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      人參皂苷G-Rh2通過調(diào)節(jié)脂質(zhì)代謝與免疫改善小鼠代謝綜合征①

      2022-07-25 04:03:04黃容容張子君解夢園
      中國免疫學雜志 2022年9期
      關(guān)鍵詞:代謝物脂質(zhì)肝臟

      黃容容 張子君 解夢園 茍 靜 李 晴 馬 坤 向 明

      (華中科技大學同濟醫(yī)學院藥學院生物藥學系,武漢 430030)

      代謝綜合征(metabolic syndrome,MS)是多種代謝紊亂癥候群在同一個體聚集的慢性疾病,表現(xiàn)為高血糖、高血壓、血脂異常、腹部肥胖等,易誘發(fā)糖尿病、脂肪肝病以及心血管疾病[1-2]。近年來MS 患者大量增加,亟需開發(fā)治療MS 的藥物[3]。MS 發(fā)病機制是代謝紊亂和慢性炎癥相互影響:肝臟和脂肪組織代謝異常易出現(xiàn)胰島素抵抗,導致肥胖、高血脂[4];肥胖環(huán)境下脂肪擴張引發(fā)Th1 細胞、M1 型巨噬細胞以及IL-6、TNF-α 等過度產(chǎn)生,形成慢性炎癥,促進脂肪分解,引起血漿脂肪酸升高[5-6]。據(jù)報道人參皂苷G-Rh2具有抗糖尿病、肥胖、炎癥等藥理活性,本課題組前期研究也發(fā)現(xiàn)G-Rh2 對肝臟脂肪酸代謝和免疫有調(diào)節(jié)作用[7-9]。本文旨在探究G-Rh2對MS的治療作用,并通過代謝和免疫調(diào)節(jié)途徑探究其作用機制。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 實驗動物 6周齡雄性C57BL/6J小鼠40只,SPF 級,購自北京華阜康生物科技股份有限公司,合格證號:42000600036134。飼養(yǎng)于華中科技大學實驗動物中心(溫度25 ℃,相對濕度60%),許可證號SYXK(鄂)2016-0057,適應性喂養(yǎng)1 周后進行實驗。本研究經(jīng)過華中科技大學實驗動物倫理委員會批準。

      1.1.2 試劑 高脂飼料(北京華阜康生物科技股份有限公司,批號:D12492);人參皂苷G-Rh2(商品名:今幸膠囊,浙江亞克藥業(yè)有限公司,每100 g 含16.2 g 人參皂苷G-Rh2,批號:190801);二甲雙胍鹽酸鹽、洛伐他?。ㄉ虾CI 化成工業(yè)發(fā)展有限公司,批號POW6L-QH、55FIB-JP);總膽固醇(total choles?terol,TC)、總?cè)8视停╰otal triglycerides,TG)、游離脂肪酸(nonestesterified fatty acid,NEFA)、高密度脂蛋白膽固醇(high density liptein cholesterol,HDL-C)、低密度脂蛋白膽固醇(low density liptein cholesterol,LDL-C)、谷 丙 轉(zhuǎn) 氨 酶(alanine aminotransferase,ALT)、谷草轉(zhuǎn)氨酶(aspartate aminotransferase,AST)(南京建成生物工程研究所,批號:A111-1、A110-1、A112-1、A113-1、A042-2、C009-2、C010-2);BCA蛋白測定試劑盒(Beyotime 公司,批號:P0010S);PE-Cy5標記的小鼠CD3 流式抗體(美國BD 公司,批號:7069621);PE標記的小鼠CD8流式抗體(美國BD公司,批號:7132789);FITC 標記的小鼠CD4 流式抗體(天津三箭生物科技有限公司,批號:AD605);PE 標記的小鼠NK1.1 流式抗體(上海Biolegend 公司,批號:B190158);PE 標記的小鼠CD25 抗體(美國BD公司,批號:E021463);PE-Cy5 標記的小鼠Foxp3 抗體(美國BD 公司,批號:8025968);PE 標記抗小鼠Gr-1 流式抗體(美國BD 公司,批號:4277720);APC標記的小鼠CD11b 流式抗體(美國BD 公司,批號:2010622)。

      1.1.3 儀器 血糖儀(湖南三諾生物傳感股份有限公司);多功能酶標儀(美國BioTek公司);C6型流式細胞儀(美國BD 公司);液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀(LC-MS/MS,美國AB SCIEX 公司);球磨勻漿機、超聲儀、真空干燥機(武漢邁特維爾生物科技有限公司);HE 染色、油紅O 染色分析儀(湖北百奧斯生物科技有限公司);高速冷凍離心機(上海力新儀器有限公司);恒溫振蕩器(太倉豪城實驗儀器制造有限公司)。

      1.2 方法

      1.2.1 動物造模、分組及給藥 隨機挑取8只正常小鼠,給予標準飼料喂養(yǎng),作為正常對照組(Con);其余32 只小鼠作為模型組,給予高脂飼料(high-fat diet,HFD,含60%脂肪、20%蛋白質(zhì)、20%碳水化合物)喂養(yǎng)。喂養(yǎng)期間,每周稱量一次小鼠體質(zhì)量并記錄其狀態(tài)。喂養(yǎng)12 周后,小鼠禁食6 h(自由飲水),尾尖微創(chuàng)采血測定空腹血糖(fasting blood glu?cose,F(xiàn)BG)值,眼眶靜脈叢取全血200μl,分離血清檢測TC、TG、HDL-C、LDL-C 水平。取同時符合下列標準的小鼠作為MS 模型:①體質(zhì)量高于同期飼養(yǎng)的正常組小鼠平均值;②FBG≥7.0 mmol/L;③血脂TG≥1.55 mmol/L、TC≥2.22 mmol/L、LDL-C≥0.35 mmol/L、HDL-C≤1.20 mmol/L 或與正常組相比有顯著性差異[10-12]。

      根據(jù)造模標準取造模成功的小鼠20只,隨機分為4組(每組5只):模型組(Mod),二甲雙胍組(陽性對照,Met,250 mg/kg),洛伐他汀組(陽性對照,Lova,10 mg/kg),G-Rh2 組(10 mg/kg 該劑量依據(jù)本課題組前期研究[9]和參考文獻[13]確定)。正常對照組和模型組按0.2 ml/只灌胃蒸餾水,各給藥組按相應劑量灌胃藥物混懸液(蒸餾水配制),1 次/d,連續(xù)4 周。給藥期間每周稱量1 次體質(zhì)量,末次給藥后處死小鼠,剝?nèi)⌒∈笃は潞透共恐?,稱重并計算脂肪指數(shù)。

      1.2.2 胰島素耐量實驗(insulin tolerance test,ITT) 給藥2 周后,小鼠禁食6 h(自由飲水),皮下注射胰島素溶液(0.4 U/kg),分別于胰島素注射后0 min、20 min、40 min 和90 min 采血測定FBG 值,記錄所得數(shù)據(jù)并計算曲線下面積(AUC)。

      1.2.3 口服葡萄糖耐量實驗(oral glucose tolerance test,OGTT) 給藥2周后,小鼠禁食6 h(自由飲水),灌胃葡萄糖溶液(2 g/kg),分別于葡萄糖負荷后0 min、30 min、60 min、90 min、120 min采血測定FBG值,記錄所得數(shù)據(jù)并計算AUC。

      1.2.4 胰島素抵抗指數(shù)(homeostasis model assess?ment,HOMA-IR)評估 末次給藥后,眼眶取血,4 ℃放置3~4 h,高速冷凍離心(6 000 r/min,4 ℃,10 min)收集血清。采用胰島素試劑盒檢測血清中胰島素含量,通過穩(wěn)態(tài)模型評估HOMA-IR,具體計算公式:HOMA-IR=空腹血糖×空腹胰島素/22.5。

      1.2.5 生化檢測 取血清,采用生化試劑盒檢測TC、TG、NEFA、HDL-C、LDL-C 水平。取肝臟勻漿,采用生化試劑盒檢測肝臟組織中ALT、AST 含量,并用蛋白試劑盒進行均一化。

      1.2.6 ELISA 檢測炎癥因子 取血清,采用ELISA試劑盒檢測炎癥因子TNF-α、IL-6水平。

      1.2.7 肝臟組織病理學分析 末次給藥后,脫臼處死小鼠,取肝臟組織同一部位的樣本固定于4%的多聚甲醛中,行HE 染色。另取一份肝臟組織迅速凍于液氮中,行油紅O染色。

      1.2.8 非靶向脂質(zhì)代謝組學分析 取小鼠肝臟組織同一部位的樣本裝在預冷的離心管中,迅速轉(zhuǎn)移到-80 ℃冰箱凍存,采用非靶向脂質(zhì)代謝組學技術(shù)檢測八大類脂質(zhì)代謝物含量,并對脂質(zhì)代謝組學數(shù)據(jù)進行解析。

      1.2.9 流式細胞儀(FACS)檢測免疫細胞 末次給藥后,脫臼處死小鼠,取出新鮮的脾臟和胸腺組織,置于PBS中保持濕潤,碾磨消化后制備單細胞懸液,分裝于EP 管中(每管約2×106個細胞),分別加入不同的流式抗體:T 細胞加入PE-Cy5 標記的小鼠CD3抗體、FITC 標記的小鼠CD4 抗體或PE 標記的小鼠CD8 抗體;調(diào)節(jié)性T 細胞(Treg)加入FITC 標記的小鼠CD4 抗體、PE 標記的小鼠CD25 抗體和PE-Cy5 標記的小鼠Foxp3 抗體;NK 細胞加入PE-Cy5 標記的小鼠CD3 抗體、PE 標記的小鼠NK1.1 流式抗體;骨髓來源的抑制性細胞(bone marrow-derived suppressor cells,MDSCs)加入APC 標記的小鼠CD11b 抗體、PE標記抗小鼠Gr-1 流式抗體;4 ℃避光孵育50 min,加入1 ml PBS,1 200 r/min 離心5 min,重復1 次,用300μl PBS重懸,流式細胞儀檢測細胞百分比。

      2 結(jié)果

      2.1 G-Rh2 對MS 小鼠肥胖體征的影響 喂養(yǎng)12 周后,與正常組比較,HFD 飼養(yǎng)小鼠體質(zhì)量快速增加且明顯高于正常組(P<0.01),呈現(xiàn)出肥胖體型。給藥4 周后,與模型組比較,G-Rh2 組小鼠體質(zhì)量明顯下降(P<0.01),恢復至正常組水平,呈瘦型(圖1A、C)。與正常組比較,模型組小鼠脂肪指數(shù)顯著升高(P<0.01)。與模型組比較,G-Rh2 組、二甲雙胍組和洛伐他汀組小鼠脂肪指數(shù)均明顯降低(P<0.05或0.01,圖1B)。

      圖1 G-Rh2對MS小鼠肥胖體征的影響(n=5)Fig.1 Effects of G-Rh2 on obesity symptom in MS mice(n=5)

      2.2 G-Rh2對MS小鼠胰島素敏感性的影響 給藥2 周后,ITT 結(jié)果顯示:與正常組比較,模型組小鼠AUC增大(P<0.05);與模型組比較,G-Rh2組注射胰島素后FBG 值下降,AUC 減小(圖2A)。OGTT 結(jié)果顯示:與正常組比較,模型組小鼠口服葡萄糖30 min后FBG 值迅速上升,至120 min 時才恢復到初始水平,同時AUC 顯著增大(P<0.01);與模型組比較,G-Rh2 組小鼠葡萄糖負荷后FBG 值變化幅度小,90 min 時恢復至初始水平,且AUC 明顯減?。≒<0.05,圖2B)。給藥4 周,與正常組比較,模型組小鼠HOMA-IR 顯著升高(P<0.01);與模型組比較,G-Rh2 組小鼠HOMA-IR 指數(shù)有一定程度的降低(圖2C)。

      圖2 G-Rh2對MS小鼠胰島素敏感性的影響(n=5)Fig.2 Effects of G-Rh2 on insulin sensitivity in MS mice(n=5)

      2.3 G-Rh2 對MS 小鼠血脂的影響 給藥4 周,與正常組比較,模型組小鼠血清中4 種脂質(zhì)TC、TG、NEFA、LDL-C 水平均升高;與模型組比較,G-Rh2 組小鼠血清中NEFA 和LDL-C 水平明顯降低(P<0.01或0.05),TC 水平也下降(P=0.105);洛伐他汀組TC 和NEFA 水平明顯降低(P<0.01);二甲雙胍組NEFA 水平下降,其余4 種脂質(zhì)水平無顯著變化(圖3)。

      圖3 G-Rh2對MS小鼠血脂的影響(n=5)Fig.3 Effects of G-Rh2 on serum lipid levels in MS mice(n=5)

      2.4 G-Rh2對MS小鼠肝臟脂質(zhì)代謝的影響 給藥4周后,與正常組比較,模型組有28種脂質(zhì)代謝物水平明顯下調(diào),222 種脂質(zhì)代謝物水平明顯上調(diào);G-Rh2 組74 種脂質(zhì)代謝物水平明顯下調(diào),8 種脂質(zhì)代謝物水平明顯上調(diào)(圖4A)。差異倍數(shù)柱狀圖展示:與正常組比較,模型組小鼠肝臟中上調(diào)最顯著的10種脂質(zhì)代謝物包括6種三酰甘油(TGs)、2種神經(jīng)酰胺(Cer)、1 種磷脂酰膽堿(PC)和1 種二酰甘油(DG);與模型組比較,G-Rh2 組小鼠肝臟中下調(diào)最顯著的脂質(zhì)代謝物有12 種,包括4 種TGs、2 種DGs、1 種Cer、2 種PCs、1 種磷脂酰乙醇胺(PE)、1 種溶血磷脂酰乙醇胺(LPE)和1 種溶血磷脂酰膽堿(LPC);上調(diào)最顯著的代謝物有8 種,分別是1 種羥基花生四烯酸(HETE)、2種環(huán)氧十八碳烯酸(EpOME)、1種PC、1 種棕櫚酸肉堿(palmitoleoylcarnitine)、1 種環(huán)氧二十碳三烯甘油酸(EET)、1 種血栓素B2(TXB2)、1種油?;鈮A(oleyl-carnitine)(圖4B)。

      聚類分析結(jié)果顯示,模型組與G-Rh2 組之間共有90 種脂質(zhì)代謝物參與了聚類,其中G-Rh2 組較模型組減少的脂質(zhì)代謝物有82 種,大多數(shù)是TGs 和磷脂酰膽堿類(PCs),與差異倍數(shù)柱狀圖結(jié)果一致。G-Rh2 組較模型組增多的脂質(zhì)代謝物有8 種,分別是3種LPCs、3種膽固醇脂和2種LPEs(圖4C)。

      圖4 G-Rh2對MS小鼠脂質(zhì)代謝物的影響(n=5)Fig.4 Effects of G-Rh2 on lipid metabolites in MS mice(n=5)

      2.5 G-Rh2 對MS 小鼠脂肪性肝炎的影響 給藥4 周后,HE 切片結(jié)果顯示:正常組小鼠肝臟形態(tài)結(jié)構(gòu)完整,中央靜脈血管清晰,肝小葉規(guī)則,肝索排列整齊;模型組小鼠肝竇萎縮變形,肝竇周圍細胞散亂,存在多處炎癥細胞聚集區(qū)域(黑色箭頭所指);G-Rh2 組小鼠肝臟形態(tài)恢復正常,肝小葉呈規(guī)則的多面棱柱狀,僅中央靜脈管周圍存在少許炎癥細胞,其他肝實質(zhì)區(qū)的炎癥細胞較模型組明顯減少(圖5A)。油紅O 染色結(jié)果顯示:正常組小鼠肝臟油紅O 染色呈陰性,藍色的細胞核清晰,無紅色;模型組小鼠肝臟油紅O染色呈陽性,有較多紅色的脂肪,藍色的細胞核少,排列疏松并出現(xiàn)大量裂隙;G-Rh2組小鼠肝臟油紅O 染色基本呈陰性,細胞核清晰,細胞內(nèi)脂滴聚集少,紅色染色比模型組明顯減輕(圖5B)。

      給藥4周后,與正常組比較,模型組小鼠肝臟指數(shù)增大,ALT、AST 含量顯著升高(P<0.01);與模型組比較,G-Rh2 組小鼠肝臟指數(shù)和ALT、AST 含量明顯降低(P<0.05或0.01,圖5C、D)。與正常組比較,模型組血清中TNF-α、IL-6 含量升高;與模型組比較,G-Rh2 組TNF-α、IL-6 含量明顯降低(P<0.05,圖5E)。

      圖5 G-Rh2對MS小鼠脂肪性肝炎的影響(n=5)Fig.5 Effects of G-Rh2 on steatohepatitis in MS mice(n=5)

      2.6 G-Rh2對MS小鼠免疫系統(tǒng)的影響 與正常組比較,模型組小鼠脾臟中CD4+T 和CD8+T 細胞比例明顯升高(P<0.05),MDSCs 細胞數(shù)量有一定程度的下降。與模型組比較,G-Rh2 組小鼠脾臟中CD4+T細胞數(shù)量明顯減少(P<0.05);CD8+T 細胞和NK 細胞數(shù)量有一定程度地下降,MDSCs 細胞數(shù)量明顯升高(P<0.01,圖6A)。胸腺組織中CD4+T、CD8+T、NK和Treg細胞均無明顯變化(圖6B)。

      圖6 G-Rh2對MS小鼠體內(nèi)免疫環(huán)境的影響(n=5)Fig.6 Effects of G-Rh2 on immune function in MS mice(n=5)

      3 討論

      諸多研究報道人參皂苷G-Rh2具有治療代謝性疾病的作用,可提高糖尿病大鼠胰島素敏感性和葡萄糖代謝能力,促進前脂肪細胞3T3-L1 脂質(zhì)分解代謝預防肥胖[14-16],但是作用機制尚不清楚。本研究同樣證實G-Rh2明顯抑制MS小鼠肥胖和脂肪肝,并降低血脂TC、NEFA、LDL-C 水平。肝臟脂質(zhì)代謝紊亂是引發(fā)高血糖、高血脂和肥胖等MS 系列癥狀的關(guān)鍵原因,一些藥物可通過重編程肝臟脂質(zhì)代謝治療MS[17-18]。因此,本課題組利用脂質(zhì)代謝組學探究G-Rh2 如何影響肝臟脂質(zhì)代謝發(fā)揮治療小鼠MS 的作用。結(jié)果表明經(jīng)HFD 誘導的MS 小鼠肝臟中有大量脂質(zhì)代謝物升高,最為顯著的是TGs,而G-Rh2 降低MS 小鼠肝臟中多種脂質(zhì)代謝物,包括TGs、DGs和PCs 等,說明G-Rh2 對脂肪肝的抑制與重塑肝臟脂質(zhì)代謝模式有關(guān)。另外,有報道稱與胰島素抵抗患者相比,胰島素敏感性患者的代謝產(chǎn)物中LPCs(C16:0)水平較高[19];本研究同樣觀察到G-Rh2 升高肝臟中LPCs,推測G-Rh2 改善MS 小鼠胰島素抵抗效應可能通過升高LPCs實現(xiàn)。

      除機體代謝紊亂外,MS和肥胖患者通常還伴隨慢性低度炎癥,他們的代謝器官肝臟和脂肪組織中存在大量的免疫細胞和細胞因子,如巨噬細胞、T 細胞、肥大細胞,炎癥因子IL-6、IL-1β、TNF-α 和趨化因子CCL2、CXCL10[20-23]。MDSCs 在MS 疾病環(huán)境中具有降低免疫反應的作用,CD11b+Gr-1+髓樣細胞在高血壓小鼠外周血中增加,通過產(chǎn)生過氧化氫來抑制T 細胞活化,從而限制炎癥反應和血壓升高[24-26]。據(jù)報道G-Rh2 具有較強的抗炎活性,通過阻斷MAPK 和NF-κB 信號通路抑制巨噬細胞激活和炎癥因子產(chǎn)生[27]。本課題組也探究了G-Rh2 對MS 小鼠組織炎癥及免疫系統(tǒng)的影響:給予G-Rh2 后,MS 小鼠肝臟中炎癥細胞浸潤減少,血清中炎癥因子TNF-α、IL-6 水平降低,脾臟中CD4+T 細胞數(shù)量恢復至正常水平,MDSCs 數(shù)量增加。研究證實肝臟炎癥與脾臟免疫狀態(tài)密切相關(guān),HFD 喂養(yǎng)的小鼠脾臟中T 細胞增殖加速和數(shù)量增加會導致脂肪性肝炎加重[28]。本研究觀察到MS 小鼠脾臟中CD4+T 細胞和CD8+T細胞均明顯升高,而G-Rh2 減少脾臟中CD4+T 細胞數(shù)量,增加MDSCs數(shù)量,說明G-Rh2限制脾臟中T細胞過度激活和增加MDSCs 細胞,有利于肝臟恢復免疫平衡。

      MS患者脂質(zhì)代謝和免疫相互影響,脂質(zhì)代謝紊亂易導致免疫失衡引發(fā)肝臟炎癥,而炎癥反過來造成肝損傷,干擾其代謝功能,形成惡性循環(huán)[29]。有研究報道暴露于斷奶后肥胖飲食的雌性C57BL/6J小鼠后代顯示出肝損傷的跡象,暴露于母體肥胖會加劇肝臟炎癥性損傷,ALT、TGs、IL-6、TNF-α 在肝臟中的含量增加[30]。G-Rh2 減少肝臟炎癥細胞聚集,調(diào)節(jié)脾臟中CD4+T/MDSCs 細胞比例平衡并降低炎癥因子IL-6、TNF-α 水平,這對抑制肝臟炎癥性損傷有重要意義,同時G-Rh2 改變了肝臟的脂質(zhì)代謝模式,尤其是減少TGs、DGs和PCs的過度堆積,有利于防止脂肪肝的形成。但是由于脂質(zhì)代謝和炎癥存在相互影響的關(guān)系,本研究尚不能確定G-Rh2 是通過解除代謝紊亂環(huán)境避免了炎癥反應,還是通過抑制炎癥進而改善肝臟代謝紊亂及高血脂、胰島素抵抗、肥胖等MS癥狀。

      綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)G-Rh2 有改善胰島素抵抗、肥胖和降血脂的作用,可用于治療MS 的高血糖、高血脂、肥胖、脂肪肝等系列癥狀,機制可能是通過調(diào)控MS 小鼠免疫失衡阻止肝臟炎癥性損傷,同時重塑脂質(zhì)代謝從而發(fā)揮治療MS的作用。

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