王怡 馮麗貞 張清華 陳全助 吳暉
摘要?為了利用iTRAQ技術研究受桉樹枝癭姬小蜂危害后桉樹葉片的差異蛋白,選擇被姬小蜂危害后第24 h的桉樹葉,采用iTRAQ定量蛋白質(zhì)組學技術開展研究,在uniprot_Quercus中共鑒定到蛋白質(zhì)1 687個。按照表達倍數(shù)變化1.2倍以上(上調(diào)大于1.2倍或者下調(diào)小于0.83倍)且P<0.05的標準篩選差異表達蛋白質(zhì)。其中,C_vs_T組的上調(diào)差異表達蛋白質(zhì)有110個,下調(diào)差異表達蛋白質(zhì)92個。經(jīng)過KEGG富集分析,篩選出的差異表達蛋白質(zhì)富集于苯丙烷生物合成(phenylpropanoid biosynthesis)、核糖體(ribosome)、單菌素生物合成(monobactam biosynthesis)、有機含硒化合物代謝(selenocompound metabolism)、丙酮酸鹽代謝(pyruvate metabolism)、脂肪酸延長代謝(fatty acid elongation)、丙酸代謝(propanoate metabolism)7條通路。
關鍵詞?桉樹枝癭姬小蜂;蛋白質(zhì)組學;iTRAQ
中圖分類號?S?763.43文獻標識碼?A文章編號?0517-6611(2020)01-0154-03
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2020.01.046
開放科學(資源服務)標識碼(OSID):
Proteomics Analysis of Resistance of Eucalyptus to Leptocybe invasa Based on iTRAQ Technique
WANG Yi, FENG Li?zhen, ZHANG Qing?hua et al
(ForestryCollege, Fujian Agriculture and Forestry University,F(xiàn)uzhou, Fujian 350002)
Abstract?In order to explore serum differential proteins in Eucalyptus leaves after Leptocybe invasa infestation using iTRAQ technology.Eucalyptus leaves of 24 h after being harmed by Leptocybe invasa were selected,and the iTRAQ quantitative proteomics technique was used to study the subject.A total of 1 687 proteins were identified in uniprot_Quercus.The differentially expressed proteins were screened according to the standard of expression fold change of 1.2 times or more (upregulation of more than 1.2 times or down-regulation of less than 0.83 times)and P< 0.05.Among them,there were 110 differentially expressed proteins in the C_vs_T group and 92 differentially expressed proteins.After KEGG enrichment analysis,the differentially expressed proteins were enriched in seven pathways:Phenylpropanoid biosynthesis, Ribosome,Monobactam biosynthesis,Selenocompound metabolism, Pyruvate metabolism, Fatty acid elongation, and Propanoate metabolism.
Key words?Leptocybe invasa Fisher et La Salle;Proteomics;iTRAQ
桉樹(Eucalyptus robusta Smith)是終年常綠植物,為姚金娘桉屬。桉樹有900多個品種,原產(chǎn)地大多在大洋洲,少數(shù)品種原產(chǎn)于東南亞[1]。桉樹易培育栽種,四季常青,具有藥用、醫(yī)用價值[2],生長速度超過了大多數(shù)闊葉林[3],19世紀時被引種到世界各地[4]。桉樹是在1890年由意大利引入,起初我國境內(nèi)種植不多,直到1984年,我國與澳大利亞進行桉樹引種與栽培合作,先后從澳大利亞引進184個桉樹樹種,自此我國開始大規(guī)模培育桉樹林[5]。到2017年,我國種植桉樹總面積達450萬hm2,木材年產(chǎn)量超過3 000萬m3,接近全國木材產(chǎn)量的30%[2]。
桉樹枝癭姬小蜂(Leptocybe invasa)屬膜翅目(Hymenoptera)姬小蜂科(Eulophidae)姬小蜂屬(Leptocybe),是危害桉樹的重要害蟲[6-7]。桉樹枝癭姬小蜂在桉樹的嫩枝、梢頭、嫩芽、葉片、葉柄、葉脈等處產(chǎn)卵[8],受害桉樹產(chǎn)卵處畸形腫大,有些桉樹無性系在姬小蜂產(chǎn)卵部位會形成蟲癭[9]。桉樹遭受危害后頂梢生長受阻,枝葉萎縮,樹形逐漸成叢生狀[10]。1年生及以下桉樹林受危害最嚴重,受害后木材產(chǎn)量大量減少。
長期以來,對桉樹抗性的研究備受關注,主要集中在桉樹抗性、被姬小蜂感染后體內(nèi)次生物質(zhì)變化方面,但對于姬小蜂危害誘導防御蛋白少有研究。
筆者利用同位素標記相對和絕對定量(isobaric tags for relative and absolute quantification,iTRAQ)技術對姬小蜂危害桉樹酶活最大的階段進行差異蛋白質(zhì)組學研究[11],應用生物信息學分析手段,分析桉樹被危害前后的差異蛋白,揭示桉樹被危害時桉樹響應的相關代謝途徑,探究姬小蜂誘導桉樹形成蟲癭的機制,對姬小蜂進行有效的控制以及有利于后續(xù)培育優(yōu)質(zhì)桉樹無性系。
1?材料與方法
1.1?試驗材料
試驗桉樹抗蟲無性系DH32-29:2017年10月,在漳州長泰巖溪林場,對桉樹無性系DH32-29上10~15 cm并有2對綠葉的半木質(zhì)化萌芽條進行采穗,同時將葉片剪去1/2。將土質(zhì)疏松且不含草根等雜質(zhì)的黃心土裝在9 cm×11 cm的無紡布育苗袋中。扦插前將泥袋完全淋濕,然后澆上0.3%的高錳酸鉀溶液進行消毒。在扦插前將穗條基部蘸上生根粉,垂直插入育苗袋中,插入深度為2~3 cm,再次淋透泥土,用網(wǎng)紗隔離穗條。把育苗袋置于遮陰處,每天適當淋水。30 d生根后則移至光照充足處,同時去除已死植株,并適當增加淋水量。待桉樹苗根莖木質(zhì)化,葉片濃綠,根系發(fā)達后移出育苗袋,移栽于直徑20 cm的花盆。
試驗蟲源:2018年3—4月于桉樹枝癭姬小蜂羽化期,剪去被小蜂危害有較多蟲癭的枝條,枝條斷口處包有濕棉花,把枝條分別放入8個養(yǎng)蟲籠中,每日保持基部濕潤,用昆蟲采集管采集每日羽化的桉樹枝癭姬小蜂。
樣品采集:試驗分為2組,每組桉樹各20盆,一組對照組未被桉樹枝癭姬小蜂危害,一組試驗組已被桉樹枝癭姬小蜂危害,取樣時間分別為危害后24 h。每次在姬小蜂危害的樣株上戴一次性手套隨機取葉片,每棵樹取一片葉子,同時在未受姬小蜂危害的桉樹相同高度與角度上取葉片。把采集的樣品放入密封袋中,排盡袋內(nèi)所有空氣,把密封袋封好,立即在密封袋上貼上標簽,再迅速置于液氮中,冷凍3~5 min,取出后轉移至實驗室-80 ℃冰箱中,以備后續(xù)試驗使用。試驗做3個重復。把6個樣品標記為C1、C2、C3、T1、T2、T3。其中C1、C2、C3為未被姬小蜂危害的桉樹DH-3229葉片樣本,T1、T2、T3為已被被姬小蜂危害的桉樹DH-3229葉片樣本。
1.2?試驗方法
1.2.1?樣品制備。
采用TCA/丙酮沉淀+SDT裂解法提取蛋白質(zhì),然后進行樣品蛋白定量[11]。定量后進行SDS-PAGE電泳,各樣品取蛋白質(zhì)20 μg分別加入5×上樣緩沖液,沸水浴5 min,進行12.5%SDS-PAGE電泳[12](恒流14 mA,90 min),考馬斯亮藍染色。用FASP的方法進行酶解[13]。各樣品分別取100 μg肽段,按照AB SCIEX公司iTRAQ標記試劑盒說明書進行標記。
1.2.2?LC-MS/MS數(shù)據(jù)采集。
標記后,將每組的肽段混合,并使用AKTA Purifier 100進行分級[14]。每份分級樣品采用納升流速的HPLC液相系統(tǒng)Easy nLC進行分離。緩沖液A液為0.1%甲酸水溶液,B液為0.1%甲酸乙腈水溶液(乙腈為84%)。色譜柱以95%的A液平衡,樣品由自動進樣器上樣到上樣柱(Thermo Scientific Acclaim PepMap100,100 μm×2 cm,nanoViper C18),經(jīng)過分析柱(Thermo scientific EASY column,10 cm,ID 75 μm,3 μm,C18-A2)分離,流速為300 nL/min[15]。
將樣品進行色譜分離,并使用Q-Exactive質(zhì)譜儀進行質(zhì)譜分析。檢測方式為正離子,母離子掃描范圍300~1 800 m/z,一級質(zhì)譜分辨率為70,000 at 200 m/z,AGC(Automatic gain control)target為1e6,Maximum IT為50 ms,動態(tài)排除時間(Dynamic exclusion)為60.0 s[16]。按下述方法采集多肽和多肽碎片的質(zhì)量電荷比:每次全掃描(full scan)后采集20個碎片圖譜(MS2 scan),MS2 Activation Type為HCD,Isolation window為2 m/z,二級質(zhì)譜分辨率17,500 at 200 m/z,Normalized Collision Energy為30 eV,Underfill為0.1%。
1.2.3?KEGG通路注釋。
利用KAAS (KEGG Automatic Annotation Server)軟件,對目標蛋白質(zhì)集合進行KEGG通路注釋。
2?結果與分析
2.1?蛋白質(zhì)檢測
由表1可知,蛋白濃度均超過5 μg/μL,蛋白總量均超過1 500 μg。由圖1可知,圖譜條帶清晰,大小集中在18.4~66.2 kD,說明樣品蛋白提取良好,樣品的濃度以及總量已達到進行后續(xù)試驗的要求[17]。
2.2?差異表達蛋白質(zhì)篩選
以倍數(shù)變化大于1.2倍(上調(diào)大于1.2倍或者下調(diào)小于0.83倍)且Pvalue小于0.05的標準篩選差異表達蛋白質(zhì)[18]。各比較組的差異表達蛋白質(zhì)數(shù)目:所有差異表達蛋白質(zhì)為202個,上調(diào)差異表達蛋白質(zhì)為110個,下調(diào)差異表達蛋白質(zhì)為92個。
2.3?差異蛋白的KEGG代謝途徑富集分析
對被桉樹枝癭姬小蜂危害后的桉樹葉差異蛋白pathway進行分析[14],由表2可知,危害后202個差異蛋白富集在161條通路中,其中顯著富集的通路為7條(顯著富集為P小于0.05),包括苯丙烷生物合成(phenylpropanoid biosynthesis)、核糖體(ribosome)、單菌素生物合成(monobactam biosynthesis)、有機含硒化合物代謝(selenocompound metabolism)、丙酮酸鹽代謝(pyruvate metabolism)、脂肪酸延長代謝(fatty acid elongation)、丙酸代謝(propanoate metabolism)這7條通路。圖2中縱坐標表示顯著富集的KEGG通路;橫坐標表示每條KEGG通路中包含的差異表達蛋白質(zhì)數(shù)目;條形圖顏色表示富集KEGG通路的顯著性即基于Fisher精確檢驗(Fishers Exact Test)計算P值,顏色梯度代表P值的大小,顏色由橘色至紅色漸變,越接近紅色代表P值越小,對應KEGG通路富集度的顯著性水平越高;條形圖上方標簽顯示富集因子(richFator<=1),富集因子表示參與某KEGG通路的差異表達蛋白質(zhì)數(shù)目占所有鑒定的蛋白質(zhì)中參與該條通路的蛋白質(zhì)數(shù)目的比例[19-20]。
3?結論與討論
該試驗共檢測到蛋白質(zhì)1 687個,與對照組相比桉樹枝癭姬小蜂危害脅迫下的桉樹葉中有202個差異蛋白,其中上調(diào)蛋白為110個,下調(diào)蛋白為92個。
對差異蛋白pathway進行分析,結果顯示差異蛋白顯著富集于7條通路,包括苯丙烷生物合成(phenylpropanoid biosynthesis)、核糖體(ribosome)、單菌素生物合成(monobactam biosynthesis)、有機含硒化合物代謝(selenocompound metabolism)、丙酮酸鹽代謝(pyruvate metabolism)、脂肪酸延長代謝(fatty acid elongation)、丙酸代謝(propanoate metabolism)這7條通路。其中最富集的通路為苯丙烷生物合成這條通路。
植物響應蟲害誘導植物抗蟲性的過程均極為復雜,筆者以桉樹抗蟲無性系DH32-29為材料,研究了桉樹枝癭姬小蜂危害脅迫下桉樹葉片的差異蛋白質(zhì),但目前尚不能確定這些差異蛋白在寄主抗蟲防御過程中的作用,還需進一步的基因功能分析。在今后的研究中,將結合轉錄組學的方法對桉
樹在桉樹枝癭姬小蜂危害脅迫下的差異表達基因進行分析,對桉樹枝癭姬小蜂危害脅迫下桉樹的應答過程進行系統(tǒng)研究。該試驗僅研究了桉樹被危害后桉樹葉片的蛋白差異表達,還不清楚姬小蜂危害桉樹產(chǎn)生蟲癭動態(tài)過程中蛋白表達,今后可以繼續(xù)在這方面進行研究,以期更全面、深入地揭示桉樹抗姬小蜂機制。
參考文獻
[1] 王豁然.桉樹遺傳資源與引種馴化[C]//中國植物學會.第六屆全國系統(tǒng)與進化植物學青年學術研討會論文摘要集.北京:中國植物學會,2000:1.
[2] 鄭嘉琪,陳少雄.我國桉樹用途概述[J].桉樹科技,2017,34(3):42-46.
[3] 黃肖春.試析桉樹栽培管理及病蟲害防治技術[J].南方農(nóng)業(yè),2018,12(9):53-54.
[4] 謝耀堅.中國桉樹育種研究進展及宏觀策略[J].世界林業(yè)研究,2011,24(4):50-54.
[5] 彭子先.我國引種桉樹的歷史沿革現(xiàn)狀及發(fā)展前景[J].湖南林業(yè)科技,1987(3):24-27.
[6] 魏初獎,張華峰,張思祿,等.桉樹枝癭姬小蜂風險分析及風險管理[J].生物災害科學,2015,38(3):182-189.
[7] MENDEL Z,PROTASOV A,F(xiàn)ISHER N,et al.Taxonomy and biology of Leptocybe invasa gen.&sp.n.(Hymenoptera :Eurlophidae),an invasive gall inducer on Eucalyptus[J].Ausralian journal of entomology,2004,43(2):101-113.
[8]袁強.桉樹枝癭姬小蜂危害的識別[J].中國科技縱橫,2015(15):223.
[9] 盧添財.桉樹枝癭姬小蜂的生物學、風險分析及防控策略研究[D].福州:福建農(nóng)林大學,2017.
[10] 常潤磊,周旭東.我國桉樹枝癭姬小蜂研究現(xiàn)狀[J].桉樹科技,2010,27(1):75-78.
[11] 王海嬌.1,6-二氧-乙酰大花旋覆花內(nèi)酯對辣椒疫霉的抑菌活性研究[D].鄭州:河南農(nóng)業(yè)大學,2018.
[12] 王瑤函,吳蕊.不同濃度胺碘酮對肺成纖維細胞增殖及表面活性蛋白D表達的影響[J].毒理學雜志,2018,32(1):71-75.
[13] 邵若玄,徐紅星,劉樹生,等.應用鳥槍法LC-MS/MS鑒定煙粉虱唾液蛋白[J].環(huán)境昆蟲學報,2018,40(2):433-439.
[14] 高勁,錢立庭,陶振超,等.基于iTRAQ定量蛋白質(zhì)組學方法篩選鼻咽癌放射抗拒相關蛋白[J].安徽醫(yī)科大學學報,2016,51(9):1333-1337.
[15] 郭長明,袁橙,武彩紅,等.應用iTRAQ定量蛋白質(zhì)組學技術篩選無乳鏈球菌魚源株與人源株差異表達蛋白[J].水產(chǎn)學報,2018,42(3):442-451.
[16] 葉非.基于集群環(huán)境的三種蛋白質(zhì)GO功能注釋方法的實現(xiàn)[D].武漢:華中科技大學,2008.
[17] 李向真,劉子朋,李娟,等.KEGG數(shù)據(jù)庫的進展及其在生物信息學中的應用[J].藥物生物技術,2012,19(6):535-539.
[18] 翁佳妍,吳敏,王爽,等.蛋白質(zhì)的檢測方法簡述[J].輕工科技,2012,28(9):17-18.
[19] 倪偉,倪蔚茹,趙靜,等.蘋果植株應答連作障礙差異蛋白質(zhì)組學分析[J].山東農(nóng)業(yè)科學,2017,49(5):1-9.
[20] 梁萌.捕食性真菌Duddingtonia flagrans蛋白質(zhì)組學研究[D].呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學,2018.