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      響應(yīng)面法優(yōu)化苦菜蛋白質(zhì)提取工藝

      2021-03-05 04:36:36賀瑩
      食品工業(yè) 2021年2期
      關(guān)鍵詞:苦菜蛋白質(zhì)條件

      賀瑩

      呂梁學(xué)院生命科學(xué)系(呂梁 033000)

      苦菜(Sonchus oleraceusL.)系菊科苦苣菜屬,一年生或二年生草本植物,莖直立或斜生,折斷有白色乳汁,基生葉羽狀深裂,全形長橢圓形或倒披針形,葉片邊緣呈鋸齒狀;瘦果褐色,為長圓形,助間有橫皺紋[1]??嗖酥饕?6種氨基酸,其中包括8種人體必需氨基酸,占氨基酸總量的43%,從苦菜中提取分離出的蛋白質(zhì),無動(dòng)物蛋白所含的膽固醇,營養(yǎng)價(jià)值高,易于被人體吸收,具有十分廣闊的市場(chǎng)潛力和前景[2-3]。

      目前苦菜產(chǎn)品的開發(fā)正處于起步階段,苦菜乳酸飲料[4]、苦菜復(fù)合果蔬汁、苦菜凍干粉等苦菜產(chǎn)品的推出深受消費(fèi)者的喜愛。但苦菜在其蛋白質(zhì)資源、產(chǎn)品加工等方面研究的深度不夠,這就極大限制了對(duì)苦菜的深度應(yīng)用開發(fā)。我們需要加深對(duì)苦菜蛋白質(zhì)的研究,為苦菜進(jìn)一步開發(fā)利用提供技術(shù)和理論支持,因此課題的研究成果有一定實(shí)用價(jià)值[5-6]。

      1 試驗(yàn)材料與方法

      1.1 試驗(yàn)材料與設(shè)備

      苦菜:采于山西呂梁田間;考馬斯亮藍(lán)G250,牛血清蛋白(BSA);氫氧化鈉、酚酞以及氯化鈉分析純,天津鳳船化學(xué)試劑科技有限公司。

      L550型離心機(jī),金壇市恒豐儀器制造有限公司;LDZX-50KBS 高壓蒸汽滅菌鍋、HPX-9052MBE電熱恒溫培養(yǎng)箱、電熱鼓風(fēng)干燥箱(101-2A),上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;BSA224S電子天平、PHS-3E pH計(jì),上海精密化學(xué)儀器有限公司。

      1.2 試驗(yàn)研究方案

      1.2.1 蛋白含量測(cè)定

      蛋白質(zhì)含量采用考馬斯亮藍(lán)法[7]測(cè)定:采用UV-3100PC型紫外可見分光光度計(jì),以牛血清蛋白(BSA)為標(biāo)準(zhǔn)蛋白,以吸光度為縱坐標(biāo)率,各標(biāo)準(zhǔn)液質(zhì)量濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,見圖1,并建立回歸方程為

      式中:Y為吸光度;X為蛋白質(zhì)的質(zhì)量濃度,μ g/mL。

      1.2.2 原料處理

      將采摘的新鮮苦菜清洗干凈并稱質(zhì)量,然后將其置于80 ℃電熱鼓風(fēng)干燥箱中風(fēng)干5 h,將風(fēng)干的苦菜用高速粉碎機(jī)粉碎,過孔徑0.180 mm篩,置于一次性干燥密封袋備用[8-9]。

      圖1 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線圖

      1.2.3 苦菜蛋白質(zhì)的提取工藝

      提取工藝流程:原料采摘清洗→風(fēng)干→粉碎→鹽溶→調(diào)pH→加熱浸提→過濾→離心分離→上清液(蛋白質(zhì)提取液)→測(cè)定。

      操作要點(diǎn):準(zhǔn)確稱取1 g苦菜樣品置于燒杯中,加入0.2 mol/L的氯化鈉溶液,用1 mol/L的稀鹽酸調(diào)節(jié)溶液pH,然后將其置于恒溫水浴鍋中攪拌提取[10],一段時(shí)間后將其取出進(jìn)行過濾,然后將濾液于6 000 r/min下離心15 min,3次,合并上清液,進(jìn)而采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定上清液中苦菜蛋白質(zhì)的含量。

      1.2.4 單因素試驗(yàn)

      以苦菜中蛋白提取量為指標(biāo),研究pH、料液比、提取溫度和提取時(shí)間4個(gè)因素對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響,每個(gè)試驗(yàn)重復(fù)3次。

      1.2.4.1 pH對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      在料液比1∶20 g/mL,提取溫度60 ℃,提取時(shí)間2.0 h條件下,研究不同pH 2.6,2.8,3.0,3.2和3.4對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響。

      1.2.4.2 料液比對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      在pH 3.0,提取溫度60 ℃,提取時(shí)間2.0 h條件下,研究不同料液比1∶15,1∶20,1∶25,1∶30和1∶35 g/mL對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響。

      1.2.4.3 提取溫度對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      在pH 3.0,料液比1∶20 g/mL,提取時(shí)間2.0 h條件下,研究不同提取溫度55,60,65,70和75 ℃對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響。

      1.2.4.4 提取時(shí)間對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      在pH 3.0,料液比1∶20 g/mL,提取溫度60 ℃條件下,研究不同提取時(shí)間1.0,1.5,2.0,2.5和3.0 h對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響。

      1.2.5 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)

      依據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,選取pH(A)、料液比(B)、提取溫度(C)和提取時(shí)間(D)4個(gè)因素,以苦菜蛋白質(zhì)提取量(Y)為指標(biāo),設(shè)計(jì)四因素三水平的Box-Behnken中心組合試驗(yàn)[11-12],探索苦菜蛋白質(zhì)提取的最佳工藝參數(shù)。試驗(yàn)因素、水平見表1。

      1.2.6 計(jì)算公式

      1.2.7 數(shù)據(jù)處理

      采用Origin 9.0繪圖軟件繪制單因素對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響趨勢(shì)圖,采用Design-Expert 7.0軟件進(jìn)行響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)與分析,試驗(yàn)安排見表1。

      表1 響應(yīng)面試驗(yàn)因素及水平

      2 結(jié)果與分析

      2.1 單因素試驗(yàn)

      2.1.1 pH對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      由圖2可知,在料液比1∶20 g/mL,提取溫度60℃,提取時(shí)間2.0 h條件下,隨著pH的升高,苦菜蛋白質(zhì)提取量也隨之發(fā)生變化,pH為3.0時(shí)苦菜蛋白提取量開始增加,pH為3.2時(shí)苦菜蛋白質(zhì)提取量達(dá)到峰值;隨著pH的逐漸升高,苦菜蛋白質(zhì)提取量開始呈現(xiàn)下降趨勢(shì),因此,試驗(yàn)選取pH 3.2為苦菜蛋白質(zhì)提取的最適pH。

      圖2 pH對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      2.1.2 料液比對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      由圖3可知,在提取溫度60 ℃,pH 3.0,提取時(shí)間2.0 h,不同料液比條件下,苦菜蛋白質(zhì)提取量整體呈先增加后減少的趨勢(shì),在料液比為1∶25 g/mL時(shí)苦菜蛋白質(zhì)提取量最高,其他比例蛋白提取量相對(duì)較低。綜合考慮,試驗(yàn)選取1∶25 g/mL為苦菜蛋白質(zhì)提取的最適料液比。

      2.1.3 提取溫度對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      由圖4可知,在料液比1∶20 g/mL,pH 3.0,提取時(shí)間2.0 h,不同提取溫度條件下,苦菜蛋白質(zhì)提取量隨提取溫度的升高而增加,這是由于苦菜蛋白質(zhì)的溶解度隨溫度的升高而增大。當(dāng)提取溫度為65 ℃時(shí),苦菜蛋白質(zhì)提取量為3.42 mg/g。提取溫度達(dá)到65 ℃后,苦菜蛋白質(zhì)的提取量隨著提取溫度的升高而繼續(xù)增加,但增加的幅度明顯減慢,因此,提取溫度選擇65℃比較合適。

      圖3 料液比對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      圖4 提取溫度對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      2.1.4 提取時(shí)間對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      由圖5可知,在pH 3.0,料液比1∶20 g/mL,提取溫度60 ℃的條件下,隨著提取時(shí)間的增長,苦菜蛋白質(zhì)的提取量越大,當(dāng)提取時(shí)間為2.0 h時(shí),提取效果最好。當(dāng)提取時(shí)間超過2.0 h時(shí),苦菜蛋白質(zhì)提取量開始下降,說明提取時(shí)間過長會(huì)破壞蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu),從而使得苦菜蛋白質(zhì)的提取量下降。因此,試驗(yàn)選取2.0 h為苦菜蛋白質(zhì)提取的最適提取時(shí)間。

      圖5 提取時(shí)間對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響

      2.2 響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)

      2.2.1 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果

      綜合上述單因素試驗(yàn)結(jié)果,選取pH、料液比、提取溫度及提取時(shí)間為考察因素,根據(jù)響應(yīng)面分析法中心組合設(shè)計(jì)原理進(jìn)行響應(yīng)面試驗(yàn),苦菜蛋白質(zhì)提取工藝的響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果見表2。

      表2 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

      2.2.2 回歸模型的建立

      利用Design-Expert 7.0軟件對(duì)響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行多元回歸分析,得到苦菜蛋白質(zhì)提取量與pH(A)、料液比(B)、提取溫度(C)和提取時(shí)間(D)的二次回歸模型為

      式中:各項(xiàng)系數(shù)的絕對(duì)值的大小表示各影響因素對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響大小,系數(shù)的正負(fù)表示該因素影響的方向,各因素對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響由大到小依次為B>C>D>A。

      對(duì)回歸模型進(jìn)行方差分析(表3),可以看出模型p=0.000 6<0.01,表明該模型具有極顯著性,說明條件不同,苦菜蛋白質(zhì)的提取量有顯著差異;失擬項(xiàng)p=0.134 1>0.05,說明在試驗(yàn)所選各因素水平范圍內(nèi),擬合程度好,此模型可用于對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析和預(yù)測(cè)。從表3可以看出,在試驗(yàn)所選各因素水平范圍內(nèi),B影響極顯著(p<0.01),C影響顯著,A、D影響不顯著,二次項(xiàng)A2,B2,C2和D2對(duì)模型影響極顯著。

      表3 回歸模型方差分析

      2.2.3 響應(yīng)曲面分析

      由圖6可知,隨著提取pH的升高、料液比的增大,苦菜蛋白質(zhì)提取量呈現(xiàn)逐漸升高后降低的趨勢(shì)。由圖7可知,隨著pH的遞增、提取溫度的升高,苦菜蛋白質(zhì)提取量呈現(xiàn)逐漸升高然后降低的趨勢(shì)。由圖8可知,隨著提取時(shí)間的增長,苦菜蛋白質(zhì)提取量呈現(xiàn)逐漸升高然后降低的趨勢(shì);隨著pH的遞增,苦菜蛋白質(zhì)提取量也呈現(xiàn)逐漸升高后下降趨勢(shì)。由圖9可知,隨著提取溫度的升高,苦菜蛋白質(zhì)提取量呈現(xiàn)逐漸升高然后降低的趨勢(shì);隨著料液比的遞增,苦菜蛋白質(zhì)提取量也呈現(xiàn)逐漸升高后下降趨勢(shì)。由圖10可知,隨著提取時(shí)間的增長,提取率呈現(xiàn)逐漸升高后降低的趨勢(shì);隨著料液比的遞增,苦菜蛋白質(zhì)提取量同樣呈現(xiàn)先升高后趨于平緩。由圖11可知,隨著提取時(shí)間的增長,提取率呈現(xiàn)逐漸升高后降低的趨勢(shì);隨著提取溫度的升高,苦菜蛋白質(zhì)提取量同樣呈現(xiàn)先升高后趨于平緩。由此可知,各因素之間交互作用的影響與單因素影響不一致,各因素間交互作用對(duì)響應(yīng)值影響不顯著。

      圖6 pH與料液比交互作用的響應(yīng)面與等高線

      圖7 pH與提取溫度交互作用的響應(yīng)面與等高線

      圖8 pH與提取時(shí)間交互作用的響應(yīng)面與等高線

      圖9 料液比與提取溫度交互作用的響應(yīng)面與等高線

      圖10 料液比與提取時(shí)間交互作用的響應(yīng)面與等高線

      圖11 提取溫度與提取時(shí)間交互作用的響應(yīng)面與等高線

      2.2.4 最佳提取條件驗(yàn)證

      由Design-Expert 7.0軟件對(duì)工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,分析可得苦菜蛋白質(zhì)提取量的最佳試驗(yàn)條件是pH為3.23,料液比1∶26.15 g/mL,提取溫度65.4 ℃,提取時(shí)間2.51 h,在此條件下的理論提取量為3.5 mg/g。根據(jù)上述優(yōu)化提取條件的試驗(yàn)結(jié)果,為了操作方便,將苦菜蛋白質(zhì)的提取工藝條件調(diào)整為pH 3.2,料液比1∶26 g/mL,提取溫度65 ℃,提取時(shí)間2.5 h,經(jīng)過3次平行試驗(yàn),得到最佳條件下苦菜蛋白質(zhì)提取量為3.54 mg/g,與理論苦菜蛋白質(zhì)提取量無顯著性差異,由此說明通過響應(yīng)面優(yōu)化得到的回歸方程模型及最佳條件可靠。

      3 結(jié)論

      以苦菜為原料,采用鹽溶、酸熱綜合方法提取苦菜蛋白質(zhì),通過單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì),得到各因素對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響趨勢(shì)圖,在此基礎(chǔ)上通過四因素三水平響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)設(shè)計(jì),全面且直觀地分析了各因素對(duì)苦菜蛋白質(zhì)提取量的影響,以及各因素之間的交互作用,建立回歸模型,經(jīng)驗(yàn)證該模型合理可靠,表明影響苦菜蛋白質(zhì)提取量的主要因素是料液比與提取溫度??嗖说鞍踪|(zhì)最佳提取工藝條件為pH 3.2,料液比1∶26 g/mL,提取溫度65 ℃,提取時(shí)間2.5 h,經(jīng)驗(yàn)證試驗(yàn),得到苦菜蛋白質(zhì)的提取量為3.54 mg/g。試驗(yàn)得到的工藝參數(shù)可為生產(chǎn)應(yīng)用提供參考。

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