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      超聲輔助提取紅花中主要活性成分的工藝優(yōu)化

      2021-03-02 03:53:08鄧潔瓊黃位年
      植物研究 2021年5期
      關(guān)鍵詞:萘酚山奈蕓香

      李 鈺 楊 曉 葉 霄 鄧潔瓊 黃位年 代 沙

      (1. 四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院經(jīng)濟(jì)作物育種栽培研究所,成都 610300;2. 四川省攀枝花市農(nóng)林科學(xué)研究院,攀枝花 617000)

      紅花(Carthamus tinctoriusL.)是菊科(Compositae)紅花屬(Carthamus)的一種薊狀自花授粉1 年生二倍體(2n=24)草本植物,該屬約25 種,我國僅有紅花一種。我國紅花種植面積約3.5 萬公頃,年產(chǎn)量約4 000 噸,主要分布于新疆伊犁和塔城區(qū)域。其干燥花為《中國藥典》(2020版)收錄的紅花藥材,傳統(tǒng)用藥以紅花干燥花瓣入藥。紅花的主要活性成分較多,已分離并報道的包含黃酮類物質(zhì)、生物堿、脂肪酸、聚炔等200 多種化合物[1~2]。干燥花瓣主要活性成分為黃酮類化合物,包括查耳酮類化合物、山奈酚和槲皮素為基本母核的一系列衍生物、蘆丁、木犀草素等化合物[3]。

      查耳酮類多為色素類成分,其中紅花黃色素是多種水溶性成分的混合物,通過進(jìn)一步分離,1993 年首次分離得到羥基紅花黃色素A。羥基紅花黃色素A(hydroxysafflor yellow A,HSYA)為藥典規(guī)定的質(zhì)量指標(biāo)性成分,研究較為廣泛,醫(yī)學(xué)上主要集中于冠心病、腦血栓等血液循環(huán)疾病的治療及抗腫瘤、抗心腦血管病變和抗誘變等方面[4~6]。姜華、盛雨辰等人研究表明HSYA 可抑制血小板激活因子誘發(fā)的血小板聚集與釋放,可競爭性地抑制血小板激活因子與血小板受體的結(jié)合,在腦缺血性損傷動物模型中,HSYA 具有明顯的治療、防御和神經(jīng)保護(hù)功能,可以顯著減少腦組織壞死面積,改善動物行為缺陷,預(yù)防缺血性腦梗塞[7~9]。同時,HSYA 還是一種應(yīng)用較廣的天然食用色素,可用于各種糕點(diǎn)、糖果、清涼飲料各類食品和化妝品的高端著色劑,具有很高的實(shí)用價值。山萘酚衍生物山奈酚-3-O-蕓香糖苷和山奈酚-3-O-葡萄糖苷可抑制疼痛和水腫,具有鎮(zhèn)靜和抗炎的作用[10]。槲皮素及其苷類有抗炎、抗病毒、抗腫瘤的作用。木犀草素具有消炎、抗過敏、抗腫瘤、抗菌等多種藥理活性[11]。

      紅花中黃酮類生物合成途徑普遍認(rèn)為其為復(fù)合型代謝路徑,分別經(jīng)草莽酸途徑和乙酸—丙二酸途徑,由一個桂皮酰輔酶A和三個丙二酰輔酶A在查耳酮合成酶(CHS)的作用下生成查耳酮,再在相關(guān)酶的作用下轉(zhuǎn)化形成黃酮、異黃酮、花青素苷等各類黃酮化合物[1,12~14](見圖1)。中藥是一個“多功效、多組分”的復(fù)雜體系,不同活性物質(zhì)具有不同的藥理活性,不同提取方法會影響提取物的組成和各成份含量,從而影響提取物的功能活性。目前紅花黃酮類成分提取方法有水提法、微波輔助提取法、超聲輔助水提法、纖維素酶法提取等,且各學(xué)者評價指標(biāo)中紅花黃酮類化合物種類不盡相同,導(dǎo)致提取工藝多樣化[3,15~18]。

      紅花黃酮類主要成分為藥典規(guī)定成分HSYA,本試驗(yàn)以紅花黃酮類及其代謝通路上相關(guān)化合物為研究對象,以HPLC測定紅花黃酮類主要化合物含量為評價指標(biāo),通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面分析模型對提取工藝進(jìn)行建立和優(yōu)化,以期找到制備紅花主要活性提取物的最佳方法和工藝,為紅花品種改良及進(jìn)一步開發(fā)利用提供實(shí)踐基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      紅花材料均由四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院經(jīng)濟(jì)作物研究所提供,采集于成都市青白江區(qū)姚渡鎮(zhèn)科研基地,于盛花期采摘后40℃烘干粉碎,過5 目藥典篩(0.18 mm孔徑),密封儲存于干燥器中備用。

      甲醇(色譜純)、乙腈(色譜純)美國Fisher 公司;磷酸(色譜純)天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;超純水(Milli-Q 純水系統(tǒng));對照品HSYA(CASNo:78281-02-4,批號:20120816)、山萘酚-3-O-蕓香糖苷(CASNo:17650-84-9,批號:20131021)、山萘酚-3-o-葡萄糖苷(CASNo:480-10-4,批號:20130124);槲 皮 素(CASNo:117-39-5,批 號:20110926)購自上海永恒生物科技有限公司;對照品槲皮素葡萄糖苷(CASNo:482-35-9,批號:PS001041/PS0400-0020)、柚皮素(CASNo:480-41-1,批號:PS001115/PS0240-0025)、柚皮素查耳酮(CASNo:73692-50-9,批號:PS170320-04)、山萘酚(CASNo:520-18-3,批號:PS001201/PS0207-0025)購自成都普思生物科技股份有限公司。

      1.2 儀器與設(shè)備

      Agilent 1200 高效液相色譜儀,G1314B VWD檢測器,Aglilent Chemstation 化學(xué)工作站;KQ-250VDB 雙頻數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);HHS-11-4 恒溫水浴鍋(上海百典儀器設(shè)備有限公司);T-214 電子天平(北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司);GZX-9146MBE 電熱鼓風(fēng)干燥箱(上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠)。

      1.3 方法

      1.3.1 提取方式及溶劑的選擇

      研究考察超聲提取和回流提取在不同提取溶劑(70%甲醇、70%酸性甲醇、70%乙醇、70%酸性乙醇)下對紅花黃酮類成分含量的影響。材料中黃酮類物質(zhì)采用HPLC-UV 法測定,用外標(biāo)法計(jì)算含量,重復(fù)3 次測定,取平均值。根據(jù)試驗(yàn)結(jié)果選擇適宜的提取方法進(jìn)行單因素試驗(yàn)。

      超聲步驟:精密稱取0.2 g 材料,加入70%的溶劑25 mL,稱重,70℃超聲45 min,超聲功率250 W,頻率45 kHz,超聲結(jié)束后冷卻溶液,冷卻后補(bǔ)重至原重,12 000 r·min-1離心3 min,取濾液,即得。

      回流步驟:精密稱取0.2 g材料,精密加入70%溶劑25 mL 提取溶劑,稱重,70℃水浴回流45 min,冷卻后加溶劑補(bǔ)重至原重,12 000 r·min-1離心3 min,取濾液,即得。

      HPLC 色 譜 條 件:Agilent XDB-C18 色 譜 柱(150 mm×4.6 mm,5 μm),體積流量V=1 mL·min-1,柱 溫30℃,進(jìn) 樣 量10 μL,檢 測 波 長337 nm(見表1)。

      表1 梯度洗脫程序Table 1 Sequence of gradient elution

      1.3.2 提取方法的優(yōu)化

      1.3.2.1 單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)

      采用單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì),研究考察兩種提取方法(超聲提取和回流提?。┰诓煌崛∪軇?0%甲醇、70%酸性甲醇、70%乙醇、70%酸性乙醇)下對紅花材料黃酮類成分含量的影響。提取后,材料中黃酮類成分采用HPLC-UV法測定。

      超聲法單因素試驗(yàn):分別對料液比(0.1∶25、0.2∶25、0.3∶25、0.4∶25、0.5∶25、0.6∶25 g·mL-1)、超聲溫度(25、40、55、70、85℃)、超聲時間(15、30、45、60、75、90 min)、溶劑百分?jǐn)?shù)(0%、10%、30%、50%、70%、100%)、超聲功率(40%、60%、80%、100%,Max=250 W)、超聲頻率(28 kHz、45 kHz)進(jìn)行單因素考察。

      回流法單因素試驗(yàn):分別對料液比(0.1∶25、0.2∶25、0.3∶25、0.4∶25、0.5∶25、0.6∶25 g·mL-1)、回流溫度(40、55、70、85、100℃)、回流時間(15、30、45、60、75、90 min)、溶劑百分?jǐn)?shù)(0%、30%、50%、70%、90%、100%)、溶劑pH(1、2、3、4、5、6.3)進(jìn)行單因素考察。

      1.3.2.2 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)

      根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,利用Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,以花瓣中主要黃酮類成分為響應(yīng)值,以單因素結(jié)果所選因素為自變量,建立多因素3 水平試驗(yàn)點(diǎn)的響應(yīng)面分析試驗(yàn)?zāi)P?,并利用Design Expert 10.0 對結(jié)果進(jìn)行多元線性回歸方程擬合,檢驗(yàn)?zāi)P?,對模型進(jìn)行響應(yīng)值預(yù)測,優(yōu)化花瓣中主要黃酮類成分提取工藝條件,并進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn)。

      1.4 統(tǒng)計(jì)分析

      所有試驗(yàn)均重復(fù)3 次。單因素試驗(yàn)采用SPSS 22.0 軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行One-Way 方差分析,采用Design Expert 10.0軟件對響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析。

      1.5 優(yōu)化方法與藥典法比較驗(yàn)證

      取紅花材料分別用本試驗(yàn)優(yōu)化方法和藥典方法進(jìn)行提取測定,比較不同提取方法中黃酮類成分提取率。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 紅花提取工藝條件確定結(jié)果

      2.1.1 紅花提取方法和提取溶劑的選擇

      紅花中檢測的黃酮類成分指標(biāo)有HSYA、槲皮素葡萄糖苷、山萘酚-3-O-蕓香糖苷、山萘酚-3-O-葡萄糖苷、槲皮素、柚皮素查耳酮、柚皮素、山萘酚;不同提取方法各成分提取率如圖2:紅花中主要黃酮類成分為HSYA 和山萘酚-3-O-蕓香糖苷,兩者共同占比85%以上;山萘酚-3-O-葡萄糖苷和槲皮素葡萄糖苷含量較少,各占8%以下;槲皮素、柚皮素查耳酮、柚皮素、山萘酚提取率在1%以下忽略不計(jì)。結(jié)果顯示HSYA 對提取溶劑PH 較為敏感,在酸性提取溶劑條件下,提取率均極顯著降低,山萘酚-3-O-蕓香糖苷提取率則對PH無顯著變化,降低PH 有助于提高槲皮素葡萄糖苷和山萘酚-3-O-葡萄糖苷提取率。針對不同提取溶劑,超聲和回流提取效果差異不同。乙醇作溶劑時,超聲和回流HSYA 和山萘酚-3-O-蕓香糖苷提取率差異不顯著。甲醇作溶劑時,超聲HSYA 和山萘酚-3-O-蕓香糖苷提取率極顯著高于回流,因此選擇70%甲醇超聲作為紅花提取黃酮類成分的考察工藝,考察指標(biāo)以主要成分HSYA 和山萘酚-3-O-蕓香糖苷提取率為工藝目標(biāo)。

      2.1.2 單因素試驗(yàn)結(jié)果

      2.1.2.1 料液比對提取紅花黃酮類成分含量的影響

      隨著料液比增加,HSYA提取率逐漸降低,山奈酚-3-O-蕓香糖苷先升高,后降低。0.1∶25和0.2∶25時,HSYA 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率變化差異不顯著,當(dāng)增加到0.3∶25 時,HSYA 提取率極顯著下降,山奈酚-3-O-蕓香糖苷變化不顯著,再繼續(xù)增大到0.4∶25時,山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率極顯著下降。因此選擇最佳料液比為0.2∶25 g·mL-1。

      2.1.2.2 超聲溫度對提取紅花黃酮類成分含量的影響

      溫度的增加會導(dǎo)致分子間運(yùn)動加速,滲透和擴(kuò)散速度加快,從而影響提取率[19]。隨著超聲溫度的增加,HSYA 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率變化呈現(xiàn)相同趨勢,先無顯著變化,40℃后提取率極顯著增加,最后趨于平衡。選擇考察超聲溫度為70℃。

      2.1.2.3 超聲時間對提取紅花黃酮類成分含量的影響

      超聲時間影響溶質(zhì)溶出量,隨著超聲時間的增加,HSYA 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率變化趨勢相似。隨超聲時間增加,提取率增加,在30 min時達(dá)到最大值,隨后略有降低,但差異不顯著。因此,選擇考察超聲時間為30 min。

      2.1.2.4 甲醇百分?jǐn)?shù)對提取紅花黃酮類成分含量的影響

      隨著提取溶劑甲醇百分?jǐn)?shù)由0 增加到30%,HSYA提取率變化差異不顯著,隨后繼續(xù)增加甲醇百分?jǐn)?shù)至50%,HSYA 提取率極顯著增加,隨后變化差異不大,但若用100%甲醇,因HSYA 為水溶性物質(zhì),此時HSYA 提取率會極顯著降低。山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率隨著甲醇由0%增加到50%,提取率逐步顯著提高,隨后趨于平衡。因此,選擇考察提取溶劑為50%甲醇。

      2.1.2.5 超聲功率對提取紅花黃酮類成分含量的影響

      超聲儀最大功率為250 W,隨著超聲功率的增加,HSYA 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率變化趨勢相似,均為逐漸升高,在80%時達(dá)到最大提取率,隨后略有降低。但整個過程變化差異均不顯著。因此,選擇考察超聲功率為80%。

      2.1.2.6 超聲頻率對提取紅花黃酮類成分含量的影響

      超聲頻率考察試驗(yàn)中,HSYA、山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率均為45 kHz>28 kHz,但差異不顯著。因此,選45 kHz作為超聲頻率。

      2.1.3 紅花響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果

      在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,利用Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,以紅花中主要黃酮類成分HSYA 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率為響應(yīng)值,以料液比(X1)、超聲溫度(X2)、超聲時間(X3)、甲醇百分?jǐn)?shù)(X4)、超聲功率(X5)5 個因素為自變量,建立5因素3 水平共46 個試驗(yàn)點(diǎn)的響應(yīng)面分析試驗(yàn)?zāi)P?,因素水平編碼見表2,試驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果見表3。

      表2 響應(yīng)面試驗(yàn)因素與水平Table 2 Experimental factors and levels used in response surface analysis

      表3 響應(yīng)面試驗(yàn)方案與結(jié)果Table 3 Design and results of response surface experiment

      2.1.3.1 紅花響應(yīng)面試驗(yàn)數(shù)據(jù)處理及數(shù)值分析

      為了研究不同條件對紅花主要黃酮類成分HSYA 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷制備的影響和確定最佳提取條件,在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上進(jìn)行中心組合試驗(yàn)(Box-Behnken),對工藝參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,試驗(yàn)設(shè)計(jì)方差分析結(jié)果見表4~5。

      表4 HSYA優(yōu)化回歸模型方差分析Table 4 Analysis of varlance for the content of total HSYA in the extract with various extraction conditions

      表5 山奈酚-3-O-蕓香糖苷優(yōu)化回歸模型方差分析Table 5 Analysis of varlance for the content of total Kaempferol-3-O-β-rutinoside in the extract with various extraction conditions

      以HSYA 為響應(yīng)值時,模型的F-Value 值為121.43,Lack of Fit 值為2.24,試驗(yàn)?zāi)P蜆O顯著,失擬項(xiàng)不顯著,信噪比37.861,變異系數(shù)3.02%,表明數(shù)據(jù)集中,離散程度小,擬合方程滿足響應(yīng)面分析的要求。此時所得HSYA提取率(Y)對料液比(X1)、超聲溫度(X2)、超聲時間(X3)、甲醇百分?jǐn)?shù)(X4)、超聲功率(X5)的二次回歸方程為:Y=1.58 167-0.53 720X1-0.00 524 603X3+ 0.021 834X4- 0.00 698 661X5-0.022 143X1X4+0.0 000 964 286X4X5+3.61 310X12+0.000 112 434X32-0.000 250 097X42。模型的校正決定系數(shù)R2Adj=0.9601,說明該模型能解釋96.01%響應(yīng)值的變化;決定系數(shù)R2=0.9681,說明該模型擬合程度較好,可用于模型分析和預(yù)測HSYA 的提取率。根據(jù)F值和P值確定影響HSYA 提取的主要因素為甲醇百分?jǐn)?shù)>料液比>料液比與甲醇百分比的交互作用>甲醇百分?jǐn)?shù)與超聲功率的交互作用>超聲時間>超聲功率。

      以山奈酚-3-O-蕓香糖苷為響應(yīng)值時,對多元回歸方程進(jìn)行方差分析(見表4),此模型雖然失擬項(xiàng)顯著,但模型仍呈極顯著。變異系數(shù)5.77%,離散度減小,R2=0.899 8,調(diào)整決定系數(shù)RAdj2=0.884 4,信噪比為20.782,表明該模型能解釋88.44%山奈酚-3-O-蕓香糖苷含量的變化,能在一定程度下對不同提取條件下的山奈酚-3-O-蕓香糖苷得率進(jìn)行預(yù)測,模型可用。對回歸方程系數(shù)進(jìn)行顯著性檢驗(yàn),甲醇百分?jǐn)?shù)(X4)、X42為極顯著項(xiàng),X22這2 項(xiàng)為顯著項(xiàng),表明甲醇百分?jǐn)?shù)對山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率具有極顯著影響,但甲醇百分?jǐn)?shù)、超聲溫度對提取率的影響不是簡單的線性關(guān)系。此時所得山奈酚-3-O-β-蕓香糖苷提取率(Y′)對料液比(X1)、超聲溫度(X2)、超聲時間(X3)、甲醇百分?jǐn)?shù)(X4)、超聲功率(X5)的二次回歸方程為:X′=-1.65 562+0.036 282X2+0.041 308X4+0.017 893X5-0.000255291X22-0.000348251X42-0.000116518X52。影響山奈酚-3-O-β-蕓香糖苷提取的主要因素為溶劑甲醇的百分?jǐn)?shù)。

      2.1.3.2 交互作用對紅花HSYA 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷得率的影響

      響應(yīng)面3D 曲面的傾斜度可以確定兩因素對響應(yīng)值的影響程度,傾斜度越高,陡坡越陡,說明兩者交互作用越顯著,顏色越深。等高線形狀也可以直觀地反映各因素交互作用對響應(yīng)值影響的強(qiáng)弱,橢圓形表示兩因素交互作用顯著,圓形則不顯著,等高線中最小橢圓的中心點(diǎn)即響應(yīng)面的最高點(diǎn)[20-23]。由表4~5 方差分析可知,料液比與甲醇百分?jǐn)?shù)、超聲功率與甲醇百分?jǐn)?shù)對HSYA 提取率的影響存在極顯著的交互作用,其他因素間交互作用不顯著。在圖9~10 中表現(xiàn)為響應(yīng)曲面坡度相對較陡,等高線比較密或呈橢圓形。交互作用中,甲醇百分?jǐn)?shù)對HSYA 提取率的影響強(qiáng)于料液比,甲醇百分?jǐn)?shù)對HSYA 提取率影響強(qiáng)于超聲功率。

      2.1.4 優(yōu)化提取工藝參數(shù)的驗(yàn)證

      通過Design Expert 10.0 分析預(yù)測所得最大響應(yīng)值:HSYA 提取率1.756%,山奈酚-3-O-β-蕓香糖苷提取率1.539%,與之對應(yīng)的預(yù)測工藝條件為:料液比0.1∶25 g·mL-1、超聲溫度71.091℃、超聲時間45 min、甲醇百分比56.806%、超聲功率71.087%(Max=250 W)。根據(jù)實(shí)際操作,對提取工藝進(jìn)行處理,在料液比0.1∶25 g·mL-1、超聲溫度70℃、超聲時間45 min、甲醇百分比57%、超聲功率71%(Max=250 W)的條件下進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),檢測圖譜如圖11 所示,組份間分離效果好,HSYA 提取率實(shí)測值為1.74%,山奈酚-3-O-β-蕓香糖苷提取率實(shí)測值為1.53%,與預(yù)測的理論值相接近,驗(yàn)證了此模型的有效性。

      2.2 優(yōu)化方法與藥典法比較驗(yàn)證

      由圖12 可知,4 個材料中優(yōu)化后的提取方法HSYA 得率高于藥典中的提取方法,山奈酚-3-Oβ-蕓香糖苷提取率極限值高于藥典提取法,該方法在提取紅花中主要黃酮類成分具有一定的優(yōu)越性,對紅花中主要黃酮類成分具有較好的提取性。

      3 結(jié)論

      通過HPLC測定,紅花花瓣中主要黃酮類成分為羥基紅花黃色素A 和山奈酚-3-O-蕓香糖苷,紅花中主要黃酮類成分為HSYA 和山萘酚-3-O-蕓香糖苷,兩者共同占比85%以上。本試驗(yàn)在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上進(jìn)行5 因素3 水平46 個試驗(yàn)點(diǎn)的響應(yīng)面優(yōu)化,得出影響羥基紅花黃色素A 提取率最主要因素為甲醇濃度>料液比>料液比與甲醇濃度的交互作用>甲醇濃度與超聲功率的交互作用;影響山奈酚-3-O-β-蕓香糖苷提取率最主要因素為甲醇濃度。

      紅花花瓣主要活性物質(zhì)最佳提取條件為:料液比0.1∶25 g·mL-1、超聲溫度70℃、超聲時間45 min、溶劑為57%甲醇、超聲功率177W,所得羥基紅花黃色素A 提取率為1.74%;山奈酚-3-O-蕓香糖苷提取率為1.53%。

      不同于其他物種,紅花中花瓣幾乎不含花青素,黃酮類物質(zhì)主要由醌式查耳酮和黃酮醇組成[12,24]。醌式查耳酮是紅花花瓣顏色形成的主要物質(zhì),其紅色和黃色的染料都來自于醌式查耳酮一類[25~26]?;ㄖ兄饕S酮類成分HSYA 和山萘酚-3-O-蕓香糖苷由同一代謝通路起源,在四羥基查耳酮(tetrahydroxy chalcone)下游分為兩條不同代謝支路,分別在相關(guān)酶的作用下代謝生成醌式查耳酮和黃酮醇及其糖苷。該方法能較好的提取其代謝通路中的主要活性成分HSYA 和山萘酚-3-O-蕓香糖苷,為產(chǎn)品開發(fā)、品種改良奠定一定研究基礎(chǔ)。

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