王含必,竇帥杰,劉思邈,張婉玉,劉美芝,鄧成艷*
(1.中國醫(yī)學科學院 北京協(xié)和醫(yī)學院 北京協(xié)和醫(yī)院婦科內(nèi)分泌與生殖中心,疑難重癥及罕見病國家重點實驗室,國家婦產(chǎn)疾病臨床醫(yī)學研究中心,北京 100730;2.北京致成生物醫(yī)學科技有限公司,北京 100176)
大量研究證明,子宮內(nèi)膜厚度和形態(tài)是影響妊娠結(jié)局的獨立因素[1-2]。子宮內(nèi)膜分為功能層和基底層,當基底層受到損傷后,將使子宮內(nèi)膜上皮及間質(zhì)組織中的細胞及腺體數(shù)量減少,子宮內(nèi)膜的血流阻力增加、血流量減少,使子宮內(nèi)膜處于缺氧微環(huán)境,損傷子宮內(nèi)膜的生理功能,這將導致子宮內(nèi)膜腺上皮細胞(endometrial glandular epithelial cells,EEC)發(fā)育受損[3],出現(xiàn)上皮細胞再生障礙,對激素刺激無反應(yīng),而導致薄型子宮內(nèi)膜。
微小核糖核酸(microRNAs,miRNAs)是包含20~25個核苷酸的小型非編碼調(diào)控 RNA[4]。miRNA幾乎在生物學的所有方面都發(fā)揮作用,如增殖、凋亡、侵襲、轉(zhuǎn)移和血管生成。miRNA通過識別mRNA的3′非翻譯區(qū)(UTR)中的互補靶位點,在轉(zhuǎn)錄后抑制基因表達[5]。在胚胎種植過程中,會產(chǎn)生超過500種miRNAs[6],這些miRNAs的表達受環(huán)境因素(如缺氧、信號通路、表觀遺傳修飾和植入的不同階段)的影響而調(diào)節(jié)子宮內(nèi)膜功能[7]。
有研究發(fā)現(xiàn),在異位子宮內(nèi)膜中miR-488表達降低,其靶基因卷曲類受體7(frizzled class receptor 7,F(xiàn)ZD7)表達升高,促進Wnt信號通路激活,從而增加子宮內(nèi)膜的增殖、遷移和侵潤[8],而阻斷Wnt信號轉(zhuǎn)導將減少細胞增殖,增加細胞凋亡[9]。Wnt(Wingless/Integrated,Wnt)信號通路在成體細胞發(fā)育過程中的增殖、分化以及干細胞更新和維持的發(fā)育過程中起著關(guān)鍵作用[10],它直接影響細胞增殖、分化、凋亡和組織穩(wěn)態(tài)等多種關(guān)鍵的生物過程[11]。Wnt信號通路可分為β-連環(huán)蛋白依賴性(典型)信號通路及β-連環(huán)蛋白非依賴性(非典型)信號通路,而Wnt 家族成員8b(Wnt8b)是典型的Wnt配體之一。在體外和體內(nèi)Wnt8b敲低都可以抑制經(jīng)典Wnt信號傳導,從而抑制細胞的增殖[12]。
本研究將觀察缺氧環(huán)境下EEC miRNAs的表達,并探究其差異性表達是否通過影響Wnt信號傳導調(diào)控子宮內(nèi)膜的增殖機制,為薄型子宮內(nèi)膜的發(fā)生及治療提供理論依據(jù)。
一、細胞來源
子宮內(nèi)膜腺上皮原代細胞(CM-H058)購于武漢普諾賽生物。
二、試劑和主要儀器
DMEM培養(yǎng)基(Gibco,美國);多聚甲醛(國藥試劑);小牛血清(Gibco,美國);TRizol(Sigma,美國);6孔細胞培養(yǎng)板(Corning,美國);兔抗Wnt8b抗體、鼠抗β-Tubulin(Cell Signaling,美國);5×M-MLV Buffer、M-MLV(200 U/μl)、RNase Inhibitor(40 U/μl)(TaKaRa,日本);q-PCR Μltra Master Mix、dNTP(康為世紀)。
培養(yǎng)箱、低溫離心機、PCR儀、酶標儀(Thermo Fisher,美國);顯微鏡(Nikon,日本)。
三、研究方法
1.子宮內(nèi)膜腺上皮細胞(EEC)的培養(yǎng):EEC使用普諾賽(Procell)配套的專用生長培養(yǎng)基及細胞培養(yǎng)操作方法。采用胰酶消化法進行傳代培養(yǎng),待EEC密度增長至80%~90%,使用胰酶消化、計數(shù)接種至六孔板,每組5×106/孔,分別在常氧(21%氧濃度)和缺氧(1%氧濃度)條件下培養(yǎng),培養(yǎng)至細胞融合度至80%左右時,分別用胰酶消化,收集兩組細胞進行后續(xù)研究。
2.高通量測序分析miRNAs的變化:Trizol法提取兩種氧濃度培養(yǎng)條件下EEC的總RNA。miRNA測序由蘇州貝康醫(yī)療股份有限公司完成。
3.實時熒光定量 PCR(qPCR)法檢測miRNA的表達:Trizol法提取兩種氧濃度培養(yǎng)條件下EEC的總RNA。采用2 μg定量逆轉(zhuǎn)錄生成cDNA,反應(yīng)體系A(chǔ)為miRNA-RT、Sno-202 RT、dNTP各1 μl,反應(yīng)條件70℃、10 min一次;反應(yīng)體系B為5×M-MLV Buffer 4 μl、M-MLV(200 U/μl)、RNase Inhibitor(40 U/μl)各1 μl、DTT(0.1 mmol/L)2 μl,反應(yīng)條件42℃ 60 min、70℃ 15 min。qPCR檢測基因表達量,反應(yīng)體系為miRNA-Forward、URP-Reverse引物(10 μmol/L)各1 μl,RT-PCR Master Mix 10 μl和無RNA酶水8 μl;snoRNA202為內(nèi)參基因;采用2-△△Ct表示待測基因mRNA表達水平。qPCR所用引物(表1)由上海生工有限公司合成。
表1 引物序列
4.采用細胞計數(shù)(cell counting kit-8,CCK8)檢測子宮內(nèi)膜腺上皮細胞增殖:分別收集在常氧條件下EEC和缺氧條件(1%氧濃度)的EEC,混勻成單細胞懸液,計數(shù),調(diào)整細胞密度為2×104/100 μl,接種至96孔板,100 μl/孔。37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。分別在12 h、24 h、48 h,每孔加入10 μl CCK8,培養(yǎng)1~4 h上機檢測,酶標儀設(shè)置吸光度450 nm,每組6重復。
5.免疫印跡法(Western blot)檢測Wnt8b蛋白的表達:分別收集常氧條件下EEC和缺氧條件(1%氧濃度)的EEC,加入100 μl細胞裂解液4℃環(huán)境下裂解細胞25 min,低溫離心機離心25 min,采用BCA蛋白濃度測定試劑進行蛋白定量,加入5×loading buffer煮沸后離心,取30 μg 蛋白上樣到10%SDS-PAGE凝膠中進行電泳后轉(zhuǎn)移到PVDF膜上;用封閉液進行封閉,室溫30 min;4℃過夜孵育一抗(兔抗Wnt8b及鼠抗β-Tubulin,稀釋度1∶1 000);用TBST洗膜3次,每次10 min;加入二抗(山羊抗兔及山羊抗鼠抗體,稀釋度1∶1 000),室溫孵育 1 h;再用 TBST洗膜3次,ECL化學發(fā)光顯影。
四、統(tǒng)計學方法
一、缺氧環(huán)境下EEC的miRNAs表達差異
在常氧和缺氧條件(1%氧濃度)下分別培養(yǎng)EEC,通過高通量測序分析探究缺氧條件下EEC的miRNAs表達變化。分析測序結(jié)果顯示,缺氧條件下EEC的miR-7851-3p、miR-125a-3p、miR-215-5p、miR-516a-5p、miR-3605-3p、miR-141-5p等miRNAs表達升高(圖1),提示缺氧損傷導致了子宮內(nèi)膜腺上皮細胞miRNAs表達譜的改變。
圖1 子宮內(nèi)膜腺上皮細胞在常氧和缺氧(1%氧濃度)條件下miRNAs差異表達熱圖
二、缺氧引起子宮內(nèi)膜腺上皮細胞的miR-7851-3p表達上調(diào)
高通量測序發(fā)現(xiàn)缺氧引起EEC多種miRNAs表達上調(diào),為進一步證實上述差異miRNAs表達,利用qPCR檢測差異miRNAs的表達。結(jié)果顯示,與常氧組相比,miR-7851-3p、miR-141-5p、miR-125a-3p在缺氧的EEC中表達升高(P<0.05~0.001),其中miR-7851-3p表達豐度更高(P<0.001)(圖2),提示miR-7851-3p顯著升高可能在缺氧損傷中起主導地位。
三、缺氧條件子宮內(nèi)膜腺上皮細胞增殖能力被抑制
缺氧可以引起細胞生長停滯,因此我們采用CCK8分別檢測常氧條件和缺氧條件(1%氧濃度)的EEC增殖情況,發(fā)現(xiàn)在兩種環(huán)境下EEC都可以增殖,但在缺氧環(huán)境下,EEC的增殖較常氧環(huán)境下增殖緩慢(P<0.05),尤其在培養(yǎng)36 h時差異極為顯著(P<0.001)(圖3),說明缺氧抑制了EEC的增殖。
與同時間點常氧組比較,*P<0.05,**P<0.01,#P<0.001。
四、缺氧環(huán)境誘導miR-7851-3p的靶基因Wnt8b表達降低
通過對TargetScan數(shù)據(jù)庫分析發(fā)現(xiàn)miR-7851-3p的靶基因為Wnt8b,同時我們通過堿基互補配對原則發(fā)現(xiàn)miR-7851-3p可與Wnt8b的3’UTR連續(xù)7個堿基相匹配(圖4 A)。于是采用Western blot分別檢測常氧條件下和缺氧環(huán)境(1%氧濃度)下的兩組EEC的Wnt8b蛋白變化情況。結(jié)果顯示,在缺氧條件中,EEC上調(diào)miR-7851-3p表達的同時,Wnt8b蛋白的表達降低(圖4 B)。綜合以上結(jié)果,我們認為缺氧誘發(fā)EEC的miR-7851-3p表達上調(diào),可能通過下調(diào)靶基因Wnt8b表達,抑制EEC的增殖活動。
A:生物信息學預(yù)測結(jié)果顯示W(wǎng)nt8b是miR-7851-3p的潛在靶基因;B:Western blot檢測Wnt8b的表達。
恒定的氧氣供應(yīng)對于正常的組織功能、發(fā)育和體內(nèi)平衡至關(guān)重要。通過提供足以滿足組織代謝輸出產(chǎn)生需求的氧濃度來控制組織中的氧穩(wěn)態(tài)是必不可少的。但在缺氧微環(huán)境下,細胞的代謝將會重編程,激活不同的分子信號通路以適應(yīng)缺氧環(huán)境[13-14],包括血管生成、葡萄糖代謝和細胞增殖等過程[15]。經(jīng)陰道彩色脈沖多普勒超聲檢查發(fā)現(xiàn)“薄”子宮內(nèi)膜的特點是子宮橈動脈的血流阻抗高,血供減少致使子宮內(nèi)膜細胞生長不良、血管內(nèi)皮生長因子表達降低和血管發(fā)育不良[16],子宮內(nèi)膜血流阻力增加,內(nèi)膜血供減少使得EEC及血管內(nèi)皮細胞處于缺氧微環(huán)境,導致子宮內(nèi)膜血管生長不良,EEC增殖受損,反之進一步影響子宮內(nèi)膜的血流,這一惡性循環(huán)過程最終的結(jié)果是子宮內(nèi)膜生長受到限制,腺上皮生長受損[17]。
缺氧是腫瘤微環(huán)境的基本特征,研究發(fā)現(xiàn)在缺氧環(huán)境下培養(yǎng)人類癌細胞系(MDA-MB231、MCF7、HT29和HCT116),27 種miRNA在24 h至少上調(diào)1.5倍,由此證明缺氧微環(huán)境下可導致miRNAs表達譜的改變[16]。為此我們用缺氧損傷模型模擬體內(nèi)的薄型子宮內(nèi)膜的內(nèi)部環(huán)境,通過RNA測序及RT-PCR檢測發(fā)現(xiàn)缺氧環(huán)境下的EEC中miR-7851-3p表達豐度高,而且與常氧環(huán)境下的EEC間表達存在顯著差異(P<0.001)。同時采用Western blot檢測,結(jié)果顯示W(wǎng)nt8b蛋白表達顯著減低,提示缺氧環(huán)境下miR-7851-3p上調(diào),從而下調(diào)靶基因Wnt8b的表達的可能。
Wnt8b是經(jīng)典Wnt配體之一,Wnt信號通路首先在黑腹果蠅的發(fā)育過程中發(fā)現(xiàn),是一種復雜的蛋白質(zhì)作用網(wǎng)絡(luò),調(diào)節(jié)各種細胞過程的信號轉(zhuǎn)導通路[18],Wnt信號通路可分為β-連環(huán)蛋白依賴性(典型)信號通路,其中β-連環(huán)蛋白易位至細胞核并上調(diào)癌基因,以及β-連環(huán)蛋白非依賴性(非典型)信號通路。經(jīng)典和非經(jīng)典途徑都需要 Wnt 配體與相應(yīng)的膜受體卷曲蛋白(Frizzled)結(jié)合以激活信號級聯(lián)[8]。Wnt8基因是Wnt基因超家族的成員,包括Wnt8a、Wnt8b和Wnt8c。Wnt8b 蛋白的一級結(jié)構(gòu)由350個氨基酸殘基組成,研究發(fā)現(xiàn)鋅指轉(zhuǎn)錄因子191(zinc finger transcription factor 191,ZNF191)可以直接與Wnt8b啟動子結(jié)合,激活Wnt8b基因,隨后激活Wnt通路促進細胞增殖[19]。通常miRNA通過堿基互補原則與靶基因的mRNA的3′非翻譯區(qū)(UTR)結(jié)合,阻斷mRNA的翻譯或降解 mRNA,從而實現(xiàn)對蛋白的調(diào)控。而本研究發(fā)現(xiàn)EEC在缺氧環(huán)境下細胞增殖能力明顯被抑制,同時缺氧使得EEC高表達miR-7851-3p,可能靶向抑制調(diào)控細胞增殖的靶基因Wnt8b表達,這可能是缺氧引起薄型子宮內(nèi)膜的重要誘因之一。
總之,我們推測缺氧微環(huán)境上調(diào)EEC的miR-7851-3p表達,可能通過抑制Wnt8b蛋白的表達,阻斷Wnt信號通路傳導,抑制EEC增殖,這可能是薄型子宮內(nèi)膜潛在的發(fā)病機制之一。