基于液相色譜-氣相色譜聯(lián)用測定巧克力中的飽和烴與芳香烴礦物油

謝堯卿，劉玲玲，李冰寧，歐陽杰，武彥文,*

（1.北京市科學(xué)技術(shù)研究院北京市理化分析測試中心，北京市食品安全測試工程技術(shù)研究中心，北京 100094；2.北京林業(yè)大學(xué)生物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，北京 100083）

礦物油主要來源于石油，包括石油經(jīng)過物理分離（如萃取、蒸餾）和/或化學(xué)轉(zhuǎn)化（如裂解、氫化、烷基化）等煉制的各類石化產(chǎn)品，以及煤、天然氣、生物質(zhì)合成的工業(yè)油。礦物油的化學(xué)類型復(fù)雜，主要包含由直鏈、支鏈和環(huán)狀烷烴組成的飽和烴礦物油（mineral oil saturated hydrocarbons，MOSH）以及高度烷基化（通常含1～5 個苯環(huán)）的芳香烴礦物油（mineral oil aromatic hydrocarbons，MOAH）[1-4]。食品中的礦物油污染相當(dāng)普遍，原因是礦物油可以從原料種植、生產(chǎn)加工、包裝運(yùn)輸和環(huán)境污染多個途徑遷移至食品[1,5-8]。歐洲安全局（European Food Safety Authority，EFSA）規(guī)定食品中的礦物油為工業(yè)來源的C10～C50碳?xì)浠衔颷1]。研究發(fā)現(xiàn)MOSH是人體內(nèi)含量最高的污染物，其中C16～C35部分容易蓄積在脂肪組織、淋巴結(jié)、脾臟和肝臟中形成微型肉芽腫，含3 個以上苯環(huán)的MOAH有致癌和遺傳毒性等[1,9-10]。由于礦物油涉及領(lǐng)域廣泛，各國目前尚未出臺限量標(biāo)準(zhǔn)。不過，礦物油對人體健康有風(fēng)險，值得關(guān)注。

礦物油與油脂互溶，油脂及其含油食品尤其容易受到污染，其中食用油的污染最為嚴(yán)重，因此國際上首先推薦了食用油中礦物油的分析方法[11-12]。研究表明，巧克力中也普遍含有礦物油，Grob等[13]發(fā)現(xiàn)巧克力含有高達(dá)270 mg/kg的礦物油，其主要來源于包裝可可豆的麻袋，原因是麻袋制作需要用軟麻油調(diào)理纖維，軟麻油的主要成分就是礦物油。近年來，部分市場調(diào)查中也發(fā)現(xiàn)巧克力中普遍含有礦物油[14]。不過，巧克力樣品的基質(zhì)復(fù)雜，凈化困難；同時現(xiàn)有方法的靈敏度過低，定量限（limit of quantification，LOQ）為5 mg/kg[14]。因此，有必要從提高凈化與靈敏度兩方面進(jìn)行改進(jìn)。課題組以銀離子固相萃取柱（Ag+-SPE）凈化結(jié)合大體積進(jìn)樣-氣相色譜建立了巧克力中MOSH的測定方法[15-16]；后續(xù)發(fā)現(xiàn)，Ag+-SPE難以有效分離MOSH和MOAH兩部分，無法獲得低含量的MOAH部分[17-20]。

本實(shí)驗(yàn)基于液相色譜-氣相色譜（on-line liquid chromatography-gas chromatography，LC-GC）聯(lián)用系統(tǒng)建立巧克力中MOSH和MOAH的測定方法。LC-GC的優(yōu)勢是將LC的凈化與氣相色譜-氫火焰離子化檢測器（gas chromatography-hydrogen flame ionization detector，GC-FID）的測定在線聯(lián)用，LC的硅膠柱可以吸附油脂，同時分離MOSH和MOAH，然后通過閥切換、保留間隙與溶劑排空閥組成的接口，將LC洗脫流出的MOSH和MOAH全部轉(zhuǎn)入GC分析，真正實(shí)現(xiàn)了全樣品分析，最大程度地提升了分析方法的靈敏度[21]。不過，LC無法分離MOAH與烯烴，一些巧克力中含有過量天然烯烴會干擾MOAH測定。已有文獻(xiàn)報道采用環(huán)氧化反應(yīng)去除食用油中的烯烴[22-23]。本研究嘗試采用該方法凈化巧克力樣品中的烯烴，通過優(yōu)化環(huán)氧化反應(yīng)條件，最終建立巧克力中MOSH和MOAH的準(zhǔn)確測定方法后完成樣品分析。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

巧克力購于北京當(dāng)?shù)氐膶?shí)體超市與京東網(wǎng)上超市。

正己烷、二氯甲烷、無水乙醇（均為色譜純）美國Fisher Scientific公司；間氯過氧苯甲酸（3-chloroperbenzoic acid，m-CPBA） 梯希愛（上海）化成工業(yè)發(fā)展有限公司；硫代硫酸鈉 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

標(biāo)準(zhǔn)品：液體石蠟、正十一烷（C11）、正十三烷（C13）、環(huán)己基環(huán)己烷（cyclohexylcyclohexane，Cycy）、5α-膽甾烷（5α-cholestane，Cho）、戊基苯（pentylbenzene，5B）、1,3,5-三叔丁基苯（1,3,5-tri-tertbutylbenzene，TBB）、1-甲基萘（1-methylnaphthalene，1-MN）、2-甲基萘（2-methylnaphthalene，2-MN）、苝（perylene，Per）以及C7～C40正構(gòu)烷烴混合標(biāo)準(zhǔn)品均購自美國Sigma-Aldrich公司。其中C11和5B分別用于MOSH和MOAH部分的揮發(fā)損失考察；Cycy和2-MN分別為MOSH和MOAH的定量內(nèi)標(biāo)；C13和1-MN用于考察內(nèi)標(biāo)物Cycy和2-MN的響應(yīng)信號的準(zhǔn)確性；此外，Cho、TBB和Per用于監(jiān)控LC分離情況，它們分別為MOSH流分的末端，MOAH的開端與末端標(biāo)記物。

分別配制10、25、50、100、150、200、300 mg/mL的系列m-CPBA乙醇溶液；配制100 mg/mL硫代硫酸鈉溶液；配制9 種MOSH/MOAH混合標(biāo)準(zhǔn)溶液（溶劑是正己烷和/或甲苯），其中C13的質(zhì)量濃度150 mg/L，C11、Cycy、5B、TBB、1-MN和2-MN的質(zhì)量濃度為300 mg/L，Cho和Per的質(zhì)量濃度為600 mg/L；配制100 mg/L的C7～C40正構(gòu)烷烴混合標(biāo)準(zhǔn)溶液；配制2.0、4.0、6.0、8.0、10.0、20.0、30.0、40.0、50.0、100.0 mg/L的潤滑油（MOSH∶MOAH 85.5∶14.5）系列溶液。

1.2 儀器與設(shè)備

LC-GC聯(lián)用儀（包括配備二元泵和UV檢測器的LC 20A液相色譜儀，帶有FID的GC 2010 plus氣相色譜儀） 日本Shimadzu公司；LC-GC接口 德國Axel Semrau公司；PAL自動進(jìn)樣器 瑞士CTC公司。

SQP分析天平 賽多利斯科學(xué)儀器北京有限公司；KQ-800KDE高功率速控超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司；Milli-Q超純水設(shè)備 美國Millipore公司；ZFD-A5040電熱鼓風(fēng)干燥烘箱 上海智城分析儀器制造有限公司；HY-5A回旋式振蕩器 江蘇榮華儀器制造有限公司；R-100旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 瑞士步琪有限公司；Biofuge Primo R, Megafuge離心機(jī) 美國Thermo公司；F-7000熒光分光光度計 日本Shimadzu公司。

1.3 方法

1.3.1 儀器條件

LC條件：進(jìn)樣量100 μL，Allure Si色譜柱（250 mm×2.1 mm，5 μm，60 ?，美國Restek公司）；流動相為正己烷與二氯甲烷混合溶劑，以0.3 mL/min梯度洗脫；洗脫程序：0～1.5 min為正己烷，1.6～6.2 min為70%正己烷+30%二氯甲烷；待試液中的MOSH（2.0～3.5 min）和MOAH（4.5～6.0 min）全部流出后，LC運(yùn)行反沖程序以再生色譜柱，設(shè)定二氯甲烷以0.5 mL/min流速在6.3～15.2 min反沖。LC運(yùn)行過程的流動相變換與MOSH/MOAH流出通過紫外檢測器（230 nm）監(jiān)測。

LC-GC接口：經(jīng)LC凈化、分離后分別得到450 μL的MOSH和MOAH。兩段流分通過閥切換（瑞士Vigiag公司），以氫氣為載氣被導(dǎo)入GC分析。GC儀器配備了由預(yù)柱（Restek MXT無涂層毛細(xì)管預(yù)柱，10 m×0.53 mm）和分析柱（Restek MXT毛細(xì)管柱，15 m×0.25 mm，0.25 μm）組成的2 個平行通道。MOSH和MOAH各自進(jìn)入一個通道，預(yù)柱與分析柱之間通過三通與溶劑排空閥連接。溶劑排空閥在LC流分閥切換前0.5 min開啟，轉(zhuǎn)移結(jié)束后0.3 min關(guān)閉。轉(zhuǎn)移到GC系統(tǒng)的MOSH和MOAH中大部分溶劑通過溶劑排空閥去除，剩余少量溶劑與濃縮的溶質(zhì)聚集在分析柱入口，進(jìn)行后續(xù)GC分離和測定。

GC條件：程序升溫的初始溫度60 ℃（保持6 min），以15 ℃/min升溫至120 ℃，再以25 ℃/min升溫至370 ℃（保持6 min）。FID溫度為380 ℃；輔助氣、燃燒氣和助燃?xì)夥謩e為氮?dú)?、氫氣和空氣，流速分別為30、40、400 mL/min。

1.3.2 樣品提取與富集

同一巧克力產(chǎn)品2～3 份，全部取出并研磨均勻；稱取5 g置于離心管中，分別加入30 μL的9 種MOSH/MOAH混合標(biāo)準(zhǔn)溶液，加入10 mL正己烷于60 ℃超聲提取20 min，離心至固液分離；吸取上清液2 mL過硅膠柱（將6 g活化硅膠裝入玻璃注射器中），以25 mL混合溶劑（80%正己烷+20%二氯甲烷）洗脫；收集洗脫液至梨形瓶中，旋轉(zhuǎn)蒸干濃縮至1 mL左右。

1.3.3 環(huán)氧化反應(yīng)

取1.3.2節(jié)濃縮液1 mL，加入0.25～1 mL的m-CPBA溶液（200 mg/mL），振搖反應(yīng)15 min，然后加入2 mL硫代硫酸鈉溶液（100 mg/mL）和0.5 mL無水乙醇終止反應(yīng)，振蕩均勻后靜置，吸取0.5 mL正己烷層至樣品瓶（瓶中預(yù)先加入少量無水硫酸鈉除去水分）用于后續(xù)測定。

1.3.4 LC-GC測定

按照1.3.1節(jié)條件測定樣品試液中的MOSH和MOAH含量。通過觀察LC部分UV檢測器的響應(yīng)信號考察LC流動相與MOSH/MOAH分離情況；考察C13和Cycy的峰面積比例是否接近1∶2，1-MN和2-MN的面積是否接近1∶1；積分計算MOSH和MOAH鼓包峰的面積，包括畫基線、勾勒鼓包峰輪廓、扣除上端尖峰以及面積的積分計算；最后分別以Cycy和2-MN為內(nèi)標(biāo)物計算MOSH和MOAH的含量。

1.3.5 方法學(xué)考察

以1.3.1節(jié)條件配制潤滑油系列溶液，以MOSH和MOAH的峰面積及其對應(yīng)質(zhì)量濃度繪制工作曲線，考察礦物油的線性范圍。LOQ由進(jìn)樣質(zhì)量濃度與FID檢測鼓包峰的經(jīng)驗(yàn)值計算得出[18]。準(zhǔn)確度考察通過測定添加10、50 mg/kg潤滑油溶液的巧克力樣品，每個添加水平平行測定6 次，計算MOSH和MOAH的回收率及其相對標(biāo)準(zhǔn)偏差（relative standard deviation，RSD）。

1.4 數(shù)據(jù)處理

使用Lab solution軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。基于內(nèi)標(biāo)中的Cycy和2-MN定量計算MOSH和MOAH的含量，采用Excel 2016、Origin 2016進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。

2 結(jié)果與分析

2.1 提取與富集方法的確定

礦物油為非極性混合物，易溶于非極性或弱極性溶劑中。為了避免溶劑更換，簡化實(shí)驗(yàn)操作，有必要保證提取、凈化與測定溶劑的一致性，本實(shí)驗(yàn)選擇正己烷作為提取溶劑。通常，升高溫度可以提高提取效率。考慮到礦物油目標(biāo)物為C10～C50烴類化合物，高溫會造成低沸點(diǎn)物質(zhì)損失，因此，確定提取溫度為60 ℃。此外，考察提取次數(shù)發(fā)現(xiàn)，第2次提取的礦物油含量僅為第1次的5%以下，因而確定提取次數(shù)為1 次。通常，整塊巧克力的礦物油污染并不一定均勻。為了保證樣品的均勻性和代表性，本實(shí)驗(yàn)將全部包裝樣品均質(zhì)后取樣。最終確定巧克力的提取方法為：分別取同一巧克力產(chǎn)品的2～3 份（包裝），全部取出并研磨均勻或均質(zhì)；稱取其中的5 g樣品，加入9 種MOSH/MOAH混合標(biāo)準(zhǔn)溶液和10 mL正己烷，于60 ℃超聲提取20 min。

礦物油與脂肪互溶，提取礦物油的同時，樣品中的大部分脂肪也一并溶出，因此，需要考慮提取液中的脂肪含量。由于LC-GC儀器中LC硅膠柱的吸附容量為20 mg甘油三酯，因而一般控制進(jìn)入LC柱中的油脂不超過15 mg。通常，LC-GC儀器測定進(jìn)樣量為50～100 μL，巧克力中的脂肪質(zhì)量分?jǐn)?shù)約為30%，5 g巧克力提取液中的脂肪超過了LC柱的承載量。因此，必須增加去除脂肪的步驟。本實(shí)驗(yàn)自制硅膠固相萃取柱，大約可去除0.5 g脂肪，方法是將6 g經(jīng)馬弗爐活化（400 ℃）的硅膠裝入玻璃注射器（棄去內(nèi)管與針頭），輕輕敲實(shí)后，以正己烷平衡；然后取2 mL提取液上樣，以25 mL由80%正己烷+20%二氯甲烷組成的混合溶劑洗脫，收集洗脫液至梨形瓶中，旋蒸濃縮至1 mL左右。

2.2 環(huán)氧化反應(yīng)條件考察

不同樣品基質(zhì)對礦物油造成的干擾不同，因而礦物油分析與樣品基質(zhì)密切相關(guān)，例如油茶籽油等食用油中含有大量干擾MOSH的奇數(shù)碳正構(gòu)烷烴，需要用活化氧化鋁凈化[15,24-25]。一些巧克力中含有大量的烯烴，這些烯烴可能包括角鯊烯、甾烯和胡蘿卜素等[22]。由于烯烴的極性與MOAH接近，LC-GC分析中LC柱無法分離烯烴與MOAH，導(dǎo)致MOAH的GC譜圖干擾嚴(yán)重（圖1A和圖2A）。為了解決這個問題，Biedermann和Grob首先提出環(huán)氧化反應(yīng)。該反應(yīng)通過間氯過氧苯甲酸（m-CPBA）與烯烴反應(yīng)生成極性較強(qiáng)的環(huán)氧化產(chǎn)物，使其保留在LC硅膠柱上，MOAH部分照舊洗脫流出，從而達(dá)到分離MOAH與烯烴分離的目的。不過，這個反應(yīng)的條件需要低溫（0 ℃）并以二氯甲烷為溶劑，存在溶劑轉(zhuǎn)換與反應(yīng)程度較難控制等問題[22]。為了控制反應(yīng)速度、簡化操作步驟，便于實(shí)現(xiàn)自動化，Nestola等[23]提出以乙醇替代二氯甲烷減緩反應(yīng)速度，使得反應(yīng)溫度升至常溫；同時，終止試劑由碳酸鈉改為硫代硫酸鈉。但此方法僅考察橄欖油、葵花籽與棕櫚油等植物油[23]，是否適用于其他樣品基質(zhì)尚待研究。

圖1 巧克力（可可脂）環(huán)氧化反應(yīng)前（A）、后（B）的效果Fig.1 Chromatograms of chocolate (cocoa butter) before (A) and after (B) epoxidation

圖2 巧克力（代可可脂）環(huán)氧化反應(yīng)前（A）、后（B）的效果Fig.2 Chromatograms of chocolate (cocoa butter substitute) before (A)and after (B) epoxidation

巧克力樣品的基質(zhì)比食用油復(fù)雜得多。預(yù)實(shí)驗(yàn)表明很多樣品存在烯烴干擾，如果烯烴的干擾影響到MOAH積分計算（圖1A和圖2A），則需要凈化去除。本實(shí)驗(yàn)考察不同樣品的烯烴含量及其環(huán)氧化反應(yīng)條件。結(jié)果發(fā)現(xiàn)烯烴干擾情況與巧克力的組成密切相關(guān)。巧克力有可可脂和代可可脂之分，通常代可可脂的烯烴干擾嚴(yán)重，必須凈化去除；可可脂中烯烴含量相對較低，如黑巧克力中可可脂含量較高，一般質(zhì)量分?jǐn)?shù)高于60%，其雖然含有烯烴，但含量較低，不干擾MOAH測定，無需環(huán)氧化反應(yīng)；不過，當(dāng)可可脂質(zhì)量分?jǐn)?shù)低于50%時，則大都需要通過環(huán)氧化反應(yīng)除去烯烴，否則無法對MOAH積分計算。環(huán)氧化實(shí)驗(yàn)表明：不同烯烴含量的樣品需要不同的m-CPBA參與反應(yīng)，低可可脂樣品需要50 mg的m-CPBA即可反應(yīng)完全（圖1B），而代可可脂則需要200 mg才能反應(yīng)完全（圖2B），繼續(xù)增加m-CPBA，MOAH譜圖不再發(fā)生變化，說明樣品中烯烴反應(yīng)比較完全。研究表明，食品中的烯烴通常為角鯊烯、胡蘿卜素和甾烯，其中角鯊烯最容易與m-CPBA發(fā)生反應(yīng)，其次是胡蘿卜素和甾烯[22]。因此，不同組成的樣品需要適當(dāng)調(diào)整反應(yīng)條件。

2.3 方法學(xué)考察

將系列質(zhì)量濃度的潤滑油溶液注入LC-GC分析，分別以MOSH和MOAH的鼓包峰面積與對應(yīng)質(zhì)量濃度繪制曲線，得到線性范圍分別為1.7～85.5 mg/kg（MOSH部分）和0.5～14.50 mg/kg（MOAH部分），對應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)曲線分別為y=106x－859 779和y=818 880x－254 169，R2=0.998，說明線性關(guān)系良好。

本方法的LOQ根據(jù)進(jìn)入FID的礦物油質(zhì)量確定。經(jīng)驗(yàn)表明，F(xiàn)ID對礦物油鼓包峰的靈敏度僅為單體化合物尖峰的1%，通常至少需要50 ng礦物油進(jìn)入FID才能滿足定量分析的不確定度要求[21]。本實(shí)驗(yàn)取5 g巧克力，以10 mL正己烷提取，取其中的2 mL提取液富集、濃縮至1 mL（1/5），環(huán)氧化反應(yīng)后注入LC-GC分析，進(jìn)樣體積為100 μL（1/10），計算LOQ，相當(dāng)于0.1 g巧克力進(jìn)入FID檢測，因此LOQ為0.5 mg/kg。

準(zhǔn)確度以巧克力樣品中添加潤滑油溶液的回收率進(jìn)行考察。分別以10、20、50 mg/kg三個水平（MOSH和MOAH總量）添加至巧克力中，平行測定6 次，結(jié)果表明：MOSH部分的加標(biāo)回收率為84.2%～93.8%，RSD為1.58%～7.01%；MOAH部分的加標(biāo)回收率為80.3%～86.0%，RSD為3.61%～8.22%，說明該測定方法的準(zhǔn)確度滿足檢測要求。

2.4 實(shí)際樣品分析結(jié)果

本實(shí)驗(yàn)對購買的28 個巧克力產(chǎn)品進(jìn)行了檢測。其中有8 個樣品（2 個為鋁箔包裝，6 個為鋁塑復(fù)合包裝）中的MOSH和MOAH含量低于LOQ值；其余20 個樣品檢出MOSH，有1 個樣品檢出了MOSH和MOAH（表1）?？傮w來看，巧克力樣品中MOSH的含量范圍為1.83～22.23 mg/kg，平均值為7.28 mg/kg。與2012年EFSA和2015年“Food Watch”的調(diào)查數(shù)據(jù)相比[1,14]，我國巧克力中的礦物油含量范圍相對較窄，但平均含量卻與國外數(shù)據(jù)相近，均低于10 mg/kg；其中1 個樣品檢出MOAH，考慮到MOAH的毒性，值得特別關(guān)注。

表1 市售巧克力中礦物油的分析結(jié)果Table 1Contents of MOH in commercial chocolate products

此外，市售巧克力的包裝材料主要有鋁箔、塑料和鋁塑復(fù)合材料3 種。本次購買的鋁箔裝巧克力均未檢出礦物油；收集的22 個鋁塑包裝產(chǎn)品中有6 個未檢出，其余的均檢出MOSH，其中1 個還檢出了MOAH。對比不同包裝材料的檢出情況，塑料包裝產(chǎn)品中的MOSH含量為1.83～6.60 mg/kg，鋁塑復(fù)合材料的含量為2.26～22.23 mg/kg，包裝材料與礦物油含量沒有顯著相關(guān)性。前期研究表明奶粉中的脂肪含量與礦物油呈正相關(guān)[26]，而各巧克力產(chǎn)品的脂肪含量相近，因此也沒有顯現(xiàn)出相關(guān)性。此外，本實(shí)驗(yàn)還比較了夾心與非夾心兩類巧克力，其中夾心樣品的平均含量為10.84 mg/kg（11 個樣品），而非夾心的為4.37 mg/kg（9 個樣品），說明夾心產(chǎn)品比非夾心的更易受到污染，這可能與夾心巧克力的工藝復(fù)雜度和增加配料相關(guān)。

由樣品分析譜圖可知不同巧克力的礦物油污染來源并不相同。圖3為兩個巧克力的礦物油譜圖，從碳數(shù)范圍看，樣品1的碳數(shù)范圍在C26～C50之間，中心碳位置大致為C33（圖3A）；而樣品14的碳數(shù)范圍在C20～C40之間，中心碳為C27。說明2 種巧克力可能來自不同的白油或潤滑油產(chǎn)品。由于不同巧克力的原料、生產(chǎn)工藝不同，僅從碳數(shù)范圍和譜圖特征并不能夠明確礦物油遷移途徑[1]。圖4是唯一檢出MOAH的巧克力樣品（樣品10），其MOSH和MOAH的碳數(shù)范圍均小于C24，因此可能是空氣污染或油墨擴(kuò)散遷移所致[1,27-29]。此外，相當(dāng)多的樣品分析譜圖出現(xiàn)了聚烯烴低聚飽和烴（polyolefin oligomeric saturated hydrocarbons，POSH）的特征峰，特別是塑料包裝產(chǎn)品（圖3A）[30]，說明塑料制品遷移的POSH非常普遍。

圖3 樣品1（A）和樣品14（B）巧克力的MOSH譜圖Fig.3 LC-GC chromatograms of MOSH in ch ocolate samples 1 (A) and 14 (B)

圖4 巧克力（樣品10）中MOSH（A）和MOAH（B）的譜圖Fig.4 LC-GC chromatograms of MOSH (A) and MOAH (B) in chocolate sample 10

3 結(jié) 論

本實(shí)驗(yàn)提出基于LC-GC準(zhǔn)確測定巧克力中MOSH和MOAH的方法，包括優(yōu)化提取方法，確定除烯烴干擾的環(huán)氧化反應(yīng)條件。與已有的方法相比，本方法的LOQ為0.5 mg/kg，從而實(shí)現(xiàn)了低含量MOAH的檢測目的。實(shí)際樣品分析發(fā)現(xiàn)，部分巧克力中含礦物油，特別是MOSH污染比較普遍，其中夾心巧克力的污染普遍高于非夾心產(chǎn)品；譜圖特征顯示中塑料包裝遷移的POSH非常普遍，由于POSH與MOSH無法分離，因此，巧克力中MOSH結(jié)果是這兩種飽和烴的總量。