劉 奇 張 智
(東北林業(yè)大學(xué)林學(xué)院,哈爾濱 150040)
玉米肽(Corn peptide,CP)是一種具有特定空間結(jié)構(gòu)和功能活性的短肽聚合物[1,2]。研究表明CP具有抑制血管緊張素轉(zhuǎn)換酶[3,4]、降低血壓[5]、促進乙醇代謝、醒酒護肝[6]以及抗氧化[7-10]、緩解疲勞[11]、抗癌[12]等功能。張智[13]等以玉米肽為參照研究玉米肽-鋅(CP-Zn)螯合物的結(jié)構(gòu)表征和體內(nèi)抗氧化活性變化,結(jié)果表明CP-Zn的抗氧化活性優(yōu)于CP,且能顯著降低小鼠血清、肝臟中丙二醛含量,提高超氧化物歧化酶的活力。香菇多糖是一種新資源功能活性物質(zhì),研究表明香菇多糖具有抗氧化、抗腫瘤[14]提高機體免疫功能等生物活性[15-18],若能利用香菇多糖結(jié)合玉米肽制成具有結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,功能活性較強的玉米肽-香菇多糖螯合物,并將其應(yīng)用于功能食品的開發(fā)中將有廣泛發(fā)展前景。
因此,本研究利用玉米肽-香菇多糖螯合物(CPG)進行動物實驗及細胞實驗。以CP及香菇多糖(G)為參照,將健康小鼠分為正常對照組;玉米肽低、中、高劑量組;玉米肽-香菇多糖低、中、高劑量組;香菇多糖低、中、高劑量組,通過小鼠生長性能(體重增長率、免疫器官指數(shù))、體液免疫能力(巨噬細胞增殖能力、巨噬細胞吞噬能力、免疫球蛋白水平)、細胞免疫能力(淋巴細胞增殖能力、淋巴細胞周期)等方面進行分析其免疫功能活性,為CPG的應(yīng)用及玉米加工副產(chǎn)物綜合利用等提供理論基礎(chǔ)。
雄性SPF小鼠(20±2)g 6~8 周齡,合格證號SCXK黑2013-004:黑龍江省中醫(yī)藥大學(xué)藥物評價中心;玉米肽(純度87.83%)、香菇多糖(純度89.62%)。
1.1.1 實驗試劑
WST-1 細胞培養(yǎng)液,印度墨汁(生物染色劑),DNFB(優(yōu)級純),Na2CO3(分析純),PBS緩沖液,碘化丙啶,RNA 酶,多酚,胰酶,免疫球蛋白IgA、IgG試劑盒。
HF-90 CO2恒溫培養(yǎng)箱;AE31倒置顯微鏡;SW-CJ-IF型超凈工作臺;MEK-7222血細胞分析儀;MULTISKAN MK3型酶標(biāo)儀;LEICA RM2235石蠟切片機;101-1型電熱鼓風(fēng)恒溫干燥箱;BD-326型臥式冷凍冰柜。
1.3.1 玉米肽-香菇多糖修飾產(chǎn)物的制備
將CP(通過Sephadex G-25分級得到肽段,平均分子質(zhì)量為572 u,肽質(zhì)量分數(shù)80.01%)配制成底物濃度為4%的溶液,調(diào)節(jié)pH值至7,取50 mL玉米肽溶液,按投料比為8∶1的比例加入香菇多糖(香菇多糖平均分子質(zhì)量1 029 D,主要成分為鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖等)供體,再次調(diào)節(jié)pH值至7,60 ℃水浴40 min,冷卻后4 500r/min離心10 min;流水透析24 h,冷凍干燥得到最終修飾產(chǎn)物玉米肽-香菇多糖(CPG)[15,19]。經(jīng)檢測,組分中氨基酸總量為70.25%(主要成分為谷氨酸、亮氨酸、脯氨酸、天冬氨酸、丙氨酸、纈氨酸、苯丙氨酸、異亮氨酸等),玉米肽-香菇多糖螯合率為69.69%,CPG質(zhì)量分數(shù)為60.17%。
1.3.2 動物實驗分組及給藥
適應(yīng)性飼養(yǎng)7 d后,稱量小鼠體重,將小鼠按照體重指標(biāo)隨機分為10組,每組12只,采用基礎(chǔ)飼料飼喂,自由飲水,給藥劑量每只0.2 mL,具體給藥方法如下表。根據(jù)體重差異進行每組每天灌胃給藥,連續(xù)灌胃給藥30 d后處死,每組3次重復(fù)。給藥劑量根據(jù)《保健食品功能學(xué)評價程序和檢驗方法-2003》擬定[19],動物飼養(yǎng)和處理遵循中國實驗動物科學(xué)協(xié)會實驗動物福利和倫理委員會(CALAS)的規(guī)定。
表1 功能實驗分組
1.3.3 小鼠生長性能的測定
停藥后隔日處死小鼠,稱取小鼠體重、脾臟、胸腺分別脾臟指數(shù)和胸腺指數(shù)。
脾臟指數(shù)=脾臟(g)/體重(g)×100%
(1)
胸腺指數(shù)=胸腺(g)/體重(g)×100%
(2)
1.3.4 小鼠體液免疫能力的測定1.3.4.1 小鼠巨噬細胞增殖能力的測定[20]
末次給藥1 h后處死動物,75%酒精浸泡5 min,無菌環(huán)境中取出腹腔巨噬細胞懸液,1 000 r/min離心5 min,取細胞沉淀,加4 mL紅細胞裂解液吹打均勻,室溫靜置5 min后,1 000 r/min離心5 min,取沉淀采用4 mL PBS洗滌3遍,重懸中含10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2 h,然后按5×106/孔接種于6孔板進行培養(yǎng)。將處于對數(shù)生長期的巨噬細胞按照1×104/孔密度接種于96孔板,按照實驗分組進行培養(yǎng)12 h后,采用WST-1法檢測細胞增殖,將各組細胞加入20 μL WST-1溶液,置于細胞培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)孵育2 h后,將96孔板置于搖床上搖動1 min,以充分混勻待檢測體系,以酶標(biāo)儀波長630 nm作為參考波長,在波長450 nm處測定吸光值。
1.3.4.2 小鼠吞噬能力的測定[20]
按每10 g體重0.1 mL的劑量向小鼠尾靜脈注射印度墨汁(10 mg/kg),注射開始時計時,分別在2 min和10 min時取眼血20 μL于3 mL0.1%的Na2CO3溶液中,在600 nm處測定吸光值(OD),以0.1%的Na2CO3溶液作為空白對照。將小鼠脫臼處死,取肝臟及脾臟并分別稱重,按公式計算吞噬指數(shù)a。
(3)
式中:a為吞噬指數(shù);m0為小鼠體重/g;m1為小鼠肝重/g;m2為小鼠脾重/g;OD1為2 min時吸光值;OD2為10 min時吸光值。
1.3.4.3 小鼠免疫球蛋白水平的測定
免疫球蛋白測定參照IgA、IgG試劑盒說明。
1.3.5 小鼠細胞免疫能力的測定
1.3.5.1 小鼠淋巴細胞增殖能力的測定
同1.3.4.1操作。
1.3.5.2 小鼠淋巴細胞周期的測定[21]
染色液配制:用0.01 mol/L pH 7.2的PBS緩沖液溶解1.00 mg 碘化丙啶(PI)和1.00 mg RNA 酶,配制成含100 μg/mL PI和100 μg/mL Rnase A的染色液,在-20 ℃下避光保存。
細胞周期檢測:無菌條件下取出小鼠脾臟按照細胞常規(guī)培養(yǎng)方法,用不同濃度的多酚處理后,用0.25%胰酶消化并將脾臟充分吹打成單個細胞懸液,將細胞收集于1.5 mL無菌離心管中,4 ℃ 以2 000 r/min離心5 min,用PBS緩沖液將細胞洗滌2次,離心5 min后,棄去PBS溶液,加入預(yù)冷的75%乙醇2 mL,重懸細胞,放入4 ℃冰箱內(nèi)固定24 h。
上機前將固定細胞以1 000 r/min的轉(zhuǎn)速離心5 min,棄去固定液,加入pH 7.2的PBS緩沖溶液重懸細胞,離心5 min,棄PBS緩沖液,加入含100μg/mL PI和100 μg/mL Rnase A的染色液,4 ℃避光染色30 min后,使細胞分散后于74 μm篩網(wǎng)過濾,上流式細胞儀檢測。
1.3.6 數(shù)據(jù)處理與分析
采用SPSS軟件對數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析,用Excel軟件進行繪圖處理。
2.1.1 CPG對體重指數(shù)的影響
CP、CPG、G對小鼠體重的影響見圖1。與正常組相比,CP-H和CPG-M、CPG-H均能顯著提高小鼠體重水平。這表明CPG和CP均能提高小鼠的體重增長率,但CP需要在高劑量的水平下才能達到顯著效果。
注:不同字母表示差異顯著P<0.05,下同。圖1 CP、CPG、G對小鼠體重的影響
2.1.2 CPG對免疫器官指數(shù)的影響
胸腺是重要的中樞免疫器官,其主要功能是產(chǎn)生T淋巴細胞和分泌胸腺素,參與細胞免疫;脾臟是外周免疫器官,具有豐富的淋巴細胞和巨噬細胞,但B淋巴細胞比例較大,與體液免疫關(guān)系更為密切,因此胸腺、脾臟是機體重要的免疫器官,而其臟器指數(shù)可在一定程度上反映機體免疫功能的強弱。由圖2可知,與空白組相比,CP-M、CP-H和CPG-L、CPG-M、CPG-H、G-M、G-H組均能顯著(P<0.05)提高免疫器官指數(shù),且CPG較CP組的效果更加明顯。CP、CPG、G均能顯著提高小鼠的生長性能指數(shù),且CPG較CP組效果更加顯著。
圖2 CP、CPG、G對小鼠免疫器官指數(shù)的影響
2.2.1 CPG對小鼠巨噬細胞增殖能力的影響
CP、CPG、G對小鼠巨噬細胞增殖能力的影響見圖3。細胞增殖指細胞經(jīng)過DNA復(fù)制、RNA轉(zhuǎn)錄和蛋白質(zhì)合成等反應(yīng)而進行的分裂過程,是生命體的重要特征。RAW264.7 細胞作為巨噬細胞的一種,當(dāng)病原體入侵或自身組織出現(xiàn)病理性改變時,它能激活機體的免疫系統(tǒng),通過細胞內(nèi)殺傷作用消滅抗原[20]。由圖3可知,與正常組相比,CP-M、CP-H和CPG-L、CPG-M、CPG-H,G-M、G-H均能顯著(P<0.05)提高小鼠巨噬細胞的增殖能力,且CPG的效果要優(yōu)于CP和G。
圖3 CP、CPG、G對小鼠巨噬細胞增殖能力的影響
2.2.2 CPG對小鼠吞噬能力的影響
CP、CPG、G對小鼠吞噬能力的影響見圖4。吞噬能力指巨噬細胞通過吞噬侵入的病原體及體內(nèi)衰老、畸變的細胞而提高機體的免疫能力。在小鼠碳廓清實驗中,體內(nèi)碳顆粒被清除的速率與血碳濃度呈指數(shù)關(guān)系,且動物的脾臟、肝影響機體的吞噬速率,其吞噬能力的大小可以間接反映機體巨噬細胞的吞噬能力,可以在一定程度上體現(xiàn)出機體的非特異性體液免疫水平[22]。由圖4可知,與正常組相比,CP-M、CP-H和CPG-L、CPG-M、CPG-H、G-H劑量組均能顯著(P<0.05)提高小鼠的吞噬能力,且CPG的效果要優(yōu)于CP和G-H。這表明CP、CPG、G均能顯著提高小鼠巨噬細胞的增殖能力和吞噬能力,且和劑量呈現(xiàn)正相關(guān),從而發(fā)揮提高機體體液免疫的生物學(xué)功能。
圖4 CP、CPG、G對小鼠吞噬指數(shù)的影響
2.2.3 CPG對小鼠免疫球蛋白水平的影響
CP、CPG、G對小鼠免疫球蛋白水平的影響見圖5。免疫球蛋白是指具有抗體活性或化學(xué)結(jié)構(gòu)上與抗體相似的球蛋白,一般存在于血液及某些細胞的表面上,血清免疫球蛋白的測定是檢查體液免疫功能最常用的方法。IgG是血清主要的抗體成分,約占血清Ig的75%,其主要在機體免疫中起保護作用[23]。IgA分血清型和分泌型兩種,血清型IgA可介導(dǎo)調(diào)理吞噬ADCC作用;分泌型IgA(SIgA)是機體粘膜防御系統(tǒng)的主要成分,它能抑制微生物在呼吸道上皮附著,減緩病毒繁殖,是防止病原體入侵機體的第一道防線。由圖5可知,與正常組相比,CP-H和CPG-L、CPG-M、CPG-H顯著(P<0.05)提高機體免疫球蛋白IgA水平;CP-M、CP-H和CPG-L、CPG-M、CPG-H、G-H均能顯著(P<0.05)提高機體免疫球蛋白IgG。
圖5 CP、CPG、G對小鼠體液免疫功能的影響
2.3.1 CPG對小鼠淋巴細胞增殖能力的影響
CP、CPG、G對小鼠淋巴細胞增殖能力的影響見圖6。T淋巴細胞在機體細胞免疫系統(tǒng)中發(fā)揮著關(guān)鍵作用,當(dāng)外界應(yīng)激源和腫瘤細胞抗原接觸T細胞時,會刺激T細胞增殖、分化成效應(yīng)T細胞,產(chǎn)生細胞免疫和抗腫瘤反應(yīng)[24],因此,淋巴細胞增殖實驗是反映機體免疫狀態(tài)的一種實驗。由圖6可知,與正常組相比,CP-H和CPG-M、CPG-H、G-H能顯著(P<0.05)提高小鼠巨噬細胞的增殖能力。這表明CP、CPG、G都能促進機體的淋巴細胞增殖能力進而達到提高機體細胞免疫水平。
圖6 CP、CPG、G對小鼠淋巴細胞增殖能力的影響
2.3.2 CPG對小鼠淋巴細胞周期的影響
CP、CPG、G對小鼠淋巴細胞周期的影響見圖7。淋巴細胞增殖是機體發(fā)揮細胞免疫的重要途徑,當(dāng)淋巴細胞與抗原或有絲分裂因子(簡稱為絲裂原)在體外共同培養(yǎng)轉(zhuǎn)化為淋巴母細胞,并且分裂增殖生成更多的淋巴細胞進行發(fā)揮細胞免疫[25]。結(jié)合前期實驗發(fā)現(xiàn),CP-H和CPG-H、G-H高劑量組具有最佳的生物活性能,因此,此處主要采用流式細胞儀檢測空白對照組、CP-H高劑量組與CPG-H和G-H的脾淋巴細胞分布情況。識別DNA損傷的關(guān)鍵是G1、S期和G2/M等周期檢查點。由圖7可知,空白對照組、CP-H劑量組與CPG-H、G-H劑量組的G0/G1期比例分別為92.42%、88.47%、87.88%、89.56%;S期比例分別為2.77%、4.13%、4.41%、3.31%;G2/M比例分別為3.18%、7.99%、9.70%、4.98%。CP-H劑量組、CPG-H、G-H劑量組與空白對照組相比G1分別減少了3.95%、4.54%、2.48%;S期分別增加了1.36%、1.64%、1.15%,這說明CPG較CP、G更能促進細胞從G1期向S期轉(zhuǎn)化,有利于DNA的合成,提高小鼠脾淋巴細胞增殖分化能力。
圖7 流式細胞術(shù)檢測脾淋巴細胞周期分布
利用玉米肽-香菇多糖螯合物(CPG)進行小鼠體內(nèi)及細胞實驗,結(jié)果表明:CP、CPG、G能顯著提高小鼠生長性能,且CPG組較CP和G組能顯著提高免疫器官指數(shù),對免疫器官發(fā)育的促進作用要優(yōu)于CP;CP高劑量組、CPG低中高劑量組、G高劑量組均能顯著(P<0.05)提高小鼠體液免疫能力,增強小鼠巨噬細胞的增殖能力、吞噬能力,提高免疫球蛋白IgA和IgG水平,這表明CPG對機體體液免疫能力的提升作用要優(yōu)于CP和G;小鼠細胞免疫能力方面,CP和CPG均能促進小鼠淋巴細胞增殖能力,且CPG較CP更能促進有絲分裂,不影響阻滯細胞,促進細胞從G1期向S期轉(zhuǎn)化,有利于DNA的合成,提高小鼠脾淋巴細胞增殖分化能力。研究表明CPG對機體的免疫增強效果要優(yōu)于CP,其可以通過促進小鼠機體生長性能、體液免疫能力水平、細胞免疫能力水平發(fā)揮其免疫生物學(xué)活性。