王雪亮,肖艷群,王華梁
(上海市臨床檢驗中心分子生物學室,上海 200126)
隨著分子生物學技術(shù)的飛速發(fā)展,分子檢測的應用范疇不斷擴大,目前已被廣泛應用于感染性疾病、遺傳性疾病和腫瘤等多個領(lǐng)域,是疾病預防、診斷、治療、監(jiān)測和預后評估的重要方法。目前,臨床常用的分子檢測技術(shù)主要分為3類:聚合酶鏈反應(polymerase chain reaction,PCR)、分子雜交技術(shù)和基因測序技術(shù)。這3類技術(shù)存在操作復雜、設備昂貴、人員需專業(yè)培訓等局限,因此開發(fā)更為快速、價廉、操作簡單、靈敏度高、特異性強的新一代檢測技術(shù),是分子檢測領(lǐng)域不斷追求的目標[1-3]。
成簇規(guī)律間隔短回文重復序列(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)/成簇規(guī)律間隔短回文重復序列相關(guān)蛋白(clustered regularly interspaced short palindromic repeat-associated protein,Cas)系統(tǒng)是細菌和古細菌在生物進化過程中形成的一種適應性免疫防御系統(tǒng)[4]。目前,CRISPR技術(shù)作為基因組編輯利器,已被廣泛應用于生物、醫(yī)學、農(nóng)業(yè)等多個領(lǐng)域[5-6]。此外,在科學家發(fā)現(xiàn)部分Cas(如Cas13和Cas12)具有“附帶切割”活性,并將其用于快速分子檢測后,此領(lǐng)域的發(fā)展立即駛?cè)肟燔嚨?,并取得系列重要成果[2,7]。我們就CRISPR技術(shù)在分子檢測中的相關(guān)應用展開綜述,以期為相關(guān)人員在此領(lǐng)域中進一步應用該技術(shù)提供參考與幫助。
CRISPR/Cas系統(tǒng)本質(zhì)上是一系列由RNA引導的核酸內(nèi)切酶,存在于約40%的細菌和90%的古細菌中,是細菌抵御外源物質(zhì)(如噬菌體和質(zhì)粒)入侵的獲得性免疫系統(tǒng)[8]。1987年,ISHINO等[9]即在大腸埃希菌中發(fā)現(xiàn)了串聯(lián)的間隔重復序列,但其功能未知。2002年,JANSEN等[10]將此重復序列正式命名為CRISPR序列。CRISPR序列主要由前導區(qū)、重復序列和間隔序列組成,其上游富含AT堿基對,長度為100~500 bp,即CRISPR序列前導區(qū),被認為是CRISPR序列轉(zhuǎn)錄的啟動子;重復序列長度為21~48 bp,含回文序列,可形成發(fā)卡結(jié)構(gòu);間隔序列位于重復序列之間,長度為25~72 bp,其序列來源于病毒或噬菌體等外源DNA[11]。2007年,BARRANGOU等[8]首次發(fā)現(xiàn)并證實了嗜熱鏈球菌可利用CRISPR系統(tǒng)抵抗噬菌體侵染。CRISPR系統(tǒng)行使功能主要包括3個階段:(1)適應階段。當外源核酸入侵細菌時,細菌啟動自身防御機制,將外源核酸整合到CRISPR回文重復序列中;(2)表達階段。CRISPR序列在RNA聚合酶幫助下進行轉(zhuǎn)錄,然后被剪切為成熟CRISPR RNA(crRNA)。成熟crRNA與反式作用crRNA相結(jié)合,形成向?qū)NA(single-guide RNA,sgRNA),發(fā)揮導向功能;(3)干擾階段。通過識別外源核酸序列中的前間區(qū)序列鄰近基序(protospacer adjacent motif,PAM),sgRNA引導Cas(如Cas9、Cas12、Cas13等)與靶標序列相互作用,引發(fā)對外源核酸的定向切割[12-13]。
根據(jù)Cas的組成及發(fā)揮功能的方式,CRISPR/Cas可分為二大類群:第1類以多個Cas組成的效應復合體行使功能為特征,包括Ⅰ、Ⅲ和Ⅳ型;第2類則只需單個多結(jié)構(gòu)域的Cas,包括Ⅱ(Cas9)、Ⅴ(Cas12)和Ⅵ(Cas13)型[14-15]。第2類系統(tǒng)簡單、高效、操作方便,是目前主要的基因編輯系統(tǒng),其中最具代表性的是Cas9。相比Cas9,Cas12a和Cas13a僅需crRNA即可實現(xiàn)特異性靶位點切割,這表明其系統(tǒng)更為簡潔,具有成為精度更高、安全性更好的新一代基因編輯工具的潛力[16-17]。
CRISPR/Cas9系統(tǒng)具有精準識別和切割特定DNA序列的能力,這意味著其可用于新型分子檢測方法的開發(fā)。2016年,PARDEE等[18]首次將CRISPR/Cas9技術(shù)引入分子檢測中,他們將等溫toehold生物傳感檢測到的寨卡病毒和凍干CRISPR/Cas9相混合,肉眼觀察即可對寨卡病毒美洲株和非洲株進行準確分型(圖1)。ZHOU等[19]和HUANG等[20]利用CRISPR/Cas9的特異識別切割能力和等溫擴增技術(shù)相結(jié)合策略分別開發(fā)了CRISDA和CAS-EXPAR方法,可實現(xiàn)阿摩爾級的高靈敏度(amol/L,10-18mol/L)單堿基分辨率,并成功用于單核苷酸多態(tài)性(single nucleotide polymorphism,SNP)分型和單增李斯特菌檢測。有學者將CRISPR/Cas9和PCR技術(shù)相結(jié)合,建立了具有較高靈敏度和特異性的不同版本的ctPCR技術(shù),有效用于人乳頭瘤病毒(human papillomavirus,HPV)16型和18型的檢測和基因分型[21-23]。此外,LEE等[24]還利用Cas9/sgRNA的特異性切割結(jié)直腸癌患者血液中的野生型DNA,進而增加樣本中循環(huán)腫瘤DNA(circulating tumor DNA,ctDNA)的豐度,可顯著提高ctDNA檢測的靈敏度和準確性,更好地用于腫瘤的早期診斷和用藥監(jiān)測。然而,上述研究報道的基于Cas9的檢測方法主要還是作為輔助工具切割特定靶標序列,并未被直接應用于各種靶標序列檢測,這使得其在實際臨床工作中的推廣受到一定程度的限制。
圖1 CRISPR/Cas9用于寨卡病毒毒株分型[18]
與常用Cas9不同,Cas13a(舊稱C2c2)是一種RNA引導的RNA核酸內(nèi)切酶,屬于第2類CRISPR/Cas系統(tǒng)中的Ⅵ型[25]。Cas13a能在crRNA的引導下特異性切割單鏈靶標RNA,并在切割完成后仍保持活性,繼續(xù)切割其他非靶標RNA,即具有“附帶切割”能力[26]?;诖颂匦?,EAST-SELETSKY等[27]開發(fā)出基于CRISPR/Cas13a檢測不同靶標RNA的新方法,但其靈敏度較低,不具有實際臨床應用價值。2017年,張峰開發(fā)了特異性高靈敏度酶解報告基因解鎖(specific high-sensitivity enzymatic reporter unLOCKing,SHERLOCK)檢測系統(tǒng)[28]。在該系統(tǒng)中,目標模板首先經(jīng)重組酶聚合酶擴增(recombinase polymerase amplification,RPA)(用于檢測DNA靶標)或逆轉(zhuǎn)錄-RPA(用于檢測RNA靶標)為含有T7啟動子的DNA模板,后經(jīng)T7 RNA聚合酶逆轉(zhuǎn)錄,產(chǎn)物可作為Cas13a切割的靶標,在Cas13a對上述靶標特異性切割后激活附帶切割功能,切割體系中單鏈RNA熒光報告探針能產(chǎn)生可被檢測的熒光信號(圖2)[28]。相比先前的研究,PRA方法的引入顯著提高了該方法的檢測靈敏度,已被成功用于寨卡病毒、登革熱病毒、致病細菌株及其耐藥基因、SNP分型和ctDNA等多種靶標檢測。此外,該方法所用檢測試劑可凍干制備成濾紙片,用于即時檢測(point-of-care testing,POCT),成本極為低廉(0.61美元/次)[28]。在此基礎(chǔ)上,該團隊很快開發(fā)出第2代SHERLOCK(SHERLOCKv2)系統(tǒng),在性能方面有了較大提升:(1)單管中可同時進行4通道檢測;(2)定量檢測限可低至2 amol/L;(3)結(jié)合Csm6蛋白可進一步將靈敏度提高3.5倍;(4)側(cè)向?qū)游鲈嚰垪l檢測,有效解決了上一代系統(tǒng)檢測通量低、不能定量、需特定熒光設備等問題[29]。此外,MYHRVOLD等[30]開發(fā)了改良版的SHERLOCKv2系統(tǒng),命名為(heating unextracted diagnostic samples to obliterate nucleases,HUDSON)。此方法可不經(jīng)核酸提取純化,僅需對臨床樣本進行核酸酶滅活和加熱等快速處理,即可用于后續(xù)SHERLOCK2反應,2 h不到便可肉眼觀測寨卡病毒和登革熱病毒的檢測及分型結(jié)果,其快速、價廉、準確的特點非常適用于POCT等應用場景[30]。
圖2 CRISPR/Cas13a分子檢測示意圖[28]
在上述重磅研究成果被報道后,多個課題組進一步拓展了Cas13a在不同分子檢測領(lǐng)域的實際應用。WU等[31]、LIU等[32]和QIN等[33]分別報道了CRISPR/Cas13可用于EB病毒、H7N9禽流感病毒和埃博拉病毒等感染性病原體的準確、快速檢測。此外,CRISPR/Cas13結(jié)合微流控芯片技術(shù)可實現(xiàn)樣本檢測的全自動化,具有重要的臨床應用價值[33]。SHAN等[34]的研究結(jié)果證實采用基于CRISPR/Cas13a的方法可在30 min內(nèi)準確定量樣本中的miRNA。
Cas12a(舊稱Cpf1)屬于第2類CRISPR/Cas系統(tǒng)中的Ⅴ型,由ZETSCHE等[35]在2015年進行特性鑒定,并成功用于人細胞基因組編輯。與Cas9類似,Cas12a是RNA引導的特異性DNA核酸內(nèi)切酶。已有研究結(jié)果表明,Cas12a具有類似Cas13a的附帶切割特性,但其非特異性切割的靶標是單鏈DNA,并利用此特性開發(fā)了基于Cas12a的分子檢測平臺——DETECTR[36]。與SHERLOCK工作原理相似,為提高方法的檢測靈敏度,DETECTR利用RPA等溫擴增靶標DNA,擴增產(chǎn)物與Cas12a/cRNA混合后啟動特定靶標切割,并激活Cas12a的附帶切割活性,反應體系中DNA熒光報告探針即可釋放熒光信號(圖3)[36]。DETECTR可在短短1 h內(nèi)準確檢測臨床患者樣本中的HPV16和HPV18準確檢測并分型。同一時期,LI等[37]也報道了與DETECTR類似的基于Cas12a的分子檢測方法,稱為HOLMES。HOLMES與DETECTR的主要不同之處是前者使用RPA對目的片段進行擴增,而未使用RPA方法。HOLMES可靈敏、特異、快速地實現(xiàn)SNP分型、DNA病毒和RNA病毒的檢測[37]。
圖3 CRISPR/Cas12a分子檢測示意圖[36]
此外,同樣屬于第2類CRISPR/Cas系統(tǒng)Ⅴ型的Cas12b(C2c1)也被證明具有附帶切割活性,LI等[38]利用其特性開發(fā)了基于Cas12b的分子檢測平臺HOLMESv2。與上一代HOLMES不同,HOLMESv2將環(huán)介導等溫擴增技術(shù)和Cas12b檢測相結(jié)合,二者相同的反應溫度使檢測系統(tǒng)可有效整合,從而實現(xiàn)快速、準確的一體化檢測,并被成功用于1 h內(nèi)快速檢測乙型腦炎病毒[38]。
與Cas12a相同,新近鑒定的Cas14同屬第2類CRISPR/Cas系統(tǒng)中的Ⅴ型,是RNA引導的特異性D N A 核酸內(nèi)切酶,同時具有針對單鏈DNA的附帶切割活性[39]。不同的是,Cas14a與靶標結(jié)合的特異性比Cas12a更高,因而更適用于開發(fā)需達到單堿基分辨率的檢測方法。HARRINGTON等[39]建立了基于Cas14a的DETECTR檢測方法,并成功用于人類眼色HERC2基因SNP分型(圖4)。然而,sgRNA引導的Cas14a僅能靶向切割單鏈DNA,故在檢測時需先將擴增后的雙鏈DNA的1條鏈降解,以生成靶標單鏈DNA,才能用于后續(xù)檢測,這在一定程度上增加了操作的復雜性。
圖4 CRISPR/Cas14a分子檢測示意圖[39]
CRISPR技術(shù)在短短幾年時間內(nèi)飛速發(fā)展,已逐漸演變?yōu)橐环N功能強大的多用途生物學工具。目前,CRISPR/Cas系統(tǒng)在分子檢測領(lǐng)域中的應用才剛剛開始,但SHERLOCK和DETECTR等方法已展現(xiàn)出良好的臨床應用價值與前景。作為新型“下一代分子診斷”技術(shù),其具有快速、便攜、成本低廉、靈敏度高、特異性強等優(yōu)點,已被證明可用于病原體檢測、耐藥性分析、SNP分型、腫瘤基因突變檢測等多個方面令,特別適用于野外環(huán)境或基層醫(yī)院。但是,基于Cas13a的檢測需使用RNA熒光報告基團,其易受環(huán)境中RNA酶降解,可能出現(xiàn)假陽性結(jié)果。相對而言,使用DNA熒光報告基團的基于Cas12的檢測方法則不易受此問題影響。此外,單獨使用Cas檢測的靈敏度偏低,現(xiàn)有CRISPR檢測方法均需擴增相應目標核酸以提高檢測靈敏度。為解決此問題,未來需挖掘更多新型Cas并建立更為簡單、有效的CRISPR/Cas檢測方法。目前報道的CRISPR檢測方法尚處于實驗室開發(fā)階段,在臨床工作中的實際作用如何尚需進一步評估,以確保其具有良好的臨床適用性??傊?,隨著新的Cas的不斷發(fā)現(xiàn)及相關(guān)研究的持續(xù)深入,CRISPR/Cas系統(tǒng)勢必會對分子檢測技術(shù)的發(fā)展和應用產(chǎn)生深遠影響。