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      米曲霉F16原生質(zhì)體的制備和再生研究

      2010-01-08 02:34:00劉源慧鄧琳芬
      海峽科學(xué) 2010年10期
      關(guān)鍵詞:原生質(zhì)溶菌酶滲透壓

      劉源慧 鄭 毅 王 婭 鄧琳芬

      米曲霉F16原生質(zhì)體的制備和再生研究

      劉源慧 鄭 毅 王 婭 鄧琳芬

      福建師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院

      目的:研究菌齡、酶液組成、酶解時(shí)間、酶解溫度、滲透壓穩(wěn)定劑、培養(yǎng)基成分等因素對(duì)米曲霉F16原生質(zhì)體制備和再生的影響。結(jié)果表明,米曲霉原生質(zhì)體制備和再生的最佳條件是:菌齡15h,酶液為0.75%纖維素酶、0.75%蝸牛酶、0.5%溶菌酶的混合酶液,酶解時(shí)間2.5h,溫度為28℃,最適原生質(zhì)體再生培養(yǎng)基為含有0.6mol/L NaCl的PDA培養(yǎng)基。

      米曲霉 原生質(zhì)體 制備 再生

      米曲霉()是一類產(chǎn)復(fù)合酶的菌株,生產(chǎn)的酶類包括蛋白酶,淀粉酶、糖化酶、纖維素酶、植酸酶等[1],在造紙、食品、飼料、生產(chǎn)曲酸、釀造等工業(yè)中應(yīng)用十分廣泛。在實(shí)際生產(chǎn)中,米曲霉的產(chǎn)酶能力往往欠佳。如果能對(duì)米曲霉進(jìn)行人工改造以提高其酶活,將會(huì)在一定程度上提高生產(chǎn)效率,降低生產(chǎn)成本。目前關(guān)于米曲霉的育種,主要采用物理和化學(xué)的誘變方法。自Emerson[2]首次報(bào)導(dǎo)得到粗糙脈孢菌的類原生質(zhì)體結(jié)構(gòu)以來,絲狀真菌原生質(zhì)體的研究已經(jīng)取得了長足的進(jìn)步,廣泛運(yùn)用于真菌遺傳學(xué)的理論研究和育種實(shí)踐。與之相關(guān)的原生質(zhì)體誘變、融合、轉(zhuǎn)化等技術(shù)是如今行之有效的菌種選育方法,愈加受到人們的重視,已經(jīng)有許多的成功報(bào)道[3-4]。然而原生質(zhì)體制備和再生是與原生質(zhì)體相關(guān)的生物技術(shù)的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。因此本文對(duì)米曲霉原生質(zhì)體的制備和再生條件進(jìn)行研究,為基于原生質(zhì)體技術(shù)基礎(chǔ)上的融合和基因組改組技術(shù)奠定夯實(shí)的基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1菌株

      米曲霉F16為本實(shí)驗(yàn)室保藏菌株

      1.1.2 主要試劑

      蝸牛酶(Snailase);為廈門泰京生物有限公司產(chǎn)品;

      纖維素酶(Cellulase),溶菌酶(Lysozyme)均為國藥試劑;

      其他常規(guī)試劑均購自上海生工和中國醫(yī)藥上?;瘜W(xué)試劑公司。

      1.1.3培養(yǎng)基

      (1)PDA固體培養(yǎng)基(g/L):馬鈴薯200;葡萄糖20;瓊脂 20;pH 6.8

      (2)馬丁培養(yǎng)基(g/L):KH2PO41;MgSO4·7H2O 0.5;蛋白胨 5;葡萄糖 10;瓊脂 15-20;pH 6.8

      (3)查氏培養(yǎng)基(g/L):蔗糖30;NaNO33;KH2PO41;KCl 0.5;MgSO4·7H2O 0.5;FeSO40.001;麩皮10;瓊脂 15-20;pH 6.8

      (4)PMA固體培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖 40;KH2PO41;NaNO32;KCl 0.5;FeSO40.01;MgSO4·7H2O 0.5;NaCl 38;瓊脂 15;酵母膏 2;PH 6.0

      (5)酵母膏培養(yǎng)基(g/L):酵母膏5;蔗糖10;瓊脂粉15

      (6)再生培養(yǎng)基:添加0.6mol/L的NaCl配制

      1.2 方法

      1.2.1菌絲體培養(yǎng)

      從斜面上洗下的新鮮成熟孢子,調(diào)整孢子濃度在107個(gè)/mL,轉(zhuǎn)接入鋪有一層無菌玻璃紙的查氏固體培養(yǎng)基中,每皿接種量0.2mL,于28℃恒溫箱中靜置培養(yǎng)數(shù)小時(shí)備用。

      1.2.2酶液的配制

      用0. 6mol/L NaCl或其它不同滲透壓穩(wěn)定劑配制,經(jīng)0.22μ微孔濾膜過濾除菌,保存于4 ℃冰箱備用。

      1.2.3原生質(zhì)體的制備與再生

      刮下玻璃紙上長好的菌絲體于50mL離心管中,加入10mL酶液,放置于適宜溫度的水浴振蕩器中進(jìn)行酶解,并定時(shí)吸取少量酶解液用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)。酶解完畢后,酶解液用4層無菌鏡頭紙過濾,除去菌絲體碎片,濾液3000r/min離心10min,除去上清液,用滲透壓穩(wěn)定劑離心洗滌2次后重懸浮于適量滲透壓穩(wěn)定劑中,得到純化的原生質(zhì)體[5]。用滲透壓穩(wěn)定劑對(duì)上述原生質(zhì)體進(jìn)行了稀釋,使之達(dá)到一定的濃度,取0.2mL接種于再生培養(yǎng)基上,28℃恒溫培養(yǎng)2d~3d。同時(shí),取純化的原生質(zhì)體用無菌水適當(dāng)稀釋后放置30min,在未加入滲透壓穩(wěn)定劑的低滲固體培養(yǎng)基上涂布培養(yǎng),作為對(duì)照,計(jì)算再生率。

      再生率=(再生固體培養(yǎng)基上菌落數(shù)-低滲固體培養(yǎng)基上菌落數(shù))/原生質(zhì)體數(shù)×100%

      2 結(jié)果和討論

      2.1 菌齡的選擇

      微生物的生理狀態(tài)尤其是菌齡,是決定原生質(zhì)體形成量的主要因素之一。絲狀真菌分離制備原生質(zhì)體時(shí)常采用年輕的菌絲,一般認(rèn)為對(duì)數(shù)前期和對(duì)數(shù)期效果最好。對(duì)于絲狀菌的原生質(zhì)體再生來說,通常認(rèn)為年輕細(xì)胞再生能力比衰老細(xì)胞要強(qiáng)。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)當(dāng)米曲霉培養(yǎng)時(shí)間為15h時(shí),原生質(zhì)體的形成量最大,達(dá)到1.92×106個(gè)/mL,再生率最高值出現(xiàn)在13h時(shí),達(dá)到22%(圖1)。綜合考慮,選擇15h的菌齡作為原生質(zhì)體制備和再生的材料。

      圖1 菌齡對(duì)原生質(zhì)體制備和再生的影響

      2.2 酶液組成的選擇

      不同微生物由于其細(xì)胞壁成分不同,用于破壁的酶種類也不相同。霉菌細(xì)胞壁的結(jié)構(gòu)及組成比較復(fù)雜,主要由纖維素、幾丁質(zhì)組成。要想獲得大量具有活性的原生質(zhì)體,首先要根據(jù)壁物質(zhì)選擇合適的酶,其次酶的濃度也要適當(dāng),酶量過低,作用會(huì)不徹底,酶量過高,會(huì)影響原生質(zhì)體的數(shù)量和活性。

      2.2.1單一酶液對(duì)原生質(zhì)體形成量的影響

      分別單獨(dú)采用0.5%、1%、1.5%、2%的蝸牛酶、纖維素酶、溶菌酶找尋各自制備米曲霉原生質(zhì)體時(shí)的最佳酶量。結(jié)果發(fā)現(xiàn)單獨(dú)使用蝸牛酶裂解米曲霉時(shí),其最佳濃度為1.5%,單獨(dú)使用纖維素酶的時(shí)候最佳濃度也為1.5%,單獨(dú)使用溶菌酶的時(shí)候最佳濃度為1%。

      2.2.2酶解液的復(fù)合配比對(duì)原生質(zhì)體形成量的影響

      上述單一酶對(duì)米曲霉原生質(zhì)體的制備效果不甚理想,這可能是由于真菌細(xì)胞壁較復(fù)雜,而使用單一的酶不能有效水解其細(xì)胞壁??紤]到裂解反應(yīng)中各個(gè)酶之間的累積效應(yīng)和各個(gè)酶之間可能存在的影響,選取各自最佳濃度的一半作為復(fù)合酶液中的基本濃度來進(jìn)行混合,同時(shí)按照一定的步長擴(kuò)充各個(gè)酶的取值范圍,以此尋求原生質(zhì)體形成量最大時(shí)的酶濃度配比。結(jié)果表明制備米曲霉原生質(zhì)體時(shí)以混合酶液的效果較好,其中第二組原生質(zhì)體形成量最大(表1),故確定以0.75%蝸牛酶、0.75%纖維素酶、0.5%溶菌酶配制的混合酶液作為裂解液。

      表1 酶液配比對(duì)原生質(zhì)體制備的影響

      2.2.3 酶解時(shí)間的選擇

      酶液處理菌絲體細(xì)胞壁的過程是一個(gè)漸進(jìn)的過程,隨著酶解時(shí)間的延長,原生質(zhì)體的數(shù)量也會(huì)增加,但是如果裂解時(shí)間過長,原生質(zhì)體的數(shù)量則會(huì)減少,并且對(duì)原生質(zhì)體的再生也不利。在最佳酶液和菌齡條件下分別對(duì)不同酶解時(shí)間的原生質(zhì)體進(jìn)行計(jì)數(shù)及再生實(shí)驗(yàn)。如圖2所示,酶解2.5h時(shí)原生質(zhì)體的再生率最高,形成量也最大,可達(dá)3.5×106個(gè)/mL。

      圖2 酶解時(shí)間對(duì)原生質(zhì)體制備和再生的影響

      2.2.4酶解溫度的選擇

      溫度能影響菌絲體細(xì)胞壁的結(jié)構(gòu)性疏散以及形成的原生質(zhì)體的活力。研究不同溫度對(duì)米曲霉F16制備和再生的影響。結(jié)果如圖3,在28℃時(shí)原生質(zhì)體的再生率最高,而生成量在30℃時(shí)最大,達(dá)到2.94×106個(gè)/mL。綜合考慮,本實(shí)驗(yàn)采用28℃作為原生質(zhì)體的酶解溫度。

      圖3 酶解溫度對(duì)原生質(zhì)體制備和再生的影響

      2.2.5滲透壓穩(wěn)定劑的選擇

      原生質(zhì)體由于脫去細(xì)胞壁,對(duì)外界環(huán)境變化很敏感。滲透壓穩(wěn)定劑能夠?yàn)槊傅娜芙夂驮|(zhì)體的存在提供一個(gè)優(yōu)良的環(huán)境,防止原生質(zhì)體的破裂,對(duì)原生質(zhì)體具有穩(wěn)定和保護(hù)作用[6]。研究不同滲透壓穩(wěn)定劑對(duì)原生質(zhì)體形成數(shù)的影響,如圖4所示,0.6mol/L NaCl作為滲透壓穩(wěn)定劑的原生質(zhì)體形成數(shù)最多,達(dá)2.8×106個(gè)/mL。

      圖4 滲透壓穩(wěn)定劑對(duì)原生質(zhì)體制備的影響

      原生質(zhì)體在蒸餾水或低滲的環(huán)境中容易破裂,所以再生培養(yǎng)基必須是高滲的。分別以0.6mol/L的NaCl、MgSO4.7H2O、KCl和蔗糖配制再生培養(yǎng)基,計(jì)算再生率,發(fā)現(xiàn)以0.6mol/L的NaCl配制的再生培養(yǎng)基上原生質(zhì)體再生效果最好。

      2.2.6再生培養(yǎng)基的選擇

      培養(yǎng)基成分為菌株提供不同的營養(yǎng)條件和生長環(huán)境,Peberdy[7]等發(fā)現(xiàn)改變培養(yǎng)基成分可以獲得不同的原生質(zhì)體產(chǎn)量,真菌的再生培養(yǎng)基中常常補(bǔ)加酵母膏、蛋白質(zhì)、糖類等作為營養(yǎng)因子。分別以0.6mol/L的NaCl配制PDA、PMA、查氏、馬丁、酵母膏培養(yǎng)基作為再生培養(yǎng)基。結(jié)果發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)基不同,其再生率有明顯差異。本實(shí)驗(yàn)采用PDA作為原生質(zhì)體的再生培養(yǎng)基,其再生率可達(dá)27%左右,效果最佳。

      圖5 不同培養(yǎng)基成分對(duì)原生質(zhì)體再生的影響

      3 結(jié)論

      錯(cuò)綜復(fù)雜的菌絲細(xì)胞的生理狀態(tài)、去壁酶種類、濃度、作用時(shí)間都可能對(duì)原生質(zhì)體的形成和再生產(chǎn)生影響。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,米曲霉菌株F16原生質(zhì)體制備和再生的最佳條件為:菌齡15小時(shí),裂解液為含0.75%蝸牛酶、0.75%纖維素酶和0.5%溶菌酶的混合酶液,溫度28℃、時(shí)間2.5h、0.6mol/LNaCl作為滲透壓穩(wěn)定劑,高滲PDA培養(yǎng)基為再生培養(yǎng)基。此條件下的原生質(zhì)體形成量大,再生效果好。在具體實(shí)驗(yàn)操作中,還需要注意幾點(diǎn):一是排除再生培養(yǎng)基上的冷凝水,因?yàn)樗謺?huì)降低滲透壓導(dǎo)致原生質(zhì)體破裂;二是制備好的原生質(zhì)體不能保存太久,最好現(xiàn)制現(xiàn)用;三,在用血球計(jì)數(shù)板進(jìn)行顯微觀察時(shí),最好減弱外置光源的強(qiáng)度,因?yàn)橥渡涔膺^強(qiáng),原生質(zhì)體與背景顏色反差較小[8],不利于觀察。

      [1] 陳力力. 血粉發(fā)酵生產(chǎn)中的微生物[J].肉類工業(yè),2003,(7):43.

      [2] Emerson S , Emerson M.R1 Production, reproduction and reversion of protoplastlike st[J ].Proc Nal Acad Sci USA,1958, 44 :668 – 6711.

      [3] Reddy C R K, Dipakkore S, Kumar G R, et al. An imp roved enzyme p reparation for rapid mass production of protoplasts as seed stock for aquaculture of macrophytic marine green algae [J]. Aquaculture, 2006, 260: 290-297.

      [4] 宋慶濤,張國珍,董金皋. 玉米大斑病菌原生質(zhì)體的制備和再生[J].微生物學(xué)通報(bào), 2003,30 (2) : 41-44.

      [5] 張志光.真菌原生質(zhì)體技術(shù)[M ]. 北京: 湖南科學(xué)技術(shù)出版社,2003.

      [6] 張志光,由媛,全麗等.雙親滅活的原生質(zhì)體融合株啤酒酵母DR9----2的構(gòu)建及其特征的研究.釀酒,2007,34(5):72-75.

      [7] PEBERDY J F.In microbial and plant protoplasts [M].London:Academic Press,1976,39-50.

      [8] 劉青,肖東光.一種觀察釀酒酵母原生質(zhì)體的簡易方法[J].釀酒科技,2005,(6):123-125.

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