魏婷 馬秀蓮 張春平 吳廣放 朱剛 李紅 高菡

文章編號：2096-398X2024）03-0020-07

（1.陜西科技大學(xué) 環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院， 陜西 西安 710021； 2.中國建筑材料工業(yè)建設(shè)西安工程有限公司， 陜西 西安 710000）

摘 要：茉莉酸甲酯Methyl jasmonate，MeJA）是高等植物體內(nèi)普遍存在的植物激素，在植物生物與非生物脅迫的生理響應(yīng)及抗逆中發(fā)揮著重要的作用.本研究通過水培實驗，探討了外源茉莉酸甲酯對鎘（Cadmium，Cd）脅迫下水稻幼苗生長及Cd吸收、分布的影響.結(jié)果顯示，MeJA可有效緩解Cd脅迫引起的植物生長抑制，并使得水稻根部和地上部Cd含量分別下降14.42%和11.63%.非損傷微測顯示，MeJA可以有效減少Cd2+離子內(nèi)流，降低植物對Cd的吸收.此外，MeJA改變了細胞壁結(jié)構(gòu)和多糖組分含量，使得水稻根部和地上部的細胞壁厚度分別增加了27.02%和39.96%，細胞壁多糖（果膠、纖維素和半纖維素）中的Cd含量也相應(yīng)增加.有效阻控了Cd進入細胞質(zhì)和細胞器，降低了Cd的生物毒性.水稻Cd吸收與轉(zhuǎn)運能力的降低與吸收轉(zhuǎn)運相關(guān)基因OsNramp1、OsNramp5、OsHMA2表達量降低有直接關(guān)系.研究結(jié)果為降低水稻Cd累積提供了一條有效的途徑.

關(guān)鍵詞：茉莉酸甲酯； 細胞壁; 亞細胞定位； Cd2+離子流; 基因表達

中圖分類號：X173; S511??? 文獻標志碼： A

Mechanism of methyl jasmonate in regulating cadmium uptake and distribution in rice seedlings

WEI Ting1， MA Xiu-lian1， HANG Chun-ping2， WU Guang-fang2， HU Gang2， LI Hong1， GAO Han1

1.School of Environmental Science and Engineering， Shaanxi University of Science & Technology， Xi′an 710021， China； 2.China Building Materials Industrial Construction Xi′an Engineering Co.， Ltd.， Xi′an 710000， China）

Abstract：Methyl jasmonate MeJA） is a plant hormone in higher plants and plays an important role in physiological response and stress resistance of plants under various biotic and abiotic stresses.In this study，the effects of exogenous MeJA on the growth of rice seedlings under cadmium Cd） stress were studied via hydroponics experiment.The results showed that MeJA could effectively relieve plant growth inhibition caused by Cd stress，and reduce Cd content in root and shoot parts of rice by 14.42% and 11.63%，respectively.Non-invasive micro-test analysis indicated that MeJA effectively reduced net Cd2+influx.Moreover，MeJA changed the cell wall structure and increased root and shoot cell wall thickness by 27.02% and 39.96%，respectively.The Cd content in pectin，cellulose and hemicellulose increased，thus Cd was effectively prevented from entering cytoplasm and organelles，and the biotoxicity of Cd to plant cells was reduced.Gene expression analysis showed that the decrease of Cd absorption and transportation in rice plants was directly related to the decreased expression of OsNramp1、OsNramp5 and OsHMA2 genes.Overall，this study provides a feasible way for decreasing Cd content in rice plants.

Key words：methyl jasmonate; cell wall; subcellular localization; Cd2+ flux; gene expression

0 引言

鎘（Cadmium，Cd）是生物毒性最強的重金屬元素之一，也是一種植物非必要的重金屬元素，具有毒性大、易轉(zhuǎn)移、難降解等特點.Cd脅迫會影響植物的種子萌發(fā)，生長發(fā)育，氣孔開合，營養(yǎng)物質(zhì)吸收，導(dǎo)致光合作用下降，植物代謝紊亂，激素失衡，誘導(dǎo)氧化應(yīng)激［1，2］.此外，由于Cd在土壤中遷移性較強，極易被農(nóng)作物吸收并富集在作物體內(nèi)，從而導(dǎo)致作物的產(chǎn)量和品質(zhì)低下，作物中的Cd通過食物鏈進入人體.Cd是公認的致癌、致畸、致突變物質(zhì)，人體攝入過量的Cd會導(dǎo)致嚴重的功能性障礙疾病，威脅人類健康［3］.因此，減少農(nóng)作物中Cd累積，并提高植物Cd抗性已成為農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中亟待解決的問題.

茉莉酸甲酯Methyl jasmonate，MeJA）作為植物應(yīng)答生物與非生物脅迫的重要信號物質(zhì)，對植物抵御重金屬脅迫和調(diào)控重金屬累積起著非常重要的作用，且具有生理活性高和環(huán)境友好的特點［4，5］.Singh等［6］研究發(fā)現(xiàn)，外源MeJA可降低水稻Cd吸收、累積并減輕Cd對生物膜的氧化損傷.MeJA也可有效抑制Cd從秋茄根部向地上部的轉(zhuǎn)運，提高秋茄葉綠素含量以及內(nèi)源茉莉酸含量，降低MDA含量及地上部Cd含量［7］.Yan等［8］通過外源施用MeJA的方法提高了Cd脅迫下觀賞辣椒各組織的干重、葉綠素含量、葉中的過氧化氫酶（CAT）以及抗壞血酸過氧化氫酶（ASA-POD）的活性，從而為受重金屬脅迫的植物提供保護作用.此外，MeJA也可提高甘藍型油菜抗壞血酸-谷胱甘肽循環(huán)相關(guān)酶的活性而顯著緩解砷脅迫引起的氧化損傷，并降低植物體內(nèi)砷的累積［9-11］.盡管國內(nèi)外已經(jīng)在MeJA調(diào)節(jié)植物重金屬抗性方面做了一定的基礎(chǔ)研究，且證實了MeJA能夠緩解植物重金屬脅迫，然而，MeJA調(diào)控植物重金屬吸收、轉(zhuǎn)運的作用機制尚不明確.

水稻是中國第一大糧食作物，也是世界范圍內(nèi)主要的糧食作物之一，全球約有一半人口以大米為主食.據(jù)統(tǒng)計，中國水稻種植面積約占世界水稻種植總面積的1/4，稻谷產(chǎn)量約為世界總產(chǎn)量的37%，土壤中的Cd容易被水稻吸收，使得Cd污染而引起的Cd米事件層出不窮，對人類健康造成了嚴重的威脅.

本研究以水稻為實驗材料，探討外源MeJA對水稻生長、Cd吸收、累積和轉(zhuǎn)運的影響，在此基礎(chǔ)上，進一步研究MeJA對水稻根系Cd內(nèi)流、細胞壁厚度、細胞壁Cd固定及重金屬吸收轉(zhuǎn)運相關(guān)基因表達的影響，深入闡明MeJA調(diào)控水稻Cd吸收、累積的作用機制，為利用MeJA提高作物重金屬脅迫、降低植物重金屬累積提供理論依據(jù)和實踐指導(dǎo).

1 實驗部分

1.1 水稻幼苗的培養(yǎng)

以揚稻6號為供試植物材料.用3%的NaClO消毒后于蛭石中進行萌發(fā).待幼苗長到兩葉一心時，將幼苗移至含有1/4 Hoagland營養(yǎng)液的水培箱中，并放置于溫室中進行培養(yǎng)，溫度為白天/夜晚26 ℃/20 ℃，光照/黑暗時間為14 h/10 h，相對濕度60%～70%.待幼苗長至三葉一心時，選取健壯且大小一致的幼苗在1/2 Hoagland營養(yǎng)液中適應(yīng)性培養(yǎng)一周，之后于1/2 Hoagland營養(yǎng)液中培養(yǎng)六周并進行處理.處理組包括：（1）C（空白對照）；（2）Cd（3 mg L-1 Cd）；（3）MeJA（1 mmol L-1 MeJA）；（4）MeJA+Cd（1 mmol L-1 MeJA+3 mg L-1 Cd）.MeJA均勻噴灑至水稻地上部分，有液滴滴落時為止.Cd以CdCl2·2.5H2O的形式加入營養(yǎng)液中.植物樣品于處理一周后收樣.

1.2 水稻生長指標的測定

將植株用去離子水小心沖洗，去除根部殘留的營養(yǎng)液，用濾紙吸干根部表面水分，將其平鋪在桌面上，用刻度尺測量地上部及根部的長度.用分析天平稱取植株鮮重并記錄，再將其放置在105 ℃烘箱中殺青半小時后，于80 ℃烘箱烘干至恒重并稱重記錄.

1.3 水稻幼苗Cd含量的測定

樣品于110 ℃殺青后，在70 ℃烘箱烘干至恒重.將植物樣品稱取0.1 g于消解管中，加入10 mL HNO3浸泡10 h后進行消解，消解條件為：80 ℃消解1.5 h，120 ℃消解1.5 h，150 ℃消解3 h，升至175 ℃時開蓋趕酸至1 mL時，用2% HNO3定容至10 mL，過濾，然后使用原子吸收光譜儀進行Cd含量的測定.

1.4 水稻根系Cd2+離子流測定

采用非損傷微測技術(shù)（NMT）對水稻根系Cd離子流進行測定［12］.每株樣品測定15 min，共4個生物學(xué)重復(fù).正負表示Cd2+的運動方向，負值表示Cd2+內(nèi)流，正值表示.

2 結(jié)果與討論

2.1 MeJA對Cd脅迫下水稻幼苗生長的影響

Cd作為一種高毒性的重金屬元素，可以抑制植物細胞的分裂和分化，影響營養(yǎng)物質(zhì)吸收，抑制光合作用速率，導(dǎo)致植物生長緩慢［13-15］.在Cd脅迫下，水稻幼苗的正常生長受到明顯抑制（如圖1所示）.而外源噴施1 mmol L-1MeJA使得水稻的地下部和地上部的干重分別增加1.81%、8.49%.由此可知，外源MeJA可以緩解Cd脅迫導(dǎo)致的水稻生長抑制.Asghari等［16］報道MeJA可以調(diào)節(jié)氣孔關(guān)閉和氣體交換，從而增強光合作用，促進植株生長.也有證據(jù)表明，MeJA可以通過增強抗氧化酶活性和ASA-GSH循環(huán)來減少Cd的毒性作用［17］.此外，MeJA還可以調(diào)節(jié)其他植物激素的含量，如乙烯和赤霉素，從而間接促進植物的生長發(fā)育［18］.

2.2 MeJA對Cd脅迫下水稻幼苗Cd含量的影響

植物根系能從環(huán)境介質(zhì)中吸收重金屬，并轉(zhuǎn)運到植物的不同部位進行累積.與Cd處理植株相比，外源噴施1 mmol L-1MeJA能有效減少Cd在水稻中的累積，使得水稻根部Cd含量和地上部Cd含量分別降低了14.42%和11.63% 如圖2所示）.MeJA降低植物重金屬吸收的效果在秋茄、擬南芥和番茄中也有報道［19-21］.說明外源MeJA可用于調(diào)控植物重金屬累積.

2.3 MeJA對Cd脅迫下水稻幼苗根系Cd2+離子流的影響

植物組織中的Cd含量與根表皮細胞對Cd跨膜攝取直接相關(guān)［12］.因此，為了進一步闡明水稻根系對Cd的吸收特性，通過非損傷微測系統(tǒng)（NMT）檢測了MeJA對水稻根系Cd2+離子流的影響.Cd脅迫下Cd2+大量流入水稻根系，平均流速率為11.61 pmol cm-2 s-1，噴施MeJA后，Cd2+內(nèi)流現(xiàn)象明顯被抑制，平均流速率為2.59 pmol cm-2 s-1，降低了77.69%（p＜0.05）（如圖3所示）.說明外源噴施MeJA可以抑制Cd2+內(nèi)流，減少水稻根系對Cd2+的吸收.研究表明，Cd2+可以與Ca2+競爭Ca2+通道，外源激素可以誘導(dǎo)Ca2+大量內(nèi)流，而抑制Cd2+的吸收，說明Cd2+轉(zhuǎn)運受植物信號分子或激素的調(diào)控［22-24］.重金屬以質(zhì)膜上的陽離子轉(zhuǎn)運蛋白為通道（OsNramp1、OsNramp5、OsIRT1）進入植物根系細胞，因此，Cd離子內(nèi)流速率的降低可能與MeJA處理后轉(zhuǎn)運蛋白基因的表達被抑制有關(guān)［25，26］.

2.4 MeJA對水稻幼苗Cd亞細胞分布的影響

不同處理組Cd的亞細胞分布均表現(xiàn)為細胞壁＞細胞質(zhì)＞細胞器，表明水稻累積Cd的主要部位為細胞壁，細胞質(zhì)次之，累積最少的部位為細胞器.外源噴施MeJA使得Cd在根部細胞壁中的分布由58%增長到了76%，在地上部細胞壁中的分布由62%增長到了72%（如圖4所示）.細胞壁是阻礙重金屬進入細胞的屏障［27，28］.細胞壁上的多糖果膠、纖維素、半纖維素）含有帶負電荷的官能團，能與重金屬離子結(jié)合并將其固定在細胞壁上，從而減少Cd進入細胞的跨膜轉(zhuǎn)運，減輕Cd對細胞器和細胞質(zhì)的毒性，有助于維持植物細胞的正常代謝［28］.

2.5 MeJA對Cd脅迫下水稻幼苗細胞壁厚度的影響

細胞壁對Cd固定能力的增強可能與細胞壁厚度的增加有關(guān).Cd處理誘導(dǎo)植物細胞壁厚度的增加已在多項研究中被發(fā)現(xiàn)［29，30］.而造成植物細胞壁增厚的主要原因是細胞壁多糖組分含量增加，提供給Cd2+的吸附位點增多［31，32］.與Cd處理組相比，噴施MeJA后，地上部和地下部細胞壁厚度分別增加了39.96%和27.02%（如圖5（a）、（b）所示）.說明植物可以通過增加細胞壁厚度從而增強細胞壁固定Cd的能力，降低其對細胞壁和細胞質(zhì)的毒害作用，有利于細胞正常生命活動的維持.同時，細胞壁厚度增加為植物細胞提供了較強的機械支持，使得Cd向原生質(zhì)體轉(zhuǎn)移過程中的滲透性降低［31］，從而增強了植物對Cd的抗性.

2.6 MeJA對Cd脅迫下水稻根系細胞壁多糖含量及多糖中Cd含量的的影響

植物通過一系列適應(yīng)機制重塑細胞壁成分和功能以應(yīng)對重金屬脅迫，增加細胞壁厚度，改變細胞壁與重金屬離子結(jié)合的能力［33］，本研究顯示，MeJA處理使得Cd脅迫下水稻根系的纖維素含量增加了16.72%（如圖6所示）.對半纖維素和果膠的影響并不顯著.細胞壁中較高水平的多糖能夠增強細胞與Cd的結(jié)合.此外，細胞壁結(jié)構(gòu)和組成的改變可能導(dǎo)致細胞壁孔隙率的改變［34］，較高含量的果膠和纖維素會導(dǎo)致細胞壁增厚，從而降低其孔隙率，降低其對重金屬的通透性［35］.

細胞壁多糖中具有大量帶負電的離子基團，如：羥基、氨基、羧基、醛基和巰基等，可提供較多的Cd2+結(jié)合位點，在固定Cd2+中起著重要的作用［12］.對根系果膠、纖維素和半纖維素中Cd含量的分析表明，MeJA處理使得細胞壁中果膠中Cd含量增加37.81%，半纖維素中Cd含量增加了68.20%，纖維素中Cd含量增加了16.72%.

2.7 MeJA對重金屬吸收轉(zhuǎn)運相關(guān)基因表達的影響

Cd在植物體內(nèi)的積累和分布與根表皮細胞對Cd的跨膜吸收直接相關(guān)［12］.重金屬跨膜運輸需要借助細胞膜上的二價陽離子轉(zhuǎn)運蛋白進行.OsNramp1和OsNramp5基因編碼的轉(zhuǎn)運蛋白是重金屬進入植物細胞膜質(zhì)膜的主要通道［36］，OsHMA2是Cd從根部到地上部的主要轉(zhuǎn)運蛋白基因［36，37］.因此，本研究顯示，Cd+MeJA處理6 h、9 h和12 h時，OsNramp1和OsNramp5基因的表達顯著低于Cd處理植株.處理3 h、9 h和12 h時，OsHMA2基因的表達也顯著低于Cd處理植株（如圖7所示）.說明外源MeJA可以抑制重金屬吸收轉(zhuǎn)運相關(guān)基因的表達，從而降低水稻根系對Cd的吸收速率及向地上部的轉(zhuǎn)運速率，調(diào)控Cd在水稻中的累積分布并降低Cd對植物的毒性.

3 結(jié)論

MeJA減輕了Cd誘導(dǎo)的生長抑制，降低了水稻組織中Cd的含量.并通過抑制吸收轉(zhuǎn)運相關(guān)基因的表達從而降低根系表皮細胞對Cd的吸收.同時，亞細胞分布顯示水稻中的Cd主要位于細胞壁中，且MeJA可通過增加根細胞壁厚度和調(diào)節(jié)細胞壁中果膠、半纖維素、纖維素的含量來重建根細胞壁，從而增加了這些細胞壁組分中Cd的含量，增強了根細胞壁對Cd的固定，降低了Cd對細胞質(zhì)和細胞器的生物毒性.本研究為利用MeJA調(diào)控植物重金屬累積，緩解重金屬脅迫提供了一定的理論基礎(chǔ).

參考文獻

［1］ 張星雨，葉志彪，張余洋.植物響應(yīng)鎘脅迫的生理與分子機制研究進展.植物生理學(xué)報，2021，577）：1 437-1 450.

［2］ 史廣宇，余志強，施維林.植物修復(fù)土壤重金屬污染中外源物質(zhì)的影響機制和應(yīng)用研究進展.生態(tài)環(huán)境學(xué)報，2021，303）：655-666.

［3］ 方 波，肖騰偉，蘇娜娜，等.水稻鎘吸收及其在各器官間轉(zhuǎn)運積累的研究進展.中國水稻科學(xué)，2021，353）：255-237.

［4］ 劉宇婧，馮藝玫，劉欣悅，等.鎘對波斯菊種子發(fā)芽的影響及外源MeJA的緩解作用.草業(yè)學(xué)報，2017，261）：122-130.

［5］ Ulloa-Inostroza E M，Alberdi M，Merio-Gergichevich C，et al.Low doses of exogenous methyl jasmonate applied simultaneously with toxic aluminum improve the antioxidant performance of vaccinium corymbosum.Plant and Soil，2016，4121）：81-96.

［6］ Singh I，Shah .Exogenous application of methyl jasmonate lowers the effect of cadmium-induced oxidative injury in rice seedlings.Phytochemistry，2014，108：57-66.

［7］ Chen J，Yan ，Li X.Effect of methyl jasmonate on cadmium uptake and antioxidative capacity in kandelia obovata seedlings under cadmium stress.Ecotoxicology &Environmental Safety，2014，1041）：349-356.

［8］ Yan ，Chen J，Li X.Methyl jasmonate as modulator of Cd toxicity in capsicum frutescens var.fasciculatum seedlings.Ecotoxicology and Environmental Safety，2013，983）：203-209.

［9］ Farooq M A，Gill R A，Islam F，et al.Methyl jasmonate regulates antioxidant defense and suppresses arsenic uptake in Brassica napus L.Frontiers in Plant Science，2016 7）：1-16.

［10］ Farooq M A，Islam F，Yang C，et al.Methyl jasmonate alleviates arsenic-induced oxidative damage and modulates the ascorbate-glutathione cycle in oilseed rape roots.Plant Growth Regulation，2017，841）：135-148.

［11］ Wei T，Li X，Li H，et al.The potential effectiveness of mixed bacteria-loaded biochar/activated carbon to remediate Cd，Pb co-contaminated soil and improve the performance of pakchoi plants.Journal of Hazardous Materials，2022，435：129 006.

［12］ Jia H，Wang X，Shi C，et al.Hydrogen sulfide decreases Cd translocation from root to shoot through increasing Cd accumulation in cell wall and decreasing Cd2+ influx in Isatis indigotica.Plant Physiology and Biochemistry，2020，155：605-612.

［13］ Wu X，Song H，Guan C，et al.Boron alleviates cadmium toxicity in Brassica napus by promoting the chelation of cadmium onto the root cell wall components.Science of the Total Environment，2020，728：138 833.

［14］ Pilaisangsuree V，Anuwan P，Supdensong ，et al.Enhancement of adaptive response in peanut hairy root by exogenous signalling molecules under cadmium stress.Journal of Plant Physiology，2020，2542）：153 278.

［15］ Yan? ，Chen J，Li X.Methyl jasmonate as modulator of Cd toxicity in capsicum frutescens var.fasciculatum seedlings.Ecotoxicology and Environmental Safety，2013，98：203-209.

［16］ Asghari M，Merrikhi M，avoosi B，et al.Methyl jasmonate foliar spray substantially enhances the productivity，quality and phytochemical contents of pomegranate fruit.Journal of Plant Growth Regulation，2020，39：1 153-1 161.

［17］ Farooq M A，Islam F，Yang C，et al.Methyl jasmonate alleviates arsenic-induced oxidative damage and modulates the ascorbate-glutathione cycle in oilseed rape roots.Plant Growth Regulation，2018，84：135-148.

［18］ Fahad S，Hussain S，Saud S，et al.Exogenously applied plant growth regulators enhance the morpho-physiological growth and yield of rice under high temperature.Frontiers in Plant Science，2016，7：1 250.

［19］ Wei T，Sun Y，Li H，et al.Methyl jasmonate triggers cadmium detoxification in tomato plants via depressing Cd2+influx，altering the subcellular distribution，and chemical forms of cadmium.Water，Air，and Soil Pollution，2022，23311）：2-16.

［20］ 馮文靜，高 巍，劉紅恩，等.植物生長調(diào)節(jié)劑促進小麥幼苗生長及降低鎘吸收轉(zhuǎn)運的研究.河南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報，2021，556）：1 036-1 044.

［21］ Lu Q，Weng Y，You Y，et al.Inoculation with abscisic acid ABA）-catabolizing bacteria can improve phytoextraction of heavy metal in contaminated soil.Environmental Pollution，2020，257：113 497.

［22］ Chen S，Jia H，Wang X，et al.Hydrogen sulfide positively regulates abscisic acid signaling through persulfidation of SnR2.6 in guard cells.Molecular Plant，2020，135）：732-744.

［23］ Li L ，Liu X L，Peijnenburg W J，et al.Pathways of cadmium fluxes in the root of the halophyte suaeda salsa.Ecotoxicology and Environmental Safety，2012，75：1-7.

［24］ 張 碩.根際陰離子背景、pH值以及鈣、鉀離子濃度對水稻根系鎘吸收和轉(zhuǎn)運的效應(yīng)分析［D］.杭州：浙江大學(xué)，2020.

［25］ Song Y，Jin L，Wang X.Cadmium absorption and transportation pathways in plants.International Journal of Phytoremediation，2017，192）：133-141.

［26］ 楊 猛.水稻NRAMP家族基因在Mn和Cd轉(zhuǎn)運中的功能研究［D］.武漢：華中農(nóng)業(yè)大學(xué)，2014.

［27］ 王學(xué)華，戴 力.作物根系鎘滯留作用及其生理生化機制.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)，2016，4922）：4 323-4 341.

［28］ Gao M Y，Chen X W，Huang W X，et al.Cell wall modification induced by an arbuscular mycorrhizal fungus enhanced cadmium fixation in rice root .Journal of Hazardous Materials，2021，416：125 894.

［29］ Fan J L，Wei X ，Wan L C，et al.Disarrangement of actin filaments and Ca2+ gradient by CdCl2 alters cell wall construction in arabidopsis thaliana root hairs by inhibiting vesicular trafficking.Journal of Plant Physiology，2011，16811）：1 157-1 167.

［30］ rzesowska M，Rabda I，Basińska A，et al.Pectinous cell wall thickenings formation：A common defense strategy of plants to cope with Pb.Environmental Pollution，2016，214：354-361.

［31］ Aleamotua M，Mccurdy D W，Collings D A.Phi thickenings in roots：Novel secondary wall structures responsive to biotic and abiotic stresses.Journal of Experimental Botany，2019，7018）：4 631-4 642.

［32］ 劉清泉，陳亞華，沈振國，等.細胞壁在植物重金屬耐性中的作用.植物生理學(xué)報，2014，505）：605-611.

［33］ Yang? B，Eticha D，Rao I M，et al.Alteration of cell-wall porosity is involved in osmotic stress-induced enhancement of aluminium resistance in common bean Phaseolus vulgaris L.） .Journal of Experimental Botany，2010，6112）：3 245-3 258.

［34］ Schmohl N，Horst W.Cell wall pectin content modulates aluminium sensitivity of ea mays L.） cells grown in suspension culture.Plant Cell Environ，2000，23：735-742.

［35］ Wu X，Song H，Guan C，et al.Boron alleviates cadmium toxicity in Brassica napus by promoting the chelation of cadmium onto the root cell wall components.Science of the Total Environment，2020，728：138 833.

［36］ 楊耀帥，梅秀芹，李取生，等.缺氧和充氧栽培對水稻Cd積累及OsHMA2基因表達的影響.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報，2017，385）：24-29.

［37］ Akagi H.Mutations in rice Oryza sativa） heavy metal ATPase 2 OsHMA2） restrict the translocation of zinc and cadmium.Plant and Cell Physiology，2012，531）：213-224.

【責任編輯：陳 佳】

基金項目：陜西省科技廳自然科學(xué)基礎(chǔ)研究計劃項目（2023-JC-YB-265）

作者簡介：魏 婷（1983—），女，陜西眉縣人，講師，博士，研究方向：植物重金屬抗性