潘 林, 李亞楠, 張 志, 朱蘊蘭
(1. 齊齊哈爾大學生命與農(nóng)林學院,抗性基因工程與寒地生物多樣性保護重點實驗室,黑龍江 齊齊哈爾 161005;2. 徐州工程學院食品與生物工程學院,江蘇省食品生物加工工程技術(shù)研究中心,江蘇省食品資源開發(fā)與質(zhì)量安全重點建設(shè)實驗室,江蘇 徐州 221018)
樺褐孔菌(Inonotus obliquus)是一種具有降血糖、抗腫瘤、抗氧化、抗病毒、抗炎、降血脂和增強免疫等多種生理活性功能的真菌[1]。樺褐孔菌主要生長在樺樹、榆樹等樹皮或枯干上,其菌核外表為黑灰色或黃褐色至黑色,表面具有不規(guī)則裂痕,內(nèi)部為黃色,無柄,質(zhì)地堅硬,大小通常在25~40 cm。樺褐孔菌主要分布于俄羅斯、加拿大、日本北海道,以及我國黑龍江省等地。由于樺褐孔菌生長在寒冷地區(qū),生長緩慢,產(chǎn)量較低,是一種稀少真菌。樺褐孔菌有20 多種化學成分具有生物活性,主要是樺褐孔菌多糖、三萜、多酚等,其中多酚是樺褐孔菌抗氧化的主要成分之一。有關(guān)樺褐孔菌活性物質(zhì)提取純化方法的研究已有很多。朱金衛(wèi)等[2]對樺褐孔菌液體發(fā)酵液中多酚和菌絲體中多酚的制備方法進行了研究。張梅梅等[3]利用正交試驗法優(yōu)化了樺褐孔菌水-乙醇混合體系提取多酚的條件。潘春麗等[4]對樺褐孔菌三萜化合物提取工藝進行了優(yōu)化。胡濤等[5]利用超聲波輔助方法提取樺褐孔菌子實體中多糖和三萜。徐曇燁等[6]利用響應(yīng)面法優(yōu)化了樺褐孔菌超聲波輔助提取多糖工藝。王暢[7]和王箴言等[8]研究了樺褐孔菌的抗氧化功能。管玉艷等[9]研究了外源因子對樺褐孔菌發(fā)酵產(chǎn)樺褐孔醇的影響。但利用超聲-微波協(xié)同方法提取樺褐孔菌多酚的研究還未見報道,本研究探索用超聲-微波協(xié)同萃取法提取樺褐孔菌多酚的條件,并測定了多酚的體外抗氧化能力,為進一步研究和開發(fā)樺褐孔菌資源提供理論依據(jù)。
樺褐孔菌(Inonotus obliquus)購買于黑龍江大興安嶺森源山產(chǎn)品有限公司。
沒食子酸標準品、抗壞血酸標準品(山東西亞化學工業(yè)有限公司);乙醇、無水碳酸鈉、硫酸亞鐵、過氧化氫(天津市福晨化學試劑廠);福林酚(國藥集團化學試劑有限公司);DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼,上海源葉生物科技有限公司)。
800Y 型高速多功能粉碎機(永康市鉑歐五金制品有限公司);FA2104N 型電子天平(上海精密科學儀器有限公司);XO-SM100 型超聲波微波協(xié)同反應(yīng)工作站(南京先歐儀器制造公司);101-1ES 型電熱鼓風干燥箱(北京市永光明醫(yī)療儀器廠);SHB-Ⅲ型循環(huán)水式多用真空真空泵(鄭州長城科工貿(mào)有限公司)。
1.4.1 沒食子酸標準曲線制作
準確稱取0.5 g 沒食子酸標準品,稀釋到500 mL 容量瓶中,加水定容配制為1 mg/mL 標準液。再從配制好的原液中吸取8 mL,加入到100 mL 容量瓶,加蒸餾水定容,得到0.08 mg/mL 標準液。
準確稱取10 g Na2CO3樣品,加水進行稀釋處理,置于100 mL 容量瓶中,定容至刻度,得到質(zhì)量濃度10%的Na2CO3。
分別吸取0、1.00、2.00、3.00、4.00、5.00、6.00、7.00 和8.00 mL 配制好的0.08 mg/mL 的標準溶液于25 mL 容量瓶中,用去離子水補充至8.00 mL,加入3.00 mL 冰箱保存的福林酚試劑,振蕩混勻,在室溫條件下暗處反應(yīng)6~8 min。再在每個容量瓶加入3 mL 配好的Na2CO3溶液,振蕩使其混合,暗處理30 min。最后,加水定容至25 mL。在750 nm 波長處,測定樣品溶液吸光值。記錄不同濃度標準液時的吸光度,以橫坐標為樣液濃度,縱坐標為吸光值做標準曲線和回歸方程。
1.4.2 多酚含量的測定
將樺褐孔菌菌核破碎成小塊后于40 °C 鼓風干燥箱中風干,然后用粉碎機粉碎,過40 目篩子備用。
稱取一定質(zhì)量的樺褐孔菌粉末樣品,加入設(shè)定好的相應(yīng)濃度的乙醇作為提取溶劑,設(shè)定一定料液比、超聲波功率參數(shù)、微波功率參數(shù),進行提取,時間間隔為10 s,將提取料液進行抽濾得到提取液,每個樣品處理3 次,合并提取液備用。
樣品測定:取提取液8 mL,然后吸取 1 mol/L Folin-Ciocalteu 溶劑3 mL,滴加至每個待測樣中,充分振蕩混勻,在室溫條件下置暗處反應(yīng)6~8 min,然后在每個待測液中加入6 mL 配好的Na2CO3溶液,在室溫條件下暗處理30 min,加水定容至100 mL,混勻后在750 nm波長處測定吸光值,并記錄相關(guān)數(shù)據(jù)。
根據(jù)標準曲線的回歸方程進行多酚含量的計算,再根據(jù)式(1)計算出不同條件下的提取率。
1.4.3 多酚提取條件的單因素試驗
分別稱取2.0 g 干燥后的樣品粉末,測定不同乙醇體積分數(shù)(v/v)30%、40%、50%、60 %和70%,不同料液比1∶30、1∶40、1∶50、1∶60、1∶70 和1∶80,不同微波功率150、200、250、300、350 和400 W,不同超聲波功率70、210、350、560 和700 W,不同提取時間60、120、180、240 和300 s 情況下多酚提取率。在測定時變化一個條件參數(shù),其他參數(shù)選定一個值不變。試驗基本參數(shù)為乙醇體積分數(shù)50 %、料液比1∶50(g∶mL)、超聲波功率350 W、微波功率350 W、提取時間120 s。
1.4.4 樺褐孔菌多酚提取工藝的正交試驗優(yōu)化
在單因素試驗結(jié)果基礎(chǔ)上,設(shè)定乙醇體積分數(shù)、料液比、微波功率、超聲波功率、運行時間這5 個條件為多因素指標,各個因素指標選取4 個水平,如表1 所示。
表1 因素水平Tab. 1 Factor and level
以相應(yīng)條件下計算所得出的樣品多酚提取率為指標,按L16(45)正交表進行正交試驗,優(yōu)化超聲-微波協(xié)同提取多酚的工藝參數(shù)。
1.4.5 多酚抗氧化活性測定
(1)多酚對DPPH 自由基清除能力的測定。
稱取0.039 4 g DPPH 樣品,加乙醇定容至1 000 mL,配置0.1 mmol/L 的DPPH 溶液。精確吸取2.0 mL 濃度分別為2、4、6、8、10、12 和14 μg/mL 樣品多酚提取液于小試管中,吸取2.0 mL 配制好的0.1 mmol/L 的DPPH 溶液,加入相應(yīng)的待測組中。搖晃使反應(yīng)混合均勻,暗處理,在室溫條件下反應(yīng)30 min??瞻讓φ沼?.0 mL 蒸餾水加2.0 mL 體積分數(shù)為95%的酒精溶液,測定樣液在517 nm 波長處的吸光值,根據(jù)測定的吸光值以縱坐標為多酚對DPPH 清除率,橫坐標為不同濃度參數(shù)做圖,并求回歸方程。按式(2)計算對DPPH 自由基的清除率并計算清除DPPH 的IC50值。
式中R1?DPPH 自由基清除率,%
X?DPPH 溶液加2.0 mL 蒸餾水的吸光度
X1?待測樣品加2.0 mL DPPH 的吸光度
X2?樣品加2.0 mL 95%乙醇所測的吸光度
(2)多酚對羥基自由基清除能力的測定。
稱取質(zhì)量為0.273 6 g 的硫酸鐵,用去離子水進行稀釋處理,定容于至100 mL 容量瓶,制成1.8 mmol/L 的硫酸亞鐵溶液。
吸取1.00 mL 30 %雙氧水溶液,用去離子水進行稀釋處理,定容至1 000 mL 容量瓶,制成0.03%雙氧水溶液。
準確稱取水楊酸樣品0.248 6 g,用無水乙醇進行相應(yīng)稀釋處理,定容至100 mL 容量瓶,搖勻得到1.8 mmol/L水楊酸乙醇溶液。
精確吸取1.0 mL 濃度分別為0.2、0.4、0.6、0.8 和l.0 mg/ mL 的多酚提取物于小試管中,分別加入2.0 mL濃度為1.8 mmol/L 的硫酸亞鐵溶液,1.5 mL 濃度為1.8 mmol/L 配制好的水楊酸樣液,再加入0.1 mL 濃度為0.03%配制好的雙氧水溶液,將混合好的試驗樣品放在水浴鍋中,溫度參數(shù)設(shè)定為37 °C,讓樣品反應(yīng)30 min。將待測液換成去離子水,作為試驗的空白對照,在510 nm 波長處測其吸光值,按式(3)計算清除率并計算清除羥自由基的IC50值。
式中R2?羥基自由基清除率,%
Y?不加相應(yīng)樣品的溶液所測得的吸光值
Y1?加入待測樣品反應(yīng)后的吸光值
Y2?加入蒸餾水的試驗組所測出的吸光值
沒食子酸標準品與吸光值的線性關(guān)系良好,回歸方程為y=104.34x-0.024 3,R2=0.997 4,多酚提取率為
式中h?提取率,%(g/g)
y?750 nm 處測得的吸光值
N?稀釋倍數(shù)
m?樺褐孔菌樣品質(zhì)量,g
2.2.1 乙醇體積分數(shù)對樺褐孔菌多酚提取率的影響
乙醇體積分數(shù)對超聲-微波協(xié)同萃取法提取樺褐孔菌多酚提取率影響的試驗結(jié)果如圖1 所示。當提取液乙醇體積分數(shù)較低時,樺褐孔菌多酚提取率較低。隨著乙醇體積分數(shù)的增加,多酚提取率不斷增加。當乙醇體積分數(shù)為50%時,多酚的提取率最佳。隨后乙醇體積分數(shù)再增加,多酚的提取率卻出現(xiàn)了略微降低。
圖1 乙醇體積分數(shù)對樺褐孔菌多酚提取率的影響Fig. 1 Effects of ethanol volume fraction on extraction rate of polyphenols from Inonotus obliquus
2.2.2 料液比對樺褐孔菌多酚提取率的影響
不同料液比對超聲-微波協(xié)同萃取法提取樺褐孔菌多酚提取率影響的試驗結(jié)果如圖2 所示。當料液比增加時,多酚的提取率增加,在物料與溶劑為1∶60(g∶mL)時,多酚提取率達到最高,然后隨著料液比增加,多酚提取率降低。
圖2 料液比對樺褐孔菌多酚提取率的影響Fig. 2 Effects of solid-liquid ratio on extraction rate of polyphenols from Inonotus obliquus
2.2.3 微波功率對樺褐孔菌多酚提取率的影響
微波功率對超聲-微波協(xié)同萃取法提取樺褐孔菌多酚提取率影響的試驗結(jié)果如圖3 所示。當微波功率由150 W 逐步增大到350 W 時,多酚的提取率逐漸增加,350 W 時達到最大。
圖3 微波功率對樺褐孔菌多酚提取率的影響Fig. 3 Effect of microwave power on extraction rate of polyphenols from Inonotus obliquus
2.2.4 超聲波功率對樺褐孔菌多酚提取率的影響
超聲波功率對超聲-微波協(xié)同萃取法提取樺褐孔菌多酚提取率影響的試驗結(jié)果如圖4 所示。使用較低功率的超聲波功率進行提取時,多酚提取率較低。隨著超聲波提取功率的提高,多酚提取率逐漸增加,當超聲波功率為350 W 時,多酚的提取率最高。之后,盡管提高超聲波功率,但是提取率不但沒有升高,反而逐漸下降。
圖4 超聲波功率對樺褐孔菌多酚提取率的影響Fig. 4 Effect of ultrasonic power on extraction rate of polyphenols from Inonotus obliquus
2.2.5 提取時間對樺褐孔菌多酚提取率的影響
提取時間對超聲-微波協(xié)同萃取法提取樺褐孔菌多酚提取率影響的試驗結(jié)果如圖5 所示。當提取時間較短時,多酚提取率較低,逐漸延長提取的時間,可以看出多酚提取率有所增加,當提取時間為120 s 時,多酚的提取率最高。之后,隨著提取時間的延長,提取率逐漸下降。
圖5 提取時間對樺褐孔菌多酚提取率的影響Fig. 5 Effect of extraction time on extraction rate of polyphenols from Inonotus obliquus
正交試驗結(jié)果如表2 所示。正交試驗最佳工藝條件組合為A1B2C2D2E2,即乙醇體積分數(shù)40%、料液比1∶60、微波功率300 W、超聲波功率350 W、提取時間180 s,此條件下所得到的多酚提取率為2.486 %。
表2 正交試驗結(jié)果Tab. 2 Orthogonal test results
運用正交試驗中極差法對數(shù)據(jù)進行分析,由表2 的相關(guān)數(shù)據(jù)可以看出,使用超聲-微波協(xié)同萃取法,進行樺褐孔菌多酚成分提取的理論最佳工藝參數(shù)為A2B2C4D2E3,即乙醇體積分數(shù)50%、料液比1∶60、微波功率400 W、超聲波功率350 W、提取時間240 s。由于試驗最佳組合是A1B2C2D2E2,而理論分析最佳組合是A2B2C4D2E3,因此對理論分析最佳組合進行試驗驗證,經(jīng)試驗測定得到多酚提取率為2.943 %。
此外,可以得出超聲波功率的極差最大,說明超聲波功率對試驗結(jié)果的影響效果最強。各因素對試驗結(jié)果影響力從大到小排列為D>C>E>B>A。
2.4.1 多酚對DPPH 自由基的清除能力
樺褐孔菌多酚對DPPH 自由基的清除率如圖6 所示,其具有一定的清除DPPH 自由基的能力,并且隨著試驗樣品濃度的增加,DPPH 的清除率也增加。經(jīng)測定,樺褐孔菌多酚對DPPH 清除率的IC50值為9.03 μg/mL。
圖6 樺褐孔菌多酚對DPPH 自由基的清除能力Fig. 6 Scavenging activity of polyphenols from Inonotus obliquus on DPPH free radical
2.4.2 多酚對羥基自由基的清除能力
樺褐孔菌多酚對羥基自由基的清除率如圖7 所示,其具有一定的清除羥基自由基的能力,并且羥自由基清除率隨著樣品濃度的增加而增加。經(jīng)測定,樺褐孔菌多酚對羥自由基清除率的IC50值為2.03 mg/mL。
圖7 樺褐孔菌多酚對羥自由基的清除能力Fig. 7 Scavenging ability of polyphenols from Inonotus obliquus on hydroxyl radical
(1)樺褐孔菌多酚的最佳超聲?微波協(xié)同萃取法提取工藝參數(shù)為乙醇體積分數(shù)50 %、料液比1∶60、微波功率400 W、超聲波功率350 W、提取時間240 s,此時的樺褐孔菌多酚提取率最高為2.943%。
(2)超聲?微波協(xié)同萃取法獲得的樺褐孔菌多酚對DPPH 和羥自由基都有一定的清除能力,但樺褐孔菌多酚對DPPH 自由基的清除能力要好于羥基自由基。
(3)超聲?微波協(xié)同萃取法可以有效提取樺褐孔菌多酚,且多酚的抗氧化活性未被破壞,超聲-微波協(xié)同方法是一種實用、有效、快速的提取樺褐孔菌多酚的方法。