王圓圓 李新淼 HESHUOTE Mailisi 白玉廷 包音都古榮·金花 呼格吉勒?qǐng)D 侯榮倫 薛強(qiáng) 敖日格勒

摘 要：研究硬脂酰輔酶A去飽和酶1（stearoyl-coenzyme A desaturase 1，SCD1）基因表達(dá)對(duì)草原安格斯牛血液脂肪酸組成的影響，采集38 頭平均體質(zhì)量（698±34） kg、48 月齡草原安格斯牛血液樣品，測(cè)定其脂肪酸組成與含量，采用實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)測(cè)定SCD1基因表達(dá)量，一代測(cè)序技術(shù)檢測(cè)SCD1基因在C878T位點(diǎn)的突變對(duì)實(shí)驗(yàn)牛血液脂肪酸組成的影響，分析SCD1基因表達(dá)與脂肪酸組成間的相關(guān)性。結(jié)果表明：血液樣品中共測(cè)得36 種主要脂肪酸，飽和脂肪酸（saturated fatty acids，SFA）以棕櫚酸（C16：0）和硬脂酸（C18：0）為主，含量分別達(dá)22.53%和26.95%，單不飽和脂肪酸（monounsaturated fatty acids，MUFA）中油酸（C18：1 n-9c）含量最高（15.09%）;由SCD1基因表達(dá)與脂肪酸組成的顯著性分析結(jié)果可知，SCD1基因表達(dá)對(duì)肉豆蔻酸（C14：0）、肉豆蔻油酸（C14：1）、C16：0、棕櫚油酸（C16：1）、C18：0、C18：1 n-9c、亞油酸（C18：2 n-6c）、MUFA和MUFA/SFA以及C14指數(shù)、C18指數(shù)、脂肪酸總不飽和指數(shù)和伸長(zhǎng)指數(shù)均影響顯著;相關(guān)性分析結(jié)果顯示，SCD1基因表達(dá)量與C16：0、C16：1、C18：0、C18：1 n-9c和MUFA含量均呈正相關(guān);SCD1基因在878位點(diǎn)處出現(xiàn)了C/T突變，有CC、TT和CT 3 種基因型，不同基因型與脂肪酸組成之間均無(wú)顯著相關(guān)性。綜上所述，草原安格斯牛血液中的SCD1基因表達(dá)對(duì)其脂肪酸組成具有調(diào)控作用，可作為遺傳標(biāo)記參考基因。

關(guān)鍵詞：草原安格斯牛;血液脂肪酸組成;硬脂酰輔酶A去飽和酶1基因表達(dá)量;相關(guān)性;硬脂酰輔酶A去飽和酶1基因分型

Effects of Stearoyl-Coenzyme A Desaturease 1 Gene Expression on Blood Fatty Acid Composition of Pastured Angus Cattle

WANG Yuanyuan1，2， LI Xinmiao1，2， HESHUOTE Mailisi3， BAI Yuting4， BAOYINDUGURONG·Jinhua1，2，*，

HUGEJILETU5， HOU Ronglun5， XUE Qiang5， AORIGELE5

（1.College of Food Science and Engineering， Inner Mongolia Agricultural University， Hohhot 010018， China; 2.Inner Mongolia Key Laboratory of Biomanufacturing， Hohhot 010018， China; 3.College of Engineering and Applied Sciences， University of Columbia， New York 10027， USA; 4.College of Veterinary， Inner Mongolia Agricultural University， Hohhot 010018， China;?5.Inner Mongolia Hesige Green Industry Import and Export Co. Ltd.， Xilingol 026321， China）

Abstract： The purpose of this study was to investigate the effect of stearoyl-coenzyme desaturase 1 （SCD1） gene expression on blood fatty acid composition of Angus cattle raised on pasture. Blood samples of 38 pastured Angus cattle with average body mass of （698 ± 34） kg and at the age of 48 months were collected for fatty acid composition and content determination. The expression of the SCD1 gene was detected by real-time fluorescence quantitative polymerase chain reaction， and the influence of SCD1 gene mutation at C878T on fatty acid composition of blood samples of cattle was detected by first-generation sequencing technology. The correlation between SCD1 gene expression and fatty acid composition was further analyzed. The results showed the presence of 36 main fatty acids in blood samples， with the major saturated fatty acids （SFA） being palmitic acid （C16：0， 22.53%） and stearic acid （C18：0， 26.95%）. Oleic acid （C18：1 n-9c） was identified as the most abundant monounsaturated fatty acid （MUFA） （15.09%）. The significance analysis indicated that SCD1 gene expression had significant effects on myristic acid （C14：0）， myristic acid （C14：1）， C16：0， C16：1， C18：0， C18：1 n-9c， linoleic acid （C18：2 n-6c）， MUFA and MUFA/SFA ratio as well as C14 index， C18 index， total unsaturation index and elongation index of fatty acids. Additionally， the correlation analysis results suggested that SCD1 gene expression was positively correlated with C16：0， palmitoleic acid （C16：1）， C18：0， C18：1 n-9c and MUFA. SCD1 gene exhibited C/T mutation at the 878 site， yielding three genotypes： CC， TT and CT. No significant difference between different genotypes and fatty acid composition was found. Overall， the expression of SCD1 gene in the blood of pastured Angus cattle can regulate its fatty acid composition and thus can be used as a reference gene for genetic markers.

Keywords： pastured Angus cattle; blood fatty acid composition; stearoyl-coenzyme A desaturase 1 gene expression level; correlation; stearoyl-coenzyme A desaturase 1 genotype

DOI：10.7506/rlyj1001-8123-20210603-168

中圖分類號(hào)：Q786? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼：A 文章編號(hào)：1001-8123（2022）02-0009-06

引文格式：

王圓圓， 李新淼， HESHUOTE Mailisi， 等. 硬脂酰輔酶A去飽和酶1基因表達(dá)對(duì)草原安格斯牛血液脂肪酸組成的影響[J]. 肉類研究， 2022， 36（2）： 9-14. DOI：10.7506/rlyj1001-8123-20210603-168.? ? http：//www.rlyj.net.cn

WANG Yuanyuan， LI Xinmiao， HESHUOTE Mailisi， et al. Effects of stearoyl-coenzyme a desaturease 1 gene expression on blood fatty acid composition of pastured angus cattle[J]. Meat Research， 2022， 36（2）： 9-14. DOI：10.7506/rlyj1001-8123-20210603-168.? ? http：//www.rlyj.net.cn

脂肪酸是動(dòng)物新陳代謝、生長(zhǎng)發(fā)育和繁殖等生命活動(dòng)所必需的營(yíng)養(yǎng)素和限制性因素，脂肪酸含量與人類健康和疾病密切相關(guān)[1]。硬脂酰輔酶A去飽和酶1（stearoyl-coenzyme A desaturase 1，SCD1）是脂肪代謝中的關(guān)鍵酶，催化硬脂酰輔酶A和棕櫚酰輔酶A第9、10位碳原子間形成一個(gè)順式雙鍵，將飽和脂肪酸轉(zhuǎn)化為單不飽和脂肪酸（monounsaturated fatty acids，MUFA）[2]。SCD1作為脂肪酸去飽和化的限速酶，其主要底物為棕櫚酰輔酶A和硬脂酰輔酶A，分別將它們轉(zhuǎn)換為棕櫚油酰輔酶A和油?；o酶A[3]。MUFA的主要組成部分包括膜磷脂、甘油三酯、膽固醇脂和酯蠟，上述脂類中飽和脂肪酸（saturated fatty acids，SFA）與MUFA的比例影響脂蛋白代謝、生物膜流動(dòng)性和信號(hào)傳導(dǎo)，進(jìn)而影響糖尿病、動(dòng)脈粥樣硬化、癌癥、肥胖癥等多種疾病[4]。研究表明，SCD1基因也是骨骼肌代謝調(diào)節(jié)的重要組成部分，它影響胰島素敏感性、線粒體脂肪酸氧化和肌纖維中氧化的神經(jīng)酰胺再生[5-6]。隨著分子生物學(xué)的發(fā)展，學(xué)者們關(guān)注高端肉牛繁育中與脂肪代謝相關(guān)的候選基因的研究[7-9]，主要以牛的肝臟、脂肪及肌肉組織中與肉質(zhì)相關(guān)SCD1基因多態(tài)性和基因測(cè)序及表達(dá)量為研究焦點(diǎn)。有關(guān)SCD1基因?qū)εＱ褐舅岬挠绊懷芯坎欢?，草原安格斯牛SCD1基因表達(dá)對(duì)血液脂肪酸的影響研究鮮有報(bào)道。本研究通過(guò)測(cè)定草原安格斯牛SCD1基因表達(dá)對(duì)血液中脂肪酸組成的影響，分析SCD1基因表達(dá)與脂肪酸之間的相關(guān)性，了解SCD1基因表達(dá)對(duì)血液脂肪酸的調(diào)控作用，為今后草原安格斯牛優(yōu)良遺傳基因的選育及優(yōu)質(zhì)草原安格斯牛數(shù)據(jù)庫(kù)的建立提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

采集平均體質(zhì)量（698±34） kg、48 月齡未妊娠的新西蘭進(jìn)口純種黑安格斯繁殖母牛血液樣品。實(shí)驗(yàn)牛采用6—9月期間草原放牧，10月至翌年5月期間飼喂青貯加干草和全價(jià)料，采用自由運(yùn)動(dòng)的草原飼養(yǎng)模式。清晨4時(shí)放牧前，從500 頭安格斯牛中隨機(jī)抽取38 頭牛的血液樣品，從頸靜脈采血5 mL，放置于含有乙二胺四乙酸（ethylenediamine tetraacetic acid，EDTA）抗凝劑的采血管充分搖勻，先提取血液中總RNA，其余全血分裝至無(wú)菌無(wú)酶凍存管中，標(biāo)記，-80 ℃冷凍保存。

三氟化硼-甲醇溶液（三氟化硼含量50%～65%）? ?美國(guó)Sigma公司;三氯甲烷、氫氧化鈉、氯化鈉、甲醇、無(wú)水乙醇、EDTA、無(wú)水乙酸鈉、硫氰酸鈉、異硫氰酸胍、丙三醇、冰醋酸（均為分析純）、正己烷（色譜純） 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;瓊脂糖?美國(guó)英杰生命技術(shù)有限公司;DNA提取試劑盒、6×DNA Loading Buffer 天根生化科技（北京）有限公司;TB GreenTM Premix EX TaqTM Ⅱ（Tli RNaseH plus）、PrimeScript Ⅱ 1st Strand cDNA Synthesis Kit、Premix TaqTM（TaKaRa TaqTM Version 2.0 plus dye） 寶生物（大連）工程有限公司;高度去離子甲酰胺、BigDye Terminator試劑盒 美國(guó)應(yīng)用生物系統(tǒng)公司;膠回收柱式聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（polymerase chain reaction，PCR）產(chǎn)物純化試劑盒 生工生物工程（上海）股份有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

2720 PCR儀? ? 德國(guó)Thermal Fisher公司;LIGHT CYCLER 480Ⅱ熒光定量PCR儀 瑞士Roche公司;G：BOX EF2全自動(dòng)凝膠成像系統(tǒng) 美國(guó)Syngene公司;NanoDrop? One超微量核酸蛋白測(cè)定儀 美國(guó)Thermo公司;7890A-5975C氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國(guó)Agilent公司;YG-96梯度PCR儀 杭州博賽科技有限公司;DYY-8C雙穩(wěn)定時(shí)電泳儀 北京六一儀器廠;BIOSENS-SC-BO5紫外分析儀 蘇州BIO TOP生物技術(shù)服務(wù)有限公司;3730xl DNA Analyzer測(cè)序儀 美國(guó)應(yīng)用生物系統(tǒng)公司。

1.3 方法

1.3.1 脂肪酸組成與含量測(cè)定

參照簡(jiǎn)路洋等[10]方法進(jìn)行血液樣品的脂肪酸前處理與含量測(cè)定。使用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀及Supelco SPTM-2560氣相毛細(xì)管柱（100 m×0.25 mm，0.2 μm）分析脂肪酸組成與含量。

1.3.2 SCD1基因表達(dá)水平測(cè)定

采用TRIzol法提取血液中的總RNA，經(jīng)微量分光光度計(jì)和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)純度和完整性，符合要求后，立即使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行cDNA合成。

1.3.2.1 總RNA的提取和反轉(zhuǎn)錄成cDNA

反轉(zhuǎn)錄第1步反應(yīng)體系（10 ?L）：1 ?L 50 μmol/L Oligo dT Primer、1 ?L 10 mmol/L dNTP Mixture、2 ?L模板RNA、6 ?L RNase Free dH2O。在PCR儀中65 ℃反應(yīng)5 min后，冰上迅速冷卻。

反轉(zhuǎn)錄第2步反應(yīng)體系（20 ?L）：取上述變性后反應(yīng)液10 ?L，加入4 ?L 5×PrimeScript Ⅱ Buffer、0.5 ?L 40 U/μL RNase Inhibitor、1 ?L 200 U/μL PrimeScript Ⅱ RTase、4.5 ?L RNase Free dH2O;42 ℃、60 min;95 ℃、5 min;使用超微量核酸蛋白測(cè)定儀測(cè)定cDNA樣品A260 nm/A280 nm判斷cDNA純度和濃度，置于-20 ℃冰箱備用。

1.3.2.2 實(shí)時(shí)熒光定量PCR

SCD1基因和內(nèi)參基因引物序列均參考唐慧等[11]設(shè)計(jì)（表1），由生工生物工程（上海）股份有限公司合成，無(wú)菌無(wú)酶水溶解，-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

以cDNA為模板，利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR對(duì)管家基因和目的基因進(jìn)行擴(kuò)增。每個(gè)樣品重復(fù)3 次， SCD1基因在樣品中的相對(duì)表達(dá)量以2-ΔΔCt表示，并按下式計(jì)算。2-ΔΔCt=（Ct值目的-Ct值內(nèi)參）處理-（Ct值目的-Ct值內(nèi)參）對(duì)照實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)程序：預(yù)變性95 ℃、30 s，95 ℃、5 s，58 ℃、30 s，循環(huán)40 次; 95 ℃、5 s，60 ℃、1 min，95 ℃、5 s，50 ℃、30 s。

1.3.3 全基因組DNA提取與基因型檢測(cè)

采用DNA提取試劑盒提取血液全基因組DNA，經(jīng)微量分光光度計(jì)和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)純度和完整性。符合要求后，進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)體系：12.5 ?L Premix TaqTM（TaKaRa TaqTM Version 2.0 plus dye）、1 ?L DNA模板、20 ?mol/L上、下游引物各5 ?L，加19.5 ?L滅菌蒸餾水補(bǔ)至25 ?L。PCR反應(yīng)程序：94 ℃變性5 min后進(jìn)行30 個(gè)循環(huán)，包括94 ℃變性30 s、56 ℃變性30 s、72 ℃變性1 min、72 ℃變性7 min。參考施雪奎[12]的方法設(shè)計(jì)SCD1基因引物序列（表2），由生工生物工程（上海）股份有限公司合成。

1.3.4 SCD1基因型檢測(cè)

使用1.5%瓊脂糖凝膠電泳，取5 ?L PCR擴(kuò)增產(chǎn)物直接點(diǎn)樣，120 V電泳20 min，在凝膠成像儀上觀察擴(kuò)增產(chǎn)物電泳結(jié)果，選擇條帶清晰、明亮的樣品，純化后，使用測(cè)序儀進(jìn)行一代測(cè)序。

1.4 數(shù)據(jù)處理

結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。數(shù)據(jù)采用Excel軟件進(jìn)行初步整理，利用IBM SPSS Statistics 20.0軟件進(jìn)行LSD方差分析，以P<0.05為顯著性檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)。

2 結(jié)果與分析

2.1 總RNA和全基因組DNA瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果

所用RNA和DNA的提取分別采用TRIzol法和試劑盒方法，以1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)其降解度。由圖1可知，RNA和DNA無(wú)降解。利用微量分光光度計(jì)測(cè)定38 頭牛血液樣品中RNA和DNA純度和濃度，結(jié)果顯示，A260 nm/A280 nm均為1.7～1.9，質(zhì)量濃度大于50 ng/?L，證明RNA和DNA可直接用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

2.2 草原安格斯牛血液SCD1基因表達(dá)量對(duì)血液脂肪酸組成的影響

由表3可知：SFA中以棕櫚酸（C16：0）和硬脂酸（C18：0）為主，含量分別為22.53%和26.95%;MUFA和多不飽和脂肪酸（polyunsaturated fatty acids，PUFA）中分別以油酸和亞油酸含量為最高，含量分別達(dá)15.09%和17.88%;MUFA/SFA為0.31;SCD1基因表達(dá)量對(duì)MUFA含量影響顯著（P<0.05），對(duì)C14：0、C14：1和C16：1含量影響均極顯著（P<0.01），對(duì)C16：0、C18：0、C18：1 n-9c、C18：2 n-6c含量和MUFA/SFA及C14指數(shù)（C14：0向C14：1轉(zhuǎn)化的指數(shù)）、C18指數(shù)（C18：0向C18：1轉(zhuǎn)化的指數(shù)）、脂肪酸總不飽和指數(shù)和伸長(zhǎng)指數(shù)影響均高度顯著（P<0.001），但對(duì)SFA含量和C16指數(shù)（C16：0向C16：1轉(zhuǎn)化的指數(shù)）影響不顯著。

2.3 草原安格斯牛血液SCD1基因表達(dá)量與血液脂肪酸組成的相關(guān)性

SCD是動(dòng)物體內(nèi)調(diào)控SFA向MUFA轉(zhuǎn)化的關(guān)鍵酶，主要在以C16：0和C18：0為底物合成C16：1和C18：1的過(guò)程中起重要作用[13-14]。由表7可知：SFA中C16：0和C18：0含量與SCD1基因表達(dá)量之間的相關(guān)系數(shù)分別為0.153和0.178;轉(zhuǎn)化為MUFA的C16：1和C18：1（C18：1 n-9c）含量與SCD1基因表達(dá)量之間的相關(guān)系數(shù)分別為0.134和0.167;MUFA與SCD1基因表達(dá)量之間的相關(guān)系數(shù)為0.166。SCD1基因表達(dá)量與C16：0、C16：1、C18：0、C18：1 n-9c和MUFA含量均呈正相關(guān)，上述結(jié)果說(shuō)明SCD1基因表達(dá)對(duì)草原安格斯牛血液脂肪酸有正向調(diào)控作用。

2.4 草原安格斯牛血液SCD1基因多態(tài)性對(duì)血液脂肪酸組成的影響

2.4.1 SCD1基因分型結(jié)果

利用PCR對(duì)草原安格斯牛血液全基因組DNA進(jìn)行擴(kuò)增，擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)，沒(méi)有非特異性條帶，純化后進(jìn)行一代測(cè)序。

檢測(cè)38 種PCR產(chǎn)物，得到SCD1基因878位點(diǎn)的多態(tài)性統(tǒng)計(jì)結(jié)果。由表5可知，草原安格斯牛血液SCD1基因中檢測(cè)出的CC、CT和TT 3 種基因型的基因個(gè)體數(shù)分別為28、9和1，CC型基因個(gè)體數(shù)最高，TT型基因個(gè)體數(shù)最少，基因型頻率分別為CC 73.7%、CT 23.7%和TT 2.6%，C和T等位基因頻率分別為85.5%和14.5%。

2.4.3 SCD1基因多態(tài)性對(duì)血液脂肪酸組成的影響

由表6可知，含CT型SCD1基因血液的C14：0（0.60%）、C14：1（0.37%）、C18：0（31.16%）含量及伸長(zhǎng)指數(shù)（0.69）均高于CC型，而CC型的C16：0（22.59%）、C16：1（0.50%）、C18：2 n-6c（18.42%）含量及C14指數(shù)（0.39）卻高于CT型，CC型個(gè)體和CT型個(gè)體之間未發(fā)現(xiàn)顯著差異。由于所選群體中TT基因型個(gè)體數(shù)較少，導(dǎo)致分析結(jié)果中出現(xiàn)較大的誤差，因此本統(tǒng)計(jì)結(jié)果認(rèn)為TT型沒(méi)有代表性，不與其他基因型數(shù)據(jù)作比較。

3 討 論

3.1 草原安格斯牛血液脂肪酸組成與含量分析

牛肉中含有大量SFA和MUFA，其中MUFA中油酸含量最高，其次為SFA中的硬脂酸和棕櫚酸等，而PUFA的含量較少[15]。有研究表明，牛肉中富含的硬脂酸、棕櫚酸與油酸能提高高密度脂蛋白膽固醇含量，降低低密度脂蛋白膽固醇含量，從而減少動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生[16]。油酸不僅是牛肉風(fēng)味的重要來(lái)源，也是評(píng)價(jià)牛肉營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的指標(biāo)之一。肌內(nèi)脂肪中MUFA的含量和MUFA/SFA比值與牛肉品質(zhì)成正比，但SFA在血清可轉(zhuǎn)化為膽固醇，可引起動(dòng)脈粥樣硬化，因此，肉中MUFA/SFA比值高，對(duì)人體健康有益[17-18]。本研究中，草原安格斯牛血液脂肪酸中棕櫚酸、硬脂酸及油酸含量很高，分別達(dá)22.53%、26.95%和15.09%，PUFA中亞油酸含量最高，達(dá)17.88%，MUFA/SFA比值為0.31，營(yíng)養(yǎng)價(jià)值較高。

3.2 草原安格斯牛SCD1基因表達(dá)量對(duì)血液脂肪酸的影響

SCD1是SFA生成MUFA過(guò)程中的限速酶，MUFA的含量對(duì)牛肉的質(zhì)量至關(guān)重要，影響牛肉大理石花紋等級(jí)、深加工性能、脂肪柔軟度以及肉的風(fēng)味等[19]，SCD1基因被認(rèn)為是影響牛肉經(jīng)濟(jì)性狀的重要候選基因[20]。伸長(zhǎng)指數(shù)表示從C16到C18的轉(zhuǎn)換，伸長(zhǎng)指數(shù)越高，油酸含量越高，牛肉風(fēng)味越好[21]。本研究中草原安格斯母牛血液中SCD1基因表達(dá)量對(duì)MUFA含量影響顯著（P<0.05），對(duì)C14：0、C14：1和C16：1含量均影響極顯著（P<0.01），對(duì)C16：0、C18：0、C18：1 n-9c、C18：2 n-6c含量、MUFA/SFA、C14指數(shù)、C18指數(shù)、脂肪酸總不飽和指數(shù)和伸長(zhǎng)指數(shù)均影響高度顯著（P<0.001），但對(duì)SFA含量和C16指數(shù)無(wú)顯著影響。因此，SCD1基因?qū)Σ菰哺袼古Ｑ褐舅峤M成有顯著影響，將會(huì)對(duì)草原安格斯牛肉風(fēng)味發(fā)揮重要作用。

SCD1作為脂肪酸合成路徑中催化SFA去飽和化的關(guān)鍵酶，具有催化SFA的脂酰CoA脫氫的作用，可在其首選底物C16：0和C18：0的第9和第10碳原子間導(dǎo)入氫鍵，分別轉(zhuǎn)化生成MUFA，即C16：1與C18：1，二者是合成膜磷脂、膽固醇酯和三酰甘油的底物，對(duì)肌內(nèi)脂肪沉積、脂肪酸組成等有重要影響[22-23]。唐慧等[11]在不同品種牛（蜀宣花牛、巴山牛和安格斯牛×巴山牛雜交牛）SCD1基因表達(dá)與肌肉脂肪酸組成的關(guān)系研究中得到SCD1基因表達(dá)量分別與MUFA、C16：1和C18：1含量呈正相關(guān)的結(jié)果。SCD1基因可催化油酸的形成[24]。本研究對(duì)草原安格斯母牛SCD1基因表達(dá)與血液中脂肪酸組成和含量進(jìn)行顯著性和相關(guān)性分析，結(jié)果表明，SCD1基因表達(dá)量與C16：0、C16：1、C18：0、C18：1和MUFA含量均呈正相關(guān)，說(shuō)明SCD1基因正向調(diào)控草原安格斯牛血液中的脂肪酸組成，對(duì)其具有遺傳效應(yīng)，與唐慧等[11]研究結(jié)果一致。

3.3 草原安格斯牛SCD1基因分型對(duì)血液脂肪酸的影響

SCD1基因?qū)θ赓|(zhì)性狀有重要作用，近年來(lái)，國(guó)內(nèi)外對(duì)該基因在各種牛群體中開(kāi)展了研究。李新淼等[25]研究發(fā)現(xiàn)，SCD1基因?qū)εＶ竞坑幸欢ㄓ绊?。Barton等[26]研究發(fā)現(xiàn)，公牛CC和CT基因型個(gè)體SFA含量顯著低于TT基因型個(gè)體，而MUFA含量顯著高于TT基因型個(gè)體。劉自增等[27]通過(guò)對(duì)天祝白牦牛的研究發(fā)現(xiàn)，SCD1基因C等位基因個(gè)體的MUFA含量較高，并且對(duì)從SFA到MUFA的去飽和度有不同程度的影響。Jiang等[22]研究發(fā)現(xiàn)，SCD1基因與SFA、亞油酸含量顯著相關(guān)。武秀香等[28]對(duì)SCD1基因C878T位點(diǎn)進(jìn)行檢測(cè)發(fā)現(xiàn)，CC基因型個(gè)體腸系膜油質(zhì)量與肌內(nèi)脂肪含量均顯著高于TT型個(gè)體（P<0.05），背膘厚極顯著低于TT型個(gè)體（P<0.01）。本研究發(fā)現(xiàn)，安格斯牛血液中SCD1基因C878T位點(diǎn)表現(xiàn)出不同的多態(tài)性，檢測(cè)出CC、CT和TT 3 種基因型，其基因型頻率分別為73.7%、23.7%和2.6%，C和T等位基因頻率分別為85.5%和14.5%。草原安格斯母牛中，SCD1基因C878T CC型個(gè)體和CT型個(gè)體血液脂肪酸之間未發(fā)現(xiàn)顯著差異，這與Barton[26]、施雪奎[12]等研究結(jié)果不一致，但與陳龍[29]的研究一致。TT型SCD1基因有助于提高M(jìn)UFA含量，本研究結(jié)果與Taniguchi等[30]研究的日本黑公牛SCD基因型與脂肪酸組成的相關(guān)性結(jié)果不一致，本研究在草原安格斯母牛血液樣品中表現(xiàn)出較低頻率的TT基因型，SCD1基因型對(duì)草原安格斯牛血液脂肪酸的影響不明顯。

4 結(jié) 論

綜上所述，草原安格斯牛血液脂肪酸含量豐富，血液SCD1基因表達(dá)量與C16：0、C16：1、C18：0、C18：1和MUFA含量均有正相關(guān)性，與C14：0、C14：1、C16：0、C16：1、C18：0、C18：1、C18：2、MUFA含量和MUFA/SFA及伸長(zhǎng)指數(shù)均顯著相關(guān);在SCD1基因C878T位點(diǎn)處檢測(cè)出CC、CT和TT 3 種基因型，不同基因型對(duì)血液脂肪酸組成無(wú)顯著影響。SCD1基因可為品種牛優(yōu)良遺傳基因的選育及優(yōu)質(zhì)草原安格斯牛數(shù)據(jù)庫(kù)的建立提供科學(xué)的理論依據(jù)。

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收稿日期：2021-06-03

基金項(xiàng)目：內(nèi)蒙古自然科學(xué)基金項(xiàng)目（2017MS0357）;內(nèi)蒙古自治區(qū)院士專家工作站建設(shè)項(xiàng)目（內(nèi)科發(fā)[2018]88號(hào)）;

內(nèi)蒙古自治區(qū)科技計(jì)劃項(xiàng)目（201803055）;內(nèi)蒙古自治區(qū)科技重大專項(xiàng)（內(nèi)財(cái)教[2013]2186號(hào)）;

內(nèi)蒙古自治區(qū)“草原英才”專項(xiàng)（內(nèi)組通字[2020]7號(hào)）;內(nèi)蒙古自治區(qū)科技成果轉(zhuǎn)化專項(xiàng)（2020CG0031）;

內(nèi)蒙古自治區(qū)財(cái)政廳“草原英才”工程專項(xiàng)（內(nèi)財(cái)行[2021]333號(hào)）

第一作者簡(jiǎn)介：王圓圓（1996—）（ORCID： 0000-0002-1039-2162），女，碩士研究生，研究方向?yàn)槭称窓C(jī)能學(xué)。

E-mail： 1692230812@qq.com

通信作者簡(jiǎn)介：包音都古榮·金花（1965—）（ORCID： 0000-0001-9863-376X），女，副教授，博士，研究方向?yàn)槭称窓C(jī)能學(xué)。

E-mail： huajin25@hotmail.com