畢佳欣,王曉雪,趙若晗,韓 旭,宋 潔*
(牡丹江醫(yī)學院生物學教研室,黑龍江 牡丹江157011)
著絲粒蛋白(centromere specific proteins,CENPs)是裝配在染色體DNA上的一個多蛋白大型復合體,是著絲粒組裝和功能發(fā)揮的基本組成單位。在有絲分裂過程中形成動粒,動粒-微管組成連接,為細胞有絲分裂中染色體的移動提供動力。CENPs結(jié)構(gòu)異常、表達異?;蚺cDNA作用異常,將影響著絲粒點的形成、激活、對稱性等,從而影響染色體的穩(wěn)定存在和正確分離。近年來,研究表明著絲粒蛋白調(diào)節(jié)異?;蚬δ苷系K會導致非整倍性并促進癌變。目前,在人體細胞中發(fā)現(xiàn)了多種CENPs,最先發(fā)現(xiàn)的是CENP-A、CENP-B,近期發(fā)現(xiàn)的有CENP-I、CENP-U、CENP-T等[1],構(gòu)成了動粒核心蛋白網(wǎng)絡(constitutively centromere-associated network,CCAN)。目前,文獻證實CCAN中CENPs如CENP-A、CENP-E、CENPF、CENP-H、CENP-W、CENP-U在多種腫瘤中出現(xiàn)過表達,并與腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關。而CENP-T作為著絲粒內(nèi)部結(jié)構(gòu),是直接參與著絲粒染色質(zhì)的構(gòu)建的重要成員,對細胞的CCAN網(wǎng)絡構(gòu)成發(fā)揮重要作用[2-3],但CENP-T在腫瘤中的表達情況及其在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用機制還未見報道。因此,本課題以組織和細胞水平實驗研究CENP-T在乳腺癌中的表達、生物學功能及機制,為闡明動粒網(wǎng)絡蛋白在腫瘤中的作用機制研究提供基礎數(shù)據(jù)。
收集2017年10月—2018年4月間牡丹江市腫瘤醫(yī)院外科手術(shù)切除標本,乳腺癌患者的乳腺癌組織及遠離癌組織3~5 cm的癌旁正常乳腺組織26對,液氮保存。所有患者術(shù)前均未行任何治療,采集標本均得到患者的同意,標本經(jīng)術(shù)后病理證實為浸潤型乳腺導管癌和乳腺導管內(nèi)癌,排除其他腫瘤。本研究所使用的人體材料通過牡丹江醫(yī)學院醫(yī)學倫理委員會批準(批準文號2017-G11)。
正常人乳腺細胞系MCF10A和乳腺癌細胞系MCF7和MDA-MB-231均購于上海生命科學研究院細胞資源中心;兔抗人CENP-T多克隆抗體購于美國Gene Tex公司;CENP-T基因序列的特異性siRNA由廣州銳博公司設計并合成,轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 2000購于美國Invitrogen公司,兔超敏二步法免疫組化檢測試劑PV-6001及DAB購于北京中杉金橋公司;碘化丙啶(propidium iodide,PI)購于碧云天公司;Annexin V-FITC細胞凋亡檢測試劑盒購于BD公司。
兔二步法(兔聚合物法檢測系統(tǒng)PV)進行IHC。石蠟切片常規(guī)脫蠟水化,以檸檬酸鈉進行抗原修復,依次滴加過氧化物酶室溫孵育10 min、正常山羊血清室溫孵育15 min,CENT-P一抗(稀釋度均為1∶300,4℃過夜)、生物素標記的二抗,室溫孵育20 min,辣根過氧化物酶標記鏈霉卵白素工作液室溫孵育15 min,DAB顯色,自來水沖洗,蘇木精復染,脫水透明,封片。用PBS代替一抗作陰性對照。以卵巢癌石蠟切片為陽性對照。所有切片采用雙盲法,細胞核和胞漿內(nèi)出現(xiàn)棕黃色顆粒為陽性細胞,陽性程度根據(jù)其陽性細胞的比率和染色程度進行綜合評定。
乳腺癌組織和癌旁正常乳腺組織10例進行啟動子甲基化檢測,采用Methprimer及EEMB OSS/cpgplot在線工具分析CENP-T啟動子區(qū)CpG島,兩個網(wǎng)站的預測結(jié)果一致,共存在一個CpG島,位置在1 819 bp至2 142 bp,長度324 bp,亞硫酸氫鹽修飾后測序(bisulfite sequencing PCR,BSP)法檢測CENP-T啟動子區(qū)CpG島甲基化水平。使用2對測序引物,分別為:1F:TTTGGTTATTGATAGAGAAGG;1R:AATA AAACCTTAAAACCCC;2F:GATAGGGATAAAGTTT TT;2R:AATAAAACCTTAAAACCCC,約需1~2套巢式引物,提取組織樣本DNA,亞硫酸鹽修飾DNA,PCR擴增,回收產(chǎn)物,1個樣本BSP單次產(chǎn)物挑取10個克隆,進行TA克隆測序。
乳腺癌組織和癌旁正常乳腺組織10例進行CENP-T啟動子突變的檢測,使用染料終止子(Bigdye terminator,BDT)反應的Sanger測序法,BDT反應:10 μL反應體系,依次加入1 μL引物、2~5 μL模板、0~3 μL dH2O和4 μL預配好的Bigdye mix。每種樣品與試劑加入的順序,按照從上到下,或者從左到右的順序依次加入,加完引物、模板、dH2O以及Bigdye mix后,需要將實驗用的反應板進行離心,1 000 r/min離心,PCR反應程序:94℃、5 min;94℃、20 s,55℃、20 s,72℃、90 s 35個循環(huán);72℃、7 min。然后電泳回收擴增的2 000 bp條帶DNA產(chǎn)物,最后用3對引物1F/1R、2F/2R和3F/3R進行測序。反應引物:1F,CGACATCGCACCACA GCACT;1R,CTTTTTCTCTAGTCAGGACCGT。2F,ATATGCAGGGTCAGTGGCTTT;2R,GGGCACGTAG ATTTCAGACTT。3F,GTTATTTCAAGACCTGTAGA;3R,TATGGTCGGGAACAGGGTGA。
MCF7細胞用含20%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)液,加入100 mg/L鏈霉素和1×105U/L青霉素,置于CO2體積分數(shù)為5%、濕度95%、37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染實驗的細胞:MCF7細胞按每孔2.5×105個接種于6孔板,當細胞匯合度達60%~80%時進行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染方法參照riboFECTTM說明書進行。siRNA轉(zhuǎn)染分為3組:未轉(zhuǎn)染對照組(NC)、轉(zhuǎn)染陰性對照組(NC siRNA)和 轉(zhuǎn) 染siRNA實 驗 組(CENP-T siRNA)。轉(zhuǎn) 染siRNA實驗組設計3對序列,評估CENP-T siRNA的序列1為5′-GGAGGTATTTGCTGCTCAT-3′,序列2為5′-GGAGGTCAATGCCTTTGCT-3′,序列3為5′-GAA GTTGAGTGGCCAAACA-3′。轉(zhuǎn)染6 h后,在熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染指示劑進行的轉(zhuǎn)染,判定當前轉(zhuǎn)染條件下細胞的轉(zhuǎn)染效率,確定siRNA轉(zhuǎn)染成功。轉(zhuǎn)染后使用含20%胎牛血清無雙抗培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),然后進行CENP-T蛋白表達水平檢測,篩選出敲減CENP-T蛋白表達水平50%以上的特異性siRNA序列,進行細胞增殖能力,細胞周期時相分布以及細胞凋亡率的檢測。
采用Western blot法檢測乳腺癌組織、癌旁正常乳腺組織及MCF7、MDA-MB-231細胞和轉(zhuǎn)染后細胞中CENP-T和GAPDH蛋白的表達。組織液氮研磨加入裂解液裂解勻漿,超聲破碎,4℃離心20 min取上清液,電泳結(jié)束后將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,5%脫脂奶粉封閉1 h,CENT-P一抗4℃過夜孵育(CENP-T工作液稀釋比例均為1∶300;GAPDH為1∶5 000)。二抗(工作液稀釋比例均為1∶5 000),室溫孵育1 h,Super ECL超敏發(fā)光液,避光作用1 min,采用Amersham Imager600系統(tǒng)進行顯色。
MCF7細胞轉(zhuǎn)染24 h后,于96孔培養(yǎng)板中每孔加入100 μL細胞懸液,每組設3個復孔。siRNA轉(zhuǎn)染MCF7細胞系分別于24、36、48和72 h后每孔加入5 mg/mL的MTT溶液10 μL,室溫下培養(yǎng)4 h后,吸棄孔內(nèi)原有培養(yǎng)液,每孔加100 μL DMSO,紫外分光光度計檢測490 nm波長處各孔吸光度值D(490),以時間為橫坐標,以吸光度值為縱坐標,繪制細胞生長曲線,分析細胞活力。
收獲轉(zhuǎn)染后48 h的CENP-T siRNA組和NC siRNA組細胞接種于6孔板中,每孔接種200個細胞,培養(yǎng)10~14 d,當出現(xiàn)肉眼可見的集落時,終止培養(yǎng),PBS沖洗3次,甲醇固定15 min,Giemsa染色15 min,清水沖洗掉多余的染液,鏡下計數(shù),計算集落形成率。集落形成率=集落數(shù)/接種細胞數(shù)×100%,每組設置3個復孔,實驗重復3次。
接種2.5×104個MCF7細胞于6孔板中,每個樣本設置3個復孔,采用20%無雙抗培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h。轉(zhuǎn)染CENP-T siRNA后的MCF7細胞系和NC siRNA組的MCF7細胞系用20%無雙抗培養(yǎng)基置于37℃、CO2體積分數(shù)為5%的培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)48 h。將每組細胞制備成單細胞懸液用于檢測細胞周期;加入1 mL預冷的70%乙醇,4℃固定過夜;1 000 g離心5 min,沉淀細胞,加入1 mL預冷PBS,重懸細胞;每管樣本中加入0.5 mL碘化丙啶染色液,流式細胞儀(FACS Calibur,BD)在激發(fā)光波長488 nm處檢測熒光,同時檢測光散射情況。用于檢測細胞凋亡情況的CENP-T siRNA組和NC siRNA組MCF7細胞用胰酶消化1 min,獲得單細胞懸液,用預冷的PBS洗滌細胞兩次,然后將細胞重懸于1×結(jié)合緩沖液并稀釋濃度至1×106個/mL;取100 μL溶液(1×105個細胞)轉(zhuǎn)移至5 mL培養(yǎng)管中,分別加入5 μL的Annexin V-FITC和5 μL的PI輕輕渦旋細胞,在室溫(25℃)下避光孵育15 min;向每管中加入400 μL的1×結(jié)合緩沖液,在1 h內(nèi)用流式細胞儀檢測分析。
數(shù)據(jù)分析采用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件分析。計數(shù)資料用χ2檢驗。計量資料以xˉ±s表示,用t檢驗或方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
采用在線數(shù)據(jù)庫GEPIA檢測CENP-T在乳腺癌組織(n=1 085)和癌旁正常乳腺組織(n=291)中的表達,結(jié)果如圖1A和B所示:與癌旁正常乳腺組織相比,CENP-T在乳腺癌組織的表達顯著降低,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖1G)。免疫組化的檢測結(jié)果顯示CENP-T在乳腺癌和癌旁正常乳腺組織內(nèi)主要著色于胞核,高倍鏡可觀察到胞核內(nèi)有棕黃色顆粒,胞漿內(nèi)也有部分表達(圖1C~F)。CENP-T在26對乳腺癌組織和癌旁正常乳腺組織中陽性表達率分別為84.62%和92.31%,陽性表達率差異無統(tǒng)計學意義(χ2=0.754,P=0.385)。然而,CENP-T在乳腺癌組織與癌旁正常乳腺組織中的表達程度差異有統(tǒng)計學意義(χ2=11.346;P=0.003)(見圖1,表1)。由此可見,CENP-T在乳腺癌組織細胞和癌旁正常乳腺組織細胞中均表達,只是表達的程度有差異,乳腺癌組織中CENP-T的蛋白表達水平下調(diào)。
圖1 CENP-T蛋白在乳腺癌及癌旁正常乳腺組織中的表達
表1 CENP-T蛋白在乳腺癌組織與癌旁正常乳腺組織中的表達情況分析(n=26)
數(shù)據(jù)庫預測CENP-T甲基化位點。在乳腺癌中CENP-T蛋白表達下調(diào)的組織,匹配癌旁正常乳腺組織進行CENP-T基因啟動子序列PCR產(chǎn)物測序和DNA片段甲基化檢測,見圖2A。CENP-T基因啟動子甲基化檢測結(jié)果顯示:乳腺癌組織CENP-T基因啟動子甲基化程度(15.34±0.01)%,癌旁正常乳腺組織CENP-T基因啟動子甲基化程度(10.26±0.016)%,乳腺癌組織與癌旁正常乳腺組織比,CENP-T基因啟動子甲基化程度增加,差異有統(tǒng)計學意義(t=4.567,P=0.002),見圖2B。啟動子突變情況分析結(jié)果,乳腺癌組織和癌旁正常乳腺組織進行CENP-T啟動子序列PCR產(chǎn)物測序見圖3,將測序結(jié)果進行blast比對,發(fā)現(xiàn)在乳腺癌組織中2例出現(xiàn)突變,1例組織檢測出啟動子的2個位點堿基突變分別為C1545T、C1628G,另外1例乳腺癌組織啟動子區(qū)C1417T堿基突變。
圖2 Western blot和BSP檢測乳腺癌組織及癌旁正常乳腺組織中CENP-T蛋白表達及其基因啟動子CpG島甲基化水平圖
圖3 乳腺癌組織中CENP-T基因啟動子區(qū)突變分析
首先,構(gòu)建CENP-T敲減細胞系:如圖4A顯示CENP-T在細胞系中的蛋白表達情況,CENP-T在正常人乳腺細胞系MCF10A中蛋白表達水平高于乳腺癌細胞系MCF7和MDA-MB-231;CENP-T在MCF7細胞系的蛋白質(zhì)表達水平較高而MDA-MB-231無表達,因此以MCF7為靶細胞構(gòu)建CENP-T瞬時敲減細胞系。3種siRNA常規(guī)轉(zhuǎn)染MCF7后,Western blot檢測干擾效率如下圖4B和C。siRNA均能降低CENP-T的表達,其中CENP-T siRNA1的敲減率最高為98%,干擾后CENP-T幾乎不表達,CENP-T siRNA3的敲減率77%,CENP-T siRNA2的敲減率為45%。因此,后續(xù)實驗使用CENP-T siRNA3作為干擾序列觀察表達降低程度對細胞生物學特征的影響。
圖4 CENP-T在3種細胞系的表達及siRNAs序列沉默后的Western blot檢測結(jié)果
MTT實驗檢測細胞增殖能力。為檢測CENP-T對MCF7細胞的生長的作用,將細胞接種于96孔培養(yǎng)板上,設立CENP-T siRNA組和陰性對照siRNA組,連續(xù)培養(yǎng)3 d,計數(shù)結(jié)果按實驗方法中描述的繪制生長曲線如圖5A。CENP-T siRNA組表達下調(diào)促進了MCF7細胞的增殖,統(tǒng)計學分析CENP-T siRNA與NC在24、36、48、72 h的時間點上(t=1.692,P=0.160;t=2.636,P=0.054;t=5.475,P=0.005;t=4.328,P=0.012)。
細胞集落形成實驗檢測細胞增殖能力。陰性對照siRNA、CENP-T siRNA細胞的增殖情況如圖5B和5C所示,CENP-T siRNA組細胞集落形成率為82%,陰性對照siRNA集落形成率為62%,CENP-T siRNA組細胞集落形成率明顯高于另外兩組,與陰性對照siRNA組比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),說明,CENP-T siRNA組增殖能力高于陰性對照siRNA組(P<0.05)。
圖5 敲減CENP-T對MCF7細胞增殖能力的影響
流式細胞儀細胞周期檢測結(jié)果見圖6,結(jié)果顯示CENP-T siRNA組的MCF7細胞G1期細胞占(56.3+0.3)%,S期和G2/M期細胞分別占(30.8+0.8)%和(12.9+0.5)%。陰性對照siRNA組的MCF7細胞G1期細胞占(59.1±1.5)%,S期和G2/M期細胞分別占(31.6±0.8)%和(9.4±0.7)%(如圖6所示)。敲減CENP-T后的G1期細胞百分率減少了2.78%,S期細胞百分率下降了0.78%,G2/M期細胞百分率增加了3.45%(P<0.01)。與陰性對照siRNA組相比,CENP-T siRNA組細胞的G2/M期明顯延長,S期的細胞數(shù)目幾乎無變化。
圖6 流式細胞術(shù)檢測敲減CENP-T后MCF7細胞周期時相分布圖
利用流式細胞術(shù)檢測48 h各組細胞凋亡率,如圖7所示,CENP-T siRNA的總凋亡率為(0.12±0.11)%,與陰性對照siRNA組相比,t=24.68,P<0.01,發(fā)生明顯抑制。
圖7 流式細胞術(shù)檢測敲減CENP-T后MCF7細胞凋亡率
CENP-T siRNA組的早期凋亡率為(0.10±0.01)%,與陰性對照siRNA組的(0.70±0.03)%相比,凋亡率降低,兩者比較差異有統(tǒng)計學意義(t=30.6,P<0.01),CENP-T表達下調(diào)抑制細胞凋亡形成。
著絲粒是保證染色體穩(wěn)定存在,保證細胞正常分裂的基本結(jié)構(gòu)和功能元件之一。著絲粒蛋白家族有很多成員,其中哺乳類細胞中著絲粒蛋白的數(shù)目預計超過100,大多數(shù)命名為著絲粒蛋白,這些蛋白有的參與構(gòu)成著絲粒,有的參與著絲粒發(fā)揮功能過程中的調(diào)控[4]。
早在1980年,F(xiàn)ritzler等[5]首先在硬皮病患者的血漿中發(fā)現(xiàn)了與著絲粒上不同的蛋白結(jié)合抗體,該發(fā)現(xiàn)促進了著絲粒蛋白的研究。CENP-T作為著絲粒蛋白成員之一,CENP-T的研究目前集中在其正常生物學結(jié)構(gòu)和功能上。人類CENP-T基因位于染色體16q22.1,共由17個外顯子組成。Hellwig等[6]用熒光顯微鏡技術(shù)分析內(nèi)部動粒蛋白CENP-T在活人類細胞中動力學變化。著絲點是染色體分離所必需的,它是通過包含許多著絲點蛋白的動態(tài)過程組裝起來的。CENP-T是一種內(nèi)部的著絲點蛋白,在有絲分裂期間為外部著絲點Ndc80復合物的組裝提供平臺,確保了在有絲分裂過程中精確的著絲粒組裝[7-9]。著絲點組裝是由CENP-A啟動的,它與內(nèi)部著絲點組成的著絲點相關網(wǎng)絡(CCAN)的組成成分發(fā)生物理相互作用,CENP-T也是組裝必須的[10]。缺乏CENP-T、CENP-A引起分裂后期滯后和分離錯誤[11]。著絲粒蛋白A(CENP-A)通過組成CENP-T復合體的著絲粒相關網(wǎng)絡來組織功能性的著絲粒。CENP-T可以直接與Holliday連接識別蛋白(HJURP)結(jié)合,通過時間調(diào)控的HJURP-CENP-T相互作用將CENP-T組裝到著絲粒上[12]。Thakur報道[13],亞鐵還原能力實驗揭示了CENP-T在S期與著絲粒DNA結(jié)合,CENP-T獨立連接著絲粒α衛(wèi)星重復序列-171 bp到外部動粒。Rago等[14]報道在著絲粒區(qū)域,CENP-T/CENP-W是CCAN上游調(diào)控分子,直接參與的著絲粒染色質(zhì)結(jié)構(gòu)的構(gòu)建。而Hori等[15]實驗進一步證明,CENP-A和H3-CENP-T/W著絲粒蛋白復合體在調(diào)節(jié)著絲粒的構(gòu)成和動粒活動具有特異性,使細胞可以在染色質(zhì)構(gòu)型之間切換,從而相互支持著絲粒的復制,并將著絲粒轉(zhuǎn)化為有絲分裂的狀態(tài)[16]。敲減CENP-T增加了CDH1(FZR1)的水平,導致(APC)-CDH1復合體的活性增加,抑制CCNB1水平,最終影響減數(shù)分裂[17]。多能干細胞(PSCs維持著豐富的CENP-A、CENP-C和CENP-T,但這些重要的著絲粒成分在干細胞著絲粒上顯著減少[18]。
目前,已經(jīng)報道著絲粒蛋白許多重要成員在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用,例如Athwal、Arimura等[19-20]報道CENP-A基因過表達狀態(tài)影響基因的調(diào)控,影響染色質(zhì)的脆性,而致惡性腫瘤的發(fā)生。研究人員在宮頸癌、胃癌[21-22]中也發(fā)現(xiàn)CENP-H的高表達,且與預后相關;CENP-W在膠質(zhì)瘤組織中普遍高表達,對細胞的增殖侵襲有促進作用[23],CENP-F表達與宮頸癌鱗狀細胞癌正相關[24],而CENP-T與腫瘤相關文獻報道僅有1篇[25]。因此我們以CENP-T為靶點,探討其在腫瘤中的作用及機制。
本實驗采用免疫組織化學法研究CENP-T在乳腺癌的表達。實驗結(jié)果顯示乳腺癌中CENP-T的蛋白水平較癌旁正常乳腺組織蛋白表達水平顯著下降(P<0.01)。這個結(jié)果與利用在線工具http://gepia.cancerpku.cn/檢索結(jié)果一致,并且該數(shù)據(jù)庫顯示CENP-T在其他腫瘤中也有相同的表達水平下調(diào)的情況。為進一步分析CENP-T在乳腺癌低表達的原因,本研究利用RNA敲減技術(shù)構(gòu)建降低CENP-T表達的細胞系,探討CENP-T對腫瘤周期,細胞增殖以及細胞凋亡的影響,與對照組MCF7細胞比較,實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),敲減CENP-T基因表達后,G1期細胞所占比例略有降低,S期細胞所占比例不變,G2/M期細胞所占比例明顯升高(P<0.01),同時,CENP-T基因表達減少率為77%后,當CENP-T敲減36 h時,MCF7細胞的增殖活性出現(xiàn)明顯增高(P<0.005),集落形成能力增強(P<0.01);表明CENP-T表達下調(diào)可能促進乳腺癌細胞增殖能力??梢奀ENP-T表達下調(diào)通過干擾遺傳物質(zhì)的分配促進細胞的增殖。CENP-T siRNA轉(zhuǎn)染后,細胞系中發(fā)生凋亡的細胞比例顯著低于siRNA陰性對照組細胞(P<0.01);說明CENP-T表達下調(diào)可抑制乳腺癌細胞發(fā)生凋亡。
以上結(jié)果與已經(jīng)報道CENPs在腫瘤中過表達相悖[21-24],可能因為CENP-T在細胞中具有其他著絲粒蛋白家族不同的特點。雖然腫瘤發(fā)生發(fā)展中存在遺傳物質(zhì)的不穩(wěn)定性分配,但CENPs仍然是一個完整復合結(jié)構(gòu),在出現(xiàn)異常表達時各種CENPs作用調(diào)控不同的信號途徑。因此,我們進一步對CENP-T啟動子區(qū)的序列測序以及甲基化水平進行檢測,發(fā)現(xiàn)CENP-T啟動子區(qū)甲基化水平增加49.5%,并在過表達的乳腺癌組織中發(fā)現(xiàn)C1417T、C1545T、C1628G,3個位點兩種形式堿基突變,進一步以生物信息學篩選出與CENP-T密切相關的轉(zhuǎn)錄因子,以解釋CENP-T表達下調(diào)的分子機制,發(fā)現(xiàn)1545C是轉(zhuǎn)錄因子PR B,PR A結(jié)合位點,1628C、1417C是轉(zhuǎn)錄因子C/EBP BETA為結(jié)合位點。本研究只是發(fā)現(xiàn)了CENP-T啟動子區(qū)甲基化水平變化及突變,要證實這個啟動子區(qū)突變和CENP-T表達水平之間存在因果關系,還需要更多的實驗來支持。
綜上所述,CENP-T在乳腺癌表達下調(diào),下調(diào)與啟動子區(qū)的序列甲基化修飾及突變密切相關。敲減CENP-T基因表達致增殖指數(shù)增加,促進細胞分裂進行,增強乳腺癌MCF7細胞增殖能力,抑制細胞凋亡。啟動子區(qū)的改變在乳腺癌中CENP-T表達下調(diào)的促癌細胞特征,究竟是何機制,還存在哪些信號分子作用改變腫瘤細胞的生物學行為,促進癌發(fā)生有待進一步研究。