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      青藏高原矮火絨草內生細菌多樣性及生物功能分析

      2019-09-10 06:14:59程亮
      南方農業(yè)學報 2019年10期
      關鍵詞:多樣性青藏高原

      摘要:【目的】探究矮火絨草(Leontopodium nanum)內生細菌的群落結構多樣性及其生物學功能,為開發(fā)相應功能的生物菌劑提供參考,并為青藏高原生態(tài)農牧業(yè)生產提供有價值的內生細菌資源?!痉椒ā坎捎媒M織分離法對矮火絨草植株內生細菌進行分離純化,基于16S rDNA序列分析確定分離菌株的系統(tǒng)發(fā)育地位;通過平板對峙法檢測分離菌株拮抗病原真菌活性;檢測分離菌株的產吲哚乙酸(IAA)、溶磷和固氮能力;測定分離菌株除草活性、低溫適生性及促種子萌發(fā)特性?!窘Y果】從矮火絨草植株根、莖、葉和種子部位共分離獲得52株內生細菌,基于16S rDNA序列分析發(fā)現52株菌株可歸屬于4門7綱10目14科18屬。其中假單胞菌屬細菌為根部優(yōu)勢屬,約占根部細菌總數的52.17%;莖中以芽孢桿菌為優(yōu)勢屬,約占莖部細菌總數的41.18%;各部位的內生細菌數量分布表現為根>莖>種子>葉。在52株內生細菌中,11株有拮抗病原真菌能力、9株具有產IAA能力、7株有溶磷活性、7株具有固氮活性、20株具有除草活性、13株具有耐低溫能力和8株具有促生作用;從植株部位分布來看,7種類型的功能菌在根、莖和種子部位均有分布,拮抗菌和除草菌在根部所占的比例較高,溶磷菌株在各植株部位所占比例均較低;在葉中未分離到拮抗菌、產IAA菌、固氮菌和促生菌。各功能菌株分布在17個屬,多樣性較高,其中假單胞菌屬和芽孢桿菌屬中含有多種功能菌株,在植株4個部位所占比例也較高。【結論】矮火絨草植株不同部位內生細菌的數量分布具有差異性,但均可分離到不同類型的功能菌株,功能菌株涵蓋17個屬,其中以假單胞菌屬和芽孢桿菌屬居多。

      關鍵詞: 矮火絨草;內生細菌;多樣性;生物學功能;青藏高原

      中圖分類號: S182;Q938? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?文獻標志碼: A 文章編號:2095-1191(2019)10-2222-12

      Diversity and biological function of endophytic bacteria in Leontopodium nanum of Qinghai-Tibetan Plateau

      CHENG Liang1,2

      (1Institute of Plant Protection, Qinghai Academy of Agriculture and Forestry Science, Xining? 810016, China;

      2Key Laboratory of Agricultural Integrated Pest Management of Qinghai Province, Xining? 810016, China)

      Abstract:【Objective】The diversity and function of endophytic bacteria of Leontopodium nanum were explored to provide reference for developing biological bacterium agent with related functions and to provide valuable endophytic bacteria resources for ecological agriculture and animal husbandry production in Qinghai-Tibet Plateau. 【Method】The endophytic bacteria of L. nanum were isolated and purified by tissue isolation method. The phylogenetic status of the isolated strains was preliminarily determined based on 16S rDNA sequence analysis. The antagonistic activity of the strains against pathogenic fungi was detected by plate confrontation method. The indoleacetic acid(IAA) secretion, phosphate solubilization and nitrogen fixation abilities of the strains were tested. The herbicidal activity, low temperature suitability and seed germination characteristics were also determined. 【Result】Results showed that 52 endophytic bacteria that belonged to 28 genera, 14 families, 10 orders, 7 classes, 4 phyla were isolated from the root, stem leaf, and seed of L. nanum based on their 16S rDNA sequences. 52.17% isolates were identified as Pseudomonas, which was the most dominant genus in the roots of L. nanum. Bacillus was the most dominant genera in the stems of L. nanum, which accounted for 41.18% of the total. The quantitative distribution of endophytic bacteria in different parts of L. nanum was root>stem>seed>leaf. Furthermore, out of 52 isolates, 11 strains confirmed to have antifungal activity, 10 strains showed IAA-producing activity, 7 strains turned out to have phosphate-solubilizing activity,7 strains were proved to be azotobacter, 20 strains showed herbicidal activity, 13 strains showed low temperature tolerance and 8 strains exhibited growth-promoting effects. Seven types of functional endophytic bacteria were found in the root, stem, leaf and seed of L. nanum. Isolates with antagonistic and herbicidal activity had a relatively large proportion in the roots of L. nanum. The proportion of strains with phosphate-solubilizing activity in all plant parts was relatively small. Isolates with antagonistic, IAA-producing, nitrogen-fixing and growth-promoting activity were not discovered in the leaves of L. nanum. The functional endophytic bacteria were distribu-ted in 17 different genera and had high population diversity. The isolates from Pseudomonas and Bacillus were multi-functional strains with a high proportion in the four parts of seedlings. 【Conclusion】The number and distribution of endophytic bacteria in different parts of L. nanum plant are different, but can be isolated into different functional types. The functional strains consist of 17 genera, of which Pseudomonas and Bacillus are dominant genus.

      Key words: Leontopodium nanum; endophytic bacteria; diversity; biological function; Qinghai-Tibetan Plateau

      0 引言

      【研究意義】自然界中幾乎所有的植物都能與多種微生物形成互利共生或內寄生關系(Hardoim et al.,2015)。一直以來,植物—內生細菌共生體因其在生態(tài)環(huán)境中生長的優(yōu)越性而備受關注(Vorholt,2012),在長期協同進化過程中內生細菌與宿主植物相互作用以維持互惠共生關系(White and Torres,2010)。宿主植物為內生細菌的生長繁殖提供營養(yǎng)物質和相對穩(wěn)定的生存環(huán)境,而內生細菌通過調節(jié)和修飾宿主植物形態(tài)學、生理學及生物化學等特征,提高宿主植物在生物與非生物脅迫下的適應性,維持共生關系的穩(wěn)定性(Chanway,1998)。因此,開展分離篩選植物內生細菌研究,可為今后開發(fā)功能抗病、除草、解磷、固氮及促生等多功能微生物菌劑提供菌種資源和篩選依據?!厩叭搜芯窟M展】近年來,有關植物內生細菌的研究主要集中在植物內生細菌基礎生物學特性及其功能活性等方面。植物內生細菌的分布具有普遍性和多樣性,在各種農作物及藥用植物中均有存在,人們已從水稻、油菜、杜仲、黃芪和甘蔗等植物的苗期、成株期的根、莖和葉等部位分離到內生細菌(Sun et al.,2008;劉蓬蓬等,2018;王梅菊等,2018;陳小潔等,2019;劉魯峰等,2019)。目前研究發(fā)現植物內生細菌的種類已超過129種,分屬于54個屬,主要集中在假單胞菌屬(Pseudomonas)、腸桿菌屬(Enterobacter)、芽孢桿菌屬(Bacillus)、土壤桿菌屬(Agrobacterium)、克雷伯氏菌屬(Klebsiella)、泛菌屬(Pantoea)和甲基桿菌屬(Methylobacterium)等(Bulgarelli et al.,2013)。李曉璐等(2015)從水黃皮內生細菌中篩選出的蠟樣芽孢桿菌對水稻害蟲稻飛虱和稻縱卷葉螟有明顯的毒殺作用,致死率在85%以上。陳超瓊(2017)從西北荒漠地區(qū)采集的駱駝刺植物組織中分離獲得的內生細菌LTYR-11Z不僅能促進小麥生長,還能提高小麥對干旱脅迫的抵抗能力。柳志強等(2017)從催吐蘿芙木分離獲得的內生枯草芽孢桿菌LYM3具有廣譜抗菌性,其產生的抑菌活性產物主要為脂肽類物質。陸藍翔等(2018)采用組織勻漿法從健康樟樹組織中分離內生細菌,發(fā)現2株菌對扦插苗株高有較好的促生效果。趙玉華等(2018)從樟樹周皮組織中分離獲得的內生枯草芽孢桿菌EBS05對番茄植株具有明顯的促生作用,對番茄抗番茄黃化曲葉病毒(TYLCV)具有誘導作用。Caulier等(2018)從馬鈴薯植株體內分離獲得的Bacillus subtilis 30B-B6菌株對馬鈴薯晚疫病有很好的防治效果。【本研究切入點】矮火絨草(Leontopo-dium nanum)為菊科火絨草屬多年生草本植物,是高寒草地牧區(qū)的優(yōu)勢牧草之一,是一種土壤趨于干旱出現的指示性物種,在我國主要集中在西北部及西南部地區(qū),分布于高山或亞高山帶,不僅抗逆性強、耐寒、喜濕,還能為家畜提供優(yōu)質的營養(yǎng)物質,具有阻礙高寒生態(tài)群落旱生化和鹽生化發(fā)展的作用(牟曉明等,2015)。目前報道的內生細菌主要來源于經濟作物,對長期生活在高海拔、寒冷氣候條件下不受人為活動干擾的植物內生細菌的研究相對較少,而針對矮火絨草內生細菌的研究尚無文獻報道?!緮M解決的關鍵問題】以矮火絨草的根、莖、葉和種子為試材,采用組織分離法分離其內生細菌,結合分子標記對分離的內生細菌進行鑒定并進行生物學功能測定,以期篩選出具有應用潛力的益生微生物,為開發(fā)相應功能的生物菌劑提供參考,并為青藏高原生態(tài)農牧業(yè)生產提供有價值的內生細菌資源。

      1 材料與方法

      1. 1 試驗材料

      1. 1. 1 植物材料 2016年6—9月從青海省祁連山東段的門源縣珠固鄉(xiāng)高寒草地采集矮火絨草的根、莖、葉和種子,混合均勻后裝入無菌封口塑料袋,置于4 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

      1. 1. 2 培養(yǎng)基 肉汁培養(yǎng)基(NA):牛肉膏3.00 g,蛋白胨5.00 g,NaCl 5.00 g,瓊脂18.00 g,蒸餾水1000 mL,pH 6.8~7.0;馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA):馬鈴薯200.00 g,葡萄糖20.00 g,瓊脂18.00 g,蒸餾水1000 mL,自然pH;King氏液體培養(yǎng)基:蛋白胨20.00 g,K2HPO4 1.15 g,MgSO4·7H2O 1.50 g,丙三醇15 mL,L-色氨酸0.10 g(或不加色氨酸);Pikovaskaia培養(yǎng)基(PKO):葡萄糖10.00 g,磷酸鈣5.00 g,(NH4)2SO4 0.50 g,NaCl 0.20 g,KCl 0.20 g,MgSO4 0.03 g,MnSO4 0.03 g,FeSO4·7H2O 0.03 g,蒸餾水1000 mL,pH 6.8~7.0;蒙金娜有機磷培養(yǎng)基:MnSO4·4H2O 0.03 g,FeSO4·7H2O 0.03 g,CaCO3 5.00 g,葡萄糖10.00 g,(NH4)2SO4 0.50 g,卵磷脂0.20 g,NaCl 0.30 g,KCl 0.30 g,酵母膏0.40 g,瓊脂20.00 g,蒸餾水1000 mL,pH 7.0~7.5;改良阿氏無氮培養(yǎng)基(Ashby):葡萄糖10.00 g,K2HPO4 0.20 g,K2SO4 0.20 g,MgSO4·7H2O 0.20 g,NaCl 0.20 g,CaCO3 5.00 g,蒸餾水1000 mL,pH 7.0~7.2。低溫篩選培養(yǎng)基:5×1C培養(yǎng)基(胰蛋白胨21.00 g、NaCl 15.00 g、大豆粉9.00 g、蒸餾水600 mL)200 mL,土壤提取液(土壤500.00 g、蒸餾水1000 mL,98 ℃煮45 min,濾紙濾出土壤液,過濾滅菌后保藏)100 mL,20%葡萄糖5 mL,加滅菌水至1000 mL。

      1. 1. 3 指示菌 馬鈴薯晚疫病菌[Phytophthora infestans(Mont.)de Bary]和櫻桃褐斑病菌(Mycosphaerella cerasella Aderh.)。

      1. 2 試驗方法

      1. 2. 1 內生細菌分離純化 采用梯度稀釋法對內生細菌進行分離純化。清水沖洗矮火絨草材料的根、莖、葉和種子,濾紙吸干表面水分;分別稱取根、莖、葉和種子部位3~5 g,于超凈工作臺內用75%酒精(45 s)、3%次氯酸鈉(3~5 min)依次對材料表面進行消毒,然后用無菌水洗滌3~5次,將樣品在滅菌研缽中加適量無菌生理鹽水研磨至勻漿狀,取1.0 mL浸出液按10倍濃度梯度稀釋后,吸取0.1 mL涂布于NA培養(yǎng)基上,最后一次洗滌水為空白對照。25 ℃恒溫培養(yǎng)3~5 d,根據菌落形態(tài)、顏色、大小、邊緣整齊度及表面形態(tài)等分類,純化編號后4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1. 2. 2 內生細菌屬種分子鑒定 菌株基因組DNA提取按照試劑盒[生工生物工程(上海)股份有限公司]使用說明進行操作。以提取的內生細菌基因組DNA為模板,應用細菌16S rRNA序列通用引物27f(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')和1492r(5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')進行擴增。PCR反應體系25.0 μL:2×Taq PCR Master Mix 12.5 μL,DNA模板(50 ng/L)1.0 μL,上、下游引物各1.0 μL,雙蒸水10.5 μL。擴增程序:95 ℃預變性5 min;95 ℃ 30 s,52 ℃ 30 s,72 ℃ 1.5 min,進行40個循環(huán);72 ℃延伸10 min。PCR產物送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序,測序結果用Chromas進行序列修正后,在NCBI數據庫中進行BLAST檢索,選取若干較高相似性的序列,用ClustalX 1.8進行多重序列比對,最后用MEGA 6.0的Neighbor-Joining構建系統(tǒng)發(fā)育進化樹,各分支的置信度自舉檢測(Bootstrap)1000次。

      1. 2. 3 內生細菌生物學功能測定 分泌吲哚乙酸(IAA)能力測定參考東秀珠和蔡妙英(2001)的方法,定性測定采用Salkowski比色法,定量測定采用純3-IAA標準曲線計算內生細菌菌株的IAA分泌量。溶磷能力測定參考陸瑞霞等(2012)的方法,定性測定采用溶磷圈法,根據溶磷圈直徑/菌落直徑(D/d值)確定溶磷能力;采用鉬銻抗比色法定量測定有效磷增量。固氮能力測定參考Piromyou等(2011)的方法,采用乙炔還原法測定固氮酶活性大小。抑菌能力測定參考崔月貞等(2016)的方法,采用平板對峙法測定抑菌效果,計算抑菌率。

      除草活性測定參考王偉等(2019)采用培養(yǎng)皿分析法。供試雜草分別為野燕麥和野油菜種子。選擇飽滿完整的雜草種子,用10 g/L次氯酸鈉溶液進行表面消毒,無菌水沖洗3次,在12孔板的孔上鋪圓濾紙片,加入待測發(fā)酵濾液1.0 mL,每孔置10粒種子進行除草活性測定。每處理重復3次,另設清水作空白對照,28 ℃智能光照培養(yǎng)箱培養(yǎng),處理3~5 d后測定胚芽(根)長,計算胚芽(根)抑制率。

      低溫適生特性檢測參考謝永麗等(2014)的方法。將待測菌株接種到5×1C培養(yǎng)液中,過夜培養(yǎng)后取10.0 μL點到5×1C培養(yǎng)基上,置于0、4、10、14、18、30和45 ℃下,每天觀察生長情況,7 d后記錄生長結果。

      促生特性測定采用玉米種子。將內生菌株接種到NA液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)12 h,通過測定OD600及涂平板計數法測定菌體濃度,取107 CFU/mL菌懸液和0.9%滅菌生理鹽水配制成混合液(1∶3)。植物種子表面消毒后用懸浮混合液浸種2 h后取出種子,將種子鋪在有濕潤濾紙的培養(yǎng)皿中,30 ℃暗培養(yǎng),3 d后觀察萌發(fā)種子數,7 d后測量種子根長、芽長和鮮重。每處理重復3次。以清水和0.9%滅菌生理鹽水處理為對照。

      2 結果與分析

      2. 1 內生細菌在矮火絨草植株不同部位的種群分布

      由表1可知,從矮火絨草植株的根、莖、葉和種子部位共分離到52株內生細菌,覆蓋4個菌門,分別為變形菌門(Proteobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、放線菌門(Actinomycetes)和擬桿菌門(Bacteroides)。在門水平上,各植株部位中變形菌門和厚壁菌門細菌所占比例較高,分別為57.69%和23.08%,擬桿菌門最少,占7.69%。其中,在根部以變形菌門細菌所占比例最高,占根部細菌總數的78.26%;莖中以厚壁菌門細菌所占比例最高,占莖部細菌總數的41.18%;葉中所含4個菌門的比例均較低。

      從屬的水平上看,共分離出18個屬的細菌,各植株部位細菌屬的數量在3~12個。其中,根部最多,達12個屬;種子次之,為8個屬;葉中最少,僅有3個屬。假單胞菌屬(Pseudomonas)細菌在各植株部位所占比例均較高,是根部所占比例最高的屬,為52.17%。莖中所占比例最高的為芽孢桿菌屬(Bacillus)細菌,其次為假單胞菌屬細菌,兩屬的細菌所占比例分別為41.18%和23.53%。各植株部位的共有屬較少,僅假單胞菌屬為各植株部位的共有屬??傮w上來看,矮火絨草植株的內生細菌數量分布表現為組織差異性,即根>莖>種子>葉。

      2. 2 矮火絨草內生細菌的類群與系統(tǒng)發(fā)育分析結果

      通過與NCBI數據庫比對,分析52株內生細菌的16S rDNA序列同源性,結果(表2和圖1-A)表明,矮火絨草植株中的內生細菌共覆蓋7綱10目14科18屬,其中22株細菌屬于γ-變形菌綱(γ-proteobacteria),為第一優(yōu)勢類群細菌,占分離菌株的42.31%;12株屬于芽孢桿菌綱(Bacilli),為第二優(yōu)勢類群細菌,占分離菌株的23.08%;此外,分離到6株放線菌綱(Actinobacteria)、5株α-變形菌綱(α-proteobacteria)、3株β-變形菌綱(β-proteobacteria)、2株鞘脂桿菌綱(Sphingobacteriia)和2株黃桿菌綱(Flavobacteriia)類群細菌,分別占分離菌株的11.54%、9.62%、5.77%、3.85%和3.85%。在目的水平上,假單胞菌目(Pseudomona-dales)為優(yōu)勢菌群,占總菌株數的36.54%,其次為芽孢桿菌目(Bacillales)和微球菌目(Micrococales),分別占總菌株數的23.08%和11.54%;在科的水平上,假單胞菌科(Pseudomonadaceae)為優(yōu)勢菌群,占總菌株數的34.62%,其次為芽孢桿菌科(Bacillaceae),占總菌株數的19.23%。

      對γ-變形菌綱細菌進一步分析表明,該綱共分為4個屬,分別是假單胞菌屬、拉恩氏菌屬(Rahnella)、克雷伯氏菌屬(Klebsiella)和不動桿菌屬(Acinetobacter),以假單胞菌屬為主,約占分離菌株的34.62%,為優(yōu)勢種群,其余3個屬的類群相對較少,合計占分離菌株的7.69%;芽孢桿菌綱細菌分為2個屬,分別是芽孢桿菌屬和類芽孢桿菌屬(Paenibacillus),其中10株來自芽孢桿菌屬,占分離菌株的19.23%;放線菌綱細菌分為3個屬,分別為節(jié)桿菌屬(Arthrobacter)、微桿菌屬(Microbacteriaceae)和棒形桿菌屬(Clavibacter);α-變形菌綱細菌分為5個屬,分別為根瘤菌屬(Rhizobium)、鞘脂單胞菌屬(Sphingomonas)、微枝形桿菌屬(Microvirga)、葉桿菌屬(Phyllobacterium)和短波單胞菌屬(Brevundimonas);β-變形菌綱細菌分為2個屬,分別為代爾夫特菌屬(Delftia)和伯克氏菌屬(Burkholderia);鞘脂桿菌綱和黃桿菌綱細菌各有1個屬,分別為土地桿菌屬(Pedobacter)和黃桿菌屬(Flavobacterium)(表2和圖1-B)。

      利用MEGA 6.0采用Neighbor-Joining法構建系統(tǒng)發(fā)育進化樹,結果(圖2)表明,矮火絨草內生細菌主要有4個進化分支,屬于18個不同的屬,其中假單胞菌屬和芽孢桿菌屬占分離菌株的53.85%。在γ-變形菌綱中,18株細菌(KBL1、KBL29、KBL5、KBL17、KBL15、KBL47、KBL2、KBL19、KBL43、KBL8、KBL22、KBL24、KBL25、KBL16、KBL28、KBL33、KBL30和KBL42)聚類于Pseudomonas屬分支單元,屬于同一屬,但局部又分為7個種分類單元。其中菌株KBL1、KBL29和KBL5同源性較高,可能屬于同一種。菌株KBL25、KBL16、KBL28和KBL33與Pseudomonas fluorescens相似性較高,均為99%,可能為同一種。菌株KBL23和KBL4分別歸屬于Acinetobacter和Rahnella;菌株KBL35和KBL18歸屬于Klebsiella。

      分離得到的10株(KBL49、KBL37、KBL51、KBL52、KBL27、KBL3、KBL46、KBL40、KBL50和KBL39)芽孢桿菌綱聚類單元中,菌株KBL49和KBL37歸屬于Bacillus pumilus;菌株KBL51、KBL52、KBL3、KBL46、KBL40、KBL39、KBL50和KBL27與Bacillus subtilis的相似性為100%,歸為同一種。菌株KBL10和KBL45與Paenibacillus prosopidis為同一屬。

      在放線菌綱中,菌株KBL12、KBL9和KBL44歸屬于Arthrobacter;菌株KBL11和KBL38歸屬于Microbacterium;菌株KBL31則聚類于Clavibacter。在β-變形菌綱中,菌株KBL32應為Burkholderia;菌株KBL7和KBL21歸屬于Delftia。在α-變形菌綱中,菌株KBL13、KBL36、KBL26、KBL34和KBL41分別歸屬于Sphingomonas、Brevundimonas、Microvirga、Phyllobacterium和Rhizobium。此外,在擬桿菌門中,菌株KBL6和KBL20歸屬于Flavobacterium;而KBL48和KBL14屬于Pedobacter。

      2. 3 矮火絨草植株內生細菌功能鑒定結果

      分離獲得的52株內生細菌中,共鑒定出除草活性菌株20株、分泌IAA的菌株9株、固氮菌7株、溶磷菌7株、耐低溫菌13株、拮抗菌11株和促生菌8株。52株內生細菌中,除草活性菌株數量占總菌株數量的比例最高(38.46%),在各植株部位的功能菌中數量也最多。根中產拮抗和除草菌株數量較多,均占總分離菌株數的15.38%,其次是產IAA菌。在葉片中未分離到拮抗菌、產IAA菌、固氮菌和促生菌,僅分離到1株溶磷菌、1株除草活性菌和3株耐低溫菌。根、莖和種子中均可分離到可培養(yǎng)的功能菌株(圖3)。

      2. 4 矮火絨草內生細菌中多功能菌屬的多樣性分析結果

      由表4可知,內生細菌中的功能菌分布在17個不同的菌屬,從本研究測定的7種功能屬性菌的角度來看,20株除草菌株分別在11個菌屬內有分布,13株耐低溫菌分布在10個菌屬內,11株拮抗菌分布在6個菌屬內,8株促生菌分布在6個菌屬內,7株溶磷菌分布在5個菌屬內,9株產IAA菌分布在4個菌屬內。假單胞菌屬包括了除草活性菌、耐低溫菌、拮抗菌、產IAA菌、促生菌、溶磷菌和固氮菌,是唯一覆蓋各功能菌的菌屬;其次為芽孢桿菌屬,包括了除溶磷菌和促生菌之外的其他5種功能菌;節(jié)桿菌屬包括了除拮抗菌和產IAA菌外的5種功能菌;克雷伯氏菌屬包括了拮抗菌、產IAA菌、除草菌和耐低溫菌;微桿菌屬則包括溶磷菌、除草菌、拮抗菌和耐低溫菌;黃桿菌屬和類芽孢桿菌屬均包括除草菌、耐低溫菌和促生菌3種功能菌。

      2. 5 矮火絨草內生細菌中有潛在應用價值的功能菌分析結果

      對矮火絨草內生細菌的生物學功能測定結果顯示,菌株拮抗能力的抑菌率為60.14%~95.47%,抑菌率最強的為菌株KBL17,分離自矮火絨草的根組織,屬于假單胞菌屬;菌株分泌IAA的能力為5.32~35.98 μg/mL,分泌IAA能力最強的為菌株KBL30,分離自矮火絨草的莖部組織,屬于假單胞菌屬;溶磷菌的溶磷能力為73.99~156.81 μg/mL,7株溶磷菌中有3株菌的溶磷能力大于100.00 μg/mL,其中溶磷能力最強的為菌株KBL12(節(jié)桿菌屬),分離自根部組織,其次為菌株KBL19(假單胞菌屬),也分離自根部組織;分離出的7株固氮菌中,固氮酶的活性介于98.57~369.29 nmol C2H4/(mL·h),菌株KBL16的固氮酶活性最大,分離自根部組織,屬于假單胞菌屬;來自種子組織的除草菌株數量相對較多,且有1株菌株(KBL3,芽孢桿菌屬)對野燕麥和野油菜的除草活性大于>95.00%,有2株菌株(KBL15,假單胞菌屬;KBL18,克雷伯氏菌屬)的除草活性介于90.00%~95.00%;分離自葉部的菌株KBL10在4 ℃下培養(yǎng)12 h可顯現出明顯的菌苔,屬于類芽孢桿菌屬;在4個植株部位中只分離到8株促生菌,效果較好的為分離自種子組織的菌株KBL20(黃桿菌屬)和KBL33(假單胞菌屬)(表5)。在同時具備拮抗病原真菌和分泌IAA功能的菌株中,菌株KBL37的抑菌率達90.16%,分泌IAA的能力為27.98 μg/mL,該菌經16S rDNA序列比對,發(fā)現其與GenBank中1株具有抗真菌能力的菌株(芽孢桿菌屬)相似性達99%。

      3 討論

      3. 1 矮火絨草內生細菌的群落結構多樣性

      本研究分離到的52株內生細菌涵蓋了4個菌門,分別為變形菌門、厚壁菌門、放線菌門和擬桿菌門,與Bulgarelli等(2013)、胥婷等(2015)報道的植物體內生細菌的種群結構一致。在分離得到的52株內生細菌中,變形菌門細菌占總分離菌株數的一半以上(57.69%)。有研究發(fā)現,水稻(Sun et al.,2008)、擬南芥(Bodenhausen et al.,2013)、互米花(李虎等,2014)、東南景天(鄧平香等,2017)、巨菌草(林標聲等,2018)等優(yōu)勢內生細菌門也均為變形菌門,說明變形菌門細菌廣泛存在于植物體內。厚壁菌門細菌在促進植物生長發(fā)育、營養(yǎng)吸收、抗逆能力和生理生態(tài)過程等方面也扮演著重要角色(Vendan et al.,2010;Kumar et al.,2012)。本研究結果顯示,矮火絨草植株內生細菌群體中也含有較豐富的厚壁菌門細菌,其中包括芽孢桿菌屬和類芽孢桿菌屬,可能與該屬細菌內芽孢具有較強的抗逆能力有關,提示矮火絨草植株內生細菌中該屬細菌值得進一步研究。

      植物內生細菌具有豐富的多樣性,并普遍存在于各種植物體內。其中,假單胞菌屬、芽孢桿菌屬、土地桿菌屬和腸桿菌屬為植物內生細菌的常見屬和優(yōu)勢種群(Sturz et al.,2000)。本研究利用16S rDNA序列分析方法從矮火絨草根、莖、葉和種子4個不同組織共分離獲得52株內生細菌,覆蓋4門7綱10目14科18屬,說明該植物內生細菌群體具有豐富的種群多樣性和遺傳多樣性。其中假單胞菌屬18株,占分離總菌株數的比例最高。此外,假單胞菌屬內生細菌在植物根、莖、葉和種子中均有分布,且比例均很高,在根和莖中達50.00%以上。因此,假單胞菌是分布較廣的植物內生細菌之一。與本研究結論相似,牧草(楊成德等,2016)、鹽角草(趙帥等,2016)、線葉嵩草(魏立娟等,2018)和三葉鬼針草(胡澤瑞等,2019)等植物內生細菌群體優(yōu)勢細菌屬也均為假單胞菌屬,說明假單胞菌屬細菌廣泛存在于植物體內,可能與該屬細菌多種功能活性有關。本研究僅利用16S rDNA序列分析對矮火絨草內生細菌進行分類,今后還需利用生理生化試驗、(G+C)%及持家基因(gyrB)等進一步鑒定到種。

      3. 2 矮火絨草內生細菌生物學功能多樣性

      近年來,隨著微生物分離和鑒定技術的發(fā)展,被分離和鑒定出的植物功能內生細菌種類和數量逐年增加,發(fā)現假單胞菌屬、芽孢桿菌屬、腸桿菌屬、固氮螺菌屬、節(jié)桿菌屬、沙雷氏菌屬、克雷伯氏菌屬、伯克霍爾德氏菌屬和不動桿菌屬等主要種屬均具有不同的生物學功能。本研究對分離獲得的52株內生細菌進行7項功能測定,結果表明,菌株分泌IAA的能力為5.32~35.98 μg/mL,其中產量最高的菌株KBL30(Pseudomonas sp. TMB3-1-1)與1株從土壤中分離的變形菌門、γ-變形菌綱、假單胞菌目、假單胞菌科的假單胞菌屬細菌相似度達99%,其次為菌株KBL37,屬于芽孢桿菌屬。有研究證實,植物內生細菌如克雷伯氏菌屬的某些細菌具有較強的IAA分泌能力,具有促進植物生長的能力(呂澤勛和宋未,1999;Ji et al.,2014),但本研究分離自矮火絨草種子的菌株KBL18(克雷伯氏菌屬)的除草抑制率為94.78%,說明該屬細菌也具有除草功能,為開發(fā)藥肥兼用的微生物產品提供了菌株資源。此外,植物內生細菌如沙雷氏菌屬、假單胞菌屬和腸桿菌屬等種屬的某些細菌具有溶磷和促生能力(Hameeda et al.,2008)。陸瑞霞等(2012)從地八角根際分離具有溶磷能力的菌株,通過溶磷圈法篩選出7株溶磷能力較強的菌株。本研究在分離獲得的52株內生細菌中有7株可在有(無)機磷選擇性培養(yǎng)基上形成透明的溶磷圈,其中2株內生細菌(KBL12和KBL19)的溶磷活性最強,分別為156.81和135.87 μg/mL。

      除了營養(yǎng)促生功能,植物內生細菌也是植物病害和雜草生物防治的資源菌來源,從植物體內分離篩選具有防病和除草作用的內生細菌將具有很好的應用前景。已有研究證明,內生細菌通過次生代謝產生一些抗真菌或除草物質來達到防治植物病害和雜草的目的(Ryan et al.,2008;陳世國和強勝,2015)。李明智等(2004)從反枝莧根際土壤中分離獲得1株對反枝莧和薺菜等雙子葉雜草具有較強除草活性的野油菜黃單胞菌反枝莧致病變種;李振東等(2011)從高山草甸紫花針茅中分離到2株對辣椒立枯絲核菌具有拮抗作用的內生細菌;柯楊等(2013)從冬凌草中分離篩選出對鐮刀菌屬及大莖點霉屬病原真菌具有明顯拮抗作用的內生細菌;魏立娟等(2018)從線葉嵩草植株中分離篩選出10株對馬鈴薯炭疽病有較強抗性的內生細菌。本研究從52株內生細菌中分離出11株同時對馬鈴薯晚疫病和櫻桃褐斑病具有拮抗能力的菌株,20株對野燕麥和野油菜種子具有不同程度除草活性的菌株。

      植物內生細菌因受植物保護而具有相對穩(wěn)定的生態(tài)環(huán)境,在可持續(xù)農牧業(yè)生產和土壤修復方面是一類具有潛在應用價值且更直接、安全有效的微生物資源。本研究證實所分離得到的內生細菌的部分生物學功能,說明祁連高寒草甸矮火絨草能適應極端環(huán)境而生存下來是植物與內生細菌協調進化的結果,對于這部分功能菌株是否與宿主矮火絨草的抗逆生存相關還有待進一步驗證。然而,傳統(tǒng)的培養(yǎng)方法還不能完全揭示植物內生細菌的種類和分布情況,使得研究植物內生細菌的種群結構數量及多樣性受到限制,因此,利用非培養(yǎng)的方法如高通量測序技術進一步探究矮火絨草植株內生細菌的群落結構、多樣性及功能細菌預測具有必要性。

      4 結論

      從矮火絨草植株根、莖、葉和種子部位共分離純化出52株內生細菌,歸屬于4門7綱10目14科18屬,內生細菌數量分布表現為根>莖>種子>葉。其中,11株有拮抗病原真菌的能力、9株具有產IAA的能力、7株有溶磷活性、7株具有固氮活性、20株具有除草活性、13株具有耐低溫能力和8株具有促生作用。各類型的功能菌在根、莖和種子部位均有分布,在葉中未分離到拮抗菌、產IAA菌、固氮菌和促生菌。各功能菌株分布在17個屬,多樣性較高,其中假單胞菌屬和芽孢桿菌屬具有多種功能菌株,是矮火絨草植株的重要內生細菌。

      參考文獻:

      陳超瓊. 2017. 駱駝刺內生細菌新種Pantoea alhagi LTYR-11Z的鑒定及其促作物抗旱機制初步研究[D]. 楊凌: 西北農林科技大學. [Chen C Q. 2017. The identification of a novel endophytic bacterium Pantoea alhagi LTYR-11Z from Alahagi sparsifolia Shap. and dissecting mechanism underlying enhanced drought resistance in crops[D]. Yangling: Northwest A & F University.]

      陳世國,強勝. 2015. 生物除草劑研究與開發(fā)的現狀及未來的發(fā)展趨勢[J]. 中國生物防治學報,31(5):770-779. [Chen S G,Qiang S. 2015. The status and future directions of bioherbicide study and development[J]. Chinese Journal of Biological Control,31(5):770-779.]

      陳小潔,王其,張欣悅,丁婷. 2019. 杜仲內生細菌拮抗小麥赤霉病菌研究[J]. 浙江農業(yè)學報,31(5):766-776. [Chen X J,Wang Q,Zhang X Y,Ding T. 2019. Study on endophytic bacteria isolated from Eucommia ulmoides with antimicrobial activity against Fusarium graminearum[J].Acta Agriculturae Zhejiangensis,31(5):766-776.]

      崔月貞,楊小利,楊成德,薛莉,張俊蓮,姚玉玲. 2016. 拮抗馬鈴薯晚疫病菌的高寒草地牧草內生細菌的鑒定及其生物學功能測定[J]. 植物保護學報,43(5):789-795. [Cui Y Z,Yang X L,Yang C D,Xue L,Zhang J L,Yao Y L. 2016. Identification and determination of biological functions of endophytic bacteria from alpine pasture against Phytophthora infestan[J]. Acta Phytophylacica Sinica,43(5):789-795.]

      鄧平香,郭榮榮,余光偉,種云霄,龍新憲. 2017. 超積累和非超積累生態(tài)型東南景天莖、葉內生細菌多樣性分析[J].微生物學通報,44(3): 533-544. [Deng P X,Guo R R,Yu G W,Zhong Y X,Long X X. 2017. Characterization of endophytic bacterial communities from leaves and stems of two ecotype of Sedum alfredii by high-throughput sequencing[J]. Microbiology China,44(3):533-544.]

      東秀珠,蔡妙英. 2001. 常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊[M]. 北京:中國科學出版社:364-398. [Dong X Z,Cai M Y. 2001. Manual for systematic identification of common bacteria[M]. Beijing: China Science Publishing House:364-398.]

      胡澤瑞,劉媛,彭長連,李淑彬. 2019. 三葉鬼針草內生細菌群體多樣性及重金屬耐受和吲哚乙酸產生潛力[J]. 微生物學通報,46(1): 29-41. [Hu Z R,Liu Y,Peng C L,Li S B. 2019. Diversity,heavy-metal tolerance and indolea-cetic acid production of bacterial endophytes in Bidens pilosa[J]. Microbiology China,46(1): 29-41.]

      柯楊,馬瑜,沈瑩華,李勃. 2013. 冬凌草內生細菌的分離鑒定及其對植物病害的生防作用[J]. 微生物學雜志,33(1):20-24. [Ke Y,Ma Y,Shen Y H,Li B. 2013. Isolation & identification of entophytic bacterial strain from Rabdosia rubescens & its biocontrol effects against plant pathogens[J]. Journal of Microbiology,33(1):20-24.]

      李虎,廖丹,蘇建強,黃福義,洪有為. 2014. 外來種互花米草根內細菌多樣性及功能[J]. 應用與環(huán)境生物學報,20(5): 856-862. [Li H,Liao D,Su J Q,Huang F Y,Hong Y W. 2014. Diversity and function of endophytic bacteria in roots of exotic plant Spartina alterniflora[J]. Chinese Journal of Applied and Environmental Biology,20(5): 856-862.]

      李明智,李永泉,徐凌,莊曉峰,孫自玲. 2004. 細菌除草劑黃單胞菌反枝莧致病菌的篩選[J]. 微生物學報,44(2):226-229. [Li M Z,Li Y Q,Xu L,Zhuang X F,Sun Z L. 2004. Screening of bacterial herbicide strain Xanthomo-nas campestris pv.etroflexus from Rhizosphere[J]. Acta Microbiologica Sinica,44(2):226-229.]

      李曉璐,劉妍,淮亞紅. 2015. 水黃皮內生菌的分離及其殺蟲菌株的篩選[J]. 沈陽農業(yè)大學學報,46(5):608-612. [Li X L,Liu Y,Huai Y H. 2015. Isolation,identification and insecticidal activity of endophytes from Pongamia pinnata[J]. Journal of Shenyang Agricultural University,46(5):608-612.]

      李振東,陳秀蓉,李鵬. 2011. 紫花針茅內生細菌的分離與鑒定[J]. 草原與草坪,31(1):8-12. [Li Z D,Chen X R,Li P. 2011. Screening and identification of endophytic bacteria from Stipa purpurea[J]. Grassland and Turf,31(1): 8-12.]

      林標聲,宋昭昭,張麗麗,范錦琳,林占熺. 2018. 巨菌草不同生長時期根、莖、葉內生細菌組成的多樣性及差異[J]. 福建農林大學學報(自然科學版),47(3):352-360. [Lin B S,Song Z Z,Zhang L L,Fan J L,Lin Z X. 2018. Composition diversity and differences of endophytic bacteria in root,stem and leaf at different growth stages of Pennisetum sp.[J]. Journal of Fujian Agriculture and Forestry University(Natural Science Edition),47(3):352-360.]

      劉蓬蓬,陳江寧,孟莉,賈天柱. 2018. 基于Illumina MiSeq高通量測序分析黃芪內生細菌多樣性[J]. 中草藥,49(11):2640-2645. [Liu P P,Chen J N,Meng L,Jia T Z. 2018. Diversity of endophytic bacteria in Astragali radix analyzed by Illumina MiSeq high-throughput sequencing technology[J]. Chinese Traditional and Herbal Drugs,49(11):2640-2645.]

      劉魯峰,寸海春,何鵬飛,狄義寧,吳毅歆,何麗蓮,李富生,何月秋. 2019. 甘蔗內生菌分離鑒定及功能多樣性研究[J].熱帶作物學報,40(6):1144-1152. [Liu L F,Cun H C,He P F,Di Y N,Wu Y X,He L L,Li F S,He Y Q. 2019. Isolation,identification and multiple function analyses of sugarcane endophytes[J]. Chinese Journal of Tropical Crops,40(6):1144-1152.]

      柳志強,李喬曼,徐爽,吳曼莉,張楠,李曉宇. 2017. 催吐蘿芙木內生菌Bacillus subtilis LYM3的抑菌活性產物[J]. 江蘇農業(yè)學報,33(1):67-72. [Liu Z Q,Li Q M,Xu S,Wu M L,Zhang N,Li X Y. 2017. Antifungal activity pro-ducts of an endophyteBacillus subtilis LYM3 from Rauvolfia vomitoria Afzel[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences,33(1):67-72.]

      陸藍翔,江明明,王焱,張岳峰,張洪良,葉建仁. 2018. 兩株樟樹促生抗病內生細菌的分離、篩選及鑒定[J]. 南京林業(yè)大學學報(自然科學版),42(6):128-136. [Lu L X,Jiang M M,Wang Y,Zhang Y F,Zhang H L,Ye J R. 2018. Isolation,screening and identification of endophytic bacteria from Cinnamomum camphora that promote growth and antagonistic pathogen[J]. Journal of Nanjing Forestry University(Natural Sciences Edition),42(6):128-136.]

      陸瑞霞,王小利,李顯剛,姚拓,趙相勇. 2012. 地八角根際溶磷菌溶磷能力及菌株特性研究[J]. 中國草地學報,34(4): 101-108. [Lu R X,Wang X L,Li X G,Yao T,Zhao X Y. 2012. Capability of dissolving phosphate and chara-cteristics of phosphate-dissolving bacteria in rhizosphere of Astragalus bhotanensis in Guizhou[J]. Chinese Journal of Grassland,34(4): 101-108.]

      呂澤勛,宋未. 1999. 產酸克雷伯氏菌SG-11生物合成吲哚-3-乙酸的檢測[J]. 分析測試學報,18(5): 42-44. [Lü Z X,Song W. 1999. Determination of indole-3-acetic acid biosynthesized by Klebsiella Oxytoca SG-11[J]. Journal of Instrumental Analysis,18(5): 42-44.]

      牟曉明,于應文,王先之,張紅梅,徐長林,花立民. 2015. 青藏高原火絨草斑塊群落空間格局分析[J]. 生態(tài)學報,35(16):5306-5315. [Mou X M,Yu Y W,Wang X Z,Zhang H M,Xu C L,Hua L M. 2015. Analysis of community spatial patterns of Leontopodium nanum patches in Qinghai-Tibetan Plateau[J]. Acta Ecologica Sinica,35(16):5306-5315.]

      王梅菊,劉晨,吳明德,張靜,楊龍,李國慶. 2018. 油菜內生細菌多樣性分析及菌株CanL-30生防潛力評估[J]. 中國油料作物學報,40(2): 258-268. [Wang M J,Liu C,Wu M D,Zhang J,Yang L,Li G Q. 2018. Diversity of endophytic bacteria in Brassica napus and biocontrol potential of Bacillus subtilis CanL-30[J]. Chinese Journal of Oil Crop Sciences,40(2): 258-268.]

      王偉,程亮,朱海霞,郭青云. 2019. 球孢白僵菌(Beauveria bassiana)NO6的分離、鑒定與除草活性[J]. 西北農業(yè)學報,28(2):297-304. [Wang W,Cheng L,Zhu H X,Guo Q Y. 2019. Isolation,identification,and herbicidal activity of Beauveria bassiana NO6[J]. Acta Agriculture Bo-reali-Occidentalis Sinica,28(2):297-304.]

      魏立娟,王玉琴,楊成德,薛麗. 2018. 青海省海晏縣線葉嵩草內生細菌的生物功能鑒定及測定[J]. 草地學報,26(3):764-769. [Wei L J,Wang Y Q,Yang C D,Xue L. 2018. Biological function identification and determination of endophytic bacteria in leaves of Kobresia capillifolia in Haiyan County,Qinghai Province[J]. Acta Agrestia Sinica,26(3):764-769.]

      謝永麗,馬莉貞,徐志偉,張英,李希來. 2014. 凍土荒漠區(qū)低溫適生PGPR菌的分離鑒定及其抗菌促生特性[J]. 中國生物防治學報,30(1):96-100. [Xie Y L,Ma L Z,Xu Z W,Zhang Y,Li X L. 2014. Identification of low-temperature adapting PGPR strains isolated from frozen desert area and their antimicrobial and growth-promoting activity[J]. Chinese Journal of Biological Control,30(1):96-100.]

      胥婷,楊麗強,宋宇,李新宇,張惠文. 2015. 不同草原類型針茅根部可培養(yǎng)內生細菌群落結構及其功能[J]. 生態(tài)學雜志,34(11):3101-3110. [Xu T,Yang L Q,Song Y,Li X Y,Zhang H W. 2015. Endophytic bacterial community structure and function of Stipa roots from different types of steppes in northern China[J]. Chinese Journal of Eco-logy,34(11):3101-3110.]

      楊成德,王玉琴,陳秀蓉,張振粉,薛莉,王穎,姚玉玲. 2016. 2種嵩草屬牧草休眠期內生細菌多樣性研究[J]. 草業(yè)學報,25(8):136-144. [Yang C D,Wang Y Q,Chen X R,Zhang Z F,Xue L,Wang Y,Yao Y L. 2016. Diversity of endophytic bacteria isolated from Kobresia during winter dormancy[J]. Acta Prataculturae Sinica,25(8):136-144.]

      趙帥,周娜,趙振勇,張科,田長彥. 2016. 基于高通量測序分析鹽角草根部內生細菌多樣性及動態(tài)規(guī)律[J]. 微生物學報,56(6): 1000-1008. [Zhao S,Zhou N,Zhao Z Y,Zhang K,Tian C Y. 2016. Endophytic bacterial diversity and dynamics in root of Salicornia europaea estimated via high throughput sequencingActa Microbiologica Sinica,56(6):1000-1008.]

      趙玉華,李俊州,馮慧靜,文才藝. 2018. 內生細菌EBS05對番茄植物的促生和誘導抗病性信號轉導途徑的研究[J]. 河南農業(yè)大學學報,52(1):59-65. [Zhao Y H,Li J Z,Feng H J,Wen C Y. 2018. Study on growth promotion and signaling pathway of induced systemic resistance elicitation mediated by endophytic bacteria strain EBS05 in tomato plant[J]. Journal of Henan Agricultural University,52(1):59-65.]

      Bodenhausen N,Horton M W,Bergelson J. 2013. Bacterial communities associated with the leaves and the roots of Arabidopsis thaliana[J]. PLoS One,8(2): e56329.

      Bulgarelli D,Schlaeppi K,Spaepen S,van Themaat E V L,Schulze-Lefert P. 2013. Structure and functions of the bacterial microbiota of plants[J]. Annual Review of Plant Biology,64(1): 807-838.

      Caulier S,Gillis A,Colau G,Licciardi F,Liépin M,Desoignies N,Modrie P,Legrève A,Mahillon J,Bragard C. 2018. Versatile antagonistic activities of soil-borne Bacillus spp. and Pseudomonas spp. against Phytophthora infestans and other potato pathogens[J]. Frontiers in Microbiology,9:143.

      Chanway C P. 1998. Bacterial endophytes:Ecological and practical implications[J]. Sydowia,50(2):149-170.

      Hallmann J,Quadt A V,Mahaffee W F,Kloepper J W. 2011. Bacterial endophytes in agricultural crops[J]. Canadian Journal of Microbiology,43(10): 895-914.

      Hameeda B,Harini G,Rupela O P,Wani S P,Reddy G. 2008. Growth promotion of maize by phosphate-solubilizing bacteria isolated from composts and macrofauna[J]. Microbiological Research,163(2):234-242.

      Hardoim P R,van Overbeek L S,Berg G,Pirttil? A M,Compant S,Campisano A,D?ring M,Sessitsch A. 2015. The hidden world within plants: Ecological and evolutionary considerations for defining functioning of microbial Endophytes[J]. Microbiology and Molecular Biology Reviews,79(3): 293-320.

      Ji S H,Gururani M A,Chun S C. 2014. Isolation and characterization of plant growth promoting endophytic diazotrophic bacteria from Korean rice cultivars[J]. Microbiolo-gical Research,169(1): 83-98.

      Kumar G,Kanaujia N,Bafana A. 2012. Functional and phylogenetic diversity of root-associated bacteria of Ajuga bracteosa in Kangra valley[J]. Microbiological Research,167(4):220-225.

      Piromyou P,Buranabanyat B,Tantasawat P,Tittabutr P,Boonkerd N,Teaumroong N. 2011. Effect of plant growth promoting rhizobacteria(PGPR) inoculation on microbial community structure in rhizosphere of forage corn cultivated in Thailand[J]. European Journal of Soil Biology,47(1): 44-54.

      Ryan R P,Germaine K,Franks A,Ryan D J,Dowling D N. 2008. Bacterial endophytes:Recent developments and applications[J]. FEMS Microbiology Letters,278(1): 1-9.

      Sturz A V,Christie B R,Nowak J. 2000. Baterial endophytes:Potential role in developing sustainable systems of crop production[J]. Critical Reviews in Plant Sciences,19(1): 1-30.

      Sun L,Qiu F B,Zhang X X,Dai X,Dong X Z,Song W. 2008. Endophytic bacterial diversity in rice(Oryza sativa L.) roots estimated by 16S rDNA sequence analysis[J]. Microbial Ecology,55(3): 415-424.

      Vendan R T,Yu Y J,Lee S H,Rhee Y H. 2010. Diversity of endophytic bacteria in ginseng and their potential for plant growth promotion[J]. Journal of Microbiology,48(5):559-565.

      Vorholt J A. 2012. Microbial life in the phyllosphere[J]. Nature Reviews Microbiology,10(12):828-840.

      White J F Jr,Torres M S. 2010. Is plant endophyte-mediated defensive mutualism the result of oxidative stress protection?[J]. Physiologia Plantarum,138(4): 440-446.

      (責任編輯 麻小燕)

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