陸小琴,杜 銳,趙玉強(qiáng),牛司強(qiáng)
(1.雅安職業(yè)技術(shù)學(xué)院藥學(xué)與檢驗(yàn)學(xué)院,四川 雅安 625000; 2.重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)科,重慶 400016)
分化抑制因子1 (inhibitor of differentiation 1, Id1)是一種螺旋-環(huán)-螺旋狀結(jié)構(gòu)的負(fù)性轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控蛋白[1]。Id1可抑制轉(zhuǎn)錄因子的DNA結(jié)合和轉(zhuǎn)錄激活能力,參與調(diào)節(jié)細(xì)胞生長和分化[2-4]。Id1的表達(dá)與乙型肝炎病毒 (hepatitis B virus, HBV)相關(guān)性肝細(xì)胞癌的預(yù)后密切相關(guān)[5],如Ding等[6]人對96例HBV相關(guān)性肝細(xì)胞癌的組織樣本進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),64.6%的樣本顯示Id1過表達(dá),與組織學(xué)分級、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移呈正相關(guān),而且Id1過表達(dá)患者的生存率較低。但是,Id1在HBV相關(guān)性肝細(xì)胞癌中的作用機(jī)制仍缺乏報道,因此本文旨在探討Id1在HBV復(fù)制、肝癌細(xì)胞增殖和凋亡中的作用及機(jī)制。
HepG2.2.15肝癌細(xì)胞株(批號:ZQ0551)購自上海中喬新舟生物科技有限公司。
MTT、細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(批號:ST316、C1062S)購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量PCR試劑盒(批號:D6110 A、DRR820 A)購自日本Takara公司;pGEx-4T-1質(zhì)粒(批號:CW2198)購自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司;TRIzol、Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染液(批號:15596018、11668019)購自美國Invitrogen公司;胎牛血清、青鏈霉素、DMEM培養(yǎng)基(批號:16250086、15140163、11965092)購自美國Gibco公司;G418(批號:G8160)購自北京索萊寶科技有限公司;Pifithrin-α(批號:P4359)購自美國Sigma公司;HBsAg和HBeAg ELISA試劑盒(批號:227712、227699)購自武漢艾美捷科技有限公司;抗Id1抗體(批號:MAB4372)購自美國Chemicon公司;抗HBx抗體、抗Bax抗體、抗BcL-2抗體、抗Cleaved caspase-3抗體、抗GAPDH抗體(批號:ab39716、ab32503、ab32124、ab2302、ab181602)購自英國Abcam公司。
1.3.1 質(zhì)粒構(gòu)建與細(xì)胞轉(zhuǎn)染
參照于游等[7]的報道設(shè)計Id1的干擾序列(siRNA-Id1)和無關(guān)序列 (siRNA-Control)(見表1)。使用基因工程的方法將干擾序列和無關(guān)序列構(gòu)建至pGEx-4T-1質(zhì)粒中。使用Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染液將siRNA-Id1質(zhì)粒和siRNA-Control質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至HepG2.2.15肝癌細(xì)胞株,使用實(shí)時定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng) (Quantitative real-time polymerase chain reaction, qRT-PCR)和蛋白質(zhì)免疫印跡試驗(yàn)(Western blot)驗(yàn)證Id1 mRNA和蛋白質(zhì)表達(dá)量的抑制效果。
1.3.2 細(xì)胞培養(yǎng)與分組
使用含10%胎牛血清、100 U/mL青鏈霉素和400 μg/mL G418的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)HepG2.2.15肝癌細(xì)胞。將細(xì)胞隨機(jī)分為4組:對照組(Control group)、siRNA-Control組(siRNA-Control group)、siRNA-Id1組(siRNA-Id1 group)、siRNA-Id1+Pifithrin-α組(siRNA-Id1+Pifithrin-α group)。對照組細(xì)胞不進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染,siRNA-Control組細(xì)胞使用siRNA-Control質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,siRNA-Id1組細(xì)胞使用siRNA-Id1質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,siRNA-Id1+Pifithrin-α組細(xì)胞使用siRNA-Id1質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后加入終濃度為20 μmol/L的Pifithrin-α[8]。孵育48 h后,收集細(xì)胞和上清液進(jìn)行檢測。
1.3.3 qRT-PCR
TRIzol試劑盒提取HepG2.2.15細(xì)胞中的mRNA,逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將mRNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,熒光定量PCR試劑盒檢測Id1和HBx基因的表達(dá),引物序列(見表2)。目的基因的相對表達(dá)量=(實(shí)驗(yàn)組的2-ΔCt)/(對照組的2-ΔCt)(ΔCt=目的基因Ct值-內(nèi)參基因Ct值)[9]。
1.3.4 酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)
ELISA試劑盒檢測細(xì)胞上清液中HBsAg和HBeAg的含量,酶標(biāo)儀450 nm波長處測定吸光度值(Optical Density, OD)。
1.3.5 Western blot
細(xì)胞裂解后,12000 r/min離心10 min,取上清進(jìn)行蛋白定量,然后進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳和轉(zhuǎn)膜,封閉2 h,使用抗Id1抗體 (1∶500)、抗HBx抗體 (1∶1000)、抗Bax抗體 (1∶1000)、抗BcL-2抗體 (1∶1000)、抗Cleaved caspase-3抗體 (1∶1000)、抗GAPDH抗體 (1∶5000),4℃過夜孵育。洗滌后,加入二抗孵育1 h,洗滌后顯色,曝光和拍照。使用Image Pro Plus 6.0軟件測定灰度值,對照組中目的條帶和GAPDH條帶的灰度值之比作為1[10]。
1.3.6 MTT試驗(yàn)
將5×103個細(xì)胞種植于96孔板,于培養(yǎng)24 h、48 h和72 h后加入10 μL 5 mg/mL的MTT溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸棄上清液,加入100 μL的DMSO溶液,室溫下振蕩混勻5 min,酶標(biāo)儀在490 nm下測定OD值。
1.3.7 流式細(xì)胞術(shù)
向105個細(xì)胞中加入195 μL的AnnexinⅤ-FITC結(jié)合液重懸,加入5 μL的AnnexinⅤ-FITC和10 μL的碘化丙啶,混勻后孵育20 min,流式細(xì)胞儀檢測。Annexin Ⅴ+PI-細(xì)胞為早期凋亡細(xì)胞,Annexin Ⅴ+PI+細(xì)胞為晚期凋亡細(xì)胞,凋亡率=凋亡細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100%。
siRNA-Id1組細(xì)胞中Id1 mRNA和蛋白的表達(dá)量低于siRNA-Control組(P<0.05)(見圖1和表3)。
與siRNA-Control組相比較,siRNA-Id1組細(xì)胞中HBx mRNA和蛋白的表達(dá)量降低(P<0.05);與siRNA-Id1組相比較,siRNA-Id1+Pifithrin-α group組細(xì)胞中HBx mRNA和蛋白的表達(dá)量升高(P<0.05)(見圖2和表4)。
表1 siRNA序列
表2 引物序列
與siRNA-Control組相比較,siRNA-Id1組細(xì)胞上清液中HBsAg和HBeAg的含量降低(P<0.05);與siRNA-Id1組相比較,siRNA-Id1+Pifithrin-α group組細(xì)胞上清液中HBsAg和HBeAg的含量升高(P<0.05)(見表5)。
與siRNA-Control組相比較,siRNA-Id1組細(xì)胞在培養(yǎng)48 h和72 h時的OD值降低(P<0.05);與siRNA-Id1組相比較,siRNA-Id1+Pifithrin-α group組細(xì)胞在培養(yǎng)48 h和72 h時的OD值升高(P<0.05)(見表6)。
注:1:siRNA-Control組;2:siRNA-Id1組。圖1 Western blot檢測細(xì)胞中Id1蛋白的表達(dá)Note. 1, siRNA-Control group; 2, siRNA-Id1 group.Figure 1 Western blot was used to examine the protein expression of Id1
表3 Id1表達(dá)的比較(n=10)
注:1:Control組;2:siRNA-Control組;3:siRNA-Id1組;4:siRNA-Id1+Pifithrin-α組。圖2 Western blot檢測HBx蛋白的表達(dá)Note. 1, Control group; 2, siRNA-Control group; 3, siRNA-Id1 group; 4, siRNA-Id1+Pifithrin-α group.Figure 2 Western blot was used to examine the protein expression of HBx
表4 4組細(xì)胞中HBx表達(dá)的比較(n=10)
注:與Control組相比,*P<0.05;與siRNA-Control組相比,#P<0.05;與siRNA-Id1組相比,▲P<0.05。
Note. Compared with Control group,*P<0.05. Compared with siRNA-Control group,#P<0.05. Compared with siRNA-Id1 group,▲P<0.05.
表5 細(xì)胞上清液中HBsAg和HBeAg水平的比較(n=10)
注:與Control組相比,*P<0.05;與siRNA-Control組相比,#P<0.05;與siRNA-Id1組相比,▲P<0.05。
Note. Compared with Control group,*P<0.05. Compared with siRNA-Control group,#P<0.05. Compared with siRNA-Id1 group,▲P<0.05.
與siRNA-Control組相比較,siRNA-Id1組細(xì)胞的早期細(xì)胞凋亡比例和晚期細(xì)胞凋亡比例升高(P<0.05);Pifithrin-α可抑制Id1基因沉默后的促凋亡效應(yīng)(P<0.05)(見圖3和表7)。
與siRNA-Control組相比較,siRNA-Id1組細(xì)胞中Bax和Cleaved caspase-3蛋白的表達(dá)量升高,而BcL-2蛋白的表達(dá)量降低(P<0.05);Pifithrin-α可部分抑制Id1基因沉默后的生物學(xué)效應(yīng)(P<0.05)(見圖4和表8)。
表6 4組細(xì)胞增殖的比較(n=10)
注:與Control組相比,*P<0.05;與siRNA-Control組相比,#P<0.05;與siRNA-Id1組相比,▲P<0.05。
Note. Compared with Control group,*P<0.05. Compared with siRNA-Control group,#P<0.05. Compared with siRNA-Id1 group,▲P<0.05.
圖3 流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞的凋亡Figure 3 Flow cytometry was used to examine cell apoptosis
表7 4組細(xì)胞凋亡率的比較(n=10)
注:與Control組相比,*P<0.05;與siRNA-Control組相比,#P<0.05;與siRNA-Id1組相比,▲P<0.05。
Note. Compared with Control group,*P<0.05. Compared with siRNA-Control group,#P<0.05. Compared with siRNA-Id1 group,▲P<0.05.
表8 細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)的比較(n=10)
注:與Control組相比,*P<0.05;與siRNA-Control組相比,#P<0.05;與siRNA-Id1組相比,▲P<0.05。
Note. Compared with Control group,*P<0.05. Compared with siRNA-Control group,#P<0.05. Compared with siRNA-Id1 group,▲P<0.05.
注:1:Control組;2:siRNA-Control組;3:siRNA-Id1組;4:siRNA-Id1+Pifithrin-α組。圖4 Western blot檢測細(xì)胞中Bax、BcL-2、Cleaved caspase-3蛋白的表達(dá)Note. 1, Control group; 2, siRNA-Control group; 3, siRNA-Id1 group; 4, siRNA-Id1+Pifithrin-α group.Figure 4 Western blot was used to examine the protein expression of Bax, BcL-2, Cleaved caspase-3
Id1是一種DNA結(jié)合抑制因子,可與堿性HLH家族成員形成異二聚體,抑制轉(zhuǎn)錄因子的DNA結(jié)合和轉(zhuǎn)錄激活能力[1]。Id1的過表達(dá)會導(dǎo)致肝細(xì)胞癌預(yù)后不良,如鄧宏宇等[11]發(fā)現(xiàn)Id1在肝細(xì)胞肝癌組織標(biāo)本中表達(dá)升高,而且其表達(dá)水平與患者的生存時間負(fù)相關(guān)。盡管已有研究表明Id1可能參與肝癌細(xì)胞的病理進(jìn)展,但是Id1對肝癌細(xì)胞增殖、凋亡等生物學(xué)功能的影響仍缺乏相關(guān)證據(jù),其作用機(jī)制尚不清楚,尤其是在HBV相關(guān)性肝細(xì)胞癌。
HBx蛋白可調(diào)節(jié)蛋白酶活性、胞漿鈣離子信號通路等功能,在促進(jìn)HBV的有效復(fù)制中發(fā)揮重要作用,如Keasler等[12]發(fā)現(xiàn)在缺乏HBx蛋白的情況下,HBV在HepG2肝癌細(xì)胞中的復(fù)制水平降低了65%,而且該研究結(jié)論在小鼠模型中也得到了證實(shí)。此外,Ding等[6]人發(fā)現(xiàn)Id1與HBx的表達(dá)量呈正相關(guān),雙重免疫熒光染色證實(shí)Id1與HBx在HBV相關(guān)性肝細(xì)胞癌組織中共表達(dá),而且HBx可以促進(jìn)HepG2肝癌細(xì)胞表達(dá)Id1 mRNA和蛋白。本文結(jié)果顯示,Id1沉默后HBx mRNA和蛋白的表達(dá)量均顯著下降,表明Id1不僅受到HBx的調(diào)節(jié),還可以反過來調(diào)節(jié)HBx的表達(dá)。HBsAg和HBeAg是評價HBV復(fù)制的重要指標(biāo),本文也發(fā)現(xiàn)Id1沉默后的HepG2.2.15細(xì)胞培養(yǎng)上清液中HBsAg和HBeAg的含量低于轉(zhuǎn)染對照組。以上結(jié)果表明,抑制Id1的表達(dá)可以下調(diào)HBx的表達(dá)和降低乙型肝炎病毒的復(fù)制。
為了進(jìn)一步探討Id1對HBV相關(guān)性肝癌細(xì)胞增殖和凋亡的影響,本文分別對各組HepG2.2.15細(xì)胞進(jìn)行了MTT試驗(yàn)和AnnexinⅤ-FITC標(biāo)記,結(jié)果顯示Id1沉默后細(xì)胞的增殖受到抑制,而且早期凋亡細(xì)胞和晚期凋亡細(xì)胞比例均顯著升高。此外,與siRNA-Control組相比較,siRNA-Id1組細(xì)胞中Bax和Cleaved caspase-3蛋白的表達(dá)量升高,而BcL-2蛋白的表達(dá)量降低,表明Id1沉默導(dǎo)致的促凋亡效應(yīng)可能與線粒體凋亡信號通路的激活有關(guān)。
p53基因是一種抑癌基因,其缺失和變異在一系列腫瘤的發(fā)生發(fā)展中起重要作用。p53也在HBV相關(guān)性肝細(xì)胞癌中發(fā)揮重要的病理作用,如Liu等[13]發(fā)現(xiàn)p53表達(dá)的缺失可激活HGF/c-Met信號通路,導(dǎo)致肝細(xì)胞癌的侵襲和轉(zhuǎn)移能力增強(qiáng)。此外,Yu等[14]發(fā)現(xiàn)Id1可以促進(jìn)p53蛋白的降解,與上調(diào)MDM2癌基因的表達(dá)有關(guān)。根據(jù)以上研究結(jié)論,本文推測Id1對HBV復(fù)制、肝癌細(xì)胞增殖和凋亡的影響是否與Id1沉默導(dǎo)致p53過表達(dá)有關(guān)。因此,本文將一種常用的p53抑制劑Pifithrin-α添加至Id1沉默的HepG2.2.15細(xì)胞中,結(jié)果顯示Pifithrin-α可不同程度的抑制siRNA-Id1對HBV復(fù)制和細(xì)胞增殖的抑制效應(yīng)以及細(xì)胞凋亡的促進(jìn)效應(yīng),表明Id1可能通過調(diào)節(jié)p53參與上述生物學(xué)效應(yīng)。
綜上所述,Id1的特異性小分子干擾RNA可以降低乙型肝炎病毒的復(fù)制,抑制肝癌細(xì)胞的增殖,誘導(dǎo)肝癌細(xì)胞的凋亡,其機(jī)制可能與p53的過表達(dá)有關(guān)。