姜 明 金 晶 沈紅波 王 金 鄭 杰 周一農(nóng)
非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)是患者無過量飲酒史而肝細胞出現(xiàn)炎性反應(yīng)、壞死或凋亡的一系列肝臟疾病[1-2]。NAFLD發(fā)生、發(fā)展的機制尚未明確,其對疾病的治療具有重要意義[3]。Rabelo等[4]的研究表明,氧化應(yīng)激調(diào)節(jié)因子還原型輔酶Ⅱ(NADPH)氧化酶4((NOX4)與NAFLD的發(fā)生、發(fā)展相關(guān)。研究顯示長鏈非編碼RNA H19(lncRNA H19)過表達對肝功能及肝損傷具有保護作用[5]。然而,lncRNA H19是否可通過調(diào)節(jié)NOX4的表達改變NAFLD大鼠肝組織的氧化應(yīng)激狀態(tài)尚未可知。本研究探討了lncRNA H19過表達對NAFLD大鼠肝損傷修復(fù)、脂質(zhì)代謝調(diào)節(jié)以及肝功能改善的影響,并探究了lncRNA H19是否可通過調(diào)控NOX4來抑制大鼠NAFLD的發(fā)展。
無特定病原體(SPF)級SD大鼠50只,雄性,(170±20)g,由北京華阜康生物科技股份有限公司提供,許可證號SCXK(京)2018-0042。保持室溫(22±3)℃,相對濕度(50±20)%,明暗交替各12 h,適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。自由飲水、進食。
試劑:膽酸鈉(安徽科寶生物公司),蛋黃粉(北京奧博星生物公司),食用豬油(浙江金恩食品有限公司),膽固醇(上海醫(yī)藥公司),基礎(chǔ)飼料(北京奧博星生物技術(shù)公司),水合氯醛(天津福星公司),丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)試劑盒、天冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(AST)ELISA試劑盒、三酰甘油(TG)ELISA試劑盒、總膽固醇(TC)ELISA試劑盒(上海碧云天公司),丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽(GSH)、BCA蛋白定量測定試劑盒(上海碧云天公司),RNA提取試劑盒,反轉(zhuǎn)錄試劑盒(美國Beyotime公司)、蘇木精-伊紅(HE)染色試劑盒(北京索萊寶公司)、兔多克隆抗NOX4抗體(美國Abcam公司),HRP標記山羊抗兔二抗(北京中杉金橋生物公司),SDS-PAGE凝膠配置試劑盒(上海碧云天公司),ECL發(fā)光試劑盒(美國Thermo公司)。
儀器:超聲破碎儀(上海歐河公司),垂直電泳槽(美國Bio-Rad公司),穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀(北京六一公司),聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)擴增儀(美國Bio-Rad公司)。由沈陽萬類公司設(shè)計PCR引物,引物序列見表1。
表1 引物序列
注:TGF-β1為轉(zhuǎn)化生長因子-β1,CTGF為結(jié)締組織生長因子
參考文獻進行大鼠NAFLD模型制備[6]。將50只大鼠隨機分為對照組10只、高脂飼料組40只。對照組給予基礎(chǔ)飼料飼養(yǎng)8周,高脂飼料組給予高脂飼料(70.5%基礎(chǔ)飼料、20%食用豬油、7%蛋黃粉、2%膽固醇、0.5%膽酸鈉豬油)飼養(yǎng)8周。從高脂飼料組40只大鼠中隨機處死10只,取出肝臟制作病理切片,觀察肝臟病理改變以判斷是否造模成功。將造模成功的30只大鼠隨機分為模型組、空載體組、過表達H19組;對照組大鼠繼續(xù)給予基礎(chǔ)飼料飼養(yǎng)4周,模型組、空載體組、過表達H19組大鼠給予高脂飼料飼養(yǎng)4周,其中空載體組大鼠在第9、10、11周第1天于尾靜脈注射空載體200 μL,過表達H19組大鼠在相同時間點于尾靜脈注射lncRNA H19慢病毒載體200 μL,4組大鼠在實驗12周后全部處死。每只大鼠予測體質(zhì)量并計算肝臟指數(shù)(肝臟指數(shù)=肝臟濕重/大鼠體質(zhì)量×100%)。
實驗第12周末,大鼠禁食12 h后測體質(zhì)量。給予各組大鼠腹腔注射1 mL/kg戊巴比妥鈉麻醉,剪開腹腔,于心臟取血5 mL,3 000 r/min,離心15 min。取上清,置于-20 ℃冰箱待用。將血清從冰箱中取出,用適量Assay Buffer稀釋。用ELISA試劑盒檢測各組血清ALT、AST、TC、TG水平。用生物化學(xué)試劑盒測定氧化應(yīng)激指標。
大鼠麻醉方法同上。剪開腹腔,用0.9%氯化鈉溶液進行心臟灌流,排空大鼠體內(nèi)血液,迅速取出肝組織,并從肝右小葉取黃豆大小的組織塊,放入4 %多聚甲醛中固定24 h,再用乙醇脫水,二甲苯透明,石蠟包埋,切片。組織切片經(jīng)脫蠟,水化,HE染色,中性樹膠封片,置于顯微鏡下觀察。
肝組織的采集方法同上,取出肝臟進行總RNA提取,使用Trizol法對研磨后的組織抽提RNA,利用紫外分光光度儀檢測純度。cDNA反轉(zhuǎn)錄合成階段,取1 μg RNA,加入反應(yīng)試劑,以終體積20 μL的體系進行cDNA合成,65 ℃ 15 min,43 ℃ 20 min,70 ℃ 15 min。RT-PCR擴增階段,采用Bio-Rad PCR儀進行,94 ℃ 15 min,1個循環(huán);95 ℃ 15 s,65 ℃ 1 min,45個循環(huán)。采用2-ΔΔCt法計算目的RNA的相對表達量,內(nèi)參是β-actin。
裂解液裂解肝組織,低溫離心30 min以提取總蛋白,BCA法計算樣本總蛋白水平,加入適量上樣緩沖液,沸水浴7 min使蛋白充分變性,電泳,完畢后轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。兔多克隆抗NOX4抗體(1∶200)4 ℃孵育過夜,HRP標記山羊抗兔IgG(1∶1 000)室溫孵育1 h,ECL發(fā)光液避光顯色。利用Image-pro plus 5.0軟件進行條帶掃描半定量,NOX4蛋白相對表達量=目的蛋白條帶灰度值/內(nèi)參蛋白條帶灰度值×100%。
模型組、空載體組、過表達H19組的體質(zhì)量、肝臟濕重及肝臟指數(shù)均高于對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05)。空載體組與模型組的體質(zhì)量、肝臟濕重及肝臟指數(shù)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與模型組、空載體組相比,過表達H19組的體質(zhì)量、肝臟濕重及肝臟指數(shù)降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表2。
表2 各組的體質(zhì)量、肝臟濕重及肝臟指數(shù)比較()
注:與對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與空載體組比較,cP<0.05
模型組、空載體組、過表達H19組的血清ALT、AST、TC、TG水平均高于對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05)??蛰d體組與模型組的血清ALT、AST、TC、TG水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。與模型組、空載體組相比,過表達H19組的血清ALT、AST、TC、TG水平明顯降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖1。
注:與對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與空載體組比較,cP<0.05
圖1各組血清ALT、AST、TC、TG水平比較AALTBASTCTCDTG
光學(xué)顯微鏡下,對照組的肝小葉結(jié)構(gòu)保持完整,肝索放射性分布,界板完整,中央靜脈清晰可見,肝細胞幾乎無脂肪變性,小葉內(nèi)幾乎無炎性反應(yīng),肝細胞也無氣球樣病變。模型組、空載體組的肝組織中脂滴增多,大泡形和小泡形均存在,明顯可見氣球樣變,門管區(qū)出現(xiàn)炎性細胞,腺泡內(nèi)可見點狀肝細胞壞死,并有約50%的大鼠出現(xiàn)肝細胞纖維化。過表達H19組的肝細胞病變明顯減少,可見小葉內(nèi)部分匯管區(qū)炎性反應(yīng),點狀肝細胞壞死,無氣球樣病變。見圖2。
圖2 各組的肝臟病理改變 HE染色 ×200 A 對照組 B 模型組 C 空載體組 D 過表達H19組
與對照組相比,模型組、空載體組的肝組織中SOD、GSH水平降低、MDA水平升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)??蛰d體組與模型組的肝組織中SOD、GSH、MDA水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。與模型組、空載體組相比,過表達H19組的肝組織中SOD、GSH水平升高、MDA水平降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表3。
表3 各組的肝組織中SOD、GSH和MDA水平比較()
注:與對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與空載體組比較,cP<0.05
與對照組相比,模型組、空載體組的肝組織中NOX4 mRNA、TGF-β1 mRNA及CTGF mRNA的表達水平升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)??蛰d體組與模型組的肝組織中NOX4 mRNA、TGF-β1 mRNA及CTGF mRNA的表達水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。與模型組、空載體組相比,過表達H19組肝組織中NOX4 mRNA、TGF-β1 mRNA及CTGF mRNA的表達水平降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表4。
表4 各組大鼠肝組織中NOX4 mRNA、TGF-β1 mRNA及CTGF mRNA的表達水平比較()
注:與對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與空載體組比較,cP<0.05
對照組、模型組、空載體組、過表達H19組的肝組織中NOX4蛋白相對表達量分別為(0.09±0.09)%、(0.33±0.12)%、(0.28±0.11)%、(0.15±0.09)%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=11.64,P<0.001)。與對照組比較,模型組、空載體組大鼠肝組織中NOX4蛋白表達水平升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)??蛰d體組與模型組的肝組織中NOX4蛋白表達水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。過表達H19組的肝組織中NOX4蛋白表達水平低于模型組、空載體組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖3。
圖3 各組肝組織中NOX4蛋白的表達水平比較
NAFLD主要是由TG在肝臟內(nèi)過度貯積而引起的疾病。目前認為NAFLD的發(fā)生、發(fā)展與多種因素相關(guān),如氧化應(yīng)激、肥胖、糖尿病、脂質(zhì)代謝異常、胰島素抵抗以及低度炎性反應(yīng)等[7]。肝臟是對氧化應(yīng)激和脂質(zhì)過氧化損傷非常敏感的器官,氧化應(yīng)激是NAFLD中肝纖維化的關(guān)鍵因素[8]。氧化應(yīng)激產(chǎn)生的活性氧簇(ROS)不但可損傷肝細胞,還可通過激活氧化應(yīng)激與脂質(zhì)過氧化通路進一步加重肝細胞損傷,從而引發(fā)肝臟炎性反應(yīng)甚至肝硬化、肝細胞癌[9]。
人體存在很多抗氧化系統(tǒng),如GSH、SOD、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)等[10-13]。研究發(fā)現(xiàn),在NAFLD大鼠模型中,抗氧化物SOD、CATSP 均顯著下降,表現(xiàn)為氧化應(yīng)激狀態(tài),并可通過抑制NOX4蛋白的表達進行調(diào)控,抑制肝纖維化的發(fā)生、發(fā)展[14]。研究發(fā)現(xiàn),NOX4的表達受到lncRNA H19的抑制,過表達的lncRNA H19通過對NOX4的抑制而延緩了肝纖維化的發(fā)生、發(fā)展[15]。本實驗建立了NAFLD大鼠模型,從各組大鼠的體質(zhì)量、肝臟濕重、肝臟指數(shù)、病理以及血清ALT、AST、TC、TG可見,與對照組相比,模型組、空載體組、過表達H19組均有不同程度的肝臟病變。而與模型組、空載體組相比,過表達H19組的上述指標均有不同程度的預(yù)后改善,提示過表達lncRNA H19可能對高脂飲食所致的NAFLD大鼠的肝損傷有一定的保護作用。本實驗還檢測了各組大鼠肝組織中氧化應(yīng)激相關(guān)指標SOD、GSH、MDA水平以及NOX4 mRNA、TGF-β1 mRNA、CTGF mRNA的表達水平,結(jié)果顯示與對照組相比,模型組、空載體組、過表達H19組的上述指標均有不同程度的改變,而與模型組、空載體組相比,過表達H19組的上述氧化應(yīng)激指標則有明顯改善。本研究進一步驗證了NOX4蛋白的表達情況,也得到了同樣的結(jié)果。這些結(jié)果提示,NAFLD大鼠的肝損傷伴隨著氧化應(yīng)激的改變,并且氧化應(yīng)激可能對NAFLD大鼠的肝損傷有至關(guān)重要的促進作用;過表達lncRNA H19可能抑制了NOX4的表達,進而抑制了NOX4對氧化應(yīng)激的激活作用,從而起到對高脂飲食誘導(dǎo)的NAFLD大鼠肝損傷的保護作用。今后將進一步驗證過表達lncRNA H19對其他參與NAFLD發(fā)生、發(fā)展的信號通路的作用,以彌補本研究的局限。
綜上所述,過表達lncRNA H19可通過抑制NOX4的表達抵抗氧化應(yīng)激的激活,進而對高脂飲食誘導(dǎo)的NAFLD大鼠的肝損傷起保護作用。lncRNA H19可能是NAFLD的新靶點,今后有待對其機制進行深入探討。