)細(xì)胞的損傷[102]。這些抗氧化物質(zhì)通過(guò)不同的機(jī)制來(lái)實(shí)現(xiàn)如活性氧物質(zhì)的清除、重金屬的螯合、抗氧化性物質(zhì)的更新、抑制膜脂被傷害和修復(fù)被氧化所損失的DNA分子等功能[103]。Iannelli等研究發(fā)現(xiàn),在鎘脅迫下蘆葦?shù)母鱾€(gè)器官中過(guò)氧化氫酶、超氧化物歧化酶等酶活性上升,GSH含量會(huì)增加,谷胱甘肽硫轉(zhuǎn)移酶(GST)活性也相應(yīng)增強(qiáng)[104]。Allen研究表明,在葉綠體中如果谷胱甘肽的合成增多,將會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞的氧化性損傷,這可能是因?yàn)槿~綠體所有的氧化還原狀態(tài)被改變[105]。也有不同學(xué)者認(rèn)為,不同抗氧化物質(zhì)的比例減少,可以作為細(xì)胞內(nèi)活性氧清除的1個(gè)信號(hào)[90,106]。Iannelli等的研究結(jié)果表明,以Cd2+處理的蘆葦與對(duì)照相比,根、匍匐莖、葉中SOD、APX、CAT活性及GSH含量都增加,其中根部GSH含量顯著增加,GST活性也得到提高,抗氧化活性的增強(qiáng)提高了該植物對(duì)Cd2+的耐性,因此認(rèn)為抗氧化系統(tǒng)既具有解毒(Cd2+)功能,同時(shí)又是Cd2+植物毒性的作用位點(diǎn)[104]。
3.4 排外作用
細(xì)胞質(zhì)膜在防止Cd2+進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)中起到了重要的防御作用。有研究表明,重金屬元素進(jìn)入植株體并被其吸收、運(yùn)輸?shù)倪^(guò)程伴隨著植物對(duì)其他元素的吸收。例如,Cd2+進(jìn)入萌發(fā)的蘿卜種子是通過(guò)Ca離子渠道[107]。耐Cd植物在Cd脅迫下可保持細(xì)胞膜的完整性,并在細(xì)胞膜作用上表現(xiàn)出一定的共性。如可以防止細(xì)胞膜外有毒重金屬的進(jìn)入或細(xì)胞膜內(nèi)物質(zhì)的外滲;細(xì)胞膜的選擇性可通過(guò)運(yùn)輸來(lái)降低重金屬的含量等。Costa等研究表明,在Cd脅迫下,萵苣和白羽扇豆的根系分泌物(主要是天冬酰胺)含量增加,而這些根系分泌物可阻止Cd2+進(jìn)入植物根系[108]。張正慶等研究表明,土壤中含有的大量水溶性和交換態(tài)的重金屬離子是植物中毒的重要原因,植物主要通過(guò)自身的衰老方式將重金屬離子排出體外[109]。
3.5 固定鈍化作用
在植物耐Cd2+脅迫過(guò)程中,第一道屏障便是植物根系,植物根系能通過(guò)細(xì)胞壁和胞外分泌物來(lái)固定鎘[110]。在菜豆的根系和葉片中,Cd2+基本上都被固定在細(xì)胞壁的果膠網(wǎng)點(diǎn)上[98]。還有一些植物將大量重金屬離子阻止在根部,限制了重金屬向根內(nèi)和植株地上部的運(yùn)輸,從而使植物免受或減輕傷害;對(duì)于一些可食用的作物,如果只食用地上部部分,那么這種機(jī)制將起到重要的作用[111]。植物根系對(duì)Cd的固定,不僅和Cd2+的濃度有關(guān),還和植物的品種有關(guān)。而有一些植物,在重金屬Cd的脅迫下,將Cd2+固定在植株地上部某些組織中,避免植株自身受到傷害,而這種將有毒物質(zhì)固定在地上部分特定的組織或葉肉細(xì)胞中的植物品種比將Cd固定在植物根系的植物品種要少很多。
3.6 應(yīng)激作用
當(dāng)植物處于高溫、重金屬污染和其他一些化學(xué)處理?xiàng)l件下時(shí),植物細(xì)胞常常會(huì)開(kāi)始合成熱休克蛋白(heats hock proteins,簡(jiǎn)稱HSPs),稱之為應(yīng)激蛋白[112]。不同的應(yīng)激蛋白通過(guò)協(xié)同作用來(lái)維持細(xì)胞正常代謝,它們通過(guò)提高細(xì)胞的耐Cd性,使植物免受Cd脅迫的影響[113]。有研究表明,受Cd脅迫的細(xì)胞會(huì)產(chǎn)生特殊的轉(zhuǎn)錄mRNA,而該物質(zhì)能調(diào)節(jié)合成應(yīng)激蛋白[114]。在1.0 mmol/L Cd脅迫下,番茄細(xì)胞在細(xì)胞膜、線粒體膜、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上產(chǎn)生大量的應(yīng)激蛋白70(hsp70)[115]。Neumann等發(fā)現(xiàn),酵母在Cd脅迫條件下也會(huì)產(chǎn)出這種應(yīng)激蛋白,而這種應(yīng)激蛋白不僅存在于ATP中,還能作為泛素的底物[116]。
在Cd脅迫下,植物也會(huì)產(chǎn)生一定量的乙烯促進(jìn)植物體內(nèi)過(guò)氧化物酶和酚的累積,提高解毒過(guò)氧化氫及指示抗壞血酸過(guò)氧化物酶的能力,使植物基因的表達(dá)得到調(diào)節(jié),編碼金屬硫的防御蛋白,從而減少植物葉片對(duì)水和鎘的吸收[111,117]。由于缺乏數(shù)據(jù),無(wú)法在分子水平上理解應(yīng)激乙烯的合成與Cd脅迫之間的關(guān)系;對(duì)此尚且不能排除Cd脅迫影響了植物細(xì)胞對(duì)Ca2+的吸收。而早在1992年,Pennazio等已經(jīng)研究了Ca2+的吸收與乙烯合成酶的關(guān)系,指出Cd應(yīng)激乙烯的作用是限制水和Cd2+向植物葉片運(yùn)輸;指示抗壞血酸過(guò)氧化物酶的能力,解毒過(guò)氧化氫;能夠調(diào)節(jié)和管理植物基因的表達(dá),編碼金屬硫防御蛋白[118-119]。
4 展望
重金屬鎘作為污染物,在環(huán)境中廣泛存在,其毒性大、半衰期長(zhǎng),已成為影響植物生長(zhǎng)的重要限制因子。鎘對(duì)植物的危害不僅表現(xiàn)在對(duì)植物生理生化方面的影響,而且使其產(chǎn)量及品質(zhì)降低,使其通過(guò)食物鏈進(jìn)入人體,對(duì)人們的健康造成威脅。因此,研究鎘對(duì)植物的危害及植物對(duì)鎘的耐性機(jī)制顯得尤為重要。鑒于目前的技術(shù)手段及研究進(jìn)展,還須要進(jìn)一步探討重金屬在植物體內(nèi)的遷移轉(zhuǎn)化及累積機(jī)制,特別是對(duì)于重金屬的形態(tài)轉(zhuǎn)化、轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的基因、區(qū)隔化的分子機(jī)制、植物耐鎘的關(guān)鍵因子、植物的耐鎘機(jī)制調(diào)控機(jī)制、重金屬之間的相互作用、抗氧化酶的調(diào)控機(jī)制等的研究,這對(duì)更好地挑選耐鎘植物及超富集植物具有重要意義。因此,有必要借助于基因工程、分子生物學(xué)、生物信息學(xué)、植物生理學(xué)等技術(shù)手段,加強(qiáng)植物對(duì)重金屬鎘脅迫的響應(yīng)及其分子機(jī)制研究;同時(shí),對(duì)重金屬含量低的作物進(jìn)行篩選,克隆超累積植物耐性基因,在非超累積植物中進(jìn)行應(yīng)用。最后對(duì)于植物耐性的脅迫信號(hào)及激素信號(hào)的研究也亟待解決。因重金屬鎘對(duì)植物的毒害是多方面的,植物對(duì)鎘的耐性機(jī)制也受多種影響因素的調(diào)控,還須進(jìn)一步深入研究和探索。
參考文獻(xiàn):
[1]Sneller F E C,Noordover E C M,Ten Bookum W M,et al. Quantitative relationship between phytochelatin accumulation and growth inhibition during prolonged exposure to cadmium in Silene vulgaris[J]. Ecotoxicology,1999,8(3):167-175.
[2]Lin L,Zhou W H,Dai H X,et al. Selenium reduces cadmium uptake and mitigates cadmium toxicity in rice[J]. Journal of Hazardous Materials,2012,235/236:343-351.
[3]Lasat M M. Phytoextraction of toxic metals:a review of biological mechanisms[J]. Journal of Environmental Quality,2002,31(1):109-120.
[4]Mishra S,Srivastava S,Tripathi R D,et al. Lead detoxification by coontail (Ceratophyllum demersum L.) involves induction of phytochelatins and antioxidant system in response to its accumulation[J]. Chemosphere,2006,65(6):1027-1039.
[5]Seth C S,Chaturvedi P K,Misra V. The role of phytochelatins and antioxidants in tolerance to Cd accumulation in Brassica juncea L.[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety,2008,71(1):76-85.
[6]宋榕潔,唐艷葵,陳 玲,等. 超富集植物對(duì)鎘、砷的累積特性及耐性機(jī)制研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,43(6):6-10.
[7]何俊瑜,王陽(yáng)陽(yáng),任艷芳,等. 鎘脅迫對(duì)不同水稻品種幼苗根系形態(tài)和生理特性的影響[J]. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào),2009,18(5):1863-1868.
[8]王明新,陳亞慧,白 雪,等. 孔雀草對(duì)鎘脅迫的響應(yīng)及其積累與分布特征[J]. 環(huán)境化學(xué),2014,33(11):1878-1884.
[9]郭 智,王 濤,奧巖松. 鎘對(duì)龍葵幼苗生長(zhǎng)和生理指標(biāo)的影響[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2009,28(4):755-760.
[10]宋阿琳,李 萍,李兆君,等. 鎘脅迫下兩種不同小白菜的生長(zhǎng)、鎘吸收及其亞細(xì)胞分布特征[J]. 環(huán)境化學(xué),2011,30(6):1075-1080.
[11]張 軍,束文圣. 植物對(duì)重金屬鎘的耐受機(jī)制[J]. 植物生理與分子生物學(xué)學(xué)報(bào),2006,32(1):1-8.
[12]張利紅,李培軍,李雪梅. 鎘脅迫對(duì)小麥幼苗生長(zhǎng)及生理特性的影響[J]. 生態(tài)學(xué)雜志等,2005,23(4):69-71.
[13]張 麗,趙忠濤,李祖祥,等. 土壤中重金屬鎘污染對(duì)潤(rùn)草1號(hào)生理生化指標(biāo)的影響[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,55(19):4952-4955.
[14]畢 君,郭偉珍,高紅真. 9種植物對(duì)鎘的忍耐和富集能力研究[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2013,29(34):12-16.
[15]張 帆,萬(wàn)雪琴,翟 晶. 鎘處理下增施氮對(duì)楊樹(shù)葉綠素合成和葉綠體超微結(jié)構(gòu)的影響[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào),2014,28(3):485-491.
[16]陳 良,隆小華,鄭曉濤,等. 鎘脅迫下兩種菊芋幼苗的光合作用特征及鎘吸收轉(zhuǎn)運(yùn)差異的研究[J]. 草業(yè)學(xué)報(bào),2011,20(6):60-67.
[17]滕振寧,方寶華,劉 洋,等. 鎘對(duì)不同品種水稻光合作用的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)氣象,2016,37(5):538-544.
[18]張媛華. Cd脅迫對(duì)綠豆幼苗生長(zhǎng)、光合作用及微量元素代謝的影響[J]. 東北農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,41(1):35-37.
[19]張永平,沈若剛,姚雪琴,等. 鎘脅迫對(duì)甜瓜幼苗抗氧化酶活性和光合作用的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2015,31(34):82-88.
[20]Zhang F Q,Shi W Y,Jin Z X,et al. Response of antioxidative enzymes in cucumber chloroplasts to cadmium toxicity[J]. Journal of Plant Nutrition,2003,26(9):1779-1788.
[21]黃 輝,李 升,郭嬌麗. 鎘脅迫對(duì)玉米幼苗抗氧化系統(tǒng)及光合作用的影響[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2010,29(2):211-215.
[22]陳朝明,龔惠群,王凱榮. Cd對(duì)桑葉品質(zhì)生理生化特性的影響及其機(jī)理研究[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),1996,7(4):417-423.
[23]張金彪,黃維南. 鎘對(duì)植物的生理生態(tài)效應(yīng)的研究進(jìn)展[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),2000,20(3):514-523.
[24]楊居榮. 鎘、銅對(duì)植物細(xì)胞的毒性及元素吸收特性的影響[J]. 環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),1991,11(3):381-386.
[25]任安芝,高玉葆,劉 爽. 鉻、鎘、鉛脅迫對(duì)青菜葉片幾種生理生化指標(biāo)的影響[J]. 應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2000,6(2):112-116.
[26]周希琴,莫燦坤. 植物重金屬脅迫及其抗氧化系統(tǒng)[J]. 新疆教育學(xué)院學(xué)報(bào),2003,19(2):103-108.
[27]方繼宇,賈永霞,張春梅,等. 馬纓丹對(duì)鎘的生長(zhǎng)響應(yīng)及其富集、轉(zhuǎn)運(yùn)和亞細(xì)胞分布特點(diǎn)研究[J]. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào),2014,23(10):1677-1682.
[28]彭 鳴,王煥校,吳玉樹(shù). 鎘、鉛誘導(dǎo)的玉米(Zea mays L.)幼苗細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的變化[J]. 中國(guó)環(huán)境科學(xué),1991,11(6):426-431.
[29]Roderer G. On the toxic effects of tetraethyl lead and its derivatives on the chrysophyte Poterioochromonas malhamensis-V. electron microscopical studies[J]. Environmental and Experimental Botany,1984,24(1):17-30.
[30]Vallee B L,Ulmer D D. Biochemical effects of mercury,cadmium,and lead[J]. Annual Review of Biochemistry,1972,41(1):91-128.
[31]楊金鳳,卜玉山,鄧紅艷. 鎘、鉛及其復(fù)合污染對(duì)油菜部分生理指標(biāo)的影響[J]. 生態(tài)學(xué)雜志,2009,28(7):1284-1287.
[32]陳 愚,任久長(zhǎng),蔡曉明. 鎘對(duì)沉水植物硝酸還原酶和超氧化物歧化酶活性的影響[J]. 環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),1998,18(3):313-317.
[33]趙天宏,劉玉蓮,曹 瑩,等. 鎘脅迫下不同形態(tài)氮肥對(duì)春小麥體內(nèi)含氮物質(zhì)的影響[J]. 華北農(nóng)學(xué)報(bào),2010,25(5):177-181.
[34]Bennett L E,Burkhead J L,Hale K L,et al. Analysis of transgenic Indian mustard plants for phytoremediation of metal-contaminated mine tailings[J]. Journal of Environmental Quality,2003,32(2):432-440.
[35]張玉秀,于 飛,張媛雅,等. 植物對(duì)重金屬鎘的吸收和累積機(jī)制[J]. 中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2008,16(5):1317-1321.
[36]Misra V,Tiwari A,Shukla B,et al. Effects of soil amendments on the bioavailability of heavy metals from zinc mine tailings[J]. Environmental Monitoring Assessment,2009,155(1/2/3/4):467-475.
[37]Wu L H,Luo Y M,Xing X R. EDTA-enhanced phytoremediation of heavy metal contaminated soil with Indian mustard and associated potential leaching risk[J]. Agriculture,Ecosystems and Environment,2004,102(3):307-318.
[38]Hauser L,Tandy S,Schulin R,et al. Column extraction of heavy metals from soils using the biodegradable chelating agent EDDS[J]. Environmental Science Technology,2005,39(17):6819-6824.
[39]王曉娟,王文斌,楊 龍,等. 重金屬鎘(Cd)在植物體內(nèi)的轉(zhuǎn)運(yùn)途徑及其調(diào)控機(jī)制[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),2015,35(23):7921-7929.
[40]趙艷玲,張長(zhǎng)波,劉仲齊. 植物根系細(xì)胞抑制鎘轉(zhuǎn)運(yùn)過(guò)程的研究進(jìn)展[J]. 農(nóng)業(yè)資源與環(huán)境學(xué)報(bào),2016,33(3):209-213.
[41]Zhao F J,Hamon R E,Lombi E,et al. Characteristics of cadmium uptake in two contrasting ecotypes of the hyperaccumulator Thlaspi caerulescens[J]. Journal of Experimental Botany,2002,53(368):535-543.
[42]Salt D E,Wagner G J. Cadmium transport across tonoplast of vesicles from oat roots[J]. The Journal of Biological Chemistry,1993,268(17):12297-12302.
[43]Clemens S.Toxic metal accumulation,responses to exposure and mechanisms of tolerance in plants[J]. Biochimie,2006,88(11):1707-1719.
[44]楊 菲,唐明鳳,朱玉興. 水稻對(duì)鎘的吸收和轉(zhuǎn)運(yùn)的分子機(jī)理[J]. 雜交水稻,2015,30(3):2-8.
[45]Merkl N,Schultze-Kraft R,Infante C. Phytoremediation in the tropics- inuence of heavy crude oil on root morphological characteristics of graminoids[J]. Environmental Pollution,2005,138(1):86-91.
[46]郝玉嬌,朱啟紅. 植物富集重金屬的影響因素研究[J]. 重慶文理學(xué)院學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2010,29(4):45-47.
[47]Thomine S,Wang R,Ward J M,et al. Cadmium and iron transport by members of a plant metal transporter family in Arabidopsis with homology to Nramp genes[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2000,97(9):4991-4996.
[48]Van Aken B. Transgenic plants for enhanced phytoremediation of toxic explosives[J]. Current Opinion in Biotechnology,2009,20(2):231-236.
[49]Cohen C K,F(xiàn)ox T C,Garvin D E,et al. The role of iron-deciency stress responses in stimulating heavy-metal transport in plants[J]. Plant Physiology,1998,116(3):1063-1072.
[50]Colangelo E P,Guerinot M L. Put the metal to the petal:metal uptake and transport throughout plants[J]. Current Opinion in Plant Biology,2006,9(3):322-330.
[51]Eide D,Broderius M,F(xiàn)ett J,et al. A novel iron-regulated metal transporter from plants identied by functional expression in yeast[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1996,93(11):5624-5628.
[52]Pence N S,Larsen P B,Ebbs S D,et al. The molecular physiology of heavy metal transport in the Zn/Cd hyperaccumulator Thlaspi caerulescens[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2000,97(9):4956-4960.
[53]Montanini B,Blaudez D,Jeandroz S,et al. Phylogenetic and functional analysis of the cation diffusion facilitator(CDF) family:improved signature and prediction of substrate specicity[J]. BMC Genomics,2007,8:107.
[54]Antosiewicz D M,Sirko A,Sowi′nski P. Trace element transport in plants[M]// Prasad M N V. Trace elements as contaminants and nutrients. Hoboken:John Wiley& Sons Inc,2008:413-448.
[55]Curie C,Alonso J M,Jean M L,et al. Involvement of NRAMP1 from Arabidopsis thaliana in iron transport[J]. The Biochemical Journal,2000,347(3):749-755.
[56]Thornton J D,Eisenreich S J. Impact of land-use on the acid and trace element composition of precipitation in the North Central U.S.[J]. Atmospheric Environment,1982,16(8):1945-1955.
[57]Williams L E,Pittman J K,Hall J L. Emerging mechanisms for heavy metal transport in plants[J]. Biochimica et Biophysica Acta,2000,1465(1/2):104-126.
[58]Salt D E,Prince R C,Pickering I J,et al. Mechanisms of cadmium mobility and accumulation in Indian Mustard[J]. Plant Physiology,1995,109(4):1427-1433.
[59]孫 濤,張玉秀,柴團(tuán)耀. 印度芥菜(Brassica juncea L.)重金屬耐性機(jī)理研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2011,19(1):226-234.
[60]蘇徳純,黃煥忠,張福鎖. 印度芥菜對(duì)土壤中難溶態(tài)Cd的吸收及活化[J]. 中國(guó)環(huán)境科學(xué),2002,22(4):342-345.
[61]熊愈輝,楊肖娥. 鎘對(duì)植物毒害與植物耐鎘機(jī)理研究進(jìn)展[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,34(13):2969-2971.
[62]Pollard A J,Powell K D,Harper F A,et al. The genetic basis of metal hyperaccumulation in plants[J]. Critical Reviews in Plant Sciences,2002,21(6):539-566.
[63]Ma J F,Hiradate S,Matsumoto H. High aluminum resistance in buckwheat Ⅱ. Oxalic acid detoxifies aluminum internally[J]. Plant Physiology,1998,117(3):753-759.
[64]Hall J L. Cellular mechanism for heavy metal detoxification and tolerance[J]. Journal of Experimental Botany,2002,53(366):1-11.
[65]薛 永,王苑螈,姚泉洪,等. 植物對(duì)土壤重金屬鎘抗性的研究進(jìn)展[J]. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào),2014,23(3):528-534.
[66]Vernoux T,Wilson R C,Seeley K A,et al. The ROOT MERISTEMLESS1/CADMIUM SENSITIVE2 gene defines a glutathione-dependent pathway involved in initiation and maintenance of cell division during postembryonic root development[J]. The Plant Cell,2000,12(1):97-109.
[67]Foyer C H,Noctor G. Redox homeostasis and antioxidant signaling:a metabolic interface between stress perception and physiological responses[J]. Plant Cell,2005,17(7):1866-1875.
[68]Rausch T,Gromes R,Liedschulte V,et al. Novel insight into the regulation of GSH biosynthesis in higher plants[J]. Plant Biology,2007,9(5):565-572.
[69]Hasan M K,Liu C C,Wang F N,et al.Glutathione-mediated regulation of nitric oxide,S-nitrosothiol and redox homeostasis confers cadmium tolerance by inducing transcription factors and stress response genes in tomato[J]. Chemosphere,2016,161:536-545.
[70]Yazaki K. ABC transporters involved in the transport of plant secondary metabolites[J]. FEBS Letters,2006,580(4):1183-1191.
[71]單長(zhǎng)卷,韓蕊蓮,梁宗鎖. 黃土高原冰草葉片抗壞血酸和谷胱甘肽合成及循環(huán)代謝對(duì)干旱脅迫的生理響應(yīng)[J]. 植物生態(tài)學(xué)報(bào),2011,35(6):653-662.
[72]Freeman J L,Persans M W,Nieman K,et al. Increased glutathione biosynthesis plays a role in nickel tolerance in Thlaspi nickel hyperaccumulators[J]. Plant Cell,2004,16(8):2176-2191.
[73]Cobbett C S,May M J,Howden R,et al. The glutathione-deficient,cadmium-sensitive mutants,cad2-1,of Arabidopsis thaliana is deficient in γ-glutamylcysteine synthetase[J]. The Plant Journal,1998,16(1):73-78.
[74]Noctor G,Arisi A C M,Jouanin L,et al. Manipulation of glutathione and amino acid biosynthesis in the chloroplast[J]. Plant Physiology,1998,118(2):471-482.
[75]Cobbett C S.Phytochelatins and their roles in heavy metal detoxification[J]. Plant Physiology,2000,123(3):825-832.
[76]Eeva T,Lehikoinen E. Local survival rates of the pied flycatchers (Ficedula hypoleuca) and the great tits (Parus major) in an air pollution gradient[J]. Ecoscience,1998,5(1):46-50.
[77]Dauwe T,Janssens E,Kempenaers B,et al. The effect of heavy metal exposure on egg size,eggshell thickness and the number of spermatozoa in blue tit Parus caeruleus eggs[J]. Environmental Pollution,2004,129(1):125-129.
[78]Dauwe T,Janssens E,Eens M. Effects of heavy metal exposure on the condition and health of adult great tits(Parus major)[J]. Environmental Pollution,2006,140(1):71-78.
[79]常團(tuán)結(jié),朱 禎. 植物金屬硫蛋白研究進(jìn)展(一)——植物MT的分類、特征及其基因結(jié)構(gòu)[J]. 生物技術(shù)通報(bào),2002(3):5-10.
[80]張娟萍,張喜鳳. 鎘污染對(duì)人體危害的初探[J]. 價(jià)值工程,2013,25:282-283.
[81]卞建春,郭恒杰,王捍東,等. 鎘暴露家兔睪丸和肝臟中小分子金屬結(jié)合蛋白的分離與比較[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,42(3):1091-1099.
[82]張海燕,徐文忠,戴文韜,等. 大蒜金屬硫蛋白家族新成員AsMT2b在鎘離子脅迫下的功能分析[J]. 科學(xué)通報(bào),2006,51(3):309-315.
[83]Grispen V M J,Irtelli B,Hakvoort H W J,et al. Expression of the Arabidopsis metallothionein 2b enhances arsenite sensitivity and root to shoot translocation in tobacco[J]. Environmental and Experimental Botany,2009,66(1):69-73.
[84]Guo W J,Meetam M,Goldsbrough P B. Examining the specific contributions of individual Arabidopsis metallothioneins to copper distribution and metal tolerance[J]. Plant Physiology,2008(146):1697-1706.
[85]蔡保松,雷 梅,陳同斌,等. 植物螯合肽及其在抗重金屬脅迫中的作用[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),2003,23(10):2125-2132.
[86]Rauser W E. Phytochelatins and related peptides:structure,biosynthesis,and function[J]. Plant Physiology,1995,109(4):1141-1149.
[87]Rauser W E. Structure and function of metal chelators produced by plants:the case for organic acids,amino acids,phytin,and metallothioneins[J]. Cell Biochemistry and Biophysics,1999,31(1):19-48.
[88]Grill E,Winnacker E L,Zenk M H. Phytochelatins:the principal heavy-metal complexing peptides of higher plants[J]. Science,1985,230(4726):674-676.
[89]Wagner G J. Accumulation of cadmium in crop plants and its consequences to human health[J]. Advances in Agronomy,1993(51):173-212.
[90]Howden R,Goldsbrough P B,Andersen C R,et al. Cadmium-sensitive,cad1 mutants of Arabidopsis thaliana are phytochelatin deficient[J]. Plant Physiology,1995,107:1059-1066.
[91]張妍茹,佟少明,侯和勝. 植物螯合肽合成酶的催化機(jī)制研究進(jìn)展[J]. 天津農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,22(2):27-30.
[92]Arif T J,Mudsser A,Arif A,et al. Prospects for exploiting bacteria for bioremediation of metal pollution[J]. Environmental Science and Technology,2014,44(5):519-560.
[93]Salt D E,Rauser W E. MgATP-dependent transport of phytochelatin across the tonoplast of oat roots[J]. Plant Physiology,1995,107(4):1293-1301.
[94]Vogeli-Lange R,Wagner G J. Relationship between cadmium,glutathione and cadmium-binding peptides(phytochelatins) in leaves of intact tobacco seedlings[J]. Plant Science,1996,114(1):11-18.
[95]Kneer R,Zenk M H. Phytochelatins protect plant enzymes from heavy metal poisoning[J]. Phytochemistry,1992,31(8):2663-2667.
[96]Krotz R M,Evangelou B P,Wagner G J. Relationships between cadmium,zinc,Cd-peptide,and organic acid in tobacco suspension cells[J]. Plant Physiology,1989,91(2):780-787.
[97]楊紅霞,張惠娟,高津旭,等. 脅迫時(shí)間和脅迫濃度對(duì)超積累植物印度芥菜細(xì)胞中鎘分布的影響[J]. 巖礦測(cè)試,2014,33(5):723-729.
[98]Leita L,Nobili M D,Cesco S. Analysis of intercellular cadmium forms in roots and leaves of bush bean[J]. Journal of Plant Nutrition,1996,19(3/4):527-533.
[99]閆 研,李建平,趙志國(guó),等. 超富集植物對(duì)重金屬耐受和富集機(jī)制的研究進(jìn)展[J]. 廣西植物,2008,28(4):505-510.
[100]Seth C S,Chaturvedi P K,Misra V. Toxic effect of arsenate and cadmium alone and in combination on giant duckweed (Spirodela polyrrhiza L.) in response to its accumulation[J]. Environmental Toxicology,2007,22(6):539-549.
[101]Hou W H,Chen X,Song G L,et al. Effects of copper and cadmium on heavy metal polluted waterbody restoration by duckweed (Lemna minor)[J]. Plant Physiology and Biochemistry,2007,45(1):62-69.
[102]李 洋,于麗杰,金曉霞. 植物重金屬脅迫耐受機(jī)制[J]. 中國(guó)生物工程雜志,2015,35(9):94-104.
[103]Willekens H,Chamnongpol S,Davey M,et al. Catalase is a sink for H2O2 and is indispensable for stress defence in C3 plants[J]. The EMBO Journal,1997,16(16):4806-4816.
[104]Iannelli M A,PietriniI F,F(xiàn)lore L,et al. Antioxidant responseto cadmium in Phragmites australis plants[J]. Plant Physiology and Biochemistry,2002,40(11):977-982.
[105]Allen R D. Dissection of oxidative stress tolerance using transgenic plants[J]. Plant Physiology,1995,107(4):1049-1054.
[106]Karpinski S,Escobar C,Karpinska B,et al. Photosynthetic electron transport regulates the expression of cytosolic ascorbate peroxidase genes in Arabidopsis during excess light stress[J]. Plant Cell,1997(9):627-640.
[107]Rivetta A,Negrini N,Cocucci M. Involvement of Ca2+-calmodulin in Cd2+ toxicity during the early phases of radish (Raphanus sativus L.) seed germination[J]. Plant,Cell & Environment,1997,20(5):600-608.
[108]Costa G,Michaut J C,Guckert A. Amino acids exuded from axenic roots of lettuce and white lupin seedlings exposed to different cadmium concentrations[J]. Journal of Plant Nutrition,1997,20(7/8):883-900.
[109]張正慶,鮑美娥,陳嘉斌,等. 植物對(duì)重金屬的耐性機(jī)制[J]. 甘肅科技,2013,29(5):69-71.
[110]王美娥,周啟星,張利華. 污染物在根-土界面的化學(xué)行為與生態(tài)效應(yīng)[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2003,14(11):2067-2071.
[111]劉明浩,陳光輝,王 悅. 植物耐鎘機(jī)制研究進(jìn)展[J]. 作物研究,2015,29(1):101-105.
[112]Sabehat A,Lurie S,Weiss D. Expression of small heat-shock proteins at low temperatures:a possible role in protecting against chilling injuries[J]. Plant Physiology,1998,117(2):651-658.
[113]荊紅梅,鄭海雷,趙中秋,等. 植物對(duì)鎘脅迫響應(yīng)的研究進(jìn)展[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),2001,21(12):2125-2130.
[114]Schffl F,Key J L. An analysis of mRNAs for a group of heat shock proteins of soybean using cloned cDNAs[J]. Journal of Molecular and Applied Genetics,1982,1(4):301-314.
[115]Edelman L,Czarnecka E,Key J L. Induction and accumulation of heat shock-specic poly(A+) RNAs and proteins in soybean seedlings during arsenite and cadmium treatments[J]. Plant Physiology,1988,86(4):1048-1056.
[116]Neumann D,Lichtenberger O,Günther D,et al. Heat-shock proteins induce heavy-metal tolerance in higher plants[J]. Planta,1994(194):360-367.
[117]Czarneck E,Nagao R T,Key J L,et al. Characterication of Gmhsp26-A,a stress gene encoding a divergent heat shock proteion of soybean:heavy-metal-induced inhibition of intron procession[J]. Molecular and Cellular Biology,1988,8(3):1113-1122.
[118]Pennazio S,Roggero P. Effect of cadmium and nickel on ethylene biosynthesis in soybean[J]. Biologia Plantarum,1992,34(3/4):345-349.
[119]Orvar B L,Ellis B E. Transgenic tobacco plants expressing antisense RNA for cytosolic ascorbate peroxidase show increased susceptibility to ozone injury[J]. The Plant Journal,1997,11(6):1297-1305.