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      端粒酶與體細(xì)胞重編程的最新研究進(jìn)展

      2019-09-10 08:15:27賀小英荊乾鴿姜欣穎吳憲蘭宗寶馬利兵
      關(guān)鍵詞:端粒酶

      賀小英 荊乾鴿 姜欣穎 吳憲 蘭宗寶 馬利兵

      摘要:端粒酶與體細(xì)胞重編程是當(dāng)今生物界最熱門的研究領(lǐng)域之一。研究端粒酶能揭示生物體胚胎早期發(fā)育、衰老和癌癥發(fā)生的機(jī)制;細(xì)胞重編程則有望從根本上解決體細(xì)胞克隆技術(shù)問(wèn)題,從而開啟生命再造新時(shí)代。文章通過(guò)對(duì)端粒酶與體細(xì)胞重編程及二者互作機(jī)制的最新研究進(jìn)展進(jìn)行詳細(xì)闡述,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞重編程面臨的主要問(wèn)題是效率低下,其根本原因是對(duì)其作用機(jī)制尚未完全了解;而最新研究證實(shí),生殖細(xì)胞的端粒酶活性發(fā)生時(shí)序性變化可能在胚胎發(fā)育及細(xì)胞重編程過(guò)程中發(fā)揮重要調(diào)控作用。因此,揭示細(xì)胞重編程機(jī)制是今后研究工作的重心,尤其是揭示端粒酶在胚胎發(fā)育過(guò)程的分子調(diào)控機(jī)理及端粒酶調(diào)控細(xì)胞重編程可能開啟的信號(hào)通路,對(duì)提高細(xì)胞重編程效率,推進(jìn)克隆動(dòng)物的生產(chǎn)實(shí)踐并開啟生命再造,以及為治療癌癥等人類重大疾病具有重要意義。

      關(guān)鍵詞: 端粒酶;體細(xì)胞重編程;表觀修飾;調(diào)控作用;胚胎發(fā)育

      中圖分類號(hào): S814.8 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號(hào):2095-1191(2019)05-1133-08

      0 引言

      端粒酶(Telomerase)是一種核糖核酸蛋白復(fù)合體,由端粒酶RNA(TER)、端粒酶催化亞基(TERT)及相關(guān)結(jié)合蛋白組成。其中,TERT是端粒酶蛋白組分中的催化亞單位,能直接刺激體外細(xì)胞增殖并延長(zhǎng)細(xì)胞壽命(Blasco,2005)。端粒(Telomeres)是由簡(jiǎn)單的DNA高度重復(fù)序列組成,且沿5'到3'方向富含GT,其中人類端粒由大量重復(fù)的TTAGGG組成。人們通常認(rèn)為,端粒酶有延長(zhǎng)端粒、保護(hù)端粒DNA完整性的功能,但越來(lái)越多研究證實(shí)其功能更強(qiáng)大和豐富。Park等(2009)研究表明,端粒酶通過(guò)與染色體重建蛋白BRG1相互作用而直接激活Wnt通路。Tsai等(2013)研究發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)端粒酶活性的神經(jīng)母細(xì)胞瘤經(jīng)RNA干擾手段滅活端粒酶后,細(xì)胞內(nèi)的DNA出現(xiàn)濃縮及細(xì)胞周期抑制現(xiàn)象。近十年來(lái),關(guān)于端粒酶又有新的分子功能發(fā)現(xiàn),即端粒酶調(diào)控細(xì)胞重編程。Zvereva等(2010)研究發(fā)現(xiàn),人類TERT能進(jìn)行細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄調(diào)控和代謝重編程;Kinoshita等(2014)研究證實(shí),當(dāng)滅活供體細(xì)胞端粒酶活性時(shí),許多與轉(zhuǎn)錄和表觀修飾相關(guān)的基因表達(dá)均發(fā)生一定程度的上調(diào)或下調(diào)??梢姡肆C冈隗w細(xì)胞重編程過(guò)程中發(fā)揮著極其重要的作用。關(guān)于端粒,曾認(rèn)為其只是不編碼的一個(gè)簡(jiǎn)單重復(fù)序列(TTAGGG)n,但現(xiàn)在越來(lái)越多研究認(rèn)為端粒除了維持染色體的結(jié)構(gòu)完整和功能穩(wěn)定外,還在調(diào)控細(xì)胞生長(zhǎng)、發(fā)育分化乃至細(xì)胞重編程等一系列生命活動(dòng)中扮演著重要角色(Mason et al.,2011)?!禨cience》在2007年刊登了進(jìn)一步的重大發(fā)現(xiàn):瑞士實(shí)驗(yàn)癌癥研究所的Joachim Linger及其同事發(fā)現(xiàn)端粒能充當(dāng)RNA的合成模板,產(chǎn)生許多RNA分子(Azzalin et al.,2007),但至今尚未明確這些合成RNA的具體作用。Wang等(2012)研究報(bào)道,與生殖細(xì)胞相比,體細(xì)胞端粒異質(zhì)性極可能是引起核重編程不徹底的關(guān)鍵因素,最終導(dǎo)致核移植效率低下或失敗。端粒維持生殖細(xì)胞染色體的完整性,而端粒酶通過(guò)延長(zhǎng)端粒使其在胚胎發(fā)育中實(shí)現(xiàn)完全重編程,與此不同的是,大多克隆動(dòng)物重編程效率低下,其主要原因是端粒并未被完全重編程,即端粒酶和端??赡苁怯绊懼鼐幊绦实年P(guān)鍵因素。為此,本文就端粒酶與體細(xì)胞重編程及二者互作機(jī)制的最新研究進(jìn)展進(jìn)行詳細(xì)闡述,為今后開展克隆動(dòng)物生產(chǎn)及再生醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域的相關(guān)研究提供參考。

      1 端粒酶的調(diào)控作用

      端粒酶是一種特殊的DNA逆轉(zhuǎn)錄酶。美國(guó)加州大學(xué)伯克利分校的研究人員對(duì)端粒酶結(jié)構(gòu)進(jìn)行了更精細(xì)的繪制(Jiang et al.,2015,2018),根據(jù)結(jié)構(gòu)圖(圖1)發(fā)現(xiàn)了兩個(gè)新蛋白Teb2和Teb3,二者與單鏈端粒DNA結(jié)合蛋白Teb1形成復(fù)合物(TEB),以增加端粒酶的活性。這兩個(gè)新蛋白的發(fā)現(xiàn)更正了人們認(rèn)為端粒酶由7個(gè)蛋白亞基和1個(gè)RNA鏈組成的觀點(diǎn)。此外,端粒酶的催化核心由RNA鏈及其互作蛋白TERT和p65組成。其中,RNA鏈形成一個(gè)環(huán)裹住TERT蛋白;端粒酶3個(gè)結(jié)構(gòu)蛋白p75、p45和p19較保守,四膜蟲與人類的結(jié)構(gòu)類似,且關(guān)鍵蛋白p50與TERT、Teb1和p75協(xié)同互作參與端粒酶的功能(Upton et al.,2017)。TER作為RNA模板,具有模板的核心和TER活化結(jié)構(gòu)域(CR4/5)兩部分結(jié)構(gòu)域,但其激活端粒酶的機(jī)制尚不清楚。最新研究發(fā)現(xiàn),全酶蛋白TCAB1能控制CR4/5的構(gòu)象,從而調(diào)控端粒酶復(fù)合體的組裝及其活性功能(Chen et al.,2018)。在人類胚胎早期發(fā)育階段,端粒酶在多種組織中具有活性,尤其在體外培養(yǎng)的絕大多數(shù)癌細(xì)胞和永生化細(xì)胞中均能檢測(cè)到端粒酶活性,但在成體細(xì)胞中缺乏端粒酶活性。

      人類TERT的表達(dá)調(diào)控在胚胎早期發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮重要作用,主要發(fā)生在轉(zhuǎn)錄水平上,且其表達(dá)量的調(diào)控對(duì)許多轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)均有影響,如鋅指轉(zhuǎn)錄因子Sp1、癌基因(c-Myc)和抑癌基因(p53)在調(diào)控端粒酶活性中發(fā)揮重要作用。Sp1結(jié)合位點(diǎn)的任何突變均能顯著降低人類TERT啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄表達(dá)(Su et al.,2018),通常Sp1需要與c-Myc協(xié)同作用才能激活端粒酶的表達(dá)(Zheng et al.,2018),而端粒酶活性的時(shí)序性調(diào)控不斷維持早期胚胎染色體的完整性和穩(wěn)定性。此外,端粒酶在胚胎發(fā)育過(guò)程中扮演著除延長(zhǎng)端粒長(zhǎng)度之外的其他重要調(diào)控作用。Lewinska等(2017)也研究證明,敲除人類TERT可導(dǎo)致p53轉(zhuǎn)錄升高,進(jìn)而減少細(xì)胞增殖,進(jìn)一步說(shuō)明p53在人類TERT表達(dá)過(guò)程中發(fā)揮負(fù)反饋調(diào)控作用。近幾年的研究發(fā)現(xiàn),TERT可直接與轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合,以輔助激活子的形式調(diào)控多個(gè)重要信號(hào)通路的下游靶基因表達(dá)(圖2)。信號(hào)通路TGF-β在胚胎發(fā)育和器官形成過(guò)程中發(fā)揮重要作用,其中,活化蛋白1(AP-1)能抑制人類TERT的轉(zhuǎn)錄,而AP1、TGF-β R1和SMAD3能抑制TGF-β活性途徑(Cherlet and Murphy,2007;Peek and Tollefsbol,2016;Yang et al.,2019)。也有研究認(rèn)為,ERα與上游人類TERT調(diào)控區(qū)結(jié)合而激活雌激素,是通過(guò)抑制TGF-β受體或AP1干擾TGF-β途徑來(lái)實(shí)現(xiàn)(Peek and Tollefsbol,2016)。Yano等(2016)、Lewinska等(2017)、Qin等(2018)研究報(bào)道,p21、p53和E2F1能抑制人類TERT活性,CDK2/CDK4和Cyclin D卻激活人類TERT表達(dá)而影響細(xì)胞增殖,從而改變細(xì)胞周期信號(hào)途徑。PI3K/Akt與TERT間存在反饋調(diào)節(jié),TERT表達(dá)可激活PI3K/Akt信號(hào)通路,而PI3K/Akt信號(hào)通路又可通過(guò)多種機(jī)制反作用增加TERT表達(dá)。PI3K/Akt和MAP激酶通路上調(diào)人類TERT轉(zhuǎn)錄是通過(guò)MAD1磷酸化,導(dǎo)致泛素介導(dǎo)的蛋白水解(Hein et al.,2011)。PI3K/Akt的通路作用可能導(dǎo)致人類TERT失調(diào),最終導(dǎo)致細(xì)胞增殖甚至發(fā)生永生化(Peek and Tollefsbol,2016)。現(xiàn)有研究證實(shí),在PI3k/Akt信號(hào)通路中,轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子PI3K、Akt和mTOR參與正調(diào)控TERT(Blasco,2005;Hein et al.,2011;Dogan and Biray Avci,2018),而PTEN參與負(fù)調(diào)控TERT(Yang et al.,2019)。NF-κB和c-Myc誘導(dǎo)的人表皮生長(zhǎng)因子受體2(HER2)在照射后能激活人類TERT的NF-κB通路,進(jìn)而破壞細(xì)胞周期調(diào)控進(jìn)程(Tilborghs et al.,2017)。此外,炎癥因子IKK通過(guò)激活端粒酶的活性而調(diào)控NF-κB通路,從而刺激細(xì)胞增殖(An et al.,2016)。最新研究發(fā)現(xiàn),表皮生長(zhǎng)因子受體(EGFR)可上調(diào)TERT的表達(dá)從而觸發(fā)MEK信號(hào)通路(Lin et al.,2018)。

      2 端粒酶與體細(xì)胞重編程的互作機(jī)制

      2. 1 體細(xì)胞重編程研究進(jìn)展

      細(xì)胞重編程是抹去基因組中原本存在的體細(xì)胞或生殖細(xì)胞類型特異的表觀遺傳修飾模式,建立起具有胚胎干細(xì)胞特異的表觀遺傳修飾模式,主要包括DNA甲基化修飾、組蛋白修飾、印記基因修飾及X染色體失活等表觀遺傳修飾的改變。

      2. 1. 1 DNA甲基化修飾 當(dāng)前的研究表明,克隆胚和克隆動(dòng)物存在異常的表觀遺傳修飾,如較高的DNA甲基化和較低的組蛋白乙酰化水平(Silveira et al.,2018)。在克隆牛早期胚胎中可觀察到不完全的去甲基化現(xiàn)象(Bonk et al.,2008),而這種不完全的修飾會(huì)導(dǎo)致個(gè)體發(fā)育異常,如大型胎兒綜合癥等(Giraldo et al.,2008)。Kremenskoy等(2006)通過(guò)調(diào)查克隆牛胎兒全基因組范圍內(nèi)的DNA甲基化模式,發(fā)現(xiàn)克隆牛胎兒的腦部和胎盤存在異常DNA甲基化。Yang等(2007)研究顯示,正常牛胚胎重新甲基化發(fā)生在8-細(xì)胞期到16-細(xì)胞期,但克隆牛胚胎在4-細(xì)胞期提前發(fā)生重新甲基化,且滋養(yǎng)層細(xì)胞存在超甲基化的異常修飾。還有研究認(rèn)為,甲基化程度較低的體細(xì)胞克隆胚重編程效率相對(duì)較高(Blelloch et al.,2006)。因此,克隆動(dòng)物發(fā)育異常及克隆動(dòng)物失敗均會(huì)發(fā)生DNA甲基修飾的異常,而選擇易于重編程的供體細(xì)胞類型至關(guān)重要(Solter,2000)。此外,Sahakyan等(2017)通過(guò)檢測(cè)克隆和非克隆公牛精子發(fā)育調(diào)節(jié)基因(PEG3、XIST、OCT4和NANOG)的甲基化狀態(tài),發(fā)現(xiàn)二者并無(wú)明顯差異,且囊胚中的甲基化狀態(tài)也相似??梢姡寺」5木釉谄浒l(fā)生過(guò)程中需要充分重新編程,才能產(chǎn)生表觀遺傳正常的胚胎,提示端粒酶在精子細(xì)胞重編程過(guò)程可能發(fā)揮重要作用。

      2. 1. 2 組蛋白修飾 組蛋白修飾在細(xì)胞重編程過(guò)程中也發(fā)揮著重要作用,是由于組蛋白單一位點(diǎn)的修飾即可改變?nèi)旧w構(gòu)象,進(jìn)而調(diào)控基因表達(dá)(Marx,2006;Park et al.,2018)。目前的研究表明,與體外受精(IVF)胚胎相比,核移植胚胎的組蛋白修飾存在不同程度的變異,從牛核移植胚胎原核期到8-細(xì)胞期的H3K9、H3K18、H4K5和H4K8乙?;骄@著高于IVF胚胎,且在兩種胚胎中H3K9和H3K18的乙?;蕜?dòng)態(tài)變化:在8-細(xì)胞期減弱,在囊胚和桑椹胚期又明顯增強(qiáng)(Wu et al.,2011)。此外,卵子對(duì)供體細(xì)胞不完全重編程可能也與組蛋白修飾異常有關(guān)。Marión等(2011)研究發(fā)現(xiàn),體細(xì)胞的端粒DNA大部分呈甲基化修飾狀態(tài),且富含組蛋白H3第9位賴氨酸三甲基化(H3K9me3)和H4第20位賴氨酸三甲基賴氨酸(H4K20me3)修飾,凡是能誘導(dǎo)成為iPS細(xì)胞的體細(xì)胞同樣伴隨著端粒重編程及其組蛋白的去甲基化修飾。

      2. 1. 3 印記基因修飾 印記基因是指僅來(lái)自親本一方的等位基因表達(dá),印記控制區(qū)(Imprinting control region,ICR)調(diào)控主要通過(guò)DNA甲基化的方式來(lái)實(shí)現(xiàn)。由于基因印記相關(guān)疾病的癥狀與體細(xì)胞克隆動(dòng)物發(fā)育異常出現(xiàn)的癥狀相似,故推測(cè)重編程過(guò)程中的印記紊亂是導(dǎo)致體細(xì)胞克隆動(dòng)物發(fā)育異常的原因之一(Shen et al.,2012)。有關(guān)發(fā)育異常和死亡的體細(xì)胞克隆動(dòng)物研究發(fā)現(xiàn),印記基因的表達(dá)和甲基化模式異常在體細(xì)胞克隆動(dòng)物各組織上均有存在。Deng等(2017)研究發(fā)現(xiàn),死亡的克隆羊與存活的克隆羊相比,前者各組織中H19基因甲基化程度更高,但二者在腦組織中的差異不顯著。Curchoe等(2009)發(fā)現(xiàn)體細(xì)胞克隆牛兩個(gè)印記基因(H19和IGF2)間的區(qū)域表現(xiàn)出異常超低甲基化修飾。此外,有研究發(fā)現(xiàn)印記基因XIST可能與雌性克隆牛的存活率有關(guān),IGF2基因可能參與雄性克隆牛的存活率,也就是說(shuō)印記基因在克隆動(dòng)物性別發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮重要作用(Ruan et al.,2018)。

      2. 1. 4 X染色體失活 X染色體失活一般發(fā)生在哺乳動(dòng)物的早期發(fā)育階段。X染色體失活是為了實(shí)現(xiàn)具有兩個(gè)X染色體的哺乳動(dòng)物雌性和具有單個(gè)X染色體的雄性與性別決定性Y染色體間的劑量等效(Sahakyan et al.,2017);在體細(xì)胞克隆過(guò)程中重編程不完全也會(huì)引起X染色體失活的異常。正常情況下,XIST基因僅作用于失活的X染色體(Inactive X chromosome,Xi),另一條有活性的X染色體(Active X chromosome,Xa)則不受其影響。已有研究表明,在雄性體外受精囊胚期的胚胎中檢測(cè)不到XIST基因mRNA,但在體細(xì)胞囊胚期發(fā)現(xiàn)有XIST基因 mRNA(Inoue et al.,2010)。在失活起始階段,X染色體被XIST基因包裹后,其組蛋白抑制性修飾如H3K27me3大量增加,而活性修飾如H3K4的甲基化被去除,在Xa染色體上則恰好相反,即H3K27me3相對(duì)較低而H3K4甲基化水平相對(duì)較高(Sado and Brockdorff,2013)。

      2. 2 端粒酶調(diào)控體細(xì)胞重編程

      2. 2. 1 端粒酶調(diào)控端粒重編程 端粒酶的首要生物學(xué)功能是維持端粒長(zhǎng)度。體細(xì)胞中缺乏端粒酶的活性,端粒長(zhǎng)度則隨DNA復(fù)制逐漸縮短;在生殖細(xì)胞中,同一精子產(chǎn)生的不同細(xì)胞端粒長(zhǎng)度存在明顯差別。Achi等(2000)通過(guò)對(duì)小鼠未成熟精原細(xì)胞、不同階段生精細(xì)胞及成熟具有受精能力的精子進(jìn)行端粒長(zhǎng)度檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn)未成熟精原細(xì)胞的端粒較其他生精細(xì)胞的短,且在生精細(xì)胞到精子成熟的過(guò)程中端粒長(zhǎng)度不斷增加。由于存在末端復(fù)制問(wèn)題,盡管體細(xì)胞端粒長(zhǎng)度隨年齡的增加而縮短,但精子端粒長(zhǎng)度因端粒酶活性的存在保持不變,其目的是為了保護(hù)精子染色體遺傳物質(zhì)的完整性,最終實(shí)現(xiàn)親代精子在胚胎發(fā)育中端粒的完全重編程(Yatsenko et al.,2012)。關(guān)于克隆動(dòng)物中端粒的重編程問(wèn)題,Shiels等(1999)認(rèn)為克隆羊多莉的端粒長(zhǎng)度并未完全重編程,因此導(dǎo)致其表現(xiàn)出早衰現(xiàn)象;Betts和King(1999)在克隆牛的所有組織和細(xì)胞中也未發(fā)現(xiàn)端粒長(zhǎng)度延長(zhǎng)現(xiàn)象。但Lanza等(2000)研究得出完全不同的結(jié)論,即克隆牛的端粒長(zhǎng)度顯著長(zhǎng)于其供體成纖維細(xì)胞;Dean等(2001)同樣發(fā)現(xiàn)克隆豬的端粒發(fā)生了重編程現(xiàn)象。關(guān)于核移植后端粒是否發(fā)生重編程的報(bào)道各不相同,其原因可能是體細(xì)胞中端粒的長(zhǎng)度變化是一個(gè)動(dòng)態(tài)過(guò)程,且克隆動(dòng)物的數(shù)量有限,不具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。因此,很難從克隆前、后動(dòng)物的體細(xì)胞探究端粒的長(zhǎng)度變化規(guī)律。目前,對(duì)于端粒酶和端粒在體細(xì)胞重編程過(guò)程中的作用機(jī)制尚不清楚,但可以肯定的是在胚胎形成期通過(guò)端粒酶重新合成端粒DNA具有重要意義(Schaetzlein and Rudolph,2005)。Wang等(2012)研究報(bào)道,在誘導(dǎo)iPS細(xì)胞重編程過(guò)程中端粒酶的活性起關(guān)鍵調(diào)控作用,端粒長(zhǎng)度發(fā)生動(dòng)態(tài)變化,且這種動(dòng)態(tài)變化可能在指導(dǎo)胚胎不斷發(fā)育和分化。

      端粒重編程發(fā)生不僅包括端粒的長(zhǎng)度變化,還包括許多參與端粒結(jié)合及與端粒調(diào)控有關(guān)的蛋白變化。至今已發(fā)現(xiàn)的端粒相關(guān)蛋白有TRF1、TRF2、TP1、TERT、Tankyrase和POT1等,其中,TRF1和TRF2是兩種端粒DNA結(jié)合蛋白(Telomere-specific DNA binding protein),且有學(xué)者認(rèn)為TRF1可能是通過(guò)抑制端粒酶來(lái)調(diào)控端粒長(zhǎng)度,TRF2則可能具有保護(hù)染色體末端的作用(Smogorzewska et al.,2000)。TP1是端粒酶蛋白組分中的亞單位,從構(gòu)成上來(lái)看是一種多功能蛋白(Blasco,2005);Tankyrase是一種人類端粒相關(guān)蛋白,推測(cè)其是通過(guò)失活TRF1的途徑來(lái)調(diào)控端粒酶活性;而人類端粒保護(hù)蛋白1(Human protection of telomeres 1,hPOT1)能與端粒單鏈重復(fù)序列TTAGGG特異性結(jié)合,并與其他端粒結(jié)合蛋白及端粒酶等共同完成端粒的保護(hù)和長(zhǎng)度調(diào)節(jié)(Hockemeyer et al.,2006)。此外,Huang等(2012)研究發(fā)現(xiàn),人類的Stn1蛋白在保護(hù)端粒完整性上發(fā)揮重要作用;Mersaoui和Wellinger(2019)研究發(fā)現(xiàn),酵母端粒長(zhǎng)度調(diào)控蛋白Cdc13特殊區(qū)域的突變會(huì)引起DNA分子破壞。因此,在端粒重編程過(guò)程中這些關(guān)鍵調(diào)控端粒的相關(guān)蛋白是否會(huì)發(fā)生變化,尚有待進(jìn)一步探究。

      2. 2. 2 端粒酶調(diào)控體細(xì)胞重編程 目前,針對(duì)端粒酶的研究主要集中在衰老和癌癥方面,細(xì)胞重編程的研究也以表觀修飾和調(diào)控為主,有關(guān)端粒酶和體細(xì)胞重編程互作方面的報(bào)道很少,但近期有研究表明端粒酶活性在細(xì)胞重編程過(guò)程中發(fā)揮著極其重要的作用。Marión等(2009a)研究認(rèn)為,只有供體細(xì)胞中具有端粒酶活性才能有效誘導(dǎo)產(chǎn)生iPS細(xì)胞,此時(shí)供體細(xì)胞的端粒發(fā)生重編程,獲得的iPS細(xì)胞與胚胎干細(xì)胞(ES細(xì)胞)特征一致。此后,Blasco及其研究團(tuán)隊(duì)在2009年的《Nature》雜志上報(bào)道,當(dāng)供體細(xì)胞缺失端粒酶活性就會(huì)導(dǎo)致端粒很短或DNA發(fā)生損失,此時(shí)供體細(xì)胞會(huì)阻礙細(xì)胞重編程的發(fā)生(Marión et al.,2009b)。Huang等(2011)也研究證實(shí),供體細(xì)胞端粒長(zhǎng)度是否被重編程決定了ESCs/iPSCs最終能否進(jìn)行多能性發(fā)育??梢?,體細(xì)胞作為供核細(xì)胞時(shí),其端粒與端粒酶活性在誘導(dǎo)iPS細(xì)胞重編程過(guò)程中發(fā)揮著重要作用,因此確定端粒酶在體細(xì)胞核移植后核重編程過(guò)程中同樣具有極其重要的作用。Wang等(2012)研究表明,與生殖細(xì)胞相比,體細(xì)胞端粒的異質(zhì)性極可能是引起核重編程不徹底的關(guān)鍵因素,最終導(dǎo)致核移植效率低下或失敗。此外,有報(bào)道稱端粒酶在體細(xì)胞核移植中除了延長(zhǎng)端粒長(zhǎng)度外,還發(fā)揮著其他作用。當(dāng)供體細(xì)胞敲除TERT或突變TERT致使端粒酶失活后,在細(xì)胞重編程中發(fā)現(xiàn)有75個(gè)基因表達(dá)上調(diào)和1571個(gè)基因表達(dá)下調(diào),而且這些基因大多數(shù)與轉(zhuǎn)錄和表觀修飾相關(guān)(Kinoshita et al.,2014)。最新研究還發(fā)現(xiàn)關(guān)于TERT基因DNA甲基化在細(xì)胞重編程相關(guān)基因表達(dá)中的一個(gè)新功能:在人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞與親代細(xì)胞的遠(yuǎn)端區(qū)域TERT啟動(dòng)子存在差異甲基化區(qū)域(DMR),在誘導(dǎo)多能干細(xì)胞TERT基因高度甲基化后,供體細(xì)胞呈低水平甲基化,即甲基化TERT-DMR能上調(diào)IPSC的啟動(dòng)子活性,從而調(diào)控細(xì)胞重編程進(jìn)程(Takasawa et al.,2018)。

      端粒酶活性在哺乳動(dòng)物生殖細(xì)胞和早期胚胎發(fā)育過(guò)程還具有時(shí)序性變化規(guī)律。早期腔前和排卵前卵母細(xì)胞的端粒酶活性較高,但成熟卵母細(xì)胞的端粒酶活性很低(Kosebent et al.,2018)。對(duì)于雄性的性源細(xì)胞來(lái)說(shuō),精母細(xì)胞和精子細(xì)胞具有端粒酶活性,而在成熟精子中檢測(cè)不到端粒酶活性(Ravindranath et al.,1997;Pech et al.,2015)。值得注意的是,卵母細(xì)胞受精后端粒酶活性明顯升高,但其發(fā)育成正常體細(xì)胞后端粒酶活性幾乎完全消失(Kosebent et al.,2018)。受精卵在胚胎發(fā)育的不同階段其端粒酶活性也會(huì)發(fā)生時(shí)序性變化,Betts和King(1999)研究發(fā)現(xiàn)在不同物種包括人類和牛受精胚在4-細(xì)胞期端粒酶活性再次出現(xiàn),且囊胚期活性表現(xiàn)相當(dāng)高。早期胚胎中的端粒延長(zhǎng)呈端粒酶依賴性,Schaetzlein等(2004)研究表明,在小鼠和牛的桑椹胚到胚泡過(guò)渡期發(fā)生端粒重編程,并在胚胎發(fā)生過(guò)程中建立了特定的端粒長(zhǎng)度,無(wú)論供體細(xì)胞核的端粒長(zhǎng)度如何,該過(guò)程都能恢復(fù)克隆胚中的端粒長(zhǎng)度。胚胎發(fā)育過(guò)程中端粒的延伸對(duì)于確保從親本到子代的正常端粒長(zhǎng)度分離至關(guān)重要,且可能對(duì)子代的再生、衰老和致癌等具有直接影響。Xu和Yang(2001)通過(guò)檢查來(lái)自孤雌激活和體細(xì)胞克隆牛胚胎中的端粒酶活性,并在胚胎發(fā)育不同階段獲取從受精卵到胚泡的端粒酶活性,結(jié)果顯示孤雌激活和體細(xì)胞克隆牛胚胎中的端粒酶活性與IVF胚胎具有相似的動(dòng)態(tài)特征。此外,在鼠和牛的胚胎發(fā)育期間,端粒酶在桑椹胚/胚泡轉(zhuǎn)變中被強(qiáng)烈激活,端粒明顯延長(zhǎng)。在胚胎發(fā)育的不同階段,無(wú)論胚胎獲得方法如何,檢測(cè)到的端粒酶活性均在胚泡階段達(dá)最高水平。

      3 展望

      細(xì)胞重編程在《Science》2008年評(píng)出的“十大科學(xué)進(jìn)展”中位列第一,日本科學(xué)家山中伸彌和英國(guó)科學(xué)家約翰·伯特蘭·格登也因研究細(xì)胞重編程取得重大突破而獲得2012年度諾貝爾生理學(xué)或醫(yī)學(xué)獎(jiǎng)。至此,細(xì)胞重編程成為當(dāng)今生物界許多學(xué)者熱衷研究的領(lǐng)域之一。由于細(xì)胞重編程有望從根本上解決體細(xì)胞克隆技術(shù)問(wèn)題及攻克再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域面臨的技術(shù)難題,因此是未來(lái)動(dòng)物改良育種、人類不孕不育乃至癌癥等重大疾病治療中最具應(yīng)用價(jià)值的一項(xiàng)前沿技術(shù)。目前,細(xì)胞重編程面臨的共同問(wèn)題是效率低下,而根本原因是對(duì)其作用機(jī)制尚未完全了解,例如生殖細(xì)胞的端粒酶活性不斷發(fā)生時(shí)序性變化在胚胎發(fā)育乃至細(xì)胞重編程過(guò)程中究竟發(fā)揮著怎樣的作用,是否在有序調(diào)控細(xì)胞重編程或開啟某些信號(hào)通路的變化等。因此,闡明細(xì)胞重編程機(jī)制,尤其是揭示端粒酶在胚胎發(fā)育過(guò)程中的分子調(diào)控機(jī)理及端粒酶調(diào)控細(xì)胞重編程可能開啟的信號(hào)通路,對(duì)提高細(xì)胞重編程效率,推進(jìn)克隆動(dòng)物的生產(chǎn)實(shí)踐并開啟生命再造,以及治療癌癥等人類重大疾病具有重要意義。

      參考文獻(xiàn):

      Achi M V,Ravindranath N,Dym M. 2000. Telomere length in male germ cells is inversely correlated with telomerase activity[J]. Biology of Reproduction,63(2):591-598.

      An J,Wu M,Xin X,Lin Z,Li X,Zheng Q,Gui X,Li T,Pu H,Li H,Lu D. 2016. Inflammatory related gene IKKα,IKKβ,IKKγ cooperates to determine liver cancer stem cells progression by altering telomere via heterochromatin protein 1-HOTAIR axis[J]. Oncotarget,7(31):50131-50149.

      Azzalin C M,Reichenbach P,Khoriauli L,Giulotto E,Ling-ner J. 2007. Telomeric,repeat containing RNA and RNA surveillance factors at mammalian chromosome ends[J]. Science,318(5851):798-801.

      Betts D H,King W A. 1999. Telomerase activity and telomere detection during early bovine development[J]. Developmental Genetics,25(4):397-403.

      Blasco M A. 2005. Telomeres and human disease:Ageing,cancer and beyond[J]. Nature Reviews Genetics,6(8):611-622.

      Blelloch R,Wang Z,Meissner A,Pollard S,Smith A,Jaenisch R. 2006. Reprogramming efficiency following somatic cell nuclear transfer is influenced by the differentiation and methylation state of the donor nucleus[J]. Stem Cells,24(9):2007-2013.

      Bonk A J,Li R,Lai L,Hao Y,Liu Z,Samuel M,F(xiàn)ergason E A,Whitworth K M,Murphy C N,Antoniou E,Prather R S. 2008. Aberrant DNA methylation in porcine in vitro- parthenogenetic-,and somatic cell nuclear transfer-produced blastocysts[J]. Molecular Reproduction Development,75(2):250-264.

      Chen L,Roake C M,F(xiàn)reund A,Batista P J,Tian S,Yin Y A,Gajera C R,Lin S,Lee B,Pech M F,Venteicher A S,Das R,Chang H Y,Artandi S E. 2018. An activity switch in human telomerase based on RNA conformation and shaped by TCAB1[J]. Cell,174(1):218-230.

      Cherlet T,Murphy L C. 2007. Estrogen receptors inhibit Smad3 transcriptional activity through Ap-1 transcription factors[J]. Molecular and Cellular Biochemistry,306(1-2):33-42.

      Curchoe C L,Zhang S Q,Yang L,Page R,Tian X C. 2009. Hypomethylation trends in the intergenic region of the imprinted IGF2 and H19 genes in cloned cattle[J]. Animal Reproduction Science,116(3-4):213-225.

      Dean W,Santos F,Stojkovic M,Zakhartchenko V,Walter J,Wolf E,Reik W. 2001. Conservation of methylation reprogramming in mammalian development:Aberrant reprogramming in cloned embryos[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of Ame-rica,98(24):13734-13738.

      Deng M,Ren C,Liu Z,Zhang G,Wang F,Wan Y. 2017. Epigenetic status of H19-Igf2 imprinted genes and loss of 5-Hydroxymethylcytosine in the brain of cloned goats[J]. Cellular Reprogramming,19(3):199-207.

      Dogan F,Biray Avci C. 2018. Correlation between telomerase and mTOR pathway in cancer stem cells[J]. Gene,641:235-239.

      Giraldo A M,Hylan D A,Ballard C B,Purpera M N,Vaught T D,Lynn J W,Godke R A,Bondioli K R. 2008. Effect of epigenetic modifications of donor somatic cells on the subsequent chromatin remodeling of cloned bovine embryos[J]. Biology of Reproduction,78(5):832-840.

      Hein N,Jiang K,Cornelissen C,Lüscher B. 2011. TGFβ1 enhances MAD1 expression and stimulates promoter-bound Pol II phosphorylation:Basic functions of C/EBP,SP and SMAD3 transcription factors[J]. BMC Molecular Biology,12:9. doi:10.1186/1471-2199-12-9.

      Hockemeyer D,Daniela J P,Takai H,de Lange T. 2006. Recent expansion of the telomeric complex in rodents:Two distinct POT1 proteins protect mouse telomeres[J]. Cell,126(1):63-77.

      Huang C H,Dai X Y,Chai W H. 2012. Human Stn1 protects telomere integrity by promoting efficient lagging-strand synthesis at telomeres and mediating C-strand fill-in[J]. Cell Research,22(12):1681-1695.

      Huang J J,Wang F,Okuka M,Liu N,Ji G,Ye X,Zuo B,Li M,Liang P,Ge W W,Tsibris J C,Keefe D L,Liu L. 2011. Association of telomere length with authentic pluripotency of ES/iPS cells[J]. Cell Research,21(5):779-792.

      Inoue K,Kohda T,Sugimoto M,Sado T,Odonuki N,Matoba S,Shiura H,Ikeda R,Mochida K,F(xiàn)ujii T,Sawai K,Otte A P,Tian X C,Yang X,Ishino F,Abe K,Ogura A. 2010. Impeding Xist expression from the active X chromosome improves mouse somatic cell nuclear transfer[J]. Science,330(6003):496-499.

      Jiang J,Chan H,Cash D D,Miracco E J,Ogorzalek Loo R R,Upton H E,Cascio D,O’Brien Johnson R,Collins K,Loo J A,Zhou Z H,F(xiàn)eigon J. 2015. Structure of Tetrahymena telomerase reveals previously unknown subunits,functions,and interactions[J]. Science,350(6260):aab4070. doi:10.1126/science.aab4070.

      Jiang J,Wang Y,Su?ac L,Chan H,Basu R,Zhou Z H,F(xiàn)eigon J. 2018. Structure of telomerase with telomeric DNA[J]. Cell,173(5):1179-1190.

      Kinoshita T,Nagamatsu G,Saito S,Takubo K,Horimoto K,Suda T. 2014. Telomerase reverse transcriptase has an extratelomeric function in somatic cell reprogramming[J]. The Journal of Biological Chemistry,289(22):15776-15787.

      Kosebent E G,Uysal F,Ozturk S. 2018. Telomere length and telomerase activity during folliculogenesis in mammals[J]. The Journal of Reproduction and Development,64(6):477-484.

      Kremenskoy M,Kremenska Y,Suzuki M,Imai K,Takahashi S,Hashizume K,Yaqi S,Shiota K. 2006. DNA methylation profiles of donor nuclei cells and tissues of cloned bovine fetuses[J]. The Journal of Reproduction and Development,52(2):259-266.

      Lanza R P,Cibelli J B,Blackwell C,Cristofalo V J,F(xiàn)rancis M K,Baerlocher G M,Mak J,Schertzer M,Chavez E A,Sawyer N,Lansdorp P M,West M D. 2000. Extension of cell life-span and telomere length in animals cloned from senescent somatic cells[J]. Science,288(5466):665-669.

      Lewinska A,Adamczyk-Grochala J,Kwasniewicz E,Wnuk M. 2017. Downregulation of methyltransferase Dnmt2 results in condition-dependent telomere shortening and senescence or apoptosis in mouse fibroblasts[J]. Journal of Cellular Physiology,232(12):3714-3726.

      Lin C,Qin Y,Zhang H,Gao M Y,Wang Y F. 2018. EGF upregulates RFPL3 and hTERT via the MEK signaling pathway in non-small cell lung cancer cells[J]. Oncology Reports,40(1):29-38.

      Marión R M,Schotta G,Ortega S, Blasco M A. 2011. Suv4-20h abrogation enhances telomere elongation during reprogramming and confers a higher tumorigenic potential to iPS cells[J]. PLoS One,6(10):e25680.

      Marión R M,Strati K,Li H,Murga M,Blanco R,Ortega S,F(xiàn)ernandez-Capetillo O,Serrano M,Blasco M A. 2009a. A p53-mediated DNA damage response limits reprogramming to ensure iPS cell genomic integrity[J]. Nature,460(7259):1149-1153.

      Marión R M,Strati K,Li H,Tejera A,Schoeftner S,Ortega S,Serrano M,Blasco M A. 2009b. Telomeres acquire em-bryonic stem cell characteristics in induced pluripotent stem cells[J]. Cell Stem Cell,4(2):141-154.

      Marx J. 2006. Molecular biology. Protein tail modification opens way for gene activity[J]. Science,311(5762):757.

      Mason M,Schuller A,Skordalakes E. 2011. Telomerase structure function[J]. Current Opinion in Structural Biology,21(1):92-100.

      Mersaoui S Y,Wellinger R J. 2019. Fine tuning the level of the Cdc13 telomere-capping protein for maximal chromosome stability performance[J]. Current Genetics,65(1);109-118.

      Park J I,Venteicher A S,Hong J Y,Choi J,Jun S,Shkreli M,Chang W,Meng Z,Cheung P,Ji H,McLauqhin M,Veenstra T D,Nusse R,McCrea P D,Artandi S E. 2009. Telomerase modulates Wnt signalling by association with target gene chromatin[J]. Nature,460(7251):66-72.

      Park J,Lee H,Han N,Kwak S,Lee H T,Kim J H,Kang K,Youn B H,Jeong H J,Kang J S,Kim S Y,Han J W,Youn H D,Cho E J. 2018. Long non-coding RNA ChRO1 facilitates ATRX/DAXX-dependent H3.3 deposition for transcription- associated heterochromatin reorganization[J]. Nucleic Acids Research. doi: 10. 1093/nar/gky923.

      Pech M F,Garbuzov A,Hasegawa K,Sukhwani M,Zhang R J,Benayoun B A,Brockman S A,Lin S,Brunet A,Orwig K E,Artandi S E. 2015. High telomerase is a hallmark of undifferentiated spermatogonia and is required for maintenance of male germline stem cells[J]. Genes & Development,29(23):2420-2434.

      Peek G W,Tollefsbol T O. 2016. Down-regulation of hTERT and Cyclin D1 transcription via PI3K/Akt and TGF-β pathways in MCF-7 cancer cells with PX-866 and raloxifene[J]. Experimental Cell Research,344(1):95-102.

      Qin Q P,Wang S L,Tan M X,Wang Z F,Luo D M,Zou B Q,Liu Y C,Yao P F,Liang H. 2018. Novel tacrine platinum(II) complexes display high anticancer activity via inhibition of telomerase activity,dysfunction of mitochondria,and activation of the p53 signaling pathway[J]. European Journal of Medicinal Chemistry,158:106-122.

      Ravindranath N,Dalal R,Solomon B,Djakiew D,Dym M. 1997. Loss of telomerase activity during male germ cell differentiation[J]. Endocrinology,138(9):4026-4029.

      Ruan Z,Zhao X,Qin X,Luo C,Liu X,Deng Y,Zhu P,Li Z,Huang B,Shi D,Lu F. 2018. DNA methylation and expression of imprinted genes are associated with the viability of different sexual cloned buffaloes[J]. Reproduction in Domestic Animals,53(1):203-212.

      Sado T,Brockdorff N. 2013. Advances in understanding chromosome silencing by the long non-coding RNA XIST[J]. Philosophical Transactions of the Royal Society of London(Series B),368(1609):20110325. doi: 10.1098/rstb.2011.0325.

      Sahakyan A,Plath K,Rougeulle C. 2017. Regulation of X-chromosome dosage compensation in human:Mechanisms and model systems[J]. Philosophical Transactions of the Royal Society of London(Series B),372(1733). Pii:20160363. doi:10.1098/rstb.2016.0363.

      Schaetzlein S,Lucas-Hahn A,Lemme E,Kues W A,Dorsch M,Manns M P,Niemann H,Rudolph K L. 2004. Telomere length is reset during early mammalian embryogene-sis[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,101(21):8034-8038.

      Schaetzlein S,Rudolph K L. 2005. Telomere length regulation during cloning, embryogenesis and ageing[J]. Reproduction,F(xiàn)ertility,and Development,17(1-2):85-96.

      Shen C J,Cheng W K,Wu S C,Chen H L,Tsai T C,Yang S H,Chen C M. 2012. Differential differences in methylation status of putative imprinted genes among cloned swine genomes[J]. PLoS One,7(2):e32812.

      Shiels P G,Kind A J,Campbell K H,Waddington D,Wilmut I,Colman A,Schnieke A E. 1999. Analysis of telomere lengths in cloned sheep[J]. Nature,399(6734):316-317.

      Silveira M M,Salgado Bay?o H X,Dos Santos Mendon?a A,Borges N A,Vargas L N,Caetano A R,Rumpf R,F(xiàn)ranco M M. 2018. DNA methylation profile at a satellite region is associated with aberrant placentation in cloned calves[J]. Placenta,70:25-33. doi:10.1016/j.placenta.2018. 08.007.

      Smogorzewska A,van Steensel B,Bianchi A,Oelmann S,Schaefer M R,Schnapp G,de Lange T. 2000. Control of human telomere length by TRF1 and TRF2[J]. Molecular and Cellular Biology,20(5):1659-1668.

      Solter D. 2000. Mammalian cloning:Advances and limitations[J]. Nature Reviews. Genetics,1(3):199-207.

      Su Y,Chen C,Guo L,Du J,Li X,Liu Y. 2018. Ecological balance of oral microbiota is required to maintain oral mesenchymal stem cell homeostasis[J]. Stem Cells,36(4):551-561.

      Takasawa K,Arai Y,Yamazaki-Inoue M,Toyoda M,Akutsu H,Umezawa A,Nishino K. 2018. DNA hypermethylation enhanced telomerase reverse transcriptase expression in human-induced pluripotent stem cells[J]. Human Cell,31(1):78-86.

      Tilborghs S,Corthouts J,Verhoeven Y,Arias D,Rolfo C,Trinh X B,van Dam P A. 2017. The role of nuclear factor-kappa B signaling in human cervical cancer[J]. Critical Reviews in Oncology/Hematology,120:141-150.

      Tsai M D,Chen P R,Tien L T,Cai Y J,Lee Y J. 2013. Nuc-lear condensation and cell cycle arrest induced by telome-rase siRNA in neuroblastoma cells[J]. Journal of Neu-ro-oncology,111(3):265-272.

      Upton H E,Chan H,F(xiàn)eigon J,Collins K. 2017. Shared subunits of tetrahymena telomerase holoenzyme and replication protein a have different functions in different cellular complexes[J]. The Journal of Biological Chemistry,292(1):217-228.

      Wang F,Yin Y,Ye X,Liu K,Zhu H,Wang L,Chiourea M,Okuka M,Ji G,Dan J,Zou B,Li M,Zhang Q,Liu N,Chen L,Pan X, Gagos S,Keefe D L,Liu L. 2012. Molecular insights into the heterogeneity of telomere reprogramming in induced pluripotent stem cells[J]. Cell Research,22(4):757-768.

      Wu X,Li Y,Xue L,Wang L,Yue Y,Li K,Bou S,Li G P,Yu H. 2011. Multiple histone site epigenetic modifications in nuclear transfer and in vitro fertilized bovine embryos[J]. Zygote,19(1):31-45.

      Xu J,Yang X. 2001. Telomerase activity in early bovine embryos derived from parthenogenetic activation and nuc-lear transfer[J]. Biology of Reproduction,64(3):770-774.

      Yang W,Wu Z,Yang K,Han Y,Chen Y,Zhao W,Huang F,Jin Y,Jin W. 2019. BMI1 promotes cardiac fibrosis in ischemia-induced heart failure via the PTEN-PI3K/AKT-mTOR signaling pathway[J]. American Journal of Physio-logy,316(1):H61-H69.

      Yang X Z,Smith S L,Tian X C,Lewin H A,Renard J P,Wakayama T. 2007. Nuclear reprogramming of cloned embryos and its implications for therapeutic cloning[J]. Nature Genetics,39(3):295-302.

      Yano S,Takehara K,Tazawa H,Kishimoto H,Urata Y,Kagawa S,F(xiàn)ujiwara T,Hoffman R M. 2016. Efficacy of a cell-cycle decoying killer adenovirus on 3-D gelfoam?-histoculture and tumor-sphere models of chemo-resistant stomach carcinomatosis visualized by FUCCI imaging[J]. PLoS One,11(9):e0162991.

      Yatsenko S A,Hixson P,Roney E K,Scott D A,Schaaf C P,Ng Y T,Palmer R,F(xiàn)isher R B,Patel A,Cheung S W,Lupski J R. 2012. Human subtelomeric copy number gains suggest a DNA replication mechanism for formation:Beyond breakage-fusion-bridge for telomere stabilization[J]. Human Genetics,131(12):1895-1910.

      Zheng L,Suzuki H,Nakajo Y,Nakano A,Kato M. 2018. Re-gulation of c-MYC transcriptional activity by transforming growth factor-beta 1-stimulated clone 22[J]. Cancer Scien-ce,109(2):395-402.

      Zvereva M I,Shcherbakova D M,Dontsova O A. 2010. Telomerase:Structure,functions,and activity regulation[J]. Biochemistry,75(13):1563-1583.

      (責(zé)任編輯 陳 燕)

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