宋慕波 帥良 方方

摘要：利用RACE技術(shù)首次從荸薺中克隆得到PPO基因全長(zhǎng)cDNA序列，并分析其在鮮切荸薺貯藏過程中的表達(dá)變化。克隆得到的荸薺PPO基因cDNA序列全長(zhǎng)為2 006 bp，開放閱讀框長(zhǎng)度為1 734 bp，編碼577個(gè)氨基酸，命名為CwPPO（登錄號(hào)：MG702489）。預(yù)測(cè)分析表明，CwPPO編碼蛋白質(zhì)的分子量為64.86 ku，分子式為C2891H4417N795O873S18，理論等電點(diǎn)為6.50，屬親水性蛋白。CwPPO蛋白可能定位于線粒體基質(zhì)空間，具有3個(gè)典型的保守結(jié)構(gòu)域和2個(gè)銅離子結(jié)合域。此外，預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn)CwPPO有20個(gè)絲氨酸磷酸化位點(diǎn)、7個(gè)蘇氨酸磷酸化位點(diǎn)及6個(gè)酪氨酸磷酸化位點(diǎn)，其二級(jí)結(jié)構(gòu)以不規(guī)則卷曲為主。系統(tǒng)發(fā)育分析顯示，CwPPO蛋白與菠蘿、油棕有較近的親緣關(guān)系。熒光定量分析發(fā)現(xiàn)，CwPPO在鮮切荸薺中的初始表達(dá)水平較低，但在貯藏后期表達(dá)量快速提高。

關(guān)鍵詞：鮮切荸薺;多酚氧化酶;基因克隆;表達(dá)分析

中圖分類號(hào)： TS255.3 ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼： A ?文章編號(hào)：1002-1302（2019）17-0046-04

荸薺（Eleocharis tuberosa）別稱馬蹄、地栗，屬莎草科多年生淺水草本植物，其球莖風(fēng)味獨(dú)特并有較高的藥用價(jià)值[1]。隨著中國(guó)經(jīng)濟(jì)的發(fā)展，鮮切果蔬產(chǎn)品越來越受到消費(fèi)者的喜愛。荸薺洗凈和削皮不易，殘留果肉的表皮寄生病菌容易進(jìn)入人體而引發(fā)疾病，加之一般荸薺加工產(chǎn)品難以保持荸薺口感爽脆、清甜可口的特點(diǎn)，因此，衛(wèi)生和方便的鮮切荸薺產(chǎn)品有較好的市場(chǎng)前景。然而，鮮切荸薺保鮮難度大、貨架期短，特別是色澤劣變問題嚴(yán)重影響了鮮切荸薺產(chǎn)業(yè)的持續(xù)健康發(fā)展[2]。

多酚氧化酶（polyphenol oxidase，簡(jiǎn)稱PPO）是植物體內(nèi)普遍存在的一種末端氧化酶，可催化酚類物質(zhì)氧化，形成黑色高聚物，其在果蔬褐變過程中起到的關(guān)鍵作用已經(jīng)在蘋果、梨和姜等果蔬的研究中得到證實(shí)[3-5]。一些研究表明，鮮切荸薺表面黃化可能與PPO活性相關(guān)，例如，殼聚糖、檸檬酸和水楊酸處理在抑制PPO活性上升的同時(shí)改善了鮮切荸薺的黃化[6-8]。然而，Pan等研究發(fā)現(xiàn)，導(dǎo)致荸薺黃化的物質(zhì)是柚皮素和圣草酚而不是PPO參與的氧化反應(yīng)產(chǎn)物[9]。因此，PPO在鮮切荸薺黃化過程中的作用仍不明確。

由于PPO是參與果蔬褐變的關(guān)鍵酶，其編碼基因已在菠蘿、甘薯、茶樹、香蕉等多種植物中克隆得到[10-12]。荸薺分子生物學(xué)方面的研究較少，關(guān)于荸薺PPO基因的克隆和相關(guān)分子生物學(xué)研究未見報(bào)道。鑒于此，本研究擬利用前期獲得的荸薺轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)進(jìn)行荸薺果肉的PPO基因全長(zhǎng)cDNA的克隆，研究鮮切荸薺貯藏過程中PPO基因的表達(dá)變化，可為多酚氧化酶的研究、鮮切荸薺黃化機(jī)制研究以及完善鮮切荸薺貯藏方案提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 原料及處理

荸薺（Eleocharis tuberosa）于2016年12月10日購自廣西壯族自治區(qū)賀州市八步區(qū)農(nóng)產(chǎn)品市場(chǎng)。購買后運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室清洗，挑選大小均一和無機(jī)械損傷、無病蟲害的荸薺，去皮后橫切成厚度為0.5 cm的圓片，然后用0.1%（w/V）次氯酸鈉溶液殺菌10 min，將樣品晾干后置于塑料托盤中用0.02 mm聚乙烯保鮮膜包裝，于10 ℃下貯藏。

1.2 試劑

植物RNA提取試劑盒，華越洋生物科技（北京）有限公司;SMARTer RACE 5′/3′ Kit RACE試劑盒、LA Taq DNA聚合酶、PMD-19T載體、感受態(tài)細(xì)胞DH5α、感受態(tài)細(xì)胞Stellar、DNA Marker、SYBR Green qPCR Master Mix熒光定量酶、6×Loading buffer、PrimeScriptTM RT reagent Kit反轉(zhuǎn)錄去基因組試劑盒，日本TaKaRa公司;溴化乙錠，生工生物工程（上海）股份有限公司;DNA凝膠回收試劑盒，天根生化科技（北京）有限公司;瓊脂糖，西班牙Biowest公司;Tris、乙醇、EDTA-Na2均為分析純，國(guó)藥集團(tuán)藥業(yè)股份有限公司。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 荸薺果肉總RNA提取 采用華越洋植物RNA提取試劑盒提取荸薺果肉總RNA，具體方法按照說明書進(jìn)行。得到RNA后利用K5600超微量分光光度計(jì)測(cè)定其純度和含量，RNA樣品保存于-80 ℃超低溫冰箱中，用于反轉(zhuǎn)錄等后續(xù)試驗(yàn)。

1.3.2 荸薺果肉PPO基因克隆 3′RACE-cDNA和5′RACE-cDNA的合成具體操作按照SMARTer RACE 5′/3′ Kit RACE試劑盒進(jìn)行。根據(jù)之前從荸薺轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中得到的PPO基因片段設(shè)計(jì)3′RACE和5′RACE引物（表1）。PCR反應(yīng)程序：94 ℃預(yù)變性1.5 min;94 ℃變性30 s，68 ℃退火45 s，72 ℃延伸2 min，25個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min，產(chǎn)物于4 ℃保存。PCR產(chǎn)物經(jīng)回收、連接（pRACE vector）、轉(zhuǎn)化（Stellar感受態(tài)細(xì)胞）、重組子篩選及菌液PCR鑒定后，測(cè)序委托華大基因科技股份有限公司進(jìn)行。應(yīng)用DNAMAN軟件和NCBI在線工具對(duì)荸薺PPO基因進(jìn)行序列基本結(jié)構(gòu)和特征分析。

根據(jù)拼接得到的基因全長(zhǎng)核苷酸序列設(shè)計(jì)引物（表1）。以反轉(zhuǎn)錄cDNA為模板，進(jìn)行PCR擴(kuò)增，經(jīng)檢測(cè)和測(cè)序獲得全長(zhǎng)序列。

1.3.3 荸薺PPO基因生物信息學(xué)分析 采用NCBI中的BLASTN、BLASTP程序進(jìn)行核苷酸序列及其推導(dǎo)的氨基酸序列的同源性比較;ORF Finder程序?qū)ふ议_放閱讀框;采用ProtParam Tool分析蛋白質(zhì)理化性質(zhì);采用Conserved Domains分析氨基酸序列的保守區(qū)域;采用Post Prediction和SubLocv 1.0進(jìn)行蛋白亞細(xì)胞定位信號(hào)預(yù)測(cè);ProtScale以Hphob./Kyte & Doolittle算法進(jìn)行親疏水性預(yù)測(cè);使用NetPhos 2.0 Server預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)序列的磷酸化位點(diǎn);使用ExPaSy-SOPMA軟件分析蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu);使用Clustal X2軟件進(jìn)行多重序列比對(duì);采用Mega 5軟件進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化樹構(gòu)建;采用SWISS-MODEL預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu);采用Swiss-PdbViewer構(gòu)建蛋白模型的拉氏構(gòu)象圖。

1.3.4 ?荸薺PPO基因的表達(dá)分析 根據(jù)獲得的荸薺PPO基因cDNA序列利用Primer 5.0設(shè)計(jì)Q-PCR特異引物（表1）。采用PrimeScriptTM RT reagent Kit去除基因組和反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成Q-PCR的模板cDNA，操作方法見說明書。參考TaKaRa公司的SYBR Green qPCR Master Mix說明書進(jìn)行 Real-time PCR擴(kuò)增。以18S rRNA（登錄號(hào)：MG742686）為內(nèi)參。利用2-ΔΔCt方法計(jì)算鮮切荸薺PPO基因在貯藏過程中的表達(dá)量。各樣品的表達(dá)量均為3次生物重復(fù)的平均值。

2 結(jié)果與分析

2.1 荸薺果肉PPO基因cDNA全長(zhǎng)序列克隆

荸薺轉(zhuǎn)錄組測(cè)序篩選得到與其他植物PPO基因同源性較高的基因片段，利用NCBI的BLAST程序進(jìn)行比對(duì)，結(jié)果顯示，與其他植物的PPO基因核苷酸序列相似度為62%～73%，其中與菠蘿（Ananas comosus，XM_020246795.1）PPO基因核苷酸序列相似性最高，為73%。根據(jù)該序列設(shè)計(jì)3′RACE和5′RACE引物，進(jìn)行PCR獲得3′和5′端序列分別約為1 700 bp和600 bp（圖1-A，圖1-B）。將片段回收后進(jìn)行測(cè)序分析發(fā)現(xiàn)3′端序列長(zhǎng)度為1 663 bp，包含了3′非翻譯區(qū)（3′UTR）及poly A結(jié)構(gòu);5′端序列長(zhǎng)度為547 bp，包含了5′非翻譯區(qū)（5′UTR）。將3′和5′端序列拼接后得到基因全長(zhǎng)序列，在拼接序列的5′端和3′端設(shè)計(jì)引物擴(kuò)增PPO的cDNA全長(zhǎng)序列（圖1-C），測(cè)序結(jié)果顯示，該序列與拼接結(jié)果一致。

將克隆得到的全長(zhǎng)序列使用NCBI中ORF Finder軟件進(jìn)行分析。該序列長(zhǎng)度為2 006 bp，含有1個(gè)1 734 bp的最大開放閱讀框（ORF）、57 bp的5′UTR區(qū)、188 bp的3′UTR區(qū)及27 bp的polyA結(jié)構(gòu)，起始密碼子ATG位于第58～60位，終止密碼子為TGA（圖2）。將該cDNA序列在NCBI上進(jìn)行比對(duì)，發(fā)現(xiàn)該序列與油棕（Elaeis guineensis;XM_010912626.2，XM_010928464.2）、海棗（Phoenix dactylifera;XM_008779971.1）和菠蘿（Ananas comosus;XM_020246795.1）的PPO基因相似度較高，均大于68%。因此，可證明已經(jīng)克隆獲得荸薺PPO基因，將此基因命名為CwPPO，并在GenBank上登錄，登錄號(hào)為MG702489。

2.2 CwPPO基因生物信息學(xué)分析

經(jīng)預(yù)測(cè)分析，CwPPO編碼蛋白質(zhì)的分子量為64.86 ku;分子式為C2891H4417N795O873S18;理論等電點(diǎn)為6.50;利用ProtScale軟件預(yù)測(cè)其屬于親水性蛋白，親水指數(shù)（GRAVY）為-0.572。

CwPPO蛋白存在跨膜結(jié)構(gòu)，屬于跨膜蛋白，可能存在由內(nèi)到外或由外到內(nèi)的雙向跨膜的2個(gè)跨膜螺旋結(jié)構(gòu)域。采用NCBI的Conserved domains數(shù)據(jù)庫預(yù)測(cè)CwPPO的保守結(jié)構(gòu)域，發(fā)現(xiàn)了3個(gè)典型的保守結(jié)構(gòu)域，分別為未知功能的保守結(jié)構(gòu)域（446～575，PPO1_KFDV，pfam12143）及酪氨酸普通中心區(qū)域（162～372，Tyrosinase，pfam00264）、多酚氧化酶中間保守域（379～429，PPO1_DWL，pfam12142）（圖3）。使用SignalP 3.0和Post Prediction預(yù)測(cè)顯示CwPPO為非分泌蛋白，定位于線粒體基質(zhì)空間的可能性最大。

蛋白質(zhì)的磷酸化是最普遍和重要的蛋白翻譯后修飾方式。經(jīng)磷酸化預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn)，CwPPO編碼的蛋白可在20個(gè)Ser、7個(gè)Thr和6個(gè)Tyr氨基酸位點(diǎn)進(jìn)行磷酸化修飾。在這33個(gè)磷酸化位點(diǎn)分值最高的是S467，為0.997。磷酸化位點(diǎn)能夠影響CwPPO蛋白的分子構(gòu)象和活性，其位點(diǎn)預(yù)測(cè)能夠?yàn)榻窈蠡虮磉_(dá)調(diào)控，蛋白修飾提供參考。

采用SOPMA軟件預(yù)測(cè)CwPPO蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)，結(jié)果顯示，該蛋白最主要的結(jié)構(gòu)是無規(guī)則卷曲占64.52%，其次α-螺旋占19.83%， 延伸鏈占15.65%。α-螺旋和延伸鏈

分散于整個(gè)蛋白質(zhì)中，且N-末端多以無規(guī)則卷曲形式存在，C-末端主要為延伸鏈形式。

利用Swiss-model預(yù)測(cè)CwPPO蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)，由軟件自動(dòng)匹配模板（PDB No. 4z11.1）進(jìn)行參照建模，CwPPO蛋白三維結(jié)構(gòu)中的α-螺旋、延伸鏈和無規(guī)則卷曲呈均勻分布，中間有2個(gè)銅離子結(jié)合域，位于172～202和324～359處（圖4）。采用Swiss-Pdb Viewer軟件分析上述同源建模結(jié)果，通過拉氏構(gòu)象可以看出蛋白質(zhì)殘基的二面角（ψ和φ）位于核心區(qū)域，表明其空間結(jié)構(gòu)穩(wěn)定，故上述利用同源建模的方法對(duì)CwPPO蛋白進(jìn)行建模的結(jié)果較為可靠（圖5）。

2.3 CwPPO蛋白序列多重比對(duì)和進(jìn)化樹構(gòu)建

通過與其他植物PPO蛋白比對(duì)發(fā)現(xiàn)，不同PPO功能區(qū)域的氨基酸序列較為保守，而C-端、N-端區(qū)域的差異較大，尤其C-端的差異最大。為了解CwPPO蛋白與其他植物PPO蛋白的進(jìn)化關(guān)系，對(duì)CwPPO蛋白進(jìn)行多序列比對(duì)并建立系統(tǒng)進(jìn)化樹（圖6）。結(jié)果發(fā)現(xiàn)，CwPPO與油棕（Elaeis guineensis）、菠蘿（Ananas comosus）的PPO蛋白親緣關(guān)系較近。

2.4 CwPPO在鮮切荸薺貯藏過程中的表達(dá)分析

通過熒光定量PCR分析鮮切荸薺貯藏過程中CwPPO的表達(dá)變化。結(jié)果表明，荸薺果肉中CwPPO的初始表達(dá)水平較低，切分后隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，CwPPO表達(dá)水平逐漸升高，與鮮切荸薺的顏色變化表現(xiàn)出一定的相關(guān)性（圖7）。

3 討論與結(jié)論

多酚氧化酶（PPO）能夠氧化植物中的酚類物質(zhì)形成黑色高聚物，是導(dǎo)致鮮切果蔬褐變的關(guān)鍵酶[13]。其編碼基因PPO在多種植物中屬于多基因家族，如番茄、馬鈴薯中都發(fā)現(xiàn)了多個(gè)不同的編碼基因[14-15]。但并非所有植物的PPO都屬于多基因家族，例如葡萄藤中僅發(fā)現(xiàn)了1個(gè)PPO基因[16]。筆者前期在荸薺轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中只發(fā)現(xiàn)了1個(gè)與其他植物PPO同源性較高的基因片段。本試驗(yàn)克隆得到的荸薺果肉PPO基因序列長(zhǎng)度為2 006 bp，編碼577個(gè)氨基酸，命名為CwPPO。CwPPO蛋白保守結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)顯示其含有3個(gè)典型的保守結(jié)構(gòu)域，這與以往報(bào)道的PPO蛋白的保守結(jié)構(gòu)域[17]吻合。植物多酚氧化酶基因序列的2個(gè)銅離子結(jié)合域的同源性都很高，這是多酚氧化酶的主要功能區(qū)[18]。通過對(duì)蛋白序列進(jìn)行保守結(jié)構(gòu)域分析，發(fā)現(xiàn)CwPPO基因包含2個(gè)含銅的高度保守區(qū)（CuA、CuB），在同源構(gòu)建CwPPO蛋白的三維模型中也可以看到2個(gè)銅離子結(jié)合域，分別是位于172～202和324～359處，這些功能域是植物PPO的主要功能區(qū)。系統(tǒng)進(jìn)化樹分析結(jié)果顯示，CwPPO編碼的氨基酸與油棕（Elaeis guineensis）、菠蘿（Ananas comosus）有較近的親緣關(guān)系。

鮮切荸薺10 ℃下貯藏前2 d基本沒有顏色變化，之后荸薺表面組織才均勻黃化，與傳統(tǒng)酶促褐變相比有明顯的“啟動(dòng)”期。同時(shí)，貯藏期間荸薺PPO活性也較低，表明荸薺果肉中可能預(yù)先并不存在大量的PPO，而且鮮切荸薺貯藏過程中PPO的底物含量也較低[19-20]。因此，研究者推測(cè)荸薺的黃化與PPO參與的酶促褐變不同。本研究發(fā)現(xiàn)鮮切荸薺貯藏過程中CwPPO的表達(dá)水平逐漸升高，與荸薺黃化進(jìn)程表現(xiàn)出了一定的相關(guān)性。切割傷害可以誘導(dǎo)植物PPO表達(dá)，增加酶的合成量，從而導(dǎo)致鮮切果蔬和外植體的褐變[21]。隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，荸薺完全黃化后還會(huì)出現(xiàn)明顯的褐變。因此，PPO可能沒有參與荸薺貯藏前期的黃化過程，但貯藏后期逐漸積累的PPO是否參與了鮮切荸薺黃化后的褐變有待進(jìn)一步研究。

參考文獻(xiàn)：

[1]何鳳平，潘永貴，張偉敏. 鮮切荸薺類黃酮3′-羥化酶分離純化及其動(dòng)力學(xué)性質(zhì)[J]. 食品科學(xué)，2017，38（8）：17-23.

[2]鄧麗莉，明 建，田維娜，等. 乙醛熏蒸處理對(duì)鮮切荸薺品質(zhì)變化的影響[J]. 食品科學(xué)，2010，31（2）：233-236.

[3]He Q，Lou Y G. Enzymatic browning and its control in fresh-cut produce[J]. Stewart Postharvest Review，2007，3（6）：1-7.

[4]Li J，Bao X L，Xu Y C，et al. Hypobaric storage reduced core browning of Yali pear fruits[J]. Scientia Horticulturae，2017，225：547-552.

[5]Queiroz C，Da Silva A J，Lopes M L，et al. Polyphenol oxidase activity，phenolic acid composition and browning in cashew apple （Anacardium occidentale L.） after processing[J]. Food Chemistry，2011，125（1）：128-132.

[6]Pen L T，Jiang Y M. Effects of chitosan coating on shelf life and quality of fresh-cut Chinese water chestnut[J]. LWT - Food Science and Technology，2003，36（3）：359-364.

[7]Jiang Y M，Pen L T，Li J R. Use of citric acid for shelf Life and quality maintenance of fresh-cut Chinese water chestnut[J]. Journal of Food Engineering，2004，63（3）：325-328.

[8]Peng L T，Jiang Y M. Exogenous salicylic acid inhibits browning of fresh-cut Chinese water chestnut[J]. Food Chemistry，2006，94（4）：535-540.

[9]Pan Y G，Li Y X，Yuan M Q. Isolation，purification and identification of etiolation substrate from fresh-cut Chinese water-chestnut （Eleocharis tuberosa）[J]. Food Chemistry，2015，186：119-122.

[10]榮 霞，賴鐘雄，林玉玲，等. 橄欖多酚氧化酶基因（PPO）克隆及其試管苗離體保存過程中的表達(dá)分析[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào)，2014，35（4）：738-745.

[11]陳 嬌，袁德保，譚 琳，等. 香蕉PPO基因的克隆及原核表達(dá)[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué)，2015，43（7）：14-18.

[12]雷東鋒，馮 怡，蔣大宗. 植物中多酚氧化酶的特征[J]. 自然科學(xué)進(jìn)展，2004，14（6）：606-614.

[13]Yoruk R，Marshall M R. Physicochemical properties and function of plant polyphenol oxidase：a review[J]. Journal of Food Biochemistry，2003，27（5）：361-422.

[14]Newman S M，Eannetta N T，Yu H，et al. Organisation of the tomato polyphenol oxidase gene family[J]. Plant Molecular Biology，1993，21（6）：1035-1051.

[15]Hunt M D，Eannetta N T，Yu H，et al. cDNA cloning and expression of potato polyphenol oxidase[J]. Plant Molecular Biology，1993，21（1）：59-68.

[16]Dry I B，Robinson S P. Molecular cloning and characterisation of grape berry polyphenol oxidase[J]. Plant Molecular Biology，1994，26（1）：495-502.

[17]田奇琳，林玉玲，鄭慶游，等. 龍眼DlPPO1基因的克隆及其表達(dá)調(diào)控分析[J]. 西北植物學(xué)報(bào)，2016，36（6）：1098-1104.

[18]You Y，Duan X，Wei X，et al. Identification of major phenolic compounds of Chinese water chestnut and their antioxidant activity[J]. Molecules （Basel，Switzerland），2007，12（4）：842-852.

[19]龐學(xué)群，張昭其. 防褐處理對(duì)切分馬蹄、馬鈴薯低溫貯藏期間褐變的影響[J]. 食品科學(xué)，2002，23（4）：126-129.

[20]Ru Z W，Lai Y Y，Xu C J，et al. In early stage of browning of phalaenopsis leaf explants[J]. Journal of Agricultural Science，2013，5（9）：57-64.