孫雪蓮 楊楚童 胡亞楠 鄒顯花
摘要:扦插作為一種無性繁殖的重要技術(shù)被廣泛應(yīng)用于生產(chǎn)實踐中,然而目前一些優(yōu)良植物的扦插生根率低,制約著其扦插繁殖技術(shù)的長足發(fā)展,而探明植物的扦插生根調(diào)控機(jī)理是提高植物扦插生根率的關(guān)鍵。本文從插穗不定根發(fā)生的形態(tài)解剖學(xué)、生理學(xué)及分子學(xué)研究三方面對植物扦插生根機(jī)理的研究進(jìn)行綜述。結(jié)合國內(nèi)外研究現(xiàn)狀,從解剖學(xué)角度對不定根形成的進(jìn)程和機(jī)理進(jìn)行說明,分析了插穗內(nèi)含物質(zhì)與生根之間的關(guān)系,闡明了不定根形成和發(fā)育的關(guān)鍵分子調(diào)控機(jī)理。目前植物的扦插生根機(jī)理研究已從解剖學(xué)、生理學(xué)深入到分子學(xué)水平,基于分子生物學(xué)的發(fā)展趨勢,提出利用基因工程手段提升植物扦插繁殖技術(shù),以實現(xiàn)植物扦插繁殖的技術(shù)創(chuàng)新,提高繁殖數(shù)量和質(zhì)量,適應(yīng)發(fā)展需要。
關(guān)鍵詞:扦插繁殖;生根機(jī)理;形態(tài)解剖學(xué);內(nèi)含物質(zhì);分子機(jī)理
中圖分類號:S722文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A論文編號:cjas2020-0016
Rooting Mechanism of Plant Cuttings: A Review Sun Xuelian, Yang Chutong, Hu Ya’nan, Zou Xianhua
(Fujian Agricultural and Forestry University, Fuzhou 350002, Fujian, China)
Abstract: Cutting is widely used in production practice as an important technique of asexual reproduction. However, the low cutting rooting rate of some quality plants still restricts the rapid development of cutting propagation technology, and the key to improve the cutting rooting rate of plants is to find out the regulation mechanism. This article summarized the research on the mechanism of cutting rooting of plant from three aspects of morphology and anatomy, physiology and molecular biology during the adventitious root formation. Combined with the current research status at home and abroad, the process and mechanism of adventitious root formation were explained from the morphology and anatomy, the relationship between adventitious root formation and rooting was analyzed. The key molecular regulation mechanism of adventitious root formation and development was clarified. At present, the research on the rooting mechanism of plant cutting has gone deep into the molecular level from anatomy and physiology. Based on the development trend of molecular biology, it is proposed to use genetic engineering to improve the cutting propagation technology of plants, so as to achieve technological innovation, improve the quantity and quality of reproduction and adapt to the needs of production development.
Keywords: Cutting Propagation; Rooting Mechanism; Morphology and Anatomy; Embedded Substance; Molecular Mechanism
0引言
相較于埋條、組織培養(yǎng)、嫁接等技術(shù),扦插繁殖擁有成本低、不受植物種類限制、操作簡單易行、易于產(chǎn)業(yè)化及繁殖速度快等優(yōu)點[1]。隨著植物幼化理論與技術(shù)在扦插繁殖中的突破,無性扦插繁殖逐漸開始受到世界各地農(nóng)林業(yè)工作者的重視[2]。但有些優(yōu)良植物由于從根原基發(fā)端分化到成活的過程長而復(fù)雜,導(dǎo)致其扦插生根率較低,生根率仍然是制約植物扦插繁殖技術(shù)的關(guān)鍵瓶頸[2-4]。
多年來人們對植物的扦插生根機(jī)理進(jìn)行多方面多角度研究探討,為創(chuàng)新扦插技術(shù),提升植物的扦插生根率提供了豐富的理論指導(dǎo)[5]。本文對國內(nèi)外扦插生根機(jī)理的綜述概況進(jìn)行研究,從形態(tài)解剖學(xué)[6-9]、生理學(xué)[10-12]以及分子學(xué)水平[13-14]等方面來研究植物的扦插生根機(jī)理,為提升植物的扦插生根率,促進(jìn)無性系繁殖技術(shù)發(fā)展,實現(xiàn)農(nóng)林業(yè)增效,同時保護(hù)和擴(kuò)大優(yōu)良植物資源提供理論依據(jù)。
1植物扦插生根的解剖學(xué)研究
20世紀(jì)40年代至今,隨著高倍電子顯微鏡和石蠟切片技術(shù)的逐漸掌握,人們對植物的解剖學(xué)方面的研究突飛猛進(jìn)。有研究報道,從扦插生根的解剖學(xué)角度來看,根原基類型、插穗的生根類型、莖的解剖結(jié)構(gòu)是決定扦插的難易程度的三大重要影響因素[14-15]。
1.1根原基類型
根原基是由插穗內(nèi)部的組織經(jīng)脫分化轉(zhuǎn)變?yōu)榉稚M織并不斷分裂形成的細(xì)胞群。根原基類型可依據(jù)植物不定根不同的形成時間分成誘生根原基和潛伏根原基[16-17]。
根據(jù)是否存在根原基可以看出部分存在潛伏根原基的植物生根較易。如桑樹(Morus alba L.)插穗有兩種生根類型,其中潛伏性根原基形成于原株發(fā)育的早期,在適宜環(huán)境下形成定位根,而不定根則形成于誘生根原基,所以桑樹更容易成活[18]。一些植物沒有潛伏根原基,如矮叢越橘(Vaccinium angustifolium)[21]、桉屬樹種[19-20]、合歡(Albizia julibrissin)[22]、東方杉(Taxodium mucronatum×Cryptomeria fortune)[24]、秤錘樹(Sinojackia xylocarpa)[23]等其不定根均由誘生根原基發(fā)育形成,插條內(nèi)都沒有原生根原基,只能夠通過外界化學(xué)或物理條件誘導(dǎo)刺激,使之誘導(dǎo)成為誘生根原基,才能成活,因此在自然條件下這類植物的插穗成活率低。
插穗生根的難易程度與誘生根原基所產(chǎn)生位點也具有一定關(guān)聯(lián)[25]。形成層、髓射線、皮層薄壁細(xì)胞、韌皮薄壁細(xì)胞、初生射線和愈傷組織[26]等均為誘生根原基所產(chǎn)生的位點,如歐洲鵝耳櫪(Carpinus betulus)的誘生根原基起源于髓射線、初生的韌皮部薄壁細(xì)胞和形成層交叉處的一些薄壁細(xì)胞[17],雜種鵝掌楸(Liriodendron chinense)[28]扦插的不定根原基起源于維管形成層,隨著薄壁細(xì)胞的不斷分化,導(dǎo)管分子不斷變化、增多,使誘導(dǎo)薄壁細(xì)胞生根扦插艱難,導(dǎo)致不定根的發(fā)生較為緩慢。垂絲海棠(Malus halliana Koehne)的誘生根原基形成于愈傷組織本身所形成的維管形成層和初生射線交匯處的細(xì)胞進(jìn)行分裂分化[29]。
1.2插穗的生根類型
根據(jù)不定根生根部位的不同,可分為插穗生根類型為皮部生根型、愈傷生根型以及混合生根型,且植物插穗的難易程度和其生根類型緊密聯(lián)系[30-31]。
研究表明,物種特性決定了大多數(shù)植物的插穗生根類型。費約果(Feijoa sellowiana)[34]、沙棘(Hippophaerhamnoides)[33]、花楸(Sorbus pohuashanensis)[35]以及三角梅(Bougainvillea spectabilis)[32]等都屬于皮部生根型,而皮部生根的根原基多是由形成層細(xì)胞直接分裂而成,繼而發(fā)育為不定根,并很快通過皮孔伸出莖外,所以皮部生根時間較短。垂絲海棠[6,29]、椴樹(Tilia tuan)[36]等植物屬于愈傷組織生根型,其首先形成一群半透明的薄壁細(xì)胞位于扦插的基部切口處,它不僅能保護(hù)扦插切口不被外界病原體等所侵染,而且擁有繼續(xù)分化的能力。在適宜的條件下,不定根由初生愈傷組織繼續(xù)分化而來的根原基發(fā)育形成[27]。有研究認(rèn)為,愈傷組織生根型的植株插條生根率低,且生根速度慢。而高效的皮部生根效果顯著高于傳統(tǒng)的插穗技術(shù)如愈傷組織生根等[14];此外,臺灣榿(Alnus formosana)[38]、桉樹[37]等混合生根型植物,與單一生根型植物相比,根系較多,在相同生長條件下根系發(fā)育較多,成活率較高。
1.3莖的解剖結(jié)構(gòu)
插穗的結(jié)構(gòu)同植物扦插生根的難易程度也有一定關(guān)系,插穗的橫切面結(jié)構(gòu)在一定程度下影響著不定根發(fā)育[39]。在紅愷木(Alnus rubra)[41]、桉樹(Eucalyptus robusta)[40]等對于不定根的研究中表明,皮層內(nèi)環(huán)狀厚壁組織對其發(fā)育形成有抑制作用。卓嘎等[7]在研究紅豆杉扦插生根的解剖結(jié)構(gòu)時發(fā)現(xiàn)周皮中存在一圈環(huán)狀的厚壁細(xì)胞導(dǎo)致紅豆杉的生根時間延長。洪漢輝等[43]從白楊硬枝的扦插效果中也發(fā)現(xiàn)年齡大的插穗其木栓層細(xì)胞壁木質(zhì)化加重,莖皮部周皮變厚,從而增加了生根的機(jī)械阻力并阻擋了根的形成;且植物年齡越大其插穗木質(zhì)部越發(fā)達(dá),分化程度更高,再分化能力減弱,導(dǎo)致年齡越大的植物的扦插生根率下降。而王戈戎等[44]在對喜樹(Camptotheca acuminate)的解剖結(jié)構(gòu)研究中卻發(fā)現(xiàn),插穗橫切面中的不連續(xù)厚壁組織并不影響不定根的生長發(fā)育。甚至在趙今哲等[45]的對于灑金柏(Platycladus orientalis)插穗橫切面的研究中沒有發(fā)現(xiàn)厚壁細(xì)胞和環(huán)狀厚壁組織。
2植物扦插生根的內(nèi)含物質(zhì)研究
2.1內(nèi)源激素對植物扦插生根的影響
內(nèi)源激素產(chǎn)生于植物體內(nèi),在植物的生理生化過程中起到一定調(diào)控作用,主要分為赤霉素類、乙烯、細(xì)胞分裂素類、生長激素類和脫落酸(ABA)。其中,低濃度的赤霉素(GA)、細(xì)胞分裂素(ZR)、生長激素(IAA)在插穗過程中可促進(jìn)不定根的形成,有利于植物的生長發(fā)育[5]。IAA/ABA值升高或IAA/ZT值增大,都會促進(jìn)愈傷組織的形成和根原基的發(fā)育,插穗生根過程中不定根的形成是由內(nèi)源激素的動態(tài)平衡調(diào)控的[46]。
不同的植物生長激素對扦插生根有不同的影響。IAA對植物不定根的促進(jìn)作用已為國內(nèi)外許多學(xué)者所證實[47-49]。IAA參與調(diào)節(jié)了植物的根原基的誘導(dǎo)、愈傷組織的形成與不定根發(fā)育生長每個階段。適宜濃度的IAA生長調(diào)節(jié)劑可以使插穗貯藏營養(yǎng)物質(zhì)重新分配,扦插苗基部可以作為一個有效的養(yǎng)分庫。同時IAA還能加快植物的呼吸速率,有利于細(xì)胞的分裂分化,在插穗基部細(xì)胞內(nèi)調(diào)節(jié)并增強(qiáng)相關(guān)酶的活性[50]。研究表明,IAA有利于miRNA的合成,進(jìn)一步對差異蛋白質(zhì)的表達(dá)造成影響,從而增強(qiáng)插穗的脅迫抗性、能量代謝和信號轉(zhuǎn)遞的能力。同時濃度適宜的IAA能夠使沙生檉柳(Tamarix taklamakanensis)[52]誘導(dǎo)出根原基并促進(jìn)不定根的形成。也有些試驗證明在北美香柏(Thuja occidentalis)[53]插穗生根過程中發(fā)現(xiàn)高濃度的IAA可以加速形成愈傷組織,促進(jìn)傷口愈合。研究證明,較高濃度的細(xì)胞分裂素有利于細(xì)胞的分裂分化,提高其扦插生根率[50],藍(lán)莓(Semen Trigonellae)在外源激素處理對照時,ZR在表達(dá)期和不定根誘導(dǎo)期具有較高的活性,促進(jìn)了不定根的生長[54]。也有研究表明,低濃度的細(xì)胞分裂素也會對不定根的分化有促進(jìn)作用,張金浩在裸花紫株(Callicarpa nudiflora Hook.et Arn)的插穗機(jī)理實驗中發(fā)現(xiàn)較低濃度的ZR有利于不定根的分化[57],能夠促進(jìn)植物的插穗生根[55-56]。高濃度的GA含量會抑制不定根的生長,反之,較低濃度的GA含量能促進(jìn)不定根的形成[56],這是因為GA會在插穗基部起始期阻礙細(xì)胞分裂,進(jìn)一步抑制不定根的發(fā)育,阻礙IAA誘導(dǎo)植物的根原基形成。此外,研究表明,脫落酸會明顯抑制植物的扦插生根,較高濃度的ABA不利于插穗生根[10],吳文浩等[49]研究發(fā)現(xiàn)薄殼山核桃(Carya illinoensis)在愈傷組織到不定根整個的形成階段中,ABA濃度一直處于下降趨勢,有利于形成IAA受體,促進(jìn)插穗內(nèi)的淀粉水解成糖和提高插穗生根率[51]。
然而,單個內(nèi)源激素含量的變化很難對插穗生根和內(nèi)源激素產(chǎn)生明顯作用,主要通過多種內(nèi)源激素的共同調(diào)控[10],因此,植物的生理效應(yīng)不是由某種激素的絕對含量決定的,而是由各種激素的相對含量決定的[57]。麻文俊等[58]實驗證明IAA無法單一地對植物扦插生根起主要作用,一定濃度的IAA/ZT增加有利于插條生根,而ZT/ABA增加則會抑制插條生根。而對于白樺(Betula platyphylla)[59]、白皮松(Pinus bungeana)[10]和長白落葉松(Larix olgensis Henry)[50]等內(nèi)源激素的研究都發(fā)現(xiàn)IAA/ABA比值與生根率呈正比,張曉平等[47]通過雜種鵝掌楸(Liriodendron chinense)的扦插生根機(jī)理研究發(fā)現(xiàn)IAA/ABA比值較小是影響植物難生根的主要因素。
2.2內(nèi)源營養(yǎng)物質(zhì)對植物扦插生根的影響
插條生根是新根形成和插條底部傷口愈合過程,因此在生根早期需要豐富的能量和營養(yǎng)物質(zhì),而可溶性蛋白、可溶性糖、淀粉等碳水化合物就是植物新根形成能量的主要來源[50]。在根的誘導(dǎo)過程中碳水化合物作為僅有的能量來源發(fā)揮著重要作用[61],可溶性糖是不定根形成的重要營養(yǎng)成分之一[62],而淀粉則是通過轉(zhuǎn)化為糖為植物提供能量[63]。敖紅等[50]在長白落葉松解剖學(xué)研究中發(fā)現(xiàn),插穗中的淀粉在生根過程中會分解并提供能量。
在扦插生根的過程所消耗的大量養(yǎng)分和能量中,碳水化合物和氮素化合物為愈傷組織形成根系提供豐富的能量,在植物生長中起到重要作用[64]。研究表明,發(fā)育粗壯良好的插穗比生長較差纖細(xì)的插穗更容易生根[65],采用曲枝、刻傷和環(huán)剝等方法處理插條,其生根率也顯著提高[65]。碳水化合物的含量高低也對扦插生根有很大影響[9],實驗發(fā)現(xiàn)在生根高峰期可溶性糖的含量達(dá)到最大值,而此峰值可在生長素的誘導(dǎo)下提前發(fā)生,從而促進(jìn)不定根的形成[12]。Haissig[66]通過對北美短葉松(Pinus banksiana)的碳水化合物含量的研究中發(fā)現(xiàn),雖然其對不定根的形成沒有直接影響,但能促進(jìn)不定根的伸長。
然而,插穗內(nèi)部碳水化合物的含量與插穗生根過程并非簡單的相互制約或影響,插穗生根與碳水化合物和含氮化合物的比率有關(guān)[66-67]。研究發(fā)現(xiàn),生根率與新梢和硬枝的C/N比值呈正相關(guān)[69],嫩枝的可溶性蛋白質(zhì)、可溶性糖和總氮含量都同植物的扦插生根成正比,而雖然硬枝的總氮和可溶性糖含量高于嫩枝,但C/N和可溶性蛋白質(zhì)含量比嫩枝低,不利于生根[4]。師晨娟等[69]青海云杉(Picea crassifolia)的全C含量與生根率研究中發(fā)現(xiàn)其呈正相關(guān),全氮含量與生根率成反比,C/N比越低,生根率越低。麻文俊等[58]在研究不同生根類型的日本落葉松(Larix kaempferi)中發(fā)現(xiàn),在插穗過程中,其總氮含量會隨著時間的增加而趨勢不同,其中較易生根型總氮含量不斷降低,而難生根型的含量先降低后升高,說明插穗中氮、碳水化合物和生長素的比例到達(dá)一定關(guān)系時,才可以促進(jìn)插穗生根[70]。
2.3酶的活性對植物扦插生根的影響
除了營養(yǎng)物質(zhì),植物體內(nèi)的吲哚乙酸氧化酶(IAAO)、多酚氧化酶(PPO)、過氧化物酶(POD)、超氧化物歧化酶(SOD)酶活性也與植物不定根的生長發(fā)育有關(guān)[71]。其中吲哚乙酸氧化酶(IAAO)和多酚氧化酶(PPO)參與了植物中的根原基誘導(dǎo),而過氧化物酶(POD)參與了根的誘導(dǎo)和伸長[72],插穗皮層內(nèi)的POD可通過內(nèi)源激素的處理提高其活性,在不定根形成之前,POD在植物體內(nèi)普遍存在,使其體內(nèi)的IAA氧化[73]。宋金耀等[75]在對植物生根過程的研究中發(fā)現(xiàn)不定根與POD活性有著緊密關(guān)聯(lián),在植物生根早期其活性會超出正常值,但當(dāng)根系穿過表皮后其活性又會降至初始水平。劉玉艷等[74]研究發(fā)現(xiàn)部分碳水化合物在POD酶的促進(jìn)作用下轉(zhuǎn)化為木質(zhì)素,使插穗木質(zhì)化程度大大提高,POD酶活性高于新生組織。常見于植物體內(nèi)的多酚氧化酶PPO,可以直接控制酚類物質(zhì)的合成,并催化其和IAA形成一種生根輔助因子“IAA-酚酸復(fù)合物”,誘導(dǎo)根原基的生長發(fā)育[77]。誘導(dǎo)期PPO的活性較高,有利于不定根的形成,表達(dá)期活性較低,促進(jìn)不定根的伸長[78]。IAAO在高等植物中廣泛存在,它能夠通過分解IAA來調(diào)節(jié)其含量,進(jìn)一步影響植物不定根的形成[79]。研究證明,在誘導(dǎo)期IAAO活性較高,能夠充分分解內(nèi)源IAA,降低IAA含量促進(jìn)植物生根;在表達(dá)期IAAO活性較低,內(nèi)源IAA含量升高,促進(jìn)植物根的伸長[12]。植物中SOD的酶活性越高,插穗的抗性越強(qiáng),有利于不定根的生長,同時加快其發(fā)生的時間[80]。言倜信等[80]在南酸棗[Choerospondias axillaris(Roxb.)Burtt et Hill.]扦插的生根過程研究時認(rèn)為SOD活性先上升再下降,能夠提高POD和酶的活性,從而促進(jìn)生根發(fā)育。
2.4生根抑制物對植物扦插生根的影響
植物扦插插穗內(nèi)存在阻礙生根的物質(zhì)稱為生根抑制物質(zhì)[81-85]。劉衛(wèi)東等[40]在研究過程中通過統(tǒng)一環(huán)境對難生根直干桉(Eucalyptus maidenii)和易生根赤桉(Eucalyptus camaldulensis Dehnh.)進(jìn)行物質(zhì)動態(tài)測定,測其生根率可以得出主要抑制物為酚類和單寧類。李永進(jìn)與丁貴杰[82]對不同家系馬尾松(Pinus massoniana Lamb.)插穗進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),插穗中存在的內(nèi)源抑制物質(zhì)黃酮類、苯酚類和脫落酸類等七種活性較高的內(nèi)源抑制物質(zhì)是影響馬尾松生根率低下的主要原因之一。王芳等[85]通過對梭梭(Haloxylon ammodendron (C. A. Mey.) Bunge)嫩枝和硬枝的研究驗證了其體內(nèi)確有生根抑制物的存在,主要存在的物質(zhì)有堿性物質(zhì)、酚類物質(zhì)和酸性物質(zhì)等。而對于植物的不同部位其生根抑制物活性的比較發(fā)現(xiàn),梭梭嫩枝木質(zhì)部的活性要比韌皮部弱,下部的生根抑制劑比中上部弱。程廣有[83]在紫杉(RamulusTaxiCuspidatae)生根抑制劑的研究中,采用有機(jī)和生物方法分析了紫杉生根抑制劑的主要成分是酚類物質(zhì),其中韌皮部含量最多,針葉次之,木質(zhì)部最少。在扦插苗中,其枝齡不同酚含量不同,其中3年生扦插苗含量最低,1年生扦插苗含量最高。朱鵬與徐建民[84]通過對鄧恩桉(Eucalyptus dunnii)組織生根抑制劑的研究,發(fā)現(xiàn)試驗材料經(jīng)組織提取液處理后均表現(xiàn)出不同程度的抑制作用,成熟樹木提取物的抑制強(qiáng)度高于幼苗和萌芽樹干,結(jié)果表明插條中生長素與抑制劑的比例是影響不定根發(fā)育的關(guān)鍵因素,而且這一比例關(guān)系達(dá)到一定關(guān)系時,才能促進(jìn)根原始體的分化。抑制劑和生長素的含量隨植株年齡的變化而變化。伴隨著枝齡的增加,植物中抑制物含量增加,生長素含量降低,同一樹冠其上部枝干的生長素含量少,抑制物含量多[86-87],而從下部采集的枝條卻剛好與之相反。
3植物扦插生根的分子機(jī)理研究
隨著植物蛋白質(zhì)組學(xué)、基因組學(xué)、代謝組學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)等學(xué)科的不斷創(chuàng)新,分子生物學(xué)技術(shù)的迅速發(fā)展,人們對植物扦插生根機(jī)理的研究從解剖學(xué)和生理學(xué)等方面逐漸轉(zhuǎn)向分子水平的研究。隨著相關(guān)研究逐漸深入,越來越多不定根發(fā)生、發(fā)育過程中的關(guān)鍵調(diào)控基因被發(fā)現(xiàn),而絕大多數(shù)如TRH1[90]、AXR4[89]、LRP1[90]、SAMS[92]、AXR1[88]、RHL1[91]等都與生長素應(yīng)答、細(xì)胞生長和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)有關(guān)。除此之外,大量與不定根形成有關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子也被深入挖掘,如AP2/EREBP[95]、AP2/ ERF[94]、ARFs[93]等。
生長素在不定根和側(cè)根的生長發(fā)育中起著重要作用,因此生長素誘導(dǎo)基因的表達(dá)及其相關(guān)分子開始被人們廣泛研究[95]。Vieten等[96]通過對不定根發(fā)育的調(diào)控機(jī)制研究發(fā)現(xiàn),影響不定根發(fā)育的PAT(生長素極性運輸)作為一種重要調(diào)控機(jī)制,由輸出載體PINs和生長素輸入載體AUX/LAX共同介導(dǎo)。IBA作為一種優(yōu)良的誘導(dǎo)生根劑被普遍使用于植物扦插生根。在IBA誘導(dǎo)初期,芒果(Mangifera indicaL.)不定根的PIN基因和AUX/LAX基因的誘導(dǎo)水平較低,4天后其基因表達(dá)迅速上升[98]。胡春華等[99]在枳橙(Citrange)的轉(zhuǎn)ROLA、B、C基因的快速繁殖時發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因的移栽成活率高達(dá)90%,且生根率明顯高于對照組。在轉(zhuǎn)基因獼猴桃(Actinidia chinensis Planch)與玫瑰(Rosa rugosa)的研究發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)ROLA、B、C基因能夠誘導(dǎo)促進(jìn)不定根形成,有利于不定根的發(fā)育生長[100-101]。Thomas P等[98]通過對葡萄插穗生根機(jī)理的研究發(fā)現(xiàn),葡萄插穗在經(jīng)過生長素處理后,基因PRP 1和PRP 2被誘導(dǎo)并迅速表達(dá),且插穗其他部位明顯低于基部表達(dá)水平,說明PRP 1和PRP 2基因促進(jìn)了葡萄插穗早期不定根的形成。在擬南芥(Arabidopsis thaliana)分子機(jī)理的實驗中,AUX/IAA基因家族突變體MSG2/IAA19,SLR/ IAA14,SHY2/IAA3和IAA28均表現(xiàn)為側(cè)根生長減少或無側(cè)根生長。NAC1、AUX1或TIR1的過量表達(dá)有利于側(cè)根的形成,而SINAT5過量表達(dá)的側(cè)根形成卻較少[102]。
在細(xì)胞周期如何參與植物根系發(fā)生的過程研究中,主要研究側(cè)根形成的相關(guān)基因,但對不定根和初生根的研究較少。側(cè)根的形成過程主要有兩方面:建立新分裂組織與木質(zhì)部中柱鞘細(xì)胞周期再活化[105]。雖然關(guān)于如何控制細(xì)胞周期重建并未完全清楚,但植物激素在控制植物生長過程中的細(xì)胞周期調(diào)節(jié)起著至關(guān)重要的作用,特別在轉(zhuǎn)錄水平中,與之接觸的亞基依賴性激酶CDKs需要同細(xì)胞周期蛋白結(jié)合才能具有活性。一段保守的氨基酸區(qū)域的主要有CDK抑制蛋白(KRPs)磷酸化與去磷酸化與共同決定酶活性,而在植物中,至少有5種CDKs(CDKA、CDKB、CDKC、CDKD和CDKE)[106]。在側(cè)根發(fā)育過程中細(xì)胞周期依賴性激酶抑制劑有著重要影響:KRP2通過調(diào)節(jié)生長素含量,在植物生長早期通過細(xì)胞周期G1期向S期轉(zhuǎn)變來調(diào)節(jié)側(cè)根的發(fā)育。研究發(fā)現(xiàn),具有獨特的細(xì)胞規(guī)律性的木質(zhì)部中柱鞘細(xì)胞是處于G1期,而其它休眠狀態(tài)的中柱鞘細(xì)胞則處在G2期。生長素的極性運輸如果阻斷,就能夠效阻礙第一次有序的細(xì)胞分裂從而阻止側(cè)根發(fā)生,說明生長素能夠調(diào)控細(xì)胞周期。同時,細(xì)胞周期的活躍性也受生長素所影響。磷脂中在KRP1和KRP2在NPA處理后,中柱鞘靜止根被高度表達(dá),而KRP3僅在生長素處理后大量表達(dá),在限制側(cè)根生長的環(huán)境中僅有少量表達(dá),生長素的誘導(dǎo)對KRP4影響較小。這些研究一定程度上表明CDK活性從生長素到中柱鞘細(xì)胞的信號接收被阻斷[104]。Kristiina等[103]在6個小時的生長素誘導(dǎo)煙草基因表達(dá)實驗發(fā)現(xiàn),G1期被生長素轉(zhuǎn)運抑制劑NPA處理后,KRP2、CKS1與Arath被強(qiáng)烈表達(dá);細(xì)胞周期在G2/M階段誘導(dǎo)出細(xì)胞周期基因和依賴性激酶,如CDKB1,CYCB1,Arath;而Myb和cmyc等轉(zhuǎn)錄因子也同時被誘導(dǎo)。以上研究表明生長素可以誘導(dǎo)細(xì)胞周期相關(guān)基因的表達(dá),與之密切相關(guān),從而改變植物細(xì)胞周期過程,進(jìn)一步誘導(dǎo)側(cè)根的發(fā)育生長。
4展望
近年來,人們對植物的扦插生根機(jī)理做了大量研究,研究探明了扦插繁殖不定根發(fā)生的起源與過程,掌握了植物扦插過程中內(nèi)源激素、營養(yǎng)物質(zhì)、酶活性、生根抑制物等內(nèi)含物質(zhì)與生根的動態(tài)變化關(guān)系,挖掘出植物扦插生根過程中與不定根發(fā)育相關(guān)的關(guān)鍵基因,并探明其功能,研究從解剖學(xué)、生理學(xué)深入到分子學(xué)水平,取得了較大的研究進(jìn)展。然而植物扦插不定根的發(fā)生、發(fā)育、成根到成活的這一復(fù)雜過程,還有許多機(jī)理需要去探討研究。問題及建議主要總結(jié)為以下幾點。
(1)目前,通過解剖學(xué)研究發(fā)現(xiàn)插穗橫切面結(jié)構(gòu)中皮層內(nèi)環(huán)狀厚壁組織對不定根發(fā)育的作用存在顯著的種間差異,有待進(jìn)一步研究確定皮層內(nèi)環(huán)狀厚壁組織與不定根發(fā)育的相關(guān)性。
(2)植物扦插過程中內(nèi)含物質(zhì)的差異會導(dǎo)致植物生根特性產(chǎn)生巨大的差異。目前研究多集中在單個內(nèi)含物質(zhì)對扦插生根的影響研究,而內(nèi)含物質(zhì)與生根的關(guān)系不僅僅是單一物質(zhì)含量的變化,決定生理效應(yīng)的是激素、營養(yǎng)物質(zhì)、酶活性、生根抑制物等多種內(nèi)含物質(zhì)共同作用的結(jié)果。今后應(yīng)進(jìn)一步加強(qiáng)各內(nèi)含物質(zhì)在生根過程中的協(xié)同作用及其互作機(jī)制研究。
(3)植物不定根的發(fā)育和形成是一個由多個基因控制的復(fù)雜過程。目前在分子研究水平主要集中在與不定根和側(cè)根形成過程的生長素應(yīng)答、細(xì)胞生長及信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等方面相關(guān)的基因挖掘,應(yīng)加強(qiáng)其他相關(guān)方面關(guān)鍵基因的深入挖掘。另一方面,目前分子水平的植物扦插生根機(jī)理研究主要集中在草本植物,如擬南芥、煙草等,木本植物的研究報道較少,分子水平的準(zhǔn)確研究對木本植物植物扦插生根機(jī)理具有重要作用。對植物不定根發(fā)育和形成過程中關(guān)鍵調(diào)控基因的挖掘,可為利用基因工程手段提升植物扦插繁殖技術(shù)提供理論與技術(shù)支撐。
參考文獻(xiàn)
[1]郭素娟.林木扦插生根的解剖學(xué)及生理學(xué)研究進(jìn)展[J].北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報,1997,19(4):64-69.
[2]周志剛,劉果厚,邱潤生,等.珍稀瀕危植物四合木嫩枝扦插生根特性的研究[J].內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2011,30(12):21-25,29.
[3]魏禮文,范紅鷹.影響難生根植物插條生根因素及解決措施[J].惠州大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,1996,16(4):63-66.
[4]潘瑞熾,Rui-ChiPan.植物生長調(diào)節(jié)劑與扦插生根[J].植物學(xué)報,1995,12(專輯3):8-14.
[5]洪漢輝,康向陽,汪曉峰.年齡效應(yīng)對白楊硬枝扦插苗生長及其莖皮部解剖結(jié)構(gòu)和葉片生化指標(biāo)的影響[J].西北植物學(xué)報,2018,38(2):274-281.
[6]陳鴻鷹.外源酚酸對歐美楊‘I-107’扦插苗細(xì)根形態(tài)建成和生理特性的影響[D].泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2017.
[7]卓嘎,楊小林,辛福梅.西藏2種紅豆杉扦插生根過程及解剖結(jié)構(gòu)研究[J].西部林業(yè)科學(xué),2015,44(1):88-91.
[8]李朝嬋,趙云龍,張冬林,等.長蕊杜鵑扦插內(nèi)源激素變化及解剖結(jié)構(gòu)觀察[J].林業(yè)科學(xué)研究,2012,25(3):360-365.
[9]郭素娟,凌宏勤,李鳳蘭.白皮松插穗生根的生理生化基礎(chǔ)研究[J].北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2004,26(2):43-47.
[10]黃麗媛,袁軍,周乃富,等.不同磷源處理對油茶扦插苗不定根發(fā)生及生理生化的影響[J].植物生理學(xué)報,2016,67(5):678-684.
[11]劉玉民,劉亞敏,馬明,等.馬尾松扦插生根過程相關(guān)生理生化分析[J].林業(yè)科學(xué),2010,46(9):28-33.
[12]閆紹鵬.歐美山楊雜種扦插生根的理化與分子機(jī)理研究[D].哈爾濱:東北林業(yè)大學(xué),2011.
[13]杜偉.桑樹硬枝扦插生根的生理生化與分子機(jī)理研究[D].鎮(zhèn)江:江蘇科技大學(xué),2016.
[14]Hatzilazarou S P, Syros T D, Yupsanis TA, et al. Peroxidases, lignin and anatomy during in vitro and ex vitro rooting of gardenia(Gardenia jasminoides Ellis) microshoots[J]. Journal of Plant Physiology. 2006,163(8):827-836.
[15]Zhang W, Fan J, Tan Q, et al. The effects of exogenous hormones on rooting process and the activities of key enzymes of Malus hupehensis stem cuttings[J]. Plos One, 2017,12(2).
[16]杜偉,程嘉翎.桑樹綠枝扦插皮部生根過程的形態(tài)解剖學(xué)觀察[J].蠶業(yè)科學(xué),2014,40(1):13-17.
[17]金建邦,祝遵凌,林慶梅.歐洲鵝耳櫪扦插生根及解剖特性[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2015,43(2):92-98.
[18]杜偉.人工誘導(dǎo)桑樹綠枝扦插皮孔生根機(jī)理的研究[J].江蘇科技大學(xué),2010.
[19]譚健暉.桉樹嫩枝扦插繁殖的研究進(jìn)展及對策[J].廣西林業(yè)科學(xué), 2003,33(2):74-76.
[20]林建,陳培,莫光武,等.桉樹的枝條扦插繁殖技術(shù)研究[J].熱帶林業(yè),2007,35(2):23-29.
[21]朱聃,呂鳳霞,陶洪波,等.矮叢越橘扦插生根的形態(tài)解剖學(xué)研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2011,42(7):143-146.
[22]周祥明,劉玉堂,趙憲爭,宋兆偉,王姝.合歡硬枝扦插生根解剖及相關(guān)酶活性變化研究[J].植物研究,2016,36(1):58-61.
[23]張穎.秤錘樹扦插繁殖技術(shù)及生根機(jī)理的研究[D].南京:南京林業(yè)大學(xué),2009.
[24]徐佩賢.東方杉嫩枝扦插繁殖技術(shù)及其生根機(jī)理研究[D].南京:南京林業(yè)大學(xué),2009.
[25]周容濤,劉洋,冷珊珊,等.歐美雜種山楊微扦插不定根發(fā)生過程的解剖學(xué)研究[J].西北植物學(xué)報,2013,33(11):2184-2188.
[26]金建邦,祝遵凌,林慶梅.歐洲鵝耳櫪扦插生根及解剖特性[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2015,43(2):92-98.
[27]林如,曹玉芳,胡正海.絞股藍(lán)扦插生根的解剖學(xué)研究[J].福建農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2003,32(4):464-467.
[28]張曉平,方炎明.雜種鵝掌楸插穗不定根發(fā)生與發(fā)育的解剖學(xué)觀察[J].植物資源與環(huán)境學(xué)報,2003,12(1):10-15.
[29]許曉崗.垂絲海棠、楸子的扦插生根機(jī)理研究[D].南京:南京林業(yè)大學(xué),2006.
[30]付紅祥.海棠的繁殖技術(shù)研究[D].南京:南京林業(yè)大學(xué),2004.
[31]李春燕,楊廷楨,高敬東,等.蘋果矮化砧扦插生根解剖學(xué)機(jī)理研究進(jìn)展[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(10):1719-1720.
[32]謝志南,賴瑞云,林麗仙,等.三角梅插穗扦插生根過程解剖學(xué)觀察[J].閩西職業(yè)技術(shù)學(xué)院學(xué)報,2008,10(3):97-99.
[33]姚景瀚,李偉.沙棘微扦插不定根發(fā)生的形態(tài)解剖學(xué)研究[J].北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2013,35(2):130-133.
[34]Meng Z, Tang H R, Dan W, et al. Studies on rooting characteristics and anatomical structure of feijoa cuttings[J]. Journal of Fruit Science, 2009, 99(2): 86-90.
[35]鄭健,鄭勇奇,吳超.花楸樹嫩枝扦插繁殖技術(shù)研究[J].林業(yè)科學(xué)研究,2009,22(1):91-97.
[36]劉云強(qiáng),楊建民,彭偉秀,等.兩種椴樹嫩枝扦插生根的解剖學(xué)研究[J].河北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2004(2):33-37.
[37]丘醒球,余倩珠,張少翃,等.桉樹插條生根解剖研究[J].林業(yè)科學(xué)研究,1995,8(2):170-176.
[38]廖德志,李志輝,吳際友,等.臺灣榿木無性系扦插繁殖試驗[J].湖南林業(yè)科技,2010,37(6):48-51.
[39]Porfírio S, Silva M D R G, Cabrita M J, et al. Reviewing current knowledge on olive (Olea europaea L.) adventitious root formation[J]. Scientia Horticulturae, 2016, 198(5):207-226.
[40]劉衛(wèi)東,萬朝琨,饒龍兵,等.桉樹扦插生根的解剖學(xué)研究[J].中南林學(xué)院學(xué)報,1997,3(4):32-36.
[41]魯?shù)?,張瑞,彭方仁,?紅榿木扦插繁殖技術(shù)及生根過程的解剖學(xué)觀察[J].西南林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2013,33(2):24-28.
[42]柯益富,彭克宇,曹夢羆.雞桑(MorusaustralisCattingLype)枝條解剖構(gòu)造與扦插發(fā)根機(jī)制的研究[J].西南大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,1992, 36(3):278-282.
[43]洪漢輝,康向陽,汪曉峰.年齡效應(yīng)對白楊硬枝扦插苗生長及其莖皮部解剖結(jié)構(gòu)和葉片生化指標(biāo)的影響[J].西北植物學(xué)報,2018,39(2):274-281.
[44]王戈戎,袁曉穎.喜樹莖解剖構(gòu)造及插條不定根的形成[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2007,51(3):88-89.
[45]趙今哲,劉國彬,張鴻翎,等.生長調(diào)節(jié)劑處理的灑金柏扦插不定根解剖學(xué)研究[J].西南林業(yè)大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué),2019,39(2):173-178.
[46]郭英超,杜克久,賈哲.興安圓柏扦插生根過程中相關(guān)內(nèi)源激素特征分析[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2012,29(1):44-48.
[47]張曉平,方炎明,黃紹輝.雜種鵝掌楸扦插生根過程中內(nèi)源激素的變化[J].南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2004,47(3):79-82.
[48]張往祥,宋元超,趙明明,等.金雀花扦插生根過程中內(nèi)源激素動態(tài)變化[J].林業(yè)科技開發(fā),2014,28(5):61-64.
[49]吳文浩,曹凡,劉壯壯,等.NAA對薄殼山核桃扦插生根過程中內(nèi)源激素含量變化的影響[J].南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2016,59(5):191-196.
[50]敖紅,王崑,馮玉龍.長白落葉松插穗的內(nèi)源激素水平及其與扦插生根的關(guān)系[J].植物研究,2002,44(2):190-195.
[51]曹凡,彭方仁,梁有旺,等.美國山核桃不定根形成過程中相關(guān)蛋白質(zhì)的鑒定及功能分析[J].南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué),2016,40(2):53-58.
[52]張錦春,劉有軍,王方琳,等.沙生檉柳扦插生根過程插穗相關(guān)理化特征分析[J].西北植物學(xué)報,2018,38(3):484-492.
[53]姚銳.北美香柏扦插繁殖技術(shù)及其生根生理生化機(jī)理的研究[D].長沙:中南林業(yè)科技大學(xué),2017.
[54]王雪嬌.藍(lán)莓組培苗扦插繁殖技術(shù)與生根機(jī)理的研究[D].哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學(xué),2016.
[55]張樂華,王書勝,單文,等.基質(zhì)、激素種類及其濃度對鹿角杜鵑扦插育苗的影響[J].林業(yè)科學(xué),2014,50(3):45-54.
[56]李永欣,曾慧杰,王曉明,等.光皮樹扦插過程中內(nèi)源激素變化[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2010,26(15):247-251.
[57]張金浩.裸花紫珠扦插繁殖技術(shù)及生根機(jī)理研究[D].北京:中國林業(yè)科學(xué)研究院,2014.
[58]麻文俊,張守攻,王軍輝,等.日本落葉松扦插生根期內(nèi)源激素和營養(yǎng)物質(zhì)及酚酸含量變化特征[J].西北植物學(xué)報,2013,33(1):109-115.
[59]詹亞光,楊傳平,金貞福,等.白樺插穗生根的內(nèi)源激素和營養(yǎng)物質(zhì)[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2001,29(4):1-4.
[60]Correa L D, Paim D C, Schwambach J, et al. Carbohydrates as regulatory factors on the rooting of Eucalyptus saligna Smith and Eucalyptus globulus Labill[J]. Plant growth regulation, 2005, 45(1): 63-73.
[61]魏海蓉,陳新,宗曉娟,等.甜櫻桃矮化砧‘吉塞拉6號’扦插過程中氧化酶活性和碳氮含量變化[J].林業(yè)科學(xué),2013,49(9):172-177.
[62]呂明霞.梅花扦插繁殖技術(shù)的研究[J].江西林業(yè)科技,2000,20(2): 43-45.
[63]Druege U, Zerche S, Kadner R. Nitrogen- and storage- affected carbohydrate partitioning in high- light- adapted Pelargonium cuttings in relation to survival and adventitious root formation under low light[J].Annals of Botany, 2004, 94(6):831-842.
[64]唐玲,王艷芳,李榮英,等.插穗規(guī)格與遮蔭度對腎茶扦插苗質(zhì)量的影響[J].中藥材,2017,40(2):281-283.
[65]羅坤水,羅忠生,葉金山,等.珍稀樹種沉水樟嫩枝扦插技術(shù)研究[J].南方林業(yè)科學(xué),2016,44(5):21-23,34.
[66]Haissig B E. Origins of adventitious roots[J]. New Zealand Journal of Forestry Science, 1974,4(2):299-310.
[67]王新建,何威,張秋娟,等.豫楸1號扦插生根過程中營養(yǎng)物質(zhì)含量及氧化酶類活性的變化[J].林業(yè)科學(xué),2009,45(4):156-161.
[68]劉曼.棱角山礬扦插繁殖技術(shù)及其生根機(jī)理研究[D].南京:南京林業(yè)大學(xué),2010.
[69]師晨娟,劉勇,王春城,等.青海云杉扦插的年齡效應(yīng)及其生根機(jī)理研究[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2006,34(12):101-104.
[70]張雪,李隆云,楊憲.灰氈毛忍冬扦插繁殖過程中營養(yǎng)物質(zhì)含量的變化研究[J].中國中藥雜志,2010,34(1):1378-1381
[71]Dash G K, Senapati S K, Rout G R. Effect of auxins on adventitious root development from nodal cuttings of Saraca asoka (Roxb.) de Wildeandassociatedbiochemicalchanges[J].Journalof Horticulture & Forestry, 2011.
[72]Husen A. Changes of Soluble Sugars and Enzymatic Activities During Adventitious Rooting in Cuttings of Grewia optiva as Affected by Age of Donor Plants and Auxin Treatments[J]. American Journal of Plant Physiology, 2012,7(1):1-16.
[73]趙云龍,陳訓(xùn),李朝嬋.糙葉杜鵑扦插生根過程中生理生化分析[J].林業(yè)科學(xué),2013,49(6):45-51.
[74]劉玉艷,于鳳鳴,韓淑麗.影響木槿硬枝扦插若干生理指標(biāo)的研究[J].林業(yè)科技,2002,27(5):4-7.
[75]宋金耀,劉永軍,宋剛,等.幾個常見樹種扦插生根過程中POD、IAAO活性及酚含量的變化[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2007,35(6):115-118.
[76]Satisha J, Raveendran P, Rokade N D. Changes in polyphenol oxidase activity during rooting of hardwood cuttings in three grape rootstocks under Indian conditions.[J]. South African Journal for Enology & Viticulture, 2008,29(2):94-97.
[77]閆紹鵬,武曉東,王秋玉,等.歐美山楊雜種嫩枝微扦插生根相關(guān)氧化酶活性變化及繁殖技術(shù)[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2011,39(11):5-7, 11.
[78]孟慶偉,高輝遠(yuǎn).植物生理學(xué)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2011.
[79]侯江濤,沈聰聰,張毅芳,凌娜.植物扦插繁殖生根機(jī)理研究綜述[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2019,47(19):1-3,6.
[80]言倜信.南酸棗扦插繁殖技術(shù)與生理機(jī)理研究[D].長沙:中南林業(yè)科技大學(xué),2015.
[81]姚瑞玲,王胤,項東云,等.鄧恩桉插條生根抑制物質(zhì)鑒定[J].福建林學(xué)院學(xué)報,2010,30(3):275-278.
[82]李永進(jìn),丁貴杰.不同家系馬尾松插穗內(nèi)源生根抑制物的分離、純化及鑒定[J].浙江林學(xué)院學(xué)報,2010,27(4):507-512.
[83]程廣有.紫杉插穗中生根抑制物的鑒定[J].北華大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2000,1(2):163-166.
[84]朱鵬,徐建民.鄧恩桉組織材料生根抑制物研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2007,47(32):10236-10238,10560.
[85]王芳,謝健,王澤,等.梭梭枝條生根抑制物研究[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2016,25(1):136-141.
[86]王志敏.五個圓柏品種扦插繁殖技術(shù)與生根機(jī)理研究[D].呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2019.
[87]Gray W M, Del Pozo J C, Walker L, et al. Identification of an SCF ubiquitin-ligase complex required for auxin response in Arabidopsis thaliana[J]. Genes Dev, 1999, 13(13): 1678-1691.
[88]Hobbie L, Estelle M. The axr4 auxin- resistant mutants of Arabidopsis thaliana define a gene important for root gravitropism and lateral root initiation[J]. Plant Journal, 2010, 7(2): 211-220.
[89]Rigas S, Debrosses G, Haralampidis K, et al. TRH1 encodes a potassium transporter required for tip growth in Arabidopsis root hairs[J]. Plant Cell, 2001, 13(1): 139-152.
[90]Schneider K, Mathur J, Boudonck K, et al. The ROOT HAIRLESS 1 gene encodes a nuclear protein required for root hair initiation in Arabidopsis[J]. Genes & Development, 1998, 12(13): 2013.
[91]QuanJ,ZhangS,ZhangC,etal.MolecularCloning, Characterization and Expression Analysis of the SAMS Gene during Adventitious Root Development in IBA-Induced Tetraploid Black Locust[J], Plos One. 2014, 9(10): e108709.
[92]Xing H, Pudake R N, Guo G, et al. Genome-wide identification and expression profiling of auxin response factor (ARF) gene family in maize[J]. Bmc Genmics, 2011, 12(178).
[93]Dalila T, Yordan Y, Sharon R, et al. Identification, characterization of an AP2/ERF transcription factor that promotes adventitious, lateral root formation in Populus[J]. Planta, 2013, 238(2): 271-282.
[94]Rigal A, Yordanov Y S, Perrone I, et al. The AINTEGUMENTA LIKE1 Homeotic Transcription Factor PtAIL1 Controls the Formation of Adventitious Root Primordia in Poplar[J]. Plant Physiology, 2012, 160(4): 1996-2006.
[95]Pacurar D I, Perrone I, Bellini C. Auxin is a central player in the hormone cross- talks that control adventitious rooting[J]. Physiol Plant, 2014, 151(1): 83-96.
[96]Vieten A, Sauer Mbrewer P B, Friml J. Molecular and cellular aspects of auxin- transport- mediated development[J]. Trends in Plant Science, 2007, 12(4): 160-168.
[97]Li Y H, Zou M H, Feng B H, et al. Molecular cloning and characterization of the genes encoding an auxin efflux carrier and the auxin influx carriers associated with the adventitious root formation in mango ( Mangifera indica L.) cotyledon segments[J]. Plant Physiology & Biochemistry, 2012, 55(2): 33-42.
[98]Thomas P, Lee M M, Schiefelbein J. Molecular identification of proline-rich protein genes induced during root formation in grape(Vitis vinifera L.) stem cuttings[J]. Plant Cell & Environment, 2010, 26(9): 1497-1504.
[99]胡春華,謝玉明,黃訓(xùn)才,等.轉(zhuǎn)rolA、B、C基因枳橙快繁技術(shù)[J].果樹學(xué)報, 2006, 23(1): 142-144.
[100] Rugini E, Pellegrineschi A, Mencuccini M, et al. Increase of rooting ability in the woody species kiwi (Actinidia deliciosa A. Chev.) by transformation with Agrobacterium rhizogenes rol genes[J]. Plant Cell Reports, 1991, 10(6-7): 291-295.
[101] Salm T P M V, Toorn C J G V, Bouwer R, et al. Production of ROL gene transformed plants of Rosa hybrida L. and characterization of their rooting ability[J]. Molecular Breeding, 1997, 3(1): 39-47.
[102] Chen H, Zhao Y, Xu Z H. Overexpression of OsRAA1 Causes Pleiotropic Phenotypes in Transgenic Rice Plants, including Altered Leaf, Flower, and Root Development and Root Response to Gravity[J]. Plant Physiology, 2004, 135(3): 1502-1513.
[103] Kristinna Himanen, Elodie Boucheron, Steffen Vanneste, et al. Auxin-Mediated Cell Cycle Activation during Early Lateral Root Initiation[J]. The Plant Cell,2002, 14(10):2339-2351.
[104] Steffen Vanneste, Lies Maes, Ive De Smet, et al. Auxin regulation of cell cycle and its role during lateral root initiation[J]. Physiologia Plantarum, 2005, 123(2): 139-146.
[105] Laskowski M J, Williams M E, Nusbaum H C, et al. Formation of lateral root meristems is a two- stage process[J]. Development, 1995, 121(10): 3303-3310.
[106] Lieven De Veylder, Gerrit T S. Beemster, Tom Beeckman, et al. CKS1At overexpression in Arabidopsis thaliana inhibits growth by reducing meristem size and inhibiting cell‐cycle progression[J]. The Plant Journal, 2001,25(6):617-626.