張洪艷,張燕嬌,鄭靜靜,卞 睿,顧 鑫,李文慧,任衛(wèi)東
(1.河北北方學(xué)院附屬第一醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)三科,河北 張家口 075000;2.河北北方學(xué)院附屬第二醫(yī)院心血管內(nèi)科,河北 張家口 075000;3.河北北方學(xué)院附屬第一醫(yī)院內(nèi)分泌科,河北 張家口 075000)
糖尿病并發(fā)抑郁癥(diabetes mellitus with depression,DD) 是糖尿病患者的一種慢性并發(fā)癥,發(fā)病隱匿且易反復(fù),患者自殺傾向高,其致死率比單純糖尿病患者高,因此對此進(jìn)行積極防治具有重大意義[1-2]。DD 的發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,高糖能引發(fā)炎性因子異常過量表達(dá),誘導(dǎo)強(qiáng)烈的神經(jīng)炎癥,造成神經(jīng)元損傷,是導(dǎo)致DD 的主要病理機(jī)制,抑制糖尿病引發(fā)的炎癥可明顯改善抑郁癥狀[3-4]。紫草素是中藥紫草中含有的一種萘醌類活性成分,具有顯著的抗菌消炎、抗氧化、降血糖的作用[5],可以降低炎性細(xì)胞因子表達(dá),通過抑制神經(jīng)炎癥減輕缺血引發(fā)的神經(jīng)元損傷,起到腦保護(hù)作用[6],由此推測紫草素可能對DD 具有治療作用。絲裂原活化蛋白激酶 (mitogen-activated protein kinase,MAPK) 是關(guān)鍵的炎癥信號分子,調(diào)控細(xì)胞增殖、凋亡等多種生理行為,在糖尿病引發(fā)的神經(jīng)病理性疼痛和抑郁癥的發(fā)病過程中起到關(guān)鍵作用,抑制MAPK 信號激活可減弱促炎細(xì)胞因子表達(dá),減輕糖尿病引發(fā)的大鼠神經(jīng)病理性疼痛,改善其抑郁樣行為[7-8],并可通過抑制神經(jīng)炎癥改善阿爾茨海默病小鼠神經(jīng)元突觸可塑性和認(rèn)知缺陷[9]。但紫草素是否可通過MAPK 信號改善DD 癥狀,目前還未見明確報(bào)道,本研究通過構(gòu)建模擬DD 環(huán)境體外細(xì)胞模型,探討紫草素對模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元凋亡的保護(hù)作用。
1.1 動(dòng)物 SD 大鼠,SPF 級,雄性體質(zhì)量350~380 g,雌性體質(zhì)量200~240 g,購自湖南安生美藥物研究院有限公司[實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號SCXK (湘) 2020-0014],飼養(yǎng)于本院動(dòng)物中心屏障環(huán)境動(dòng)物房[實(shí)驗(yàn)動(dòng)物使用許可證號SYXK (冀) 2019-0016],環(huán)境相對濕度(51±5)%、溫度(24±1)℃、12 h/12 h 光暗循環(huán),適應(yīng)性飼喂1 周后開始實(shí)驗(yàn)。本實(shí)驗(yàn)經(jīng)河北北方學(xué)院附屬第一醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(倫理號LLS2022 第73 號)。
1.2 藥物與試劑 紫草素(純度>98%,批號dasf0508,南京道斯夫生物科技有限公司)。皮質(zhì)酮(純度99.63%)、MAPK 激活劑(C16-PAF)、羊抗兔二抗(批號HY-B1618、HY-108635、HY-90126,美國MCE 公司);膠原酶Ⅰ、葡萄糖、噻唑藍(lán)(methyl thiazolyl tetrazolium,MTT) 試劑盒、尼氏染色液、Annexin V-FITC/PI 凋亡檢測試劑盒、大鼠白細(xì)胞介素-6 (interleukin-6,IL-6)、腫瘤壞死因子-α (tumor necrosis factor-α,TNF-α) 酶聯(lián)免疫吸附 (enzyme linked immunosorbent assay,ELISA) 試劑盒 (批號17100017、G8150、M1020、C0117、CA1020、PI328、PI915,北京索萊寶科技有限公司);大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞完全培養(yǎng)基、BCA 蛋白質(zhì)定量檢測試劑盒(批號CM-R107、C503021,武漢普諾賽生命科技有限公司);胰蛋白酶、RIPA 裂解液[批號A600626-0005、C500005-0050,生工生物工程 (上海) 股份有限公司];大鼠白細(xì)胞介素-18 (interleukin-18,IL-18) ELISA 試劑盒、兔源p38 MAPK、磷酸化p38 MAPK(phosphorylated p38 MAPK,p-p38 MAPK)、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-9 (caspase-9)、B 淋巴細(xì)胞瘤-2 相關(guān)X 蛋白(Bax)、β-肌動(dòng)蛋白 (β-actin) 一抗 (批號ab213909、ab8227、ab60179、ab30275、ab10861、ab10263,英 國Abcam 公司)。
1.3 儀器 MR-96A 型酶標(biāo)儀、DSX100 型光學(xué)顯微鏡、CytoFLEX 型流式細(xì)胞儀(北京昊諾斯科技有限公司);1703930 型轉(zhuǎn)印槽、1659001 型電泳儀 (美國Bio-Rad 公司);Bio-Best 型化學(xué)發(fā)光圖像分析系統(tǒng)(上海人和科學(xué)儀器有限公司)。
2.1 原代培養(yǎng)大鼠胎鼠海馬神經(jīng)元 將雌、雄大鼠以1 ∶2 的比例合籠,交配獲得孕鼠,以檢查到陰栓為孕1 d,取孕18 d 的孕鼠,吸入異氟醚麻醉后,開腹取出胎鼠,剪下大腦,分離出海馬組織,剪碎后加入等體積的膠原酶Ⅰ和胰蛋白酶,混勻后充分消化,以200 目篩過濾后1 000 r/min離心5 min,以大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞完全培養(yǎng)基洗滌細(xì)胞沉淀后再次離心,加入完全培養(yǎng)基后,將細(xì)胞吹打成單細(xì)胞懸浮液,計(jì)數(shù)并調(diào)整細(xì)胞密度為3.0×105/mL,接種在培養(yǎng)瓶中無菌培養(yǎng)。
2.2 構(gòu)建模擬DD 環(huán)境細(xì)胞模型并篩選紫草素最佳作用濃度 取培養(yǎng)5 d 的大鼠胎鼠海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)細(xì)胞,傳代接種在96 孔板中;其中6 孔不接種細(xì)胞,作為空白組。24 h 后分別以0 (對照組)、0.25、0.5、1、2、4 μmol/L紫草素干預(yù)細(xì)胞[10],6 h 后以150 mmol/L 葡萄糖及200 μmol/L 皮質(zhì)酮聯(lián)合干預(yù)細(xì)胞,構(gòu)建體外模擬DD 環(huán)境細(xì)胞模型[11],18 h 后加入MTT 溶液10 μL 繼續(xù)培養(yǎng)4 h,去除上清,保留底部紫色結(jié)晶,加入Formazan 溶解液110 μL 于搖床上低速振蕩,10 min 后采用酶標(biāo)儀測量各孔在490 nm波長處的吸光值,計(jì)算細(xì)胞活力。各組均設(shè)6 個(gè)復(fù)孔。
2.3 分組處理及細(xì)胞活力檢測 將培養(yǎng)5 d 的大鼠胎鼠海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)細(xì)胞傳代后接種在96 孔板中,隨機(jī)分為對照組、模型組、紫草素(2 μmol/L) 組、C16-PAF(4 μmol/L) 組[12]、紫草素+C16-PAF(2 μmol/L+4 μmol/L)組,24 h 后以2 μmol/L 紫草素和4 μmol/L C16-PAF 分組干預(yù)細(xì)胞,6 h 后除對照組外,其他組按“2.2” 項(xiàng)下方法構(gòu)建體外模擬DD 環(huán)境細(xì)胞模型,繼續(xù)培養(yǎng)18 h 后,按“2.2” 項(xiàng)下MTT 法檢測各組細(xì)胞活力。各組均設(shè)6 個(gè)復(fù)孔。
2.4 細(xì)胞損傷情況檢測 將培養(yǎng)5 d 的大鼠胎鼠海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)細(xì)胞傳代后接種在24 孔板,按“2.3” 項(xiàng)下方法分組處理后,去除培養(yǎng)液,以PBS 漂洗細(xì)胞后固定,加入尼氏染液進(jìn)行染色,漂洗后于鏡下觀察神經(jīng)元細(xì)胞損傷情況。
2.5 細(xì)胞凋亡情況檢測 將培養(yǎng)5 d 的大鼠胎鼠海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)細(xì)胞傳代后接種在24 孔板,按“2.3” 項(xiàng)下方法分組處理后,收集各組細(xì)胞及其培養(yǎng)液。PBS 重懸細(xì)胞,計(jì)數(shù)后取約含1×106個(gè)細(xì)胞的細(xì)胞懸液,1 000 r/min 離心5 min,洗滌細(xì)胞沉淀,依次加入膜聯(lián)蛋白V-異硫氰酸熒光素(Annexin V-FITC) 10 μL、Binding Buffer 500 μL、碘化丙啶(propidium iodide,PI) 5 μL,混勻后于37.5 ℃避光孵育15 min,1 000 r/min 離心5 min,再次洗滌細(xì)胞沉淀,以500 μL PBS 重懸細(xì)胞,混勻后上機(jī)檢測,以流式細(xì)胞儀自帶的系統(tǒng)分析數(shù)據(jù)得到細(xì)胞凋亡率。各組剩余的細(xì)胞懸液1 000 r/min 離心5 min 后保存在液氮中。
2.6 細(xì)胞上清液炎性因子TNF-α、IL-6、IL-18 水平檢測 取“2.5” 項(xiàng)下收集得到的各組細(xì)胞培養(yǎng)液,1 000 r/min離心5 min,采用試劑盒通過ELISA 法檢測上清液中炎性因子TNF-α、IL-6、IL-18 水平。
2.7 神經(jīng)元細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白及MAPK 信號通路蛋白表達(dá)檢測 取“2.5” 項(xiàng)下保存在液氮中的各組細(xì)胞,加入高效RIPA 裂解液,于冰水浴中裂解2 h,3 000 r/min 離心20 min,采用BCA 試劑盒測定上清液中蛋白總濃度,各組分別取20 μg 總蛋白變性后電泳分離,濕轉(zhuǎn)后采用5%脫脂奶粉溶液封閉蛋白非特異位點(diǎn),分別以對應(yīng)兔源p38 MAPK、p-p38 MAPK、caspase-9、Bax、β-actin 一抗(1 ∶1 300) 4 ℃孵育13 h,洗滌后以羊抗兔二抗溶液(1 ∶1 700) 37 ℃孵育1.5 h,洗滌后通過化學(xué)發(fā)光法顯色并拍照,通過Image J 軟件定量各蛋白灰度值,計(jì)算出各組蛋白條帶灰度值與內(nèi)參β-actin 蛋白條帶灰度值的比值。
2.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 通過SPSS 24.0 軟件進(jìn)行處理,數(shù)據(jù)以(±s) 表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩之間進(jìn)一步比較采用SKN-q檢驗(yàn)。P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
3.1 不同濃度紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力的影響 不同濃度紫草素可增強(qiáng)體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力,并在一定濃度范圍內(nèi)隨濃度升高而作用增強(qiáng)(P<0.05)。當(dāng)紫草素濃度為2 μmol/L時(shí),進(jìn)入平臺(tái)期,其促生長作用會(huì)隨濃度的繼續(xù)升高而減?。≒<0.05),因此選擇2 μmol/L 紫草素進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn),見表1。
表1 不同濃度紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力的影響(±s,n=6)
表1 不同濃度紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力的影響(±s,n=6)
注:與0 μg/mL 紫草素比較,*P<0.05;與0.25 μg/mL 紫草素比較,# P <0.05;與0.5 μg/mL 紫草素比較,△P <0.05;與1 μg/mL紫草素比較,▲P<0.05。
紫草素濃度/(μmol·L-1)細(xì)胞活力/%0 100.00±0.00 0.25139.41±10.08*0.5162.71±13.25*#1 187.53±16.07*?!? 202.39±21.63*?!鳌? 197.52±19.30*#△▲
3.2 紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力的影響 與對照組比較,模型組細(xì)胞活力降低(P<0.05);與模型組比較,紫草素組細(xì)胞活力升高(P<0.05),C16-PAF 組細(xì)胞活力降低(P<0.05);與紫草素組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞活力降低(P<0.05);與C16-PAF 組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞活力升高 (P<0.05),見表2。
表2 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力比較(±s,n=6)
表2 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力比較(±s,n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與紫草素組比較,△P<0.05;與C16-PAF 組比較,▲P<0.05。
組別細(xì)胞活力/%對照組100.00±0.00模型組51.23±5.42*紫草素組87.64±10.05#C16-PAF 組29.76±3.56?!髯喜菟?C16-PAF 組60.18±7.04△▲
3.3 紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞損傷的影響 對照組神經(jīng)元尼氏小體在神經(jīng)元的樹突和胞體中正常分布;與對照組比較,模型組神經(jīng)元尼氏小體明顯減少,甚至消失,細(xì)胞呈現(xiàn)明顯損傷;與模型組比較,紫草素組神經(jīng)元尼氏小體有所恢復(fù),神經(jīng)元損傷均減輕,C16-PAF 組神經(jīng)元尼氏小體進(jìn)一步減少,神經(jīng)元損傷均加重;與紫草素組比較,紫草素+C16-PAF 組神經(jīng)元尼氏小體進(jìn)一步減少,神經(jīng)元損傷均加重,見圖1。
圖1 大鼠海馬神經(jīng)元尼氏染色(×200)
3.4 紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡的影響 與對照組比較,模型組細(xì)胞凋亡率升高 (P<0.05);與模型組比較,紫草素組細(xì)胞凋亡率降低(P<0.05),C16-PAF 組細(xì)胞凋亡率升高(P<0.05);與紫草素組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞凋亡率升高(P<0.05);與C16-PAF 組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞凋亡率降低(P<0.05),見圖2、表3。
圖2 各組大鼠海馬神經(jīng)元凋亡情況
表3 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡率比較(±s,n=6)
表3 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡率比較(±s,n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與紫草素組比較,△P<0.05;與C16-PAF 組比較,▲P<0.05。
組別凋亡率/%對照組3.02±0.43模型組51.96±5.94*紫草素組10.43±1.25#C16-PAF 組70.65±7.36?!髯喜菟?C16-PAF 組46.31±4.02△▲
3.5 紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞TNFα、IL-6、IL-18 水平的影響 與對照組比較,模型組細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-18 水平升高(P<0.05);與模型組比較,紫草素組細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-18 水平降低(P<0.05),C16-PAF 組細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-18 水平升高(P<0.05);與紫草素組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-18 水平升高(P<0.05);與C16-PAF 組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-18 水平降低(P<0.05),見表4。
表4 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-18 水平比較(ng/mL,±s,n=6)
表4 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-18 水平比較(ng/mL,±s,n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與紫草素組比較,△P<0.05;與C16-PAF 組比較,▲P<0.05。
組別TNF-αIL-6IL-18)對照組1.49±0.150.68±0.080.39±0.05模型組3.78±0.37*1.85±0.34*1.12±0.18*紫草素組1.55±0.16#0.73±0.12#0.43±0.07#C16-PAF 組5.16±0.42?!?2.69±0.41#△ 1.86±0.25?!髯喜菟?C16-PAF 組 3.64±0.39△▲ 1.81±0.37△▲ 1.08±0.13△▲
3.6 紫草素對體外模擬DD 環(huán)境大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白及MAPK 信號通路蛋白表達(dá)的影響 與對照組比較,模型組細(xì)胞caspase-9、Bax、p-p38 MAPK/p38 MAPK蛋白表達(dá)升高(P<0.05);與模型組比較,紫草素組細(xì)胞caspase-9、Bax、p-p38 MAPK/p38 MAPK 蛋白表達(dá)降低(P<0.05),C16-PAF 組細(xì)胞caspase-9、Bax、p-p38 MAPK/p38 MAPK 蛋白表達(dá)升高(P<0.05);與紫草素組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞caspase-9、Bax、p-p38 MAPK/p38 MAPK 蛋白表達(dá)升高(P<0.05);與C16-PAF 組比較,紫草素+C16-PAF 組細(xì)胞caspase-9、Bax、p-p38 MAPK/p38 MAPK 蛋白表達(dá)降低(P<0.05),見圖3、表5。
圖3 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白及MAPK 信號通路蛋白印跡圖
表5 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白及MAPK 信號通路蛋白表達(dá)比較(±s,n=6)
表5 各組大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白及MAPK 信號通路蛋白表達(dá)比較(±s,n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與紫草素組比較,△P<0.05;與C16-PAF 組比較,▲P<0.05。
組別caspase-9/β-actinBax/β-actinp-p38 MAPK/p38 MAPK對照組0.27±0.050.42±0.090.18±0.03模型組1.18±0.23*1.35±0.21*0.64±0.05*紫草素組0.33±0.06#0.49±0.10#0.22±0.04#C16-PAF 組1.90±0.41?!?.02±0.27?!?.98±0.12?!髯喜菟?C16-PAF 組1.11±0.28△▲1.28±0.22△▲0.60±0.07△▲
近年來,我國糖尿病發(fā)病率逐年上升,繼發(fā)的抑郁癥病例數(shù)也隨之升高,已成為亟需解決的一個(gè)社會(huì)公共衛(wèi)生問題[13-14]。本研究以葡萄糖聯(lián)合皮質(zhì)酮干預(yù)的方法構(gòu)建模擬DD 環(huán)境海馬神經(jīng)元細(xì)胞模型,結(jié)果顯示,體外原代培養(yǎng)的大鼠胎鼠海馬神經(jīng)元以葡萄糖聯(lián)合皮質(zhì)酮干預(yù)后,炎性細(xì)胞因子TNF-α、IL-6、IL-18 大量產(chǎn)生,引發(fā)炎癥,造成細(xì)胞尼氏小體數(shù)明顯減少,呈現(xiàn)明顯損傷,進(jìn)而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,表明體外模擬DD 環(huán)境細(xì)胞模型構(gòu)建成功。
炎癥狀態(tài)加劇可增加糖尿病患者發(fā)生抑郁的風(fēng)險(xiǎn),減弱大腦中炎癥和氧化應(yīng)激可改善糖尿病大鼠抑郁癥狀,進(jìn)行抗炎治療是改善DD 癥狀的有效手段[15-16]。紫草素是一種有明顯抗炎活性的天然化合物,可抑制MAPK 信號活化,拮抗炎癥發(fā)生發(fā)展,改善關(guān)節(jié)炎、牙髓炎等炎性疾病癥狀[17-18],并可減輕氧糖剝奪誘導(dǎo)的大鼠原代皮層神經(jīng)元凋亡[10],因而推測紫草素可能防治DD。本實(shí)驗(yàn)以不同濃度紫草素處理體外模擬DD 環(huán)境細(xì)胞模型,均可增強(qiáng)其細(xì)胞活力,當(dāng)紫草素濃度為2 μmol/L 時(shí)進(jìn)入平臺(tái)期,故后續(xù)實(shí)驗(yàn)選擇2 μmol/L 紫草素進(jìn)行。以2 μmol/L 紫草素處理體外模擬DD 環(huán)境細(xì)胞模型,可降低炎性細(xì)胞因子TNF-α、IL-6、IL-18 水平,減弱炎癥,減輕細(xì)胞損傷,下調(diào)凋亡蛋白caspase-9 及Bax 表達(dá),進(jìn)而抑制凋亡,表明紫草素可通過抗炎作用而改善模擬DD 環(huán)境神經(jīng)元細(xì)胞損傷,提升其細(xì)胞活力,最終保護(hù)細(xì)胞免于凋亡,揭示紫草素在DD 的治療中有很好的應(yīng)用前景。
MAPK 是一種典型的細(xì)胞應(yīng)激反應(yīng)元件,參與介導(dǎo)糖尿病相關(guān)的牙周炎、焦慮和抑郁等并發(fā)癥的產(chǎn)生及病情進(jìn)展,下調(diào)p38 MAPK 磷酸化水平可減少活性氧及炎性介質(zhì)的生成,拮抗炎癥的產(chǎn)生及進(jìn)展[19],改善神經(jīng)炎癥等應(yīng)激誘導(dǎo)的焦慮和抑郁癥狀[20]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,以MAPK 激活劑C16-PAF 處理模擬DD 環(huán)境海馬神經(jīng)元細(xì)胞模型,可加重神經(jīng)元細(xì)胞炎癥損傷,促進(jìn)其凋亡;而紫草素可降低模擬DD 環(huán)境海馬神經(jīng)元細(xì)胞中p38 MAPK 的磷酸化水平;以C16-PAF 和紫草素聯(lián)合處理模擬DD 環(huán)境海馬神經(jīng)元細(xì)胞,C16-PAF 可減弱紫草素的抗炎活性,拮抗其對模擬DD環(huán)境海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡的抑制功效,逆轉(zhuǎn)紫草素對神經(jīng)元的保護(hù)作用,表明MAPK 信號介導(dǎo)紫草素對體外培養(yǎng)的模擬DD 環(huán)境海馬神經(jīng)元細(xì)胞的保護(hù)作用。
綜上所述,本實(shí)驗(yàn)證實(shí)了紫草素可下調(diào)MAPK 蛋白磷酸化水平,進(jìn)而降低炎性細(xì)胞因子水平,抵抗炎癥反應(yīng)發(fā)生及進(jìn)展,增強(qiáng)模擬DD 環(huán)境海馬神經(jīng)元細(xì)胞活力,抑制其凋亡,抑制MAPK 信號激活是紫草素發(fā)揮上述藥理作用的機(jī)制之一。