趙培霞, 王 雷
(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院, 內(nèi)蒙古 呼和浩特 010019)
甘蒙錦雞兒(CaraganaopulensKom.)是豆科錦雞兒屬植物,多年生灌木,高40~60 cm,主要分布于內(nèi)蒙古、河北、山西、陜西、寧夏、甘肅、青海東部、四川北部、西藏昌都地區(qū),生長(zhǎng)于海拔高達(dá)3 400 m的干山坡、溝谷、丘陵[1-3]。甘蒙錦雞兒是干旱地區(qū)良好的水土保持樹種[4],枝葉營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)含量高,為優(yōu)良飼料;其莖干粗硬,耐燃燒,可做薪柴;是優(yōu)良綠肥植物[5]。
甘蒙錦雞兒是一種花色鮮艷、葉形美觀、抗旱性極強(qiáng)、適應(yīng)性比較廣的我國(guó)特有野生植物。隨著城市園林綠化建設(shè)的不斷發(fā)展,野生花卉的引種馴化和開發(fā)應(yīng)用越來越受到重視[6]。如果將鄉(xiāng)土植物引種到北方城市園林綠化建設(shè)中,可在層次、色彩感方面起到一定的作用。除在園林方面價(jià)值顯著外,藥用方面的價(jià)值也很顯著,具有抗炎、抗腫瘤、抗病毒、降壓等多種藥理作用[7]。目前,肖岸容[8]、楊中鐸[9]等對(duì)甘蒙錦雞兒的優(yōu)良化學(xué)成分進(jìn)行了詳細(xì)的研究。冷肖荀[10]對(duì)甘蒙錦雞兒芽苗切根移栽容器育苗進(jìn)行了試驗(yàn),指出使用IBA和ABT,可以極顯著地促進(jìn)側(cè)根數(shù)的增加。瞿元清[11]在試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)甘蒙錦雞兒在荒山造林的成活率方面明顯較其他樹種高。馬成倉(cāng)[12]對(duì)內(nèi)蒙古高原地區(qū)的甘蒙錦雞兒的光合作用和水分代謝進(jìn)行研究。甘蒙錦雞兒多用種子繁殖,但甘蒙錦雞兒不僅果莢內(nèi)種子數(shù)量極少,而且種子害蟲嚴(yán)重,種子被害率很高。因此,依靠種子繁殖進(jìn)行資源擴(kuò)繁困難重重。錦雞兒屬其他種[13-15]在組培方面都有相關(guān)研究,而甘蒙錦雞兒在組培方向的研究還處于相對(duì)空白狀態(tài)。本試驗(yàn)擬利用植物組織培養(yǎng)技術(shù),找到合適的激素搭配,培育出具有優(yōu)良性狀的植株,為甘蒙錦雞兒今后的引種及擴(kuò)大繁殖提供理論基礎(chǔ)。
試驗(yàn)用的甘蒙錦雞兒成熟種子于學(xué)校指定種子公司購(gòu)買,置于4℃冰箱保存,選取籽粒飽滿的種子備用。
1.2.1種子預(yù)處理與消毒 選取成熟飽滿的種子置于圓柱瓶中用蒸餾水浸泡一晚(種子硬度強(qiáng)),將浸泡后的種子置于超凈工作臺(tái)中,用75%的酒精浸泡30 s,此濃度的酒精有很強(qiáng)的穿透力和殺菌力,但卻不能徹底滅菌[16],用無菌水沖洗3~5次,再用2%的次氯酸鈉浸泡,浸泡時(shí)不停的搖晃瓶子,作6種梯度進(jìn)行滅菌:0,8,10,12,15,17 min,最后用無菌水沖洗3~5次,用濾紙吸干凈種子表面的水分,接種于MS(Murashige and Skoog medium,MS培養(yǎng)基)培養(yǎng)基中,7 d統(tǒng)計(jì)污染率。
1.2.2種子萌發(fā) 在超凈臺(tái)中,將經(jīng)過不同滅菌時(shí)間處理的種子接種于以MS+3%蔗糖+0.6%瓊脂為基本培養(yǎng)基,分別添加不同質(zhì)量濃度的6-BA(6-Benzylaminopurine,6-芐氨基腺嘌呤)(0.2,0.5,1.0,1.5 mg·L-1)和NAA(α-Naphthalene acetic acid,α-萘乙酸)(0.05,0.1,0.3 mg·L-1)共12個(gè)組合,每種培養(yǎng)基接種10瓶,每瓶接個(gè)2外植體,置于光培養(yǎng),從接種之日起30 d觀察芽的萌發(fā)情況,并統(tǒng)計(jì)種子誘導(dǎo)率及萌發(fā)新芽的生長(zhǎng)狀況。
1.2.3芽的增殖 甘蒙錦雞兒的組培苗長(zhǎng)到一定高度時(shí),剪取含有一對(duì)腋芽的莖段,接種于以MS+3%蔗糖+0.6%瓊脂為基本培養(yǎng)基,分別添加不同質(zhì)量濃度的6-BA(0.2,0.5,1.0 mg·L-1)和NAA(0.05,0.1,0.2 mg·L-1)。按照2因素3水平正交實(shí)驗(yàn)安排,共9種組合,選擇生長(zhǎng)良好的芽增殖繼代2~3次,繼代周期為30 d,并在4周左右觀察芽的增殖系數(shù)和植株生長(zhǎng)狀況。
1.2.4生根培養(yǎng) 將生長(zhǎng)良好的植株,移植于以1/2 MS+2%蔗糖+0.6%瓊脂為基本培養(yǎng)基,分別添加1)IBA(Indole-3-butyric acid,吲哚丁酸) 0.3 mg·L-1+ NAA 0.3 mg·L-1;2)IBA 0.5 mg·L-1+ NAA 0.5 mg·L-1;3)IBA 1.0 mg·L-1+ NAA 0.8 mg·L-1;4)IAA(Indole-3-acetic acid,吲哚乙酸)0.5 mg·L-1;5)IAA 0.5 mg·L-1+ GA3(Gibberellin,赤霉素) 0.15 mg·L-1;6)IAA 0.1 mg·L-1;7)IBA 0.3 mg·L-1;8)IBA 0.5 mg·L-1+ NAA 0.05 mg·L-1的培養(yǎng)基上進(jìn)行生根培養(yǎng),30 d后觀察生根數(shù),生根時(shí)間和試管苗的生長(zhǎng)狀況。
1.2.5煉苗與移栽 將經(jīng)生根培養(yǎng)的甘蒙錦雞兒幼苗移栽到已經(jīng)滅菌的草炭土∶珍珠巖∶蛭石=6∶3∶1的混合基質(zhì)中,前3 d密封處理,3 d后期間可揭少蓋通風(fēng)換氣,15 d后統(tǒng)計(jì)成活率。
1.2.6培養(yǎng)條件 培養(yǎng)基PH范圍為5.75~5.85,于121℃高壓滅菌鍋(1.1 Mpa)內(nèi)滅菌,后放于工作臺(tái)冷卻備用。接種后放于溫度為25±1℃,光照強(qiáng)度為50 μmol·m-2·s-1,光照時(shí)間為12 h的培養(yǎng)室。
1.2.7數(shù)據(jù)處理 利用SPSS 20.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析處理。
數(shù)據(jù)采用以下公式進(jìn)行處理:
污染率(%)=被污染的外植體數(shù)/接種的外植體總數(shù)×100%;
芽誘導(dǎo)率(%)=發(fā)生萌發(fā)個(gè)數(shù)/外植體總數(shù)×100%;
叢生芽誘導(dǎo)率(%)=長(zhǎng)叢生芽的外植體數(shù)/外植體總數(shù)×100%;
增殖系數(shù)=形成叢生芽的總數(shù)/外植體總數(shù);
生根率(%)=生根的外植體個(gè)數(shù)/外植體總數(shù)×100%。
試驗(yàn)用種子含水率比較低,生理活動(dòng)非常微弱。故對(duì)種子進(jìn)行預(yù)處理,浸種于蒸餾水的目的是使種子較快地吸水,達(dá)到能正常發(fā)芽的含水量。外植體的消毒滅菌是組織培養(yǎng)的難點(diǎn)之一,因此確定合適的滅菌試劑和滅菌時(shí)間是極其重要的一步。試驗(yàn)所采用的外植體為成熟種子,材料消完毒后,將種子和藥劑接觸的種皮去除(種皮部分可能攜帶細(xì)菌)接種于MS培養(yǎng)基。接種7 d后統(tǒng)計(jì)污染率、褐化率和成活率見表1。污染率隨著滅菌時(shí)間的加長(zhǎng)而逐漸減小,褐化率也逐漸減小,但隨著滅菌時(shí)間的加長(zhǎng),污染率、褐化率又逐漸加大,在15 min是污染率達(dá)到最小,種子出芽率為最高,而且種子生長(zhǎng)狀態(tài)比較好,如果滅菌時(shí)間過長(zhǎng),使種子失去活性,嚴(yán)重影響種子的發(fā)芽率。因此,在甘蒙錦雞兒無菌苗體系建立過程中,采用75%酒精滅菌30 s配合次氯酸鈉消毒15 min為較為適宜的方法。
表1 不同方式對(duì)甘蒙錦雞兒種子滅菌效果的影響Table 1 Effect of different methods on seed disinfection of C. opulens
將甘蒙錦雞兒的種子接于以MS培養(yǎng)基為基本培養(yǎng)基,添加不同濃度6-BA和NAA組合的12種培養(yǎng)基中,生長(zhǎng)過程見圖1。表2是甘蒙錦雞兒在各不同濃度激素處理下培養(yǎng)30 d后,種子的萌發(fā)率及新芽的生長(zhǎng)狀況。
圖1 甘蒙錦雞兒組織培養(yǎng)過程Fig.1 Process of tissue culture of C. opulens注:a:外植體;b-c:叢生芽誘導(dǎo);d-f:生根植株;g-i:試管苗生根;j-l:煉苗Note:a:Explants;b-c:Cluster bud induction;d-f:Rooting plants;g-i:Rooting of test-tube plantlets;j-l:Training seedling
表2 不同激素濃度組合對(duì)甘蒙錦雞兒成熟胚芽誘導(dǎo)的影響Table 2 Effects of different hormone concentration combinations on induction of mature embryo of C. opulens
處理Treatments編號(hào)Number激素濃度Hormone concentration/mg·L-16-BANAA種數(shù)Number of vaccinations誘導(dǎo)芽率Induced bud rate芽生長(zhǎng)情況Bud situation1G10.200.056048.62%±0.04++2G20.200.106050.84%±0.08++3G30.200.306036.67%±0.23+4G40.500.056078.84%±0.01++++5G50.500.106059.98%±0.19+++6G60.500.306043.67%±0.32++7G71.000.056062.60%±0.18+++8G81.000.106046.19%±0.05++9G91.000.306052.33%±0.26++10G101.500.056035.41%±0.06+11G111.500.106043.67%±0.08+12G121.500.306051.67%±0.56++
注:++++生長(zhǎng)非常,+++好,++一般、+不是很好
Note:+++ growth is very,+++ good,++ average,+ not very good
F檢驗(yàn)結(jié)果見表3:因素6-BA、NAA及兩者的交互作用對(duì)種子誘導(dǎo)效果產(chǎn)生顯著影響。6-BA、兩者的交互作用及NAA的F值從大到小依次為13.18,8.86和7.48。說明6-BA對(duì)種子的誘導(dǎo)率影響最大,兩者的交互作用次之,然后是NAA。要確定哪個(gè)水平影響效果顯著,則需進(jìn)行多重比較分析,采用Duncan方差分析見表4,5。
表3 誘導(dǎo)芽率的多因素方差分析Table 3 Multivariate variance analysis of induced bud rate
注:P<0.05.下同
Note:P<0.05. The same as below
從表4得出:在P<0.05水平下,6-BA在A2(0.5 mg·L-1)、A3(1.0 mg·L-1)水平時(shí)與其他2個(gè)濃度水平A1、A4呈現(xiàn)顯著性差異,A2與A3水平間差異不顯著、A1與A4水平間差異不顯著;在P<0.01水平下,6-BA在A2、A3水平時(shí)與其他2個(gè)濃度水平A1、A4呈現(xiàn)極顯著性差異,A2與A3、A1與A4水平間差異不顯著;根據(jù)均值大小,即當(dāng)6-BA為A2(0.5 mg·L-1)水平時(shí)對(duì)誘導(dǎo)芽率影響最顯著。
表4 A因素(6-BA)4水平Duncan檢驗(yàn)Table4 Duncan test of factor A(6-BA) on 4 levels
注:不同小寫字母表示0.05水平差異顯著,不同大寫字母表示0.01水平差異顯著,下同
Note:Different lowercase letters indicate significant differences at the 0.05 level,and different uppercase letters indicate significant differences at the 0.01 level,The same as below[17]
從表5得出:在P<0.05水平下,NAA在B1(0.05 mg·L-1)水平時(shí)與B2,B3水平呈現(xiàn)顯著性差異,B2與B3水平間差異不顯著;在P<0.01水平下,NAA在B1水平時(shí)與B3呈現(xiàn)極顯著性差異,B1與B2,B2與B3水平間差異不顯著,即誘導(dǎo)率最高時(shí)為NAA的B1(0.05 mg·L-1)水平。綜上所述,甘蒙錦雞兒成熟種子初代培養(yǎng)的適宜濃度組合為6-BA 0.5 mg·L-1+ NAA 0.05 mg·L-1,誘導(dǎo)率最高為78.84%。
表5 B因素(NAA)3水平Duncan檢驗(yàn)Table5 Duncan test of factor B(NAA) on 3 levels
試驗(yàn)采用2因素3水平正交設(shè)計(jì),在添加不同質(zhì)量濃度的6-BA和NAA的9種培養(yǎng)基中進(jìn)行單芽繼代增殖影響的試驗(yàn),甘蒙錦雞兒的實(shí)生苗長(zhǎng)到一定高度時(shí),將其莖剪下,并將莖切成小段進(jìn)行接種,幾天后基部開始膨脹產(chǎn)生愈傷組織,莖段上部在生長(zhǎng)的同時(shí)產(chǎn)生從生芽。表6是30 d的統(tǒng)計(jì)結(jié)果。
為了對(duì)比2種因素各濃度水平對(duì)芽增殖的影響進(jìn)行極差分析,從極差值R直觀可知,NAA對(duì)增殖系數(shù)的影響最大,其次是6-BA,優(yōu)選水平后,確定A2B1的增殖效果最好,即6-BA 0.5 mg·L-1+ NAA 0.05 mg·L-1,增殖系數(shù)最高為3.30(見圖1-b,c),在該培養(yǎng)基上繼代培養(yǎng)后,一年可以實(shí)現(xiàn)3.311≈510 000棵具有相同優(yōu)良性狀的植株,通過這種方式可以實(shí)現(xiàn)快速擴(kuò)繁的目的。
表6 不同激素組合對(duì)甘蒙錦雞兒不定芽繼代芽增殖的影響Table 6 Effects of different hormone combinations on increment of adventitious buds of C. opulens
對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析如表7所示,6-BA、NAA及兩者的交互作用對(duì)芽增殖效果產(chǎn)生顯著影響。兩者的交互作用、NAA、6-BA的F值從大到小依次為10.21,6.67和6.39,說明兩者的交互作用對(duì)繼代增殖產(chǎn)生叢生芽的影響最大,NAA次之,然后是6-BA。為確定最佳激素組合,需進(jìn)一步進(jìn)行Duncan分析。
表7 芽增殖率的多因素方差分析Table 7 Multivariate variance analysis of bud proliferation rate
從表8得出:在P<0.05水平下,6-BA在A2(0.5 mg·L-1)、A3(1.0 mg·L-1)水平時(shí)與A1呈現(xiàn)顯著性差異,A2與A3水平間差異不顯著,在P<0.01水平下,6-BA在A2、A3水平時(shí)與A1呈現(xiàn)極顯著性差異,A2與A3水平間差異不顯著,故根據(jù)均值大小,6-BA為A2(0.5 mg·L-1)水平時(shí)對(duì)增殖率影響最顯著。
表8 A因素(6-BA)3水平Duncan檢驗(yàn)Table8 Duncan test of factor A(6-BA) on 3 levels
從表9得出:在P<0.05水平下,NAA在B1(0.05 mg·L-1)水平時(shí)與B2、B3水平呈現(xiàn)顯著性差異,B2與B3水平間差異不顯著;在P<0.01水平下,NAA在B1水平時(shí)與B3呈現(xiàn)極顯著性差異,B1與B2水平間差異不顯著、B2與B3水平間差異不顯著,即NAA為B1(0.05 mg·L-1)時(shí)增殖率最高。綜上所述,適宜增殖的濃度組合為6-BA 0.5 mg·L-1+ NAA 0.05mg·L-1,與極差分析結(jié)果一致。
表9 B因素(NAA)3水平Duncan檢驗(yàn)Table 9 Duncan test of factor B(NAA) on 3 levels
在所設(shè)計(jì)的8種生根培養(yǎng)基上培養(yǎng)4周后發(fā)現(xiàn),均有不同程度的生根(見表10、圖1-g,h,i)。添加激素IAA的培養(yǎng)基生根效果要好于添加激素IBA的培養(yǎng)基的生根效果,生根時(shí)間短,生根率高,根數(shù)量多,植株健壯。在只添加IAA的培養(yǎng)基中,隨著IAA濃度的增加生根率逐漸下降,高濃度激素對(duì)生根產(chǎn)生一定的抑制作用,但是當(dāng)IAA濃度同為0.5 mg·L-1時(shí),配合添加GA 0.15 mg·L-1時(shí),生根率有所增加。隨著IBA濃度的增加生根率無明顯變化。S2與S1相比、S4與S3相比,IBA濃度不變,NAA濃度增加,生根率也明顯增加但是生根時(shí)間明顯加長(zhǎng),其原因主要是NAA濃度增加在切口處形成大量愈傷組織,延長(zhǎng)了生根的時(shí)間。
接種培養(yǎng)30 d統(tǒng)計(jì)發(fā)現(xiàn):在S7:1/2 MS + IAA 0.5 mg·L-1+ GA 0.15 mg·L-1和S8:1/2 MS + IAA 0.1 mg·L-1兩種培養(yǎng)基上生根率都較高,但是在S7中生根大多數(shù)為單根,綜合考慮S8:1/2 MS + IAA 0.1 mg·L-1這一培養(yǎng)基上的培養(yǎng)效果最好生長(zhǎng)旺盛,植株高大,葉色深綠(如圖1-f),主根明顯(如圖1-g),根系發(fā)達(dá),其平均生根率為63.16%,平均生根數(shù)為2.17條·株-1,平均株高5.5 cm。
將生根的甘蒙錦雞兒取出,用水洗掉殘余培養(yǎng)基,移栽到草炭土∶珍珠巖∶蛭石=6∶3∶1的混合基質(zhì)中,7天后統(tǒng)計(jì)成活率為90%,并且植株健壯(見圖1-j,k,l)。
組培試驗(yàn)中面臨的最大問題是外植體極易受感染,因此,在試驗(yàn)各個(gè)步驟中都應(yīng)該謹(jǐn)慎。試驗(yàn)過程中,滅菌不充分,工作臺(tái)中有菌等都是感染的誘因,導(dǎo)致后期試驗(yàn)無法進(jìn)行。甘蒙錦雞兒種子病蟲害較多,在滅菌過程中無法消除干凈,對(duì)后期感染率有一定影響。目前來看,甘蒙錦雞兒種子的滅菌以15 min最為適宜,種子的感染率最小,如果加長(zhǎng)滅菌時(shí)間,種子活性下降。錦雞兒屬植物種子病蟲害較多,影響種子發(fā)芽率,種子存儲(chǔ)時(shí)間越長(zhǎng),發(fā)芽率和萌發(fā)速度都大大降低[18],因此在選擇種子的時(shí)候應(yīng)選擇當(dāng)年生的進(jìn)行組織培養(yǎng)最好,萌發(fā)的植株生長(zhǎng)狀況良好,更有益于后期的繼代增殖。
試驗(yàn)選擇成熟種子為外植體萌發(fā)切取莖段誘導(dǎo)分化苗,沒有經(jīng)過愈傷組織的誘導(dǎo)及分化,簡(jiǎn)化了培養(yǎng)流程,極大程度上縮短了時(shí)間,此種方法培養(yǎng)的組培苗可以穩(wěn)定地保持母體的優(yōu)良特性[19]。
在組培試驗(yàn)中,激素種類以及濃度組合錯(cuò)綜復(fù)雜,實(shí)驗(yàn)采用正交設(shè)計(jì)對(duì)增殖方案的優(yōu)化,避免了單因素的局限性,發(fā)揮了正交設(shè)計(jì)的優(yōu)勢(shì):即用最少的處理得到最佳的組合;另一方面可以確定組織培養(yǎng)各個(gè)階段的關(guān)鍵因素[17]。成熟胚的組織培養(yǎng)研究比較少,沈海龍[20-21]是利用未成熟胚進(jìn)行組織培養(yǎng),本試驗(yàn)所用材料為甘蒙錦雞兒成熟胚。在增殖方面,增殖系數(shù)不是特別理想,后期可以尋找更合適的激素配比使得誘導(dǎo)芽增殖系數(shù)更大。在植物根系的誘導(dǎo)過程中,根系的生長(zhǎng)所需的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)主要來源于激素,不同激素配比對(duì)植物的作用明顯不同。甘蒙錦雞兒在生根方面,大多數(shù)植物使用IBA[22-23],但本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)使用IAA生根效果好,生根時(shí)間短,與武春燕試驗(yàn)結(jié)果相同[24]。目前關(guān)于甘蒙錦雞兒組培方面研究暫處于相對(duì)空白狀態(tài),對(duì)后期的研究有參考價(jià)值。
試驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),在進(jìn)行甘蒙錦雞兒的組織培養(yǎng)時(shí),其種子的滅菌以75%酒精滅菌30 s加氯酸鈉滅菌15 min最為適宜,存活率高;種子萌發(fā)培養(yǎng)基以MS + 6-BA 0.5 mg·L-1+ NAA 0.05 mg·L-1最佳,誘導(dǎo)率最高為78.84%;增殖培養(yǎng)基以MS + 6-BA 0.5 mg·L-1+ NAA 0.05 mg·L-1最佳,增殖系數(shù)為3.30;以1/2 MS + IAA 0.1 mg·L-1生根效果最好,植株健壯;將生根的植株移栽到草炭土∶珍珠巖∶蛭石=6∶3∶1的混合基質(zhì)中,成活率為90%;本研究最終建立了一套野生甘蒙錦雞兒的組培體系,為以后野生甘蒙錦雞兒引種到城市園林建設(shè)中提供一定的借鑒作用。