楊艷俊,楊秀東,張 艷
(吉林化工學(xué)院 化學(xué)與制藥工程學(xué)院,吉林 吉林 132022)
山里紅(Crataegus pinnatifida Bge.var.major N.E.Br.)是中國(guó)藥典中山楂藥材的兩種來(lái)源品種之一,屬于薔薇科果樹(shù)的果實(shí),也稱(chēng)為北山楂、仙果,廣泛分布于中國(guó)北方,屬于天然的有機(jī)食品,重要的藥食同源之物[1].山里紅干燥成熟的果實(shí),有活血化瘀、理氣通脈、化濁降脂的功能.山里紅中有許多類(lèi)型的生物活性成分,主要分為兩大類(lèi):黃酮類(lèi)和有機(jī)酸.已經(jīng)分離出金絲桃苷素、槲皮素、牡荊素等黃酮類(lèi)化合物[2-6].黃酮類(lèi)化合物具有較強(qiáng)的擴(kuò)張冠狀動(dòng)脈、改善微循環(huán)的功效,較好的抗氧化能力,同時(shí)能夠抵抗動(dòng)脈粥樣硬化,改善細(xì)胞糖脂代謝等作用[7-11].因此,山里紅總黃酮的研究開(kāi)發(fā)具有重要的經(jīng)濟(jì)和社會(huì)效益.以山里紅的干燥果實(shí)為研究對(duì)象,應(yīng)用BBD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化超聲輔助提取工藝,采用紫外-可見(jiàn)分光光度法測(cè)其含量,通過(guò)清除超氧陰離子、DPPH自由基、ABTS自由基的清除能力來(lái)評(píng)估抗氧化活性,為山里紅的深入開(kāi)發(fā)奠定基礎(chǔ).
野生山里紅干燥果實(shí),吉林市周邊山區(qū)采集;蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,95%乙醇,三氯化鐵,鎂粉,亞硝酸鈉,硝酸鋁,氫氧化鈉,三羥甲基氨基甲烷,濃鹽酸,鄰苯三酚,DPPH,ABTS,過(guò)硫酸鉀,以上均為國(guó)產(chǎn)分析純.
紫外分光光度計(jì),北京普析通用儀器有限公司;電子分析天平,上海舜宇恒平科學(xué)有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器廠;恒溫水浴鍋,常國(guó)華電器有限公司;超聲儀,昆山市超聲儀器有限公司;電熱恒溫鼓風(fēng)干燥機(jī),上海姚氏儀器設(shè)備廠;高速粉碎機(jī),永康市鉑歐五金制品有限公司.
1.2.1 總黃酮的鑒定
山里紅提取液,加入FeCl3溶液,溶液變?yōu)樯罹G色;另取提取液加入少許的鎂粉,搖勻,加入2滴濃鹽酸,1~2 min后,溶液呈紫色,證明提取液含有黃酮類(lèi)化合物.
1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
(1)對(duì)照品溶液的制備
精密稱(chēng)取10 mg蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品置于50 mL容量瓶中,用80%乙醇溶解并定容,得0.2 mg·mL-1標(biāo)準(zhǔn)品溶液.
(2)供試品溶液的制備
燒瓶中加入山里紅粉末2.0 g,40 mL 60%乙醇溶液,在30 ℃下超聲提取30 min,過(guò)濾,得黃酮提取液,備用.
(3)測(cè)定最大吸收波長(zhǎng)
取供試液1 mL置于25 mL容量瓶中,加少量5%的NaNO2溶液,搖勻,靜置6 min;加10%的Al2(NO3)3溶液0.3 mL,搖勻,靜置6 min;加4%的NaOH溶液4 mL,60%乙醇定容至刻度,在400~600 nm波長(zhǎng)處進(jìn)行掃描,在504 nm處有最大吸收峰.如需測(cè)定樣品吸光度,則每次測(cè)定3個(gè)數(shù)據(jù)取平均值.
(4)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線
通過(guò)用梯度濃度標(biāo)準(zhǔn)品溶液測(cè)吸光度后,依據(jù)所得數(shù)據(jù)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.
1.2.3 方法學(xué)研究
(1)精密度實(shí)驗(yàn)
移取2 mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品溶液并放進(jìn)10 mL容量瓶中,按照1.2.2(3)項(xiàng)顯色處理后,在504 nm波長(zhǎng)處連續(xù)測(cè)定6次吸光度,計(jì)算相對(duì)偏差.
(2)穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)
各吸取少量供試液,使時(shí)間間隔分別為5、10、15、30、60、90 min,按1.2.2(3)項(xiàng)顯色處理后,在504 nm波長(zhǎng)處測(cè)得吸光度,計(jì)算相對(duì)偏差.
(3)重復(fù)性實(shí)驗(yàn)
各吸取少量供試液分別放入6個(gè)小容量瓶中,按1.2.2(3)項(xiàng)顯色處理后,在504 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,計(jì)算相對(duì)偏差.
(4)加樣回收實(shí)驗(yàn)
精密吸取上述溶液0.2 mL,并置于10 mL量瓶中,加入蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品(0.41 mg·mL-1)2 mL.按1.2.2(3)項(xiàng)顯色處理后,在504 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,計(jì)算相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差與回收率.
1.2.4 單因素實(shí)驗(yàn)
(1)乙醇濃度對(duì)黃酮提取率的影響
精密稱(chēng)取5份山里紅粉各2.0 g,以40 mL乙醇溶液作為溶劑,設(shè)定乙醇濃度為40%、50%、60%、70%、80%,在30 ℃條件下,超聲提取30 min,抽濾得濾液.
(2)液料比對(duì)黃酮提取率的影響
(3)提取溫度對(duì)黃酮提取率的影響
(4)提取時(shí)間對(duì)黃酮提取率的影響
分別精密吸取上述各濾液0.1 mL,按1.2.2(3)項(xiàng)顯色處理后,在504 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,計(jì)算總黃酮提取率.
1.2.5 響應(yīng)曲面法實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
為進(jìn)一步優(yōu)化山里紅總黃酮的最佳工藝條件,根據(jù)Box-Behnken中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)原則,對(duì)應(yīng)的4因素3水平的響應(yīng)面分析工藝參數(shù)見(jiàn)表1.
表1 響應(yīng)面試驗(yàn)因素水平設(shè)計(jì)
1.2.6 山里紅總黃酮抗氧化性研究
(1)超氧陰離子的清除能力測(cè)定
參照文獻(xiàn)[12]~[13],取緩沖溶液預(yù)熱后,分別加入不同濃度的供試品溶液和鄰苯三酚溶液,反應(yīng)后加入8 mol·L-1的鹽酸終止反應(yīng),在325 nm處測(cè)吸光度,為A1;蒸餾水代替鄰苯三酚溶液,重復(fù)上述步驟,吸光度A0.Vc做對(duì)照實(shí)驗(yàn).清除率如公式(1)所示:
(1)
(2)對(duì)DPPH自由基的清除能力測(cè)定
測(cè)定方法參照文獻(xiàn)[14]~[15],將2 mL濃度為0.1 mmol·L-1的DPPH溶液與0.1 mg·mL-1的樣品溶液(0.4~2.0 mL)混合,室溫避光反應(yīng)35 min,在517 nm處測(cè)定其吸光度Ai;測(cè)量不同濃度樣品的吸光度Aj.以2 mL乙醇代替樣品,與2 mL DPPH混勻,其吸光度A0.
(2)
(3)ABTS自由基清除能力的測(cè)定
測(cè)定方法參照文獻(xiàn)[16]~[17],將ABTS和過(guò)硫酸鉀混合,靜置過(guò)夜(至少12 h),稀釋后使之在734 nm處吸光度為0.7±0.02.樣品管中加入0.1 mL黃酮溶液、3.9 mL ABTS工作液,靜置6 min,測(cè)吸光度A樣,移取2 mL無(wú)水乙醇,按同樣方法處理測(cè)定吸光度A0.同法測(cè)定Vc清除ABTS自由基的能力.清除率如公式(3)所示:
(3)
以吸光度為縱坐標(biāo),濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程為:y=11.054x-0.002,R2=0.999 9,在濃度為0.2~0.8 mg·mL-1范圍內(nèi),蘆丁濃度與吸光度呈良好的線性關(guān)系.
2.2.1 精密度實(shí)驗(yàn)結(jié)果
吸光度值RSD=0.5%<1%,表明精密度良好.
1)冒漿。注漿過(guò)程中,要認(rèn)真觀察地表及相鄰管線的變化情況,由于漿液的注入引起地層變化,并且封閉強(qiáng)度較低的地方可能會(huì)冒出漿液,需要加以堵塞,必要時(shí)采用間歇注漿方式,確保漿液有效的注入地層。
2.2.2 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果
結(jié)果表明吸光度A隨時(shí)間改變表現(xiàn)出逐漸減弱趨勢(shì),在30 min內(nèi)樣品溶液的吸光度降低不顯著,RSD值為1.6%;在60 min內(nèi)樣品溶液吸光度值的RSD值為3.2%,隨著時(shí)間延長(zhǎng)持續(xù)降低.結(jié)果表明,供試品溶液顯色后在30 min內(nèi)較為穩(wěn)定.
2.2.3 重復(fù)性實(shí)驗(yàn)結(jié)果
6組吸光度值經(jīng)計(jì)算RSD=0.91%<1%,結(jié)果表明方法重復(fù)性良好.
2.2.4 回收率實(shí)驗(yàn)
5組吸光度值經(jīng)計(jì)算RSD=1.19%<2%,平均加樣回收率為98.52%.結(jié)果表明:回收率較高,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差偏小,該方法準(zhǔn)確度較高.
2.3.1 乙醇濃度對(duì)黃酮提取率的影響
乙醇濃度對(duì)黃酮提取率的影響如圖1所示.
乙醇濃度/%圖1 乙醇濃度的影響
由圖1可見(jiàn),當(dāng)乙醇濃度逐步增大,總黃酮提取率呈先增大后減小的趨勢(shì).當(dāng)乙醇濃度為60%時(shí),黃酮類(lèi)化合物提取率最高.原因可能是60%乙醇的溶液極性與黃酮的極性相當(dāng).
2.3.2 液料比對(duì)黃酮提取率的影響
液料比對(duì)黃酮提取率的影響如圖2所示.
液料比(mL/mg)圖2 液料比的影響
2.3.3 提取溫度對(duì)黃酮提取率的影響
提取溫度對(duì)黃酮提取率的影響如圖3所示.
提取溫度/℃圖3 提取溫度的影響
由圖3可見(jiàn),當(dāng)溫度逐漸升高,山里紅干燥果實(shí)粉末的提取率呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì).提取溫度50 ℃時(shí),提取率達(dá)到最高.溫度越高越有利于擴(kuò)散進(jìn)行,有效成分即可快速滲透到溶劑中,但溫度過(guò)高時(shí)雜質(zhì)也易溶出.
2.3.4 提取時(shí)間對(duì)黃酮提取率的影響
提取時(shí)間對(duì)黃酮提取率的影響如圖4所示.
提取時(shí)間/min圖4 提取時(shí)間的影響
由圖4可見(jiàn),當(dāng)提取時(shí)間逐漸增加時(shí),提取率呈現(xiàn)先增大后減小并逐漸平緩的趨勢(shì).說(shuō)明此時(shí)黃酮類(lèi)化合物已經(jīng)基本提取完全,延長(zhǎng)提取時(shí)間,提取率增大不明顯,可取最佳提取時(shí)間為20 min.
2.4.1 采用響應(yīng)面法優(yōu)化山里紅總黃酮提取工藝
響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)匯總見(jiàn)表2,實(shí)驗(yàn)號(hào)3、22、26、28、29條件是4因素最佳組合,隨機(jī)分布于29次響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)中.剩余實(shí)驗(yàn)號(hào)為分析實(shí)驗(yàn),用來(lái)估算實(shí)驗(yàn)誤差,對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行補(bǔ)充優(yōu)化,最后統(tǒng)一分析進(jìn)行擬合,得出最優(yōu)條件.由Design-Expert 8.0.6.1軟件處理數(shù)據(jù),根據(jù)二次回歸方程擬合分析,得出多組變量之間的函數(shù)關(guān)系,多因素組合實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)見(jiàn)表2,其方差分析結(jié)果見(jiàn)表3.回歸方程為:
表2 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
表3 回歸方程方差分析表
Y=-38.45500+0.51300A+0.71771B+0.11300C+0.85533D-7.18750E-004AB-3.50000E-004AC+7.05000E-003AD-1.68750E-003BC+2.09375E-003BD+2.77500E-003CD6.88333E-003A2-0.014564B2-4.53333E-003C2-0.013471D2
2.4.2 方差結(jié)果分析
由表3回歸方程方差分析結(jié)果可知,模型項(xiàng)P值<0.000 1,表明該模型高度顯著;失擬項(xiàng)0.626 1>0.05,說(shuō)明該模型可信度高.回歸模型的決定系數(shù)R2為0.981 7,調(diào)整型決定系數(shù)Adj-R2為0.963 4,說(shuō)明該模型能夠很好地描述此次實(shí)驗(yàn)結(jié)果.模型預(yù)測(cè)了乙醇濃度、液料比、提取時(shí)間、提取溫度對(duì)山里紅總黃酮提取率效果的影響,由表3可知:A、B、D、AD、CD、A2、B2、C2、D2為顯著影響因素.
2.4.3 兩因素交互作用分析
響應(yīng)面對(duì)于因素A、B、C、D值所構(gòu)成的三維空間在二維平面上的等高線圖,可直觀地反映各因素之間的相互作用,等高線的形狀可以反映出交互相的強(qiáng)弱,橢圓形表示兩因素交互作用顯著,而圓形則與之相反.由響應(yīng)面三維立體曲線分析可知各個(gè)因素對(duì)響應(yīng)面值的影響,例如,乙醇濃度的響應(yīng)曲面坡度陡峭,表明該因素對(duì)于黃酮提取率作用明顯[18].液料比、乙醇濃度交互作用,表現(xiàn)為曲面陡峭,表明對(duì)其響應(yīng)值的影響明顯.通過(guò)軟件處理得到響應(yīng)面分析結(jié)果見(jiàn)圖5~10.
圖6 乙醇濃度與提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率影響的響應(yīng)面和等高線
圖7 乙醇濃度與提取溫度對(duì)總黃酮提取率影響的響應(yīng)面和等高線圖
圖8 液料比與提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率影響的響應(yīng)面和等高線圖
圖9 液料比與提取溫度對(duì)總黃酮提取率影響的響應(yīng)面和等高線圖
圖10 提取時(shí)間與提取溫度對(duì)總黃酮提取率影響的響應(yīng)面和等高線圖
2.4.4 模型方程的驗(yàn)證試驗(yàn)
2.5.1 對(duì)超氧陰離子自由基的清除能力測(cè)定
測(cè)定山里紅總黃酮的抗氧化活性,與Vc做對(duì)照,測(cè)定結(jié)果如下圖11.
不同濃度的山里紅總黃酮都有抗氧化活性,且隨總黃酮濃度的增加,吸光度增大.通過(guò)使用SPSS進(jìn)行模擬計(jì)算,山里紅總黃酮的IC50=0.36 mg·mL-1,Vc的IC50=0.14 mg·mL-1,通過(guò)對(duì)比山里紅總黃酮樣品的IC50與Vc的IC50,發(fā)現(xiàn)山里紅總黃酮有較強(qiáng)的清除超氧陰離子自由基的能力.
濃度/(mg·mL-1)圖11 山里紅總黃酮提取液和Vc對(duì)超氧陰離子自由基的清除能力
2.5.2 對(duì)DPPH自由基的清除能力測(cè)定
對(duì)山里紅總黃酮及Vc的抗氧化活性進(jìn)行了分析研究,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如下圖12.
如圖所示,隨著山里紅總黃酮的濃度增加,其清除DPPH自由基能力逐漸增強(qiáng).通過(guò)SPSS進(jìn)行模擬計(jì)算,山里紅總黃酮的IC50=0.05 mg·mL-1,而Vc的IC50=0.01 mg·mL-1時(shí)由此可見(jiàn)山里紅總黃酮對(duì)清除DPPH自由基具有一定的作用.
濃度/(mg·mL-1)圖12 山里紅總黃酮提取液和Vc對(duì)DPPH自由基的清除能力
2.5.3 對(duì)ABTS自由基的清除能力測(cè)定
對(duì)山里紅總黃酮及Vc的抗氧化活性進(jìn)行了分析研究,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如下圖13.
濃度/(mg·mL-1)圖13 濃度梯度下的總黃酮和Vc對(duì)ABTS自由基的清除能力
由圖可知,山里紅總黃酮及Vc均對(duì)ABTS自由基有一定的清除能力,且在一定范圍內(nèi),隨濃度的增大,其清除率增大,呈現(xiàn)較好的量效關(guān)系.通過(guò)使用SPSS進(jìn)行模擬計(jì)算,山里紅總黃酮的IC50=0.35 mg·mL-1,Vc的IC50=0.34 mg·mL-1.通過(guò)對(duì)比山里紅總黃酮樣品的IC50與Vc的IC50,發(fā)現(xiàn)山里紅總黃酮有較強(qiáng)的抗氧化活性.
在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,通過(guò)響應(yīng)面分析對(duì)山里紅總黃酮提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,總黃酮提取的最佳工藝條件:乙醇濃度62%,液料比26 mL/mg,提取時(shí)間21 min,提取溫度52 ℃,在此條件總黃酮的提取率預(yù)測(cè)值為10.19%,驗(yàn)證值為10.13%,預(yù)測(cè)值與驗(yàn)證值非常接近,說(shuō)明響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)方法用于山里紅總黃酮提取工藝優(yōu)化科學(xué)可靠.
山里紅果總黃酮具有一定的清除自由基的能力,與總黃酮濃度呈線性關(guān)系.超氧陰離子、ABTS和DPPH自由基清除能力的IC50分別為0.36、0.05、0.35 mg·mL-1,均具有顯著的抗氧化能力.