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      DTA-6 對(duì)甜葉菊形態(tài)建成、酶活性、產(chǎn)量及品質(zhì)的影響

      2020-03-04 12:42:16馮勝杰王新欣賈鵬宇王詩(shī)雅盧潔春左官?gòu)?qiáng)劉雅黃文婷馮乃杰鄭殿峰
      關(guān)鍵詞:甜葉菊過(guò)氧化物糖苷

      馮勝杰,王新欣,賈鵬宇,王詩(shī)雅,盧潔春,左官?gòu)?qiáng),劉雅,黃文婷,馮乃杰,2,鄭殿峰,2

      (1.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)農(nóng)學(xué)院,大慶 163319;2.廣東海洋大學(xué)農(nóng)學(xué)院;3.國(guó)家雜糧工程技術(shù)研究中心)

      甜葉菊(Bertoni)是菊科的多年生草本植物。在巴拉圭(和巴西),甜葉菊的葉子自幾百年前就被當(dāng)?shù)厝朔Q為“甜食”[1-3],其主要用作茶、藥品等的添加劑。存在于葉子中的甜菊醇糖苷作為主要次級(jí)代謝物是甜葉菊葉片甜度的基礎(chǔ),并且是甜味劑的重要成分。此外,甜菊甙和杜克糖甙也是甜葉菊的次級(jí)代謝物,但其含量低于甜菊醇糖苷[4-6]。甜菊甙是甜葉菊干葉中主要的甜味成分(4.13%),而其他重要的化合物為:甜菊雙糖甙,瑞鮑迪甙A(2.4%),B,C(1.2%),D,E,F(xiàn) 和杜克甙A(0.3%)。瑞鮑迪甙A/甜菊醇糖苷比率被認(rèn)為是一個(gè)很好的反映甜味的品質(zhì)指標(biāo)。甜菊甙是一種高甜度、低熱值的非發(fā)酵性天然甜味劑,其甜度為蔗糖的200~300 倍,而熱量只有蔗糖的1/300,提取于菊科宿根多年生草本植物的甜葉菊莖葉中。甜葉菊葉片中的各種次級(jí)代謝產(chǎn)物的合成在開(kāi)花以后會(huì)顯著降低,因此為了獲得更高含量的甜菊醇糖苷,甜葉菊需要在開(kāi)花前收獲葉片[7]。甜菊甙是一種新型糖源,具有重要的保健功能,如促進(jìn)新陳代謝、強(qiáng)壯身體和降低血壓等,目前在食品、醫(yī)療、日用品等領(lǐng)域得到了廣泛的應(yīng)用[8-9]。S.Gregersen[10]研究表明在甜葉菊葉的各時(shí)期發(fā)現(xiàn)了濃度不同的有甜味的化合物甜菊醇糖苷。在對(duì)甜葉菊研究過(guò)程中,發(fā)現(xiàn)了甜菊甙活性以及幾種酶活性。Bailey 和McHargue[11]研究表明番茄果實(shí)和葉片中過(guò)氧化物酶活性隨著葉齡的增加而增加,在衰老過(guò)程中活性逐漸下降。有研究表明[12-14],應(yīng)用植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑可控制植株的生長(zhǎng)發(fā)育,改善植株的光合作用,調(diào)控植物的生理代謝功能以及提高作物的產(chǎn)量和品質(zhì)。張明才等[15]研究表明,DTA-6[16-17]可提高花生器官的生理代謝功能,增加花生產(chǎn)量,改善花生品質(zhì)。目前大多數(shù)研究主要針對(duì)甜菊醇糖苷提純方面做出了研究,而植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑在甜葉菊栽培中的應(yīng)用尚未見(jiàn)報(bào)道。因此,研究引入植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑DTA-6 并開(kāi)展了其作用效果和機(jī)理研究。試驗(yàn)在大田條件下,探討調(diào)節(jié)劑DTA-6 調(diào)控甜葉菊形態(tài)建成,生理代謝及甜葉菊產(chǎn)量品質(zhì)的作用機(jī)理,進(jìn)而為調(diào)節(jié)劑DTA-6 在甜葉菊上的應(yīng)用提供科學(xué)理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)材料

      1.1.1 試驗(yàn)品種

      供試品種為惠農(nóng)3 號(hào),黑龍江省海林市海林農(nóng)場(chǎng)的主栽品種。

      1.1.2 試驗(yàn)地基本情況

      試驗(yàn)田地位于黑龍江省海林市海林農(nóng)場(chǎng)第五作業(yè)區(qū)(東經(jīng)128°47′30″~129°7′30″,北緯44°15′~44°25′),試驗(yàn)地氣候?yàn)榇箨懶约撅L(fēng)氣候,土質(zhì)以崗地白漿土為主,有機(jī)質(zhì)含量27 g·kg-1,含氮為98 mg·kg-1,全磷為94 mg·kg-1,含水解氮為58.8 mg·kg-1,有效磷為15 mg·kg-1。年平均≥10 ℃活動(dòng)積溫2 500 ℃左右,無(wú)霜期136 d 左右,年降水量530~550 mm。

      1.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

      試驗(yàn)采用大田試驗(yàn)方法,隨機(jī)區(qū)組試驗(yàn)設(shè)計(jì),使用植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑2-N,N-二乙氨基乙基己酸酯(DTA-6)進(jìn)行葉面噴施處理,濃度分別為12.5 mg·L-1(D12.5)、60 mg·L-1(D60)、300 mg·L-1(D300),以葉面噴施清水為對(duì)照(DCK)。試驗(yàn)設(shè)置四次重復(fù),于8 月15 日(移栽后75 d)進(jìn)行葉面噴施。小區(qū)為6 行區(qū),壟寬0.65 m,行長(zhǎng)8 m,小區(qū)面積為31.2 m2,區(qū)間過(guò)道1 m,共16 個(gè)小區(qū)。于5 月25 日移栽大田,每公頃的保苗株數(shù)在18 萬(wàn)株。田間作業(yè)均同當(dāng)?shù)爻R?guī)生產(chǎn)。

      1.3 測(cè)定項(xiàng)目與方法

      1.3.1 取樣及測(cè)定方法

      (1)形態(tài)指標(biāo)測(cè)定:于8 月20 日、9 月7 日、9 月22 日(分別為移栽后80、98、113 d)進(jìn)行取樣,每個(gè)處理選取大小長(zhǎng)勢(shì)一致的植株4 株,測(cè)量株高、莖粗后,按莖、葉分樣,105 ℃殺青30 min,80 ℃烘干至恒重后分別稱其干物質(zhì)量。

      (2)生理指標(biāo)測(cè)定:采取植株倒5 葉片,在液氮中速凍30 min,置于-40 ℃低溫冰箱中貯存。

      (3)產(chǎn)量的測(cè)定:在9 月22 日進(jìn)行收獲測(cè)產(chǎn),在每試驗(yàn)小區(qū)取1 m2進(jìn)行測(cè)產(chǎn),放在室內(nèi)陰干脫葉后進(jìn)行甜葉菊干葉稱重。

      1.3.2 酶液提取方法

      過(guò)氧化物(POD)酶活性的提取和測(cè)定采用Sigma 法[18]測(cè)定。已知量的新鮮甜菊葉在預(yù)冷的研缽中研磨并在50 mmol·L-1預(yù)冷的磷酸緩沖液(pH7.8)在冰浴上研磨成勻漿。轉(zhuǎn)入離心管中在4 ℃、12 000 g、20 min 的條件下進(jìn)行離心,取出上清液即為酶粗提液,用于過(guò)氧化物酶活性的測(cè)定。

      多酚氧化(PPO)酶活性的提取和測(cè)定方法是根據(jù)曹建康等[19]編著的《果蔬采后生理生化實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)》測(cè)定。已知量的新鮮甜菊葉在預(yù)冷的研缽中研磨并在含有4% PVPP、1 mmol PEG 和1%TritonX-100 的已知濃度的提取緩沖液中研磨。轉(zhuǎn)入離心管中在4 ℃、12 000 g、20 min 的條件下進(jìn)行離心,取出上清夜即為酶粗提液,用于多酚氧化酶活性的測(cè)定。

      1.3.3 酶活性測(cè)定

      過(guò)氧化物酶活性,反應(yīng)混合物含有在0.2 M 磷酸鹽緩沖液(pH6.0)中的愈創(chuàng)木酚,30%H2O2和40 μL酶提取物。通過(guò)加入相應(yīng)的酶開(kāi)始反應(yīng)。氧化染料的顏色變化在30 s 的時(shí)間間隔在470 nm 讀取1 min,重復(fù)4 次。過(guò)氧化物酶活性單位為u·g-1FW。

      多酚氧化酶的活性,反應(yīng)混合物含有50 mmol·L-1乙酸-乙酸鈉緩沖液(pH5.5)、鄰苯二酚溶液和50 μL酶提取物。將內(nèi)容物混合并立即開(kāi)始計(jì)時(shí)。將反應(yīng)混合液倒入比色杯中,置于分光光度計(jì)樣品室中。以蒸餾水為參比,在反應(yīng)15 s 時(shí)開(kāi)始記錄反應(yīng)體系在波長(zhǎng)420 nm 處吸光度值,作為初始值,然后每隔1 min記錄一次,連續(xù)測(cè)定,至少獲取6 個(gè)點(diǎn)的數(shù)據(jù),重復(fù)4次。多酚氧化酶活性單位為ΔOD420/min·g-1。

      1.3.4 瑞鮑迪甙A 和甜菊糖苷的提取及測(cè)定

      酶液提?。悍Q取1 g 干樣葉片粉末,加入8 mL 熱水,混勻后進(jìn)行30 min 超聲處理,離心4 000 g,15 min,4 ℃進(jìn)行離心,取上清液,重復(fù)3 次。3 次上清液混合均勻待用,進(jìn)行色譜分析。

      檢測(cè)方法:通過(guò)使用安捷倫1 200 型液相色譜儀進(jìn)行液相色譜分析,采用XDB-NH3(4.6×250 mm,5 μm)色譜柱,柱溫40 ℃,流速1 mL·min-1,流動(dòng)相采用等度洗脫模式,流動(dòng)相乙腈/水組成比為80∶20(v/v),檢測(cè)器為紫外-可見(jiàn)檢測(cè)器,檢測(cè)波長(zhǎng)210 nm。

      1.4 數(shù)據(jù)分析與處理

      試驗(yàn)數(shù)據(jù)的處理與分析采用了SPSS22.0,顯著性和極顯著性的檢驗(yàn)采用Duncan’s 新復(fù)極差法,數(shù)據(jù)整理與圖表的繪制是通過(guò)Microsoft Office EXCEL2010 進(jìn)行繪制完成。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 噴施DTA-6 對(duì)甜葉菊形態(tài)建成的影響

      如表1 所示,在整個(gè)生長(zhǎng)期,株高逐漸增加。其中在8 月20 日,葉面噴施D12.5 的處理與CK 相比株高極顯著升高,而其他處理則與CK 相比株高無(wú)明顯差異;在9 月7 日,各處理與CK 相比株高并無(wú)顯著變化;在9 月22 日,D60 比CK 株高顯著升高,而其他處理則與CK 相比株高無(wú)明顯差異。

      表1 葉噴DTA-6 處理對(duì)株高的影響Table 1 Effect of leaf DTA-6 spray treatment on plant height

      如表2 所示,在整個(gè)生長(zhǎng)期,莖粗逐漸增粗。其中在8 月20 日,葉面噴施D12.5 的處理與CK 相比株高極顯著增粗,而其他處理則與CK 相比莖粗無(wú)明顯差異;在9 月7 日,D12.5 的處理與CK 相比株高顯著增粗,而其他處理則與CK 相比莖粗均無(wú)顯著差異。在9 月22 日,D12.5 比CK 株高顯著增粗,而其他處理則與CK 相比莖粗無(wú)明顯差異。

      表2 葉噴DTA-6 處理對(duì)莖粗的影響Table 2 Effect of leaf DTA-6 spray treatment on stem diameter

      如表3 所示,在整個(gè)生長(zhǎng)期,分枝數(shù)逐漸增加。其中在8 月20 日,葉面噴施D12.5、D300 處理與CK相比分枝數(shù)均極顯著增加,而D60 處理則與CK 相比無(wú)明顯差異;在9 月7 日,各處理與CK 相比分枝數(shù)均無(wú)顯著差異;在9 月22 日,D12.5 處理與CK 相比分枝數(shù)顯著增加,D60 處理與CK 相比分枝數(shù)極顯著增加。

      表3 葉噴DTA-6 處理對(duì)分枝數(shù)的影響Table 3 Effect of leaf DTA-6 spray treatment on number of branches

      如表4 所示,在整個(gè)生長(zhǎng)期,單株莖重逐漸增加。其中在8 月20 日與9 月7 日,各處理則與CK 相比單株莖重均無(wú)明顯差異;在9 月22 日,D60 處理與CK 相比單株莖重顯著增加,而其他處理與CK 相比均沒(méi)有顯著變化。

      表4 葉噴DTA-6 處理對(duì)單株莖重的影響Table 4 Effect of leaf spray DTA-6 treatment on stem weight

      如表5 所示,在整個(gè)生長(zhǎng)期中,除在9 月7 日調(diào)查時(shí)D12.5 處理與CK 相比降低,其余各處理與CK相比均增加,但均沒(méi)有達(dá)到顯著水平。

      表5 葉噴DTA-6 處理對(duì)單株葉重的影響Table 5 Effect of leaf DTA-6 spray treatment on leaf weight per plant

      2.2 噴施DTA-6 對(duì)葉片中過(guò)氧化物酶活性的影響

      隨著甜葉菊的抗逆性的增加,過(guò)氧化酶活性逐漸降低。噴施調(diào)節(jié)劑DTA-6 后,各處理的過(guò)氧化物酶活性均有變化。如圖1 所示,過(guò)氧化物酶活性變化為在整個(gè)生長(zhǎng)期中,氧化物酶(POD)活性呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì)。其中在8 月20 日,各處理中過(guò)氧化物酶活性與CK 相比顯著提高,并且均達(dá)到極顯著水平;在9 月7 日,各處理中過(guò)氧化物酶活性與CK 相比顯著提高,并且均達(dá)到極顯著水平;在9 月22 日,噴施D12.5 的處理與CK 相比過(guò)氧化物酶(POD)活性極顯著增加,噴施D300 處理與對(duì)照相比過(guò)氧化物酶(POD)活性極顯著降低,而噴施D60 的處理與CK相比活性顯著降低。

      圖1 噴施DTA-6 對(duì)葉片中過(guò)氧化物酶活性的影響Fig.1 Effect of DTA-6 spray on peroxidase activity in leaves

      2.3 噴施DTA-6 對(duì)葉片中多酚氧化酶活性的影響

      甜葉菊的抗逆性與多酚氧化酶活性呈負(fù)相關(guān)。噴施調(diào)節(jié)劑DTA-6 后,各處理的多酚氧化酶活性均有變化。如圖2 所示,在整個(gè)生長(zhǎng)期中,氧化物酶(POD)活性變化呈現(xiàn)先升高后趨于平緩的趨勢(shì)。其中在8 月20 日,D12.5、D60 處理與CK 相比多酚氧化酶活性極顯著降低,而D300 處理多酚氧化酶活性降低,但未達(dá)到顯著水平;在9 月7 日與9 月22 日,各處理多酚氧化酶活性與CK 相比均極顯著降低。

      圖2 噴施DTA-6 對(duì)葉片中多酚氧化酶活性的影響Fig.2 Effect of DTA-6 spray on polyphenol oxidase activity in leaves

      2.4 噴施DTA-6 對(duì)葉片中瑞鮑迪甙與甜菊苷比值(ReA/ST)的影響

      ReA/ST 的比值越高證明甜葉菊品質(zhì)越好。噴施調(diào)節(jié)劑DTA-6 后,各處理的ReA/ST 的比值間具有一定的差異。如圖3 所示,在8 月20 日,D12.5 處理與CK 相比極ReA/ST 顯著提高,而其他處理與CK相比均極顯著降低;在9 月7 日,各處理間葉片中ReA/ST 與CK 相比均極顯著降低;在9 月22 日,各處理間葉片中ReA/ST 與CK 相比均極顯著提高,而D60 處理的ReA/ST 最大。

      圖3 噴施DTA-6 對(duì)瑞鮑迪甙與甜菊苷比值的影響Fig.3 Effect of DTA-6 spray on the ratio of rebaudioside and stevioside

      2.5 噴施DTA-6 對(duì)甜葉菊產(chǎn)量的影響

      根據(jù)表6 可以看出,在收獲測(cè)產(chǎn)時(shí),各處理于CK 相比均有增加,其中D12.5 處理增加了3.8%;D60 處理增加了11.2%,并且差異達(dá)到了顯著水平;D300 處理增加了8.0%。

      表6 噴施DTA-6 對(duì)甜葉菊產(chǎn)量的影響Table 6 Effect of spraying DTA-6 on Stevia yield

      3 討論

      POD 酶是植物重要的保護(hù)性酶[20-22],許多植物可以通過(guò)此類酶防御系統(tǒng)來(lái)清除遭受脅迫而產(chǎn)生的活性氧,從而使植物維持正常的生長(zhǎng)發(fā)育。過(guò)氧化物酶廣泛存在于植物體中,是一種活性較高的酶。在植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中過(guò)氧化物酶活性不斷發(fā)生變化。一般表現(xiàn)為老化組織中活性較高,幼嫩組織中活性較弱,所以過(guò)氧化物酶可作為組織老化的一種生理指標(biāo)[23-24]。多酚氧化酶(PPO)是呼吸鏈末端氧化酶之一,它參與多酚類物質(zhì)的氧化,在植物植株的防御保護(hù)體系中起重要作用[25-26]。多酚氧化酶也是生物質(zhì)體的自源代謝酶類,能夠長(zhǎng)期維持生物體的生自體次生代謝的平衡[27-28]。甜葉菊整株含有糖苷,以其葉片甜度最高,其安全性早已得到FAO 和WHO 等國(guó)際組織的認(rèn)可,因而甜葉菊醇糖苷已被廣泛應(yīng)用于食品、藥品、肥料以及飼料等行業(yè)[29-30]。有研究發(fā)現(xiàn)[31-32],在植物的幼嫩組織和器官中轉(zhuǎn)化酶的活性較高,轉(zhuǎn)化酶活性會(huì)隨著組織和器官的成熟而降低。研究指出,葉面噴施植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑DTA-6 可以使甜葉菊葉片中的POD 酶和PPO 酶活性呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì),并且D60 處理達(dá)到極顯著水平,這一結(jié)果與前人研究表現(xiàn)相同,但是關(guān)于調(diào)節(jié)劑DTA-6 具體對(duì)PPO 酶與POD 酶活性的調(diào)控過(guò)程可能還有許多其他因素在起作用,如基因調(diào)控、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)以及植物內(nèi)源激素系統(tǒng)的調(diào)控等諸多方面,其有關(guān)機(jī)理尚待深入研究。Saibi 等[33]使小麥中DHN-5 在擬南芥中超表達(dá),結(jié)果表明,DHN-5 通過(guò)調(diào)控?cái)M南芥中抗氧化酶的活性,增加了過(guò)氧化物酶活性,這與試驗(yàn)的結(jié)果表現(xiàn)有差異,推斷調(diào)節(jié)劑對(duì)甜葉菊的作用可能是多基因共同調(diào)控的結(jié)果,今后還需進(jìn)一步挖掘相關(guān)基因,從而更好地從分子水平揭示化學(xué)調(diào)節(jié)劑促進(jìn)甜葉菊品質(zhì)及產(chǎn)量建成的調(diào)控機(jī)理。

      4 結(jié)論

      試驗(yàn)通過(guò)葉噴處理,初步篩選出了對(duì)甜葉菊產(chǎn)量提高、品質(zhì)改善有較好效果的植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑S3307 濃度為50 mg·L-1,該處理在葉片成熟期降低了甜葉菊葉片中POD 酶和PPO 酶活性,提高了甜葉菊中ReA/ST,增加甜葉菊產(chǎn)量,有利于甜葉菊植株更好地生長(zhǎng)發(fā)育。證明了化學(xué)調(diào)控技術(shù)在對(duì)提高甜葉菊品質(zhì)及其產(chǎn)量方面具有發(fā)展的潛力。

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