阮鵬 曾毅 胡穎嵩

[摘要]目的探討骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞（BMMSCs）濃度對(duì)調(diào)節(jié)性T細(xì)胞（Treg）/輔助性T細(xì)胞17（Th17）表達(dá)的影響。方法貼壁法提取大鼠BMMSCs并傳代培養(yǎng)至P4代，油紅O染色法及鈣鹽染色法測(cè)定P3代成脂及成骨誘導(dǎo)能力。倒置顯微鏡下標(biāo)記CD29、CD90、CD45熒光抗體。磁珠法分選大鼠CD4+T細(xì)胞，流式細(xì)胞儀測(cè)定細(xì)胞純度。將CD4+T細(xì)胞與濃度不同的BMMSCs（0.5倍、1倍、2倍、4倍濃度組）共培養(yǎng)3 d，流式細(xì)胞儀測(cè)定Treg、Th17增值比例，流式微球分析法檢測(cè)轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β（TGF-β）及白介素（IL-6、IL-10、IL-17）水平。結(jié)果本研究P4代BMMSCs形態(tài)均勻，且呈梭形緊密排列，成脂誘導(dǎo)后鏡下呈現(xiàn)橘紅色脂肪小滴，成骨誘導(dǎo)后鏡下呈現(xiàn)黑鈣鹽結(jié)節(jié)。CD90、CD29于BMMSCs表面陽(yáng)性表達(dá)，CD45弱表達(dá)。磁珠法分選出CD4+T細(xì)胞約（5.75±0.36）×10個(gè)/ml，細(xì)胞純度>95%。共培養(yǎng)后，在Treg增殖比例上，2倍>1倍>0.5倍>4倍濃度組，2倍濃度組與其他各組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在Th17增殖比例上，1倍>2倍>0.5倍>4倍濃度組，0.5倍濃度組與各組組間比較，4倍濃度組與1倍、2倍濃度組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在TGF-β水平上，1倍>2倍>4倍>0.5倍濃度組，1倍濃度組與0.5倍、4倍濃度組組間比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在IL-10水平上，2倍>1倍〉4倍〉0.5倍濃度組，0.5倍濃度組與其他各組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在IL-6、IL-17水平上，各組組間比較，差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。結(jié)論BMMSCs具多向分化潛能，CD4+T細(xì)胞分化成Treg、Th17的增殖比例受到BMMSCs濃度的影響，較高濃度時(shí)增殖效應(yīng)最強(qiáng)，高濃度時(shí)抑制增殖，兩者增殖比例變化與相關(guān)因子表達(dá)水平并不同步。

[關(guān)鍵詞]骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞;調(diào)節(jié)性T細(xì)胞;輔助性T細(xì)胞17;濃度調(diào)節(jié)

[中圖分類號(hào)]R329.2??? [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼]A??? [文章編號(hào)]2095-0616（2022）05-0031-05

Study on the regulation of Treg/Th17 expression by the concentration of bone marrow mesenchymal stem cells

RUAN Peng1??? ZENG Yi1??? HU Yingsong2

1. Inspection Department，Wuhan Zhongtong Lanbo Medical Laboratory Co.，Ltd，Hubei，Wuhan 430000，China;

2. Department of Laboratory Medicine，Hubei Provincial Hospital of Integrated Traditional Chinese and Western Medicine，Hubei，Wuhan 430000，China

[Abstract]Objective To investigate the effect of the concentration of bone marrow mesenchymal stem cells （BMMSCs）on the expression of regulatory T cells （Treg）/ T helper 17 cells （Th17）. Methods Rat BMMSCs were extracted by adherence culture method and subcultured to P4 generation，and the lipogenic and osteogenic induction potential of P3 generation was determined by oil red O staining and calcium salt staining. CD29，CD90 and CD45 fluorescent antibodies were labeled under inverted microscope. Rat CD4+ T cells were sorted by magnetic bead method，and cell purity was determined by flow cytometry. CD4+ T cells were co-cultured with BMMSCs of different concentrations （0.5x，1x，2x，and 4x）group for 3 d. Treg and Th17 value-added ratios were determined by flow cytometry，and the levels of transforming growth factor-β（TGF-β）and interleukin （IL-6，IL-10，IL-17）were measured by cytometric bead array. Results In this study，BMMSCs of P4 generation were uniform in morphology and closely arranged in a shuttle shape，showing small fat droplets in tangerine microscopically after lipogenic induction and black calcium salt nodules microscopically after osteogenic induction. CD90 and CD29 were positively expressed on the surface of BMMSCs and CD45 was weakly expressed. CD4+ T cells were sorted out by magnetic bead method at about （5.75±0.36）×10 cells/ml，with cell purity>95%. After co-culture，the ratio of Treg proliferation was：2x>1x>0.5x>4xconcentration group，with the 2xconcentration group significantly different from all other concentration groups，with statistically significant differences （P<0.05）. The ratio of Th17 proliferation was：1x>2x>0.5x>4xconcentration group，with the 0.5x concentration group significantly different from all other concentration groups，and the 4xconcentration group significantly different from 1x and 2x concentration groups，with statistically significant differences （P<0.05）. The level of TGF- pwas：1x>2x>4x>0.5xconcentration group，with the Ixconcentration group significantly different from 0.5xand 4xconcentration groups，with statistically significant differences （P<0.05）. The level of IL-10 was：2x>1x>4x>0.5x concentration group，with the 0.5x concentration group different from all other concentration groups，with statistically significant differences （P<0.05）. There were no statistically significant differences in the levels of IL-6 and IL-17 among each group （P>0.05）. Conclusion BMMSCs have multi-lineage differentiation potential，and the proliferation ratio of CD4+ T cells differentiated into Treg and Th17 is affected by the concentration of BMMSCs，with the strongest proliferative effect at relatively high concentrations and inhibition of proliferation at higher concentrations，and the changes in the proliferation ratios of Treg and Th17 are not synchronized with the expression levels of related factors.

[Key words] Bone marrow mesenchymal stem cells;Regulatory T cells;T helper 17 cells;Concentration regulation

骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞（bone marrow mesenchymal stem cells，BMMSCs）是存在于骨髓，具有多向分化性及自我增殖能力的一種非造血來(lái)源干細(xì)胞[1]。間充質(zhì)干細(xì)胞（mesenchymal stem cells，MSCs）在調(diào)節(jié)免疫細(xì)胞增殖、表面受體表達(dá)、相關(guān)因子分泌等方面具有不可或缺的作用[2]。調(diào)節(jié)性T細(xì)胞（regulatory T cells，Treg）和輔助性T 細(xì)胞17（T helper cell 17，Th17）是分別具有抗炎和促炎作用的兩類初始CD4+T細(xì)胞亞群[3]。Treg/Th17動(dòng)態(tài)平衡是介導(dǎo)自身免疫耐受、維持移植微環(huán)境穩(wěn)態(tài)的重要機(jī)制，而以Th17為主導(dǎo)的比例失衡及IL-17等，則可致自身免疫病、炎癥、移植排斥、腫瘤、代謝異常等的發(fā)生[4-5]。根據(jù)既往研究，MSCs對(duì)Treg/Th17有調(diào)控作用。本研究將不同濃度的大鼠BMMSCs同CD4+T細(xì)胞共培養(yǎng)，探討B(tài)MMSCs濃度對(duì)Treg/Th17表達(dá)的影響，以期為BMMSCs在不同條件下的臨床運(yùn)用提供參考。

1??? 材料與方法

1.1??? 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

選取SPF級(jí)雄性Wistar大鼠[武漢大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心，許可證號(hào)SCXK （鄂）2008-0004]。在3周齡、約50 g的實(shí)驗(yàn)大鼠中提取BMMSCs，選6周齡、約200 g的實(shí)驗(yàn)大鼠分選CD4+ T細(xì)胞。本實(shí)驗(yàn)符合《實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理?xiàng)l例》，且獲武漢大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)倫理委員會(huì)審批。

1.2??? 實(shí)驗(yàn)材料

青霉素鏈霉素雙抗（美國(guó)Hyclone公司，SV30010），Von Kossa染色試劑盒（北京博蕾德生物科技有限公司，HTKMS1001-1），轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β（TGF-β）檢測(cè)試劑盒（上海滬震實(shí)業(yè)有限公司，HZ-TGF-B1-Mu），胎牛血清（美國(guó)Gibco公司，12676029），DMEM/F12 培養(yǎng)基（美國(guó)Gibco 公司，12634010），倉(cāng)鼠抗小鼠CD29 PE （美國(guó)BD公司，562801），小鼠抗大鼠CD45 PE-Cy7（美國(guó)BD 公司，561588），CD90 APC熒光抗體（上海恪敏生物科技有限公司，SZB17840），IL-6檢測(cè)試劑盒（上海江萊生物科技有限公司，JL14113），IL-10檢測(cè)試劑盒（上海江萊生物科技有限公司，JL20242-96T），IL-17檢測(cè)試劑盒（北京百奧萊博科技有限公司，ZN2653），抗大鼠CD4 FITC熒光抗體[上海艾博抗貿(mào)易有限公司，ab269349），大鼠CD4磁珠（德國(guó)Melitenyi 公司，130-049-201 ），CO2 培養(yǎng)箱[上海一恒科學(xué)儀器有限公司，BPN-50CH（UV）]，流式細(xì)胞儀（美國(guó)BD公司，F(xiàn)ACSCanto II）等。

1.3??? 方法

①提取BMMSCs：剖取3周齡實(shí)驗(yàn)大鼠的脛、股骨，將骨髓腔反復(fù)洗滌后留取懸液并接種于T75 培養(yǎng)瓶，加入DMEM/F12完全培養(yǎng)液（含1%青霉素鏈霉素雙抗+10%胎牛血清）5 ml后置于培養(yǎng)箱孵育，2～3 d換液1次。貼壁法分離純化BMMSCs 至90%融合。傳代培養(yǎng)至P4代后于倒置顯微鏡下觀察形態(tài)并標(biāo)記CD29、CD90、CD45熒光抗體。流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞純度。②油紅O染色法檢測(cè)P3代成脂誘導(dǎo)能力：倒去培養(yǎng)液后，先以磷酸鹽緩沖液輕緩漂洗，再加入95%酒精固定胞膜30 min，稀釋油紅儲(chǔ)存液，濾紙過濾并靜置，除去雜質(zhì)，染色30 min，75%酒精脫色，除去多余染料，封片。③鈣鹽染色法檢測(cè)P3代成骨誘導(dǎo)能力：漂洗同上，加入冷丙醇固定胞膜10 min，蒸餾水沖洗數(shù)次，置入孵育液孵育4～6 h，沖洗，2%硝酸鉆浸泡4 min，沖洗數(shù)次，1%硫化銨浸泡2 min，沖洗，自然干燥、封固。④提取CD4+T細(xì)胞：獲取6周齡大鼠的脾單個(gè)核細(xì)胞懸液，計(jì)數(shù)后將CD4+ T細(xì)胞磁珠按比例加入并混勻，將其孵育后置入MS分選柱，緩沖液反復(fù)沖刷后獲取CD4+T細(xì)胞并計(jì)數(shù)。流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞純度。⑤共培養(yǎng)：BMMSCs以不同濃度[0.5/1/2/4倍濃度（1/2/4/8×10個(gè)/孔）]+培養(yǎng)液置于6孔板孵育。2 d后加入CD4+T細(xì)胞（2×10個(gè)/孔）及IL-2 （50 mg/L）、植物血凝素（5 g/L），孵育3 d后離心提取上清并冷凍保存。⑥Treg、Th17及相關(guān)因子檢測(cè)：流式細(xì)胞儀檢測(cè)Treg及Th17增殖比例。流式微球分析法檢測(cè)TGF-B、IL-10、IL-17、IL-6 水平。

1.4??? 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

2??? 結(jié)果

2.1??? 細(xì)胞形態(tài)學(xué)結(jié)果

倒置顯微鏡下P4代BMMSCs形態(tài)均勻，且呈梭形緊密排列，符合實(shí)驗(yàn)要求所需。經(jīng)成脂誘導(dǎo)后鏡下呈現(xiàn)橘紅色脂肪小滴。經(jīng)成骨誘導(dǎo)后鏡下呈現(xiàn)黑鈣鹽結(jié)節(jié)。見圖1 ～ 3。

2.2??? BMMSCs表面抗原檢測(cè)結(jié)果

CD90、CD29于細(xì)胞表面陽(yáng)性表達(dá)，CD45弱表達(dá)，符合實(shí)驗(yàn)要求所需，見圖4。

2.3??? CD4+ T細(xì)胞鑒定

磁珠法分選出CD4+T細(xì)胞約（5.75±0.36）×10個(gè)/ml，見圖5。細(xì)胞純度>95%。符合實(shí)驗(yàn)要求所需。

2.4??? BMMSCs濃度對(duì)Treg/Th17表達(dá)的影響

共培養(yǎng)后，在Treg增殖比例上，2倍>1倍>0.5倍>4倍濃度組，2倍濃度組與其他各組組間比較，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在Th17增殖比例上，1倍>2倍>0.5倍>4倍濃度組，0.5倍濃度組與各組組間比較，4倍濃度組與1倍、2倍濃度組比較，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。見圖6～7。

2.5??? BMMSCs濃度調(diào)節(jié)Treg/Th17表達(dá)對(duì)相關(guān)因子水平的影響

共培養(yǎng)后，在TGF-B水平上，1倍>2倍>4倍>0.5倍濃度組，1倍濃度組與0.5倍、4倍濃度組組間比較，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在IL-10水平上，2倍>1倍>4倍>0.5倍濃度組，0.5倍濃度組與其他各組比較，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在IL-6、IL-17水平上，各組組間比較，差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。見表1。

3??? 討論

BMMSCs在幼稚CD4+T細(xì)胞的增殖、分化中意義重大，Treg與Th17是其中影響較大的兩類細(xì)胞[6]。兩者均于TGF-B信號(hào)的調(diào)控下完成初始分化，但于終末分化階段，Treg在細(xì)胞核內(nèi)分泌TGF-B、IL-10等抑炎因子，介導(dǎo)免疫逃逸，保持免疫穩(wěn)態(tài);Th17分泌IL-17、IL-6等致炎因子，誘導(dǎo)自身免疫及炎癥反應(yīng)[7]。既往研究[8-9]亦證實(shí)，Treg/Th17比例及其相關(guān)細(xì)胞因子失衡與某些疾病的發(fā)生及其病情程度顯著相關(guān)。

BMMSCs具有多項(xiàng)分化潛能。本研究提取大鼠BMMSCs與CD4+ T細(xì)胞，觀察顯示，BMMSCs形態(tài)均勻，且呈梭形緊密排列，成脂誘導(dǎo)后鏡下呈現(xiàn)橘紅色脂肪小滴，成骨誘導(dǎo)后鏡下呈現(xiàn)黑鈣鹽結(jié)節(jié)。說明BMMSCs增殖旺盛，且具有成脂及成骨分化潛能。來(lái)源于骨髓、羊水、脂肪等組織中的MSCs 一般可在其表面陽(yáng)性表達(dá)CD90、CD73、CD29等，弱表達(dá)CD14、CD45等。本研究BMMSCs表面陽(yáng)性表達(dá)CD90、CD29，弱表達(dá)CD45，CD4+T細(xì)胞純度>95%。證明所得細(xì)胞符合實(shí)驗(yàn)所需。

本研究共培養(yǎng)后，在Treg增殖比例上，2倍>1倍>0.5倍>4倍濃度組，2倍濃度組與其他各組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在Th17增殖比例上，1倍>2倍>0.5倍>4倍濃度組，0.5倍濃度組與各組組間比較，4倍濃度組與1倍、2倍濃度組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P<0.05）。在TGF-β水平上，1倍>2倍>4倍>0.5倍濃度組，1倍濃度組與0.5倍、4倍濃度組組間比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P <0.05）。在IL-10水平上，2倍>1倍>4倍>0.5倍濃度組，0.5倍濃度組與其他各組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P <0.05）。在IL-6、IL-17水平上，各組組間比較，差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P >0.05）。提示BMMSCs可促進(jìn)Treg、Th17的增殖、分化，但其濃度梯度與Treg/Th17增殖比例不呈正相關(guān)。具體表現(xiàn)為，低濃度（0.5倍）時(shí)，兩者即可增殖，且Th17增殖高峰稍早于Treg;較高濃度（1倍、2倍）時(shí)，兩者增殖效應(yīng)最強(qiáng)，高倍濃度（4倍）時(shí)，兩者增殖比例均顯著降低，起抑制作用。而在Treg/Th17平衡對(duì)相關(guān)因子表達(dá)的影響上，相關(guān)因子水平與Treg/Th17增殖比例的變化并不同步，且IL-6、IL-17水平變化并不顯著。這可能與TGF-B、IL-10等抑炎因子在BMMSCs調(diào)節(jié)下顯著增殖有關(guān)[10]。

BMMSCs免疫調(diào)節(jié)的發(fā)揮是多機(jī)制的，除TGF-B/Smad 信號(hào)通路，Toll受體（Toll-like receptor，TLR）信號(hào)通路在先天免疫細(xì)胞的激活中亦具重要地位，其可通過自身TLR-3、TLR-4的激活誘導(dǎo)CD4+ CD25+T細(xì)胞特征性表達(dá)FoxP3蛋白使Treg表達(dá)上調(diào)，進(jìn)而發(fā)揮免疫抑制作用，當(dāng)TLR 基因沉默，則分化受抑[11]。此外，TLR亦在不同條件或病模下對(duì)Th17分化產(chǎn)生影響。李凌云[12]敲除心臟移植小鼠TLR2基因的研究表明，敲除TLR2可上調(diào)Th-17、IL-17、IL-6表達(dá)，加重小鼠排異反應(yīng)。張皓旻等[13]的研究指出，TLR可通過Th17信號(hào)通路誘使TNF、IL-6等細(xì)胞因子表達(dá)上調(diào)及自身抗體生成以介導(dǎo)自身免疫應(yīng)答等。Najar等[14]對(duì)BMMSCs的研究中，Treg增殖時(shí)，IL-10水平隨之上升。Kim等[15]在Th0與BMMSCs的培養(yǎng)體系中阻斷IL-10信號(hào)通路，結(jié)果顯示Th17及IL-17比例升高。以上研究共同提示，BMMSCs調(diào)節(jié)Treg/Th17 平衡機(jī)制的實(shí)現(xiàn)，可能與其促進(jìn)Treg及其相關(guān)因子增殖、抑制Th17及其相關(guān)因子分泌有關(guān)。

綜上，BMMSCs具多向分化潛能，CD4+T細(xì)胞分化成Treg、Th17的增殖比例受到BMMSCs濃度的影響，較高濃度時(shí)增殖效應(yīng)最強(qiáng)，高濃度時(shí)抑制增殖，兩者增殖比例變化與相關(guān)因子表達(dá)水平并不同步。

[參考文獻(xiàn)]

[1]朱業(yè)淘，劉陽(yáng)，王童.堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子修飾骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞后對(duì)腦出血后神經(jīng)功能影響的研究進(jìn)展[J].中國(guó)醫(yī)藥科學(xué)，2021，11 （6）：38-41.

[2]郭禮妍，賴沛龍，耿素霞，等.人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞來(lái)源外泌體對(duì)Treg和TH17細(xì)胞的調(diào)節(jié)作用[J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)血液學(xué)雜志，2019，27（1）：221-226.

[3]崔換天，蔡雨孜，王麗，等.Treg/Th17代謝特點(diǎn)及相關(guān)通路對(duì)Treg/Th17平衡的影響[J].中國(guó)免疫學(xué)雜志，2019，35（7）：888-891.

[4] Calcaterra V，Croce S，Inci F，et al. Th17 and Treg Balance in Children With Obesity and Metabolically Altered Status[J].Front Pediatr，2020，19 （8）：591012.

[5]鄭雅.MicroRNA調(diào)控Th17/Treg平衡的研究進(jìn)展[J]. 醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào)，2020，33 （6）：651-657.

[6] Feng Z，Zhai Y，Zheng Z，et al.Loss of A20 in BMMSCs regulates the Th17/Treg balance in Rheumatoid Arthritis[J].Sci Rep，2018，8（1）：427.

[7] Lee GR.The Balance of Th17 versus Treg Cells in Autoimmunity[J].Int J Mol Sci，2018，19（3）：730.

[8] Moaaz M，Youssry S，Elfatatry A，et al.Th17/Treg cells imbalance and their related cytokines （IL-17，IL-10 and TGF-β）in children with autism spectrum disorder[J].J Neuroimmunol，2019，15 （337）：577071.

[9] Rezalotfi A，Ahmadian E ，Aazami H，et al.Gastric Cancer Stem Cells Effect on Th17/Treg Balance;A Bench to Beside Perspective[J].Front Oncol，2019，5 （9）：226.

[10]王凱，李亞光，周春雷，等.不同濃度骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞對(duì)大鼠Treg/Th17平衡的影響[J].中華危重病急救醫(yī)學(xué)，2019，31 （3 ）：288-292.

[11] Toubi E，Vadasz Z.Highlights in Autoimmunity：2020[J]. Isr Med Assoc J，2020，11（22）：717-719.

[12]李凌云.TLR2基因敲除對(duì)小鼠心臟移植排斥反應(yīng)的影響及機(jī)制[D].武漢：華中科技大學(xué)，2019：3-4.

[13]張皓旻，楊波，遲小華，等.SARS病毒感染相關(guān)免疫損傷分子機(jī)制和干預(yù)藥物的生物信息學(xué)預(yù)測(cè)及其對(duì)COVID-19的意義[J].中華微生物學(xué)和免疫學(xué)雜志，2020，40（3）：165-173.

[14] Najar M ，Raicevic G，F(xiàn)ayyad-Kazan H，et al. Mesenchymal stromal cells and immunomodulation：A gathering of regulatory immune cells [J]. Cytotherapy，2016，18（2）：160-171.

[15] Kim N，Cho SG.Overcoming immunoregulatory plasticity of mesenchymal stem cells for accelerated clinical applications [J]. Int J Hematol，2016，103 （2）：129-137.