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      人工設(shè)計(jì)短肽對(duì)α-淀粉酶催化作用的影響

      2021-12-06 02:35:48魯明杰李傳博謝丹丹遲乃玉岳松年竇少華
      中國(guó)釀造 2021年11期
      關(guān)鍵詞:淀粉酶底物緩沖液

      魯明杰,李傳博,謝丹丹,遲乃玉,岳松年,竇少華*

      (1.大連大學(xué) 生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,遼寧 大連 116622;2.遼寧省海洋微生物工程技術(shù)研究中心,遼寧 大連 116622)

      淀粉酶能夠催化α-1,4糖苷鍵水解,并將淀粉分解為多種重要的物質(zhì),如單糖、糊精等[1-3]。它主要從微生物來(lái)源生產(chǎn),分為α,β和γ亞型,應(yīng)用十分廣泛,約占世界酶市場(chǎng)的25%~30%,在食品、制藥和洗滌等工業(yè)生產(chǎn)領(lǐng)域中起著至關(guān)重要的作用[4-6]。

      影響淀粉酶活性的因素有很多,包括溫度、pH、酶濃度、底物濃度、激活劑和抑制劑等[7-8]。目前,通過(guò)生物學(xué)科和物理學(xué)科相結(jié)合來(lái)提高淀粉酶的生產(chǎn)水平成為科學(xué)研究重點(diǎn)。經(jīng)常采用的技術(shù)手段是通過(guò)電場(chǎng)裝置向酶解體系中直接加入高頻、中頻和低頻電場(chǎng)以達(dá)到改變淀粉酶活性的目的[9]。Zeta電位被認(rèn)為是一種估計(jì)蛋白表面電位的間接工具,是維持最佳蛋白功能的關(guān)鍵物理特性[10-11]。因此,可以選擇Zeta電位作為判定蛋白表面由于各種過(guò)程而發(fā)生的變化的工具。

      電場(chǎng)可以使氨基酸表面的正負(fù)電荷產(chǎn)生高頻率交替位移,從而使酶活性降低、升高。α-淀粉酶活性升高可以加速底物的分解,提高發(fā)酵工業(yè)效率;α-淀粉酶活性降低,可以有效延長(zhǎng)淀粉制品的保質(zhì)期[12]。毛霉蛋白酶經(jīng)過(guò)高頻電場(chǎng)處理后,酶活增長(zhǎng)幅度較大,有的甚至高達(dá)20%[13]。中等頻率電場(chǎng)處理果膠甲酯酶后,發(fā)現(xiàn)在0.4 V/cm電場(chǎng)強(qiáng)度下對(duì)果膠甲基酯酶活性具有顯著效果[14]。低頻電場(chǎng)輻射條件下生長(zhǎng)的釀酒酵母縮短了生長(zhǎng)遲滯期,加快了其對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,且其生長(zhǎng)速率相比自然生長(zhǎng)提高了14.5%[15]。由此可知,高頻和低頻電場(chǎng)可以直接作用在酶上,作用快,效果顯著,但是也有弊端,如能耗大,不夠環(huán)保。如果能夠人工合成和電場(chǎng)具有相同作用的短肽,則可以有效解決這個(gè)問(wèn)題。

      人工設(shè)計(jì)短肽可以依據(jù)實(shí)際需求,利用不同氨基酸帶電性的不同,合成總電荷量不同的短肽[16]。鄧真真等[17]以經(jīng)典米氏動(dòng)力學(xué)方程為基礎(chǔ),構(gòu)建復(fù)雜體系中酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)模型,從理論以及實(shí)驗(yàn)角度來(lái)全面地對(duì)體系中底物的豐度與其相應(yīng)酶促速率之間的關(guān)系進(jìn)行研究,證明復(fù)雜體系中的酶解反應(yīng)速率幾乎與底物的豐度無(wú)關(guān)。本課題組劉榮娜等[18]通過(guò)測(cè)定米氏常數(shù)(Km)和活化能(Ea)驗(yàn)證了帶電蛋白質(zhì)的加入可以提高酶與底物的親和力,增加酶的催化效率。因此,以結(jié)構(gòu)清晰的牛血清白蛋白氨基酸序列為模板,人工設(shè)計(jì)合成帶有正電荷和負(fù)電荷的兩條短肽T8-和T9+。本研究將T8-和T9+兩條短肽加入α-淀粉酶酶促反應(yīng),并對(duì)α-淀粉酶和帶電荷短肽反應(yīng)過(guò)程各種因素進(jìn)行科學(xué)分析,在最優(yōu)測(cè)定條件下研究人工設(shè)計(jì)帶電荷短肽的加入對(duì)淀粉酶催化作用的影響,可以為酶的食品、醫(yī)藥、農(nóng)業(yè)應(yīng)用等研究提供新的科學(xué)依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      NaH2PO4、Na2HPO4、葡萄糖、HCl、NaOH、NaCl、可溶性淀粉、酒石酸鉀鈉、3,5-二硝基水楊酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS)(分析純):生工生物工程(上海)股份有限公司;α-淀粉酶(500~1 500 U/mg):美國(guó)Sigma-Aldrich公司;4-二甲氨基吡啶(4-dimethylaminopyridine,DMAP)、1-羥基苯并三唑(hydroxybenzotrizole,Hobt)、N,N'-二異丙基碳二亞胺(N,N'-diisopropylcarbodiimide,DIC)、wang樹(shù)脂、N,N-二甲基甲酰胺(N,N-dimethylformamide,DMF)、巴豆酸:上海麥克林生化科技有限公司。

      1.2 儀器與設(shè)備

      DK-S26電熱恒溫水浴鍋:上海一恒儀器有限公司;Multiskan GO全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀:賽默飛世爾科技公司;Zeta電位儀:Brookhaven Instruments Inc.。

      1.3 方法

      1.3.1α-淀粉酶活性的測(cè)定

      采用3,5-二硝基水楊酸測(cè)定還原糖[19-20]計(jì)算α-淀粉酶活力。α-淀粉酶活力計(jì)算公式如下:

      式中:C為標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得的葡萄糖含量,μmol;Ew為0.2 mL酶

      液中含有的酶的質(zhì)量,mg;t為反應(yīng)時(shí)間,min。

      α-淀粉酶活定義:將pH值為6.9,溫度為40 ℃時(shí),每分鐘水解淀粉產(chǎn)生1.0 mg的葡萄糖所需要的α-淀粉酶量定義為一個(gè)酶活力單位(U/mg)。

      1.3.2α-淀粉酶最適反應(yīng)條件的優(yōu)化

      溫度對(duì)α-淀粉酶活力的影響:分別設(shè)置實(shí)驗(yàn)溫度(30℃、35 ℃、40 ℃、45 ℃),加入200 μL 10-4g/mL的α-淀粉酶溶液,磷酸緩沖鹽溶液(phosphatebuffersaline,PBS)濃度0.01mol/L,緩沖液pH 6.9,測(cè)定α-淀粉酶的活力。

      PBS緩沖液濃度對(duì)α-淀粉酶活力的影響:分別設(shè)置PBS緩沖液濃度(0、0.01 mol/L、0.02 mol/L、0.03 mol/L、0.05 mol/L、0.10 mol/L),加入200 μL 10-4g/mL的α-淀粉酶溶液,設(shè)置溫度40 ℃,緩沖液pH 6.9,測(cè)定α-淀粉酶的活力。

      緩沖液pH對(duì)α-淀粉酶活力的影響:分別設(shè)置緩沖液pH(6.5、6.7、6.9、7.0、7.1、7.3、7.5),加入200 μL 10-4g/mL的α-淀粉酶溶液,設(shè)置溫度40 ℃,PBS緩沖液濃度0.01 mol/L,測(cè)定α-淀粉酶的活力。

      1.3.3 短肽的合成

      根據(jù)氨基酸的帶電性,利用多肽技術(shù)合成路線合成直線肽T8-、T9+[16,21]。

      合成路線:樹(shù)脂溶脹→連接首個(gè)氨基酸→脫保護(hù)→檢測(cè)(深藍(lán)色為陽(yáng)性反應(yīng))→第一次清洗→縮合→第二次清洗→檢測(cè)(無(wú)色為陽(yáng)性反應(yīng))→肽鏈的延伸→肽的收縮→氨基酸側(cè)鏈脫保護(hù)→樹(shù)脂的切割→粗品肽

      1.3.4 高效液相色譜分析

      分別對(duì)兩條短肽進(jìn)行高效液相色譜測(cè)定,分析其純度,色譜條件參考文獻(xiàn)[22]。

      1.3.5 T8-和T9+對(duì)α-淀粉酶活力的影響

      先將α-淀粉酶溶液稀釋為10-4g/mL,再分別加入200 μL 1 mg/mL T8-、T9+溶液,作用5 min,再按照1.3.1方法測(cè)得酶活,考察酶活變化。

      依次稀釋T8-、T9+溶液濃度為10-4U/mg,10-5U/mg,10-6U/mg,10-7U/mg,10-8U/mg,取溶液200 μL加入α-淀粉酶溶液中,作用5 min,再按照1.3.1方法測(cè)得酶活,考察酶活變化。

      1.3.6 米氏常數(shù)的測(cè)定

      將含量為2%的淀粉溶液依次稀釋至0.25%、0.50%、1.00%和1.50%的底物濃度。分別將200 μL T8-溶液和T9+溶液加入200 μLα-淀粉酶溶液,40 ℃水浴反應(yīng)5 min,測(cè)得還原糖的產(chǎn)量。按照底物濃度和反應(yīng)速率的關(guān)系使用雙倒數(shù)法作圖[21,23],可得到最大反應(yīng)速率(Vm)和米氏常數(shù)(Km)。

      1.3.7 活化能的測(cè)定

      酶能夠明顯的降低反應(yīng)所需活化能,從而加快反應(yīng)速度。溫度對(duì)反應(yīng)速度的影響,一般表現(xiàn)為隨著溫度的升高,化學(xué)反應(yīng)也隨之加快,服從Arrhenius公式[24-25]。分別在30 ℃(303 K)和40 ℃(313 K)條件下測(cè)量各自的酶促反應(yīng)速率常數(shù)。

      式中:K為酶促反應(yīng)速率常數(shù);R為摩爾氣體常數(shù);T為熱力學(xué)

      絕對(duì)溫度,K;Ea為活化能,J/mol;A為阿倫尼烏斯常數(shù)。

      (1)根據(jù)直線求Ea以為X軸,log K為Y軸,依據(jù)四點(diǎn)數(shù)據(jù),求出回歸方程Y=aX+b,最小二乘積計(jì)算出斜率a,將R值代入計(jì)算得Ea。

      (2)依據(jù)兩點(diǎn)數(shù)據(jù)直接計(jì)算法,選擇在30 ℃(303 K)和40 ℃(313 K)條件下測(cè)量各自的酶促反應(yīng)速率常數(shù)K,Ea計(jì)算公式為:

      1.3.8 Zeta電位的測(cè)定

      分別將1.4 mLα-淀粉酶溶液、T8-溶液、T9+溶液、淀粉溶液、水加入到Zeta電位樣品池中,測(cè)得電位[26-27]。然后將α-淀粉酶溶液:T8-溶液、α-淀粉酶溶液:T9+溶液按1∶1比例混合,依次加入到Zeta電位樣品池中,測(cè)得電位。最后將α-淀粉酶溶液:T8-溶液:淀粉溶液、α-淀粉酶溶液:T9+溶液:淀粉溶液按1∶1∶1比例混合,依次加入到Zeta電位樣品池中,測(cè)得電位。

      1.3.9 統(tǒng)計(jì)分析

      利用SPSS 26.0和GraphPad Prism 9.0.0軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)與分析。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均進(jìn)行3次平行,以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示。數(shù)據(jù)分析過(guò)程中,當(dāng)P<0.05,表示具有顯著性差異,顯著性的置信區(qū)間為95%。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 最適測(cè)定條件的優(yōu)化

      不同濃度緩沖液、pH、溫度對(duì)α-淀粉酶酶活影響見(jiàn)圖1。

      圖1 不同溫度(A)、濃度緩沖液(B)、pH值(C)對(duì)α-淀粉酶酶活影響Fig.1 Effect of different temperature (A),buffer concentrations (B),and pH (C) on α-amylase activities

      由圖1A可知,隨著溫度的升高,α-淀粉酶的活性呈先增加后降低趨勢(shì),在溫度為40 ℃時(shí),α-淀粉酶酶活有最大值,為199.66 U/mg,說(shuō)明α-淀粉酶的最佳測(cè)定溫度為40 ℃。溫度為30~45 ℃時(shí)酶活雖然有變化,但是變化并不大,說(shuō)明在適宜溫度范圍內(nèi),溫度對(duì)α-淀粉酶酶活有影響,但影響不大。

      由圖1B可知,隨著緩沖液濃度的增加,α-淀粉酶的活性呈不斷降低趨勢(shì),在緩沖液濃度0.01 mol/L時(shí),α-淀粉酶酶活有最大值,為628.12 U/mg,說(shuō)明α-淀粉酶的最佳緩沖液濃度為0.01 mol/L。

      由圖1C可知,隨著緩沖液pH的增加,α-淀粉酶的活性呈先增加后降低趨勢(shì),在pH值為6.9時(shí),α-淀粉酶酶活有最大值,為626.12 U/mg,說(shuō)明α-淀粉酶的最佳緩沖液pH值為6.9,α-淀粉酶酶活受pH值影響較大,后續(xù)實(shí)驗(yàn)應(yīng)充分注意pH的影響。

      2.2 短肽合成結(jié)果

      人工設(shè)計(jì)合成的帶電荷短肽T9+和T8-的高效液相色譜圖見(jiàn)圖2,分析結(jié)果見(jiàn)表1、表2。

      表1 T9+高效液相色譜分析結(jié)果Table 1 Analysis results of high performance liquid chromatography of T9+

      表2 T8-高效液相色譜分析結(jié)果Table 2 Analysis results of high performance liquid chromatography of T8-

      圖2 T9+(A)及T8-(B)的高效液相色譜圖Fig.2 High performance liquid chromatogram of T9+(A) and T8-(B)

      結(jié)果表明,制備的短肽T9+RKHYRQSTEFKKVHQ通過(guò)高效液相色譜儀檢測(cè)后出現(xiàn)四個(gè)峰,有三種微量雜質(zhì),可忽略不計(jì),第三個(gè)峰為短肽T9+,純度為98.04%,分子質(zhì)量為1 972.26,溶解性正常,符合所需實(shí)驗(yàn)要求。制備的短肽T8-YEDEFHNDQEYSETD通過(guò)高效液相色譜儀檢測(cè)后出現(xiàn)兩個(gè)峰,第二個(gè)峰為短肽T8-,純度為98.88%,分子質(zhì)量為1 920.85,溶解性正常,符合所需實(shí)驗(yàn)要求。

      2.3 T8-和T9+對(duì)α-淀粉酶作用的影響

      2.3.1α-淀粉酶活力

      不同種類及濃度短肽對(duì)淀粉酶活力的影響見(jiàn)圖3。由圖3可知,短肽T8-和T9+質(zhì)量濃度為10-4g/mL時(shí),加入T8-后,α-淀粉酶酶活為314.27 U/mg,與空白組(未加入短肽)酶活304.72 U/mg相比增加3.13%,加入T9+后,α-淀粉酶酶活為300.58 U/mg,與空白組酶活相比降低1.36%。說(shuō)明帶不同種電荷的短肽對(duì)α-淀粉酶酶活有相反的作用,且隨著加入T8-和T9+溶液濃度的減小,α-淀粉酶酶活變化的趨勢(shì)減小,在短肽質(zhì)量濃度為10-4g/mL時(shí)酶活影響最大,可能是由于所帶電荷的不同引起α-淀粉酶酶活發(fā)生不同的變化。總體來(lái)講,人工設(shè)計(jì)帶負(fù)電荷短肽T8-對(duì)α-淀粉酶的催化作用有正效應(yīng),人工設(shè)計(jì)帶正電荷短肽T9+對(duì)α-淀粉酶的催化作用有負(fù)效應(yīng)。

      圖3 不同種類及濃度短肽加入對(duì)酶活的影響Fig.3 Effects of adding different kinds and concentrations of short peptides on enzyme activity

      2.3.2 米氏常數(shù)的測(cè)定

      反應(yīng)速率由不同底物濃度下所產(chǎn)生的還原糖含量可求得,依據(jù)雙倒數(shù)作圖法,做出加入不同短肽后α-淀粉酶的米氏方程曲線,得到的α-淀粉酶的反應(yīng)動(dòng)力學(xué)參數(shù)見(jiàn)表3。

      表3 加入不同短肽溶液的α-淀粉酶動(dòng)力學(xué)參數(shù)Table 3 Kinetic parameters of α-amylase with different short peptides

      由表3可知,加入T8-溶液,米氏常數(shù)Km升高,Vm/Km增加;加入T9+溶液,米氏常數(shù)Km值降低,Vm/Km也增加,說(shuō)明不同帶電荷短肽的加入使酶與底物的親和力發(fā)生改變[23]。

      2.3.3 活化能的測(cè)定

      反應(yīng)速率與活化能密切相關(guān)[8],不同種類及濃度短肽對(duì)活化能的影響見(jiàn)圖4。由圖4可知,加入T8-和T9+后酶的活化能有明顯的改變。加入T8-后,活化能從原來(lái)的2 152.89 J/mol降低為497.44 J/mol,活化能降低,酶活升高,說(shuō)明T8-起到提高酶活性的效果。加入T9+后,活化能為4 942.90 J/mol,增加130%,說(shuō)明T9+起到降低酶活性的效果。其中,質(zhì)量濃度為10-5g/mL時(shí),活化能改變最小,質(zhì)量濃度為10-6g/mL時(shí),活化能改變最大,其余質(zhì)量濃度短肽對(duì)活化能的影響也非常明顯。說(shuō)明不同質(zhì)量濃度T8-和T9+的加入對(duì)活化能分別起到降低和升高活化能的作用,且影響較大。

      圖4 不同種類及濃度短肽加入對(duì)活化能的影響Fig.4 Effects of adding different kinds and concentrations of shortpeptides on activation energy

      2.3.4 電位變化

      T8-、T9+、酶、底物淀粉溶液按比例加入后搖勻,進(jìn)行電位測(cè)定,結(jié)果見(jiàn)表4。由表4可知,將T8-和T9+加入到酶和底物淀粉體系后,原有體系電位值分別增加了32%和47%,說(shuō)明T8-和T9+的加入,影響了α-淀粉酶的酶促反應(yīng),從而影響了Zeta電位,也說(shuō)明可將電位的變化作為觀察酶性質(zhì)的一個(gè)指標(biāo)。

      表4 不同物質(zhì)的Zeta電位Table 4 Zeta potential of different substances

      續(xù)表

      3 結(jié)論

      本實(shí)驗(yàn)利用多肽固相合成法合成帶電荷短肽T8-和T9+,并探討其對(duì)α-淀粉酶的活性、米氏常數(shù)(Km)、活化能和Zeta電位的影響。T8-使α-淀粉酶體系活化能降低,反應(yīng)易發(fā)生,可作為激活劑應(yīng)用在食品發(fā)酵中提高發(fā)酵速率。T9+使α-淀粉酶體系活化能升高,反應(yīng)難發(fā)生,可作為抑制劑應(yīng)用在食品貯藏中延遲腐敗速率。人工設(shè)計(jì)的短肽,結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單,組分單一,能耗小成本低,危害性低,將其應(yīng)用在食品生產(chǎn)、發(fā)酵、釀造以及紡織工業(yè)具有極大的創(chuàng)新意義和應(yīng)用價(jià)值。因此,可以進(jìn)一步驗(yàn)證酶與底物的催化作用和短肽表面所帶電荷的相關(guān)性,為增加或降低酶的活化能提供有力支撐。

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