于冬冬 趙丹陽 楊芳 楊鶇祥 楊關(guān)林*
1.遼寧中醫(yī)藥大學,遼寧 沈陽 110847 2.沈陽市第一人民醫(yī)院,遼寧 沈陽 110041 3.遼寧中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院,遼寧 沈陽 110032
絕經(jīng)后骨質(zhì)疏松癥(postmenopausal osteoporosis,PMOP)發(fā)病機理復(fù)雜,常規(guī)藥物長期服用依從性差,新藥價格昂貴,難以普及[1]。中醫(yī)治療PMOP歷史悠久,更能從整體上把握,從而辨證施治,擁有更廣闊的前景。
PMOP主要是由于雌激素的撤退導致的骨量的減少、骨的脆性增加,其發(fā)病機制與成骨和破骨的不平衡密切相關(guān),即成骨細胞的成骨分化能力減退,破骨細胞的活性增強[2]。因此,促進骨形成的同時抑制骨吸收仍然是目前防治PMOP的重點所在[3]。
《太平圣惠方》中的鹿角膠丸具有防治骨質(zhì)疏松癥的藥理學作用[4]。方中鹿角膠平補腎氣,杜仲、牛膝、菟絲子補益腎精,肉桂健補脾胃,滋養(yǎng)后天生化之源,熟地以養(yǎng)血,共起填精益氣之功效,但鹿角膠丸對PMOP是否具有防治作用目前還沒有研究。本研究旨在探討鹿角膠丸對PMOP的防治效果及潛在機制,為臨床應(yīng)用中藥防治PMOP提供實驗依據(jù)。
1.1.1實驗動物:健康SPF 級雌性SD 大鼠80只,3個月月齡,體質(zhì)量(300±10) g,購自遼寧長生生物技術(shù)有限公司[許可證號 SCXK(遼)2015-0001]。
1.1.2藥物及試劑:(1)實驗藥物。中藥復(fù)方鹿角膠丸均在遼寧中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院購買,組成:由鹿角膠3 g,附子10 g,肉桂5 g,杜仲10 g,山茱萸10 g,菟絲子12 g,熟地黃10 g,肉蓯蓉10 g,五味子5 g,牛膝10 g,巴戟天5 g。將藥制備為水煎劑,生藥量為1 g/mL。仙靈骨葆膠囊(貴州同濟堂制藥,國藥準字號:Z20025337);福善美(阿侖膦酸鈉,默沙東公司,進口藥品注冊證號H20130241)。(2)實驗試劑。蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒(碧云天公司,中國);Human β-CTX ELISA檢測試劑盒(PHICON Biotech公司,中國);Human P1NP ELISA檢測試劑盒(PHICON Biotech公司,中國);SABC免疫組化染色試劑盒(武漢博士德,武漢);DAB 顯色試劑盒(武漢博士德,武漢);Runx 2(Abcom,美國);Cathepsin K(Abcom,美國)。
1.1.3實驗儀器:Micro CT(比利時,Bruker SkyScan 1174);小動物輻照儀(美國,X-RAD 320);顯微鏡(日本,OLYMPUS);AMR-100酶標儀(中國,杭州奧盛儀器)。
1.2.1動物分組、造模、給藥:(1)分組。用電子天平先稱量大鼠的體重范圍,按隨機數(shù)字表法分為8組,各組10只。A組:正常組(Control組);B組:假手術(shù)組(Sham);C組:模型空白組(去卵巢組,OVX組);D組:中藥復(fù)方組:高、中、低3個劑量組(鹿角膠丸組,LJJW-H、LJJW-M、LJJW-L 組);E組:中藥對照組(仙靈骨葆組,XLGB組);F組:西藥對照組(福善美組,F(xiàn)SM組)。(2)去卵巢大鼠模型(ovariectomized rat model,OVX)的建立、取血清及骨組織。動物的飼養(yǎng)、OVX模型的建立按照課題組前期的實驗方法[5]。末次灌胃后,經(jīng)24 h禁食,將大鼠麻醉成功后,逐步顯露腹主動脈及其分叉,緩慢抽吸腹主動脈內(nèi)血液注入采血管內(nèi),離心取上清液,分裝1.5 mL EP管內(nèi),凍存?zhèn)溆?。剔出雙側(cè)股骨,醫(yī)用紗布包裹,外包錫紙,-70 ℃冰箱凍存,待測骨密度。(3)給藥劑量與方法。大鼠等效劑量按成人用藥量的6.3倍計算(成人體質(zhì)量按70 kg計算)。給藥容積:1 mL/100 g體質(zhì)量。Control、Sham、OVX組給予等體積的0.9%氯化鈉溶液;中藥復(fù)方組予鹿角膠丸水煎劑;中藥對照組用仙靈骨葆膠囊水溶液;西藥對照組用福善美水溶液,調(diào)成1 g/mL的藥物溶液。造模開始后給藥,每日上午、下午各灌胃給藥1次,連續(xù)9周。每周稱大鼠體質(zhì)量1次,根據(jù)其變化調(diào)整給藥劑量。
1.2.2DEXA、Micro-CT、HE染色檢測骨密度及骨結(jié)構(gòu):(1)使用DEXA骨密度檢測儀及系統(tǒng)自帶骨密度分析軟件測定大鼠的全身、脊柱及下肢的BMD (g/cm2);(2)將股骨標本置于10%福爾馬林中固定24 h 后進行micro-CT 掃描。對所有掃描圖片進行3D重建,并使用系統(tǒng)分析軟件計算松質(zhì)骨的骨體積分數(shù)(BV/TV)、結(jié)構(gòu)模式指數(shù)(structural mode index,SMI)、骨小梁數(shù)量(Tb.N)及BMD(Tb.Sp)[6];(3)骨組織脫鈣、石蠟包埋、切片、脫蠟,蘇木素染色液染色,伊紅復(fù)染,二甲苯透明、中性樹膠封片,常溫晾干,顯微鏡下拍片并保存。
1.2.3ELISA法檢測骨代謝指標:β-CTX、PINP試劑盒,放置恢復(fù)室溫,按照說明書進行分組加樣,37 ℃溫育箱中避光、緩慢水平均勻搖晃、溫浴60 min,孔內(nèi)均加滿洗滌液,放置30 min后棄掉。加試劑盒內(nèi)A、B液,輕輕搖晃混勻顯色,加入終止液50 μL,終止試劑反應(yīng)。最后測定吸光度,450 nm波長測量吸光度(OD值)。繪制標準曲線的回歸方程,計算出β-CTX、PINP的濃度。
1.2.4骨組織免疫組化、Western Blot測定相關(guān)蛋白表達:(1)骨組織切片脫蠟、抗原修復(fù)、血清封閉、一抗孵育過夜、二抗標記,DAB顯色液,顯微鏡下觀察,陽性信號為棕黃色或棕褐色,蘇木素復(fù)染、固定封片及檢測;(2)提取骨組織蛋白、上樣、轉(zhuǎn)膜、封閉、一抗孵育過夜、辣根過氧化物酶(HRP)標記二抗孵育、ECL發(fā)光成像,Image J軟件測定平均灰度值。
采用SPSS 13.0軟件進行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差表示,組間比較采用ANOVA方法,若滿足正態(tài)分布,但不滿足方差齊性條件,采用配對t檢驗;若數(shù)據(jù)不符合正態(tài)分布,采用秩和檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
雙能X線檢測各組大鼠的骨密度(圖1 A),結(jié)果顯示,Control、Sham組的骨密度為(0.25±0.01) g/cm2、(0.26±0.01) g/cm2(Control組圖中未顯示),OVX組骨密度為(0.18±0.01) g/cm2,鹿角膠丸低劑量組、中劑量組、高劑量組分別是(0.20±0.01) g/cm2、(0.23±0.02) g/cm2、(0.21±0.02) g/cm2(圖中顯示LJJW-M組),XLGB組為(0.21±0.01) g/cm2,F(xiàn)SM組為(0.22±0.03) g/cm2(圖中未顯示)。相比于Sham組,OVX組大鼠的BMD明顯降低(P<0.05)(圖1B)。相對于OVX組,LJJW-H、LJJW-M、LJJW-L、XLGB、FSM組的骨密度均有改善,說明各個處理組均有提高絕經(jīng)后大鼠骨密度的藥理學作用,但作用效果不盡相同,其中以LJJW-M組的骨密度提高最明顯(P<0.05),其次是FSM組(P<0.05),LJJW-H和XLGB組的提高骨密度的效果相似,LJJW-L的骨密度改善效果最差,結(jié)果提示鹿角膠丸具有提高去卵巢大鼠BMD的藥效學作用。
圖1 鹿角膠丸提高OVX大鼠的骨密度Fig.1 Improvement of bone mineral density in OVX rats with deer horn glue pill注:與OVX相比,※P<0.05;與Sham組相比,△P<0.05。
HE染色檢測各組骨組織結(jié)構(gòu)的改變,Sham組大鼠骨小梁結(jié)構(gòu)完整、無斷裂,骨小梁形態(tài)排列緊密、所占骨面積的比例大,骨髓腔比例相對小(圖2)。OVX組骨小梁形態(tài)破壞明顯、出現(xiàn)明顯斷裂,骨小梁排列紊亂,髓腔空洞較多,骨小梁面積百分比(Tb.Ar%)明顯下降(P<0.05,與Sham組比較)。相對于模型OVX組,LJJW-H、LJJW-M、LJJW-L、XLGB、FSM組骨小梁含量明顯增多、增寬,骨小梁斷裂明顯減少,排列略整齊,髓腔減小。但是仍未有達到正常組及Sham組的標準。各藥物處理組中以其中LJJW-M組表現(xiàn)尤為明顯(P<0.05,與OVX組比較)。
圖2 HE染色檢測各組大鼠骨組織結(jié)構(gòu)的改變Fig.2 HE staining to detect the changes of bone tissue structure in each group注:與OVX相比,※P<0.05;與Sham組相比,△P<0.05。
2.3.1ELISA法測定大鼠血清中PINP含量:OVX組血清中PINP含量降低(P<0.05,與Sham組相比),表明大鼠骨代謝處于骨形成抑制的狀態(tài)(圖3)。LJJW各處理組的PINP值都高于OVX組,尤其以LJJW-M組升高的最明顯(P<0.01,與OVX組相比)。XLGB組亦能升高血清中PINP值(P<0.05,與OVX組相比)。FSM組對血清中的PINP值影響不明顯。
圖3 中藥復(fù)方鹿角膠丸提高OVX大鼠的PINP值Fig.3 Improvement of PINP value in OVX rats with deer horn glue pill注:與OVX相比,※P<0.05;與Sham組相比,△P<0.05。
2.3.2ELISA法測定大鼠血清中β-CTX含量:與Sham組相比,OVX組血清中β-CTX含量升高(P<0.05),LJJW各處理組的β-CTX值都低于Sham組(圖4)。與OVX組相比,P<0.05。
圖4 中藥復(fù)方鹿角膠丸降低OVX大鼠的β-CTX值Fig.4 Reduction of β-CTX in OVX rats with deer horn glue pill注:與OVX相比,※P<0.05;與Sham組相比,△P<0.05。
Micro-CT檢測大鼠股骨結(jié)構(gòu)的改變(圖5)。與Sham組相比,OVX組股骨Micro CT 指標的BMD、BV/TV和Tb.N分別降低了68.08%、71.89%和61.54%,而SMI上升39. 34%。LJJW-M給藥組明顯改善骨小梁的情況,骨小梁的數(shù)量明顯增多,破壞減少,相對于模型組來說,XLGB組的骨密度及骨小梁的情況也有所改善,但是改善的幅度及效果不如中藥處理組。與OVX相比,BMD值LJJW-M組P<0.01,XLGB組P<0.05。Tb.N值LJJW-M組P<0.05,XLGB組P<0.05。
圖5 中藥復(fù)方鹿角膠丸改善骨結(jié)構(gòu)Fig.5 Deer horn glue pill improves bone structure注:*:與OVX相比,LJJW-M組P<0.01,XLGB組P<0.05;△:與OVX相比,LJJW-M組P<0.05,XLGB組P<0.05。
2.5.1成骨相關(guān)蛋白Runx 2的表達:OVX大鼠予鹿角膠丸中藥復(fù)方(LJJW-M)干預(yù)12周后,OVX組Runx 2的表達明顯降低(P<0.05,與Sham組相比較)(圖6),而LJW-M處理組的Runx 2表達相對升高(P<0.05,與OVX組相比較),但是沒有恢復(fù)到對照組的水平,而XLGB組的Runx 2的表達與LJJW-M相似(P<0.05,與OVX組相比較)。
圖6 中藥復(fù)方鹿角膠丸促進Runx 2蛋白表達Fig.6 Promotion of the expression of Runx 2 protein with deer horn glue pill注:*:與OVX相比,LJJW-M組P<0.05,XLGB組P<0.05;△:與Sham相比,P<0.05。
2.5.2破骨相關(guān)蛋白Cathepsin K的表達:OVX大鼠予鹿角膠丸中藥復(fù)方(LJJW-M)干預(yù)12周后,與Sham組相比,OVX組的Cathepsin K表達明顯升高(P<0.01,與Sham組相比較)(圖7)。而LJW-M處理組的表達相對減低(P<0.01,與OVX組相比較),甚至低于普通的水平,而FSM組的Runx2的表達與LJJW-M相似(P<0.05,與OVX組相比較)。
圖7 鹿角膠丸抑制Cathepsin K蛋白表達Fig.7 Prohibition of the expression of Cathepsin K protein with deer horn glue pill注:*:與OVX相比,LJJW-M組P<0.01,XLGB組P<0.05;△:與Sham相比,P<0.01。
免疫組織化學法進一步檢測成骨相關(guān)通路蛋白Runx2的表達。結(jié)果顯示,對照組松質(zhì)內(nèi)骨細胞內(nèi)有一定的Runx 2的蛋白表達(棕色顆粒,箭頭所示)(圖8)。與Sham組比較,OVX組的Runx 2的蛋白表達明顯減少,鹿角膠丸中藥復(fù)方(LJJW-M)處理OVX大鼠一定時間(12周)后,Runx2的表達相對增多(P<0.01,與OVX組相比較),但是沒有恢復(fù)到對照組的水平,而XLGB組的Runx2的表達亦增加,但表達低于LJJW-M處理組(P<0.05,與OVX組相比較)。
圖8 鹿角膠丸促進Runx 2蛋白表達Fig.8 Promotion of the expression of Runx 2 protein with deer horn glue pill注:與OVX相比,*P<0.01;與OVX相比,△P<0.05。
PMOP主要是由于雌激素的撤退導致的骨量的減少、骨的脆性增加、骨折風險性增加的一種疾病,隨著人口的老齡化,該病的發(fā)病率及致殘致死率也在逐年提升[1-2]。
《黃帝內(nèi)經(jīng)》中記載:“腎者,主骨生髓”“腎主藏精”,補腎填精仍是治療PMOP的主要治則。研究發(fā)現(xiàn),在應(yīng)用鹿角膠丸對骨質(zhì)疏松模型大鼠干預(yù)的研究中,與對照組相比較鹿角膠丸能夠明顯增加骨密度,促進骨形成,抑制抑制骨吸收[4]。鹿角粉制成的顆粒具有補鈣,溫腎陽,強筋骨等功效[7]。
本研究對鹿角膠丸防治PMOP的藥理學作用及其潛在機制進行進一步研究發(fā)現(xiàn),鹿角膠丸能夠提OVX大鼠骨密度,其中以LJJW-M組的骨密度提高最明顯,結(jié)果提示鹿角膠丸具有提高去卵巢大鼠BMD的藥效學作用。隨后,應(yīng)用Micro-CT、HE染色檢測各組骨組織結(jié)構(gòu)的改變,模型組骨小梁形態(tài)破壞明顯、出現(xiàn)明顯斷裂,骨小梁排列紊亂,髓腔空洞較多。LJJW-M處理組骨小梁含量明顯增多、增寬,骨小梁斷裂明顯減少,排列略整齊,髓腔減小,LJJW-M組提高OVX大鼠BMD、BV/TV 和Tb.N,降低SMI值,說明鹿角膠丸具有改善骨結(jié)構(gòu)、增加骨強度的藥理學作用。
PMOP發(fā)生的過程中,血清中的相關(guān)股形成及骨吸收的檢測標記也隨之發(fā)生改變[8],LJJW各處理組的β-CTX值都低于Sham組,尤其以LJJW-M組降低的最明顯,說明鹿角膠丸能夠降低OVX大鼠血清中β-CTX水平、抑制骨吸收。模型組血清中PINP含量降低,LJJW各處理后PINP升高,說明LJJW能夠提高血清中PINP、促進骨形成。
Runx 2是骨形成重要的通路調(diào)節(jié)蛋白[9],OVX組的Runx2表達明顯降低,而LJW-M處理組的Runx 2表達相對升高,但是沒有恢復(fù)到正常水平。Cathepsin K是破骨細胞吸收活性的重要調(diào)節(jié)蛋白[10], Cathepsin K的表達在OVX組明顯升高,而LJW-M能夠抑制其表達,甚至低于對照水平。說明鹿角膠丸可能通過對成骨及破骨的雙重調(diào)節(jié),進而達到防治PMOP的目的。
本研究從動物體內(nèi)的角度探討鹿角膠丸對PMOP的防治效果及潛在的作用機制,發(fā)現(xiàn)鹿角膠丸具有防治PMOP的藥理學作用的同時,且可能通過調(diào)節(jié)成骨及破骨的雙重作用完成的,本研究豐富了中醫(yī)防治PMOP的科學內(nèi)涵,并為該藥應(yīng)用于臨床防治PMOP提供實驗依據(jù)。