• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      光皮木瓜綠原酸的提取及抗菌活性測定

      2010-03-24 09:04:40胡仲秋洪小迪岳田利
      食品科學(xué) 2010年24期
      關(guān)鍵詞:光皮甲醇溶液木瓜

      胡仲秋,洪小迪,岳田利

      (西北農(nóng)林科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 楊凌 712100)

      光皮木瓜綠原酸的提取及抗菌活性測定

      胡仲秋,洪小迪,岳田利

      (西北農(nóng)林科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 楊凌 712100)

      為提高木瓜的利用價值,首次利用甲醇研究光皮木瓜中綠原酸的最佳提取工藝,在單因素試驗基礎(chǔ)上,通過正交試驗設(shè)計考察浸提溶劑體積分數(shù)、浸提溫度、浸提料液比和浸提時間對綠原酸提取的影響,并初步考察綠原酸樣品液對志賀氏痢疾桿菌及金黃色葡萄球菌的抗菌活性。結(jié)果表明從木瓜中提取綠原酸的最佳工藝條件為:以85%甲醇溶液(85:15,V/V)浸提木瓜粉、浸提料液比1:30(g/mL)、浸提溫度40℃、浸提時間14h。在該工藝條件下,綠原酸的最高產(chǎn)率可達到0.142%。綠原酸提取液對志賀氏痢疾桿菌和金黃色葡萄球菌具有明顯的抗菌活性,表明民間所用的木瓜白酒浸泡液的主要藥理活性成分可能為綠原酸。

      光皮木瓜;綠原酸;提取優(yōu)化;抗菌活性;志賀氏痢疾桿菌;金黃色葡萄球菌

      綠原酸(chlorogenic acid)是許多食用植物及藥用植物中抗菌消炎、清熱解毒的重要活性成分[1-4],有研究認為,綠原酸是很有希望的抗艾滋病毒(HIV)的先導(dǎo)化合物[5],它具有清除自由基[6-7]、抗脂質(zhì)過氧化[8]和抗菌抗病毒等作用[9-10]。國內(nèi)外一些學(xué)者從植物中提取多酚(綠原酸作為多酚中的一個組分),并考察了綠原酸的活性[11-12]。然而,很少有人從資源豐富的木瓜中提取綠原酸并研究其活性。木瓜為薔薇科植物貼梗海棠[Chaenomeles speciosa (Sweet) Nakai]的成熟果實,有平肝和胃、去濕舒筋的功效,常用于治療腰酸腿痛、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、四肢轉(zhuǎn)筋、吐瀉等癥[13-14]。在民間醫(yī)術(shù)中,木瓜常用水或酒精浸泡,飲用后可以治腹瀉和腫脹。木瓜在我國廣泛種植,為我國特有古老果樹之一,而且產(chǎn)量極大,僅云南省木瓜年產(chǎn)量就達5×106kg,現(xiàn)在山東、河南、陜西、安徽、江蘇、湖北、四川、浙江、江西、廣東、廣西等省(區(qū))都有栽培。本實驗基于我國豐富的木瓜資源,研究光皮木瓜中綠原酸的甲醇提取法及其最佳工藝,并根據(jù)民間用木瓜白酒浸泡液治療腹瀉和腫脹,初步考察綠原酸對志賀氏痢疾桿菌及金黃色葡萄球菌的抗菌活性。

      1 材料與方法

      1.1 材料、試劑與儀器

      鮮光皮木瓜(干燥后制成粉狀),采于西北農(nóng)林科技大學(xué);綠原酸標準品 中國藥品生物制品檢定所;金黃色葡萄球菌CVM14、志賀氏桿菌CMCC56由西北農(nóng)林科技大學(xué)食品微生物安全試驗室楊保偉博士恵贈。

      甲醇(分析純);正己烷、氯仿(均為分析純);蒸餾水;甲醇(色譜純) 美國Fisher公司。

      MP200B電子天平 上海精科天平儀器廠;電熱恒溫水浴鍋 楊凌天成公司;SHB-III循環(huán)水式多用真空泵鄭州長城科工貿(mào)有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 瑞士Buchi公司;PK121R離心機 意大利ALC公司;UV mini 1240紫外分光光度計和Lc2010型高壓液相色譜儀 日本Shimadzu公司;PL202-S精密電子天平 瑞士梅特勒-托利多公司;CNP-9080隔水式恒溫培養(yǎng)箱 上海精宏實驗設(shè)備有限責(zé)任公司;ClassⅡ生物安全柜 美國 Nuaire公司。

      1.2 木瓜中綠原酸的甲醇提取工藝以及工藝優(yōu)化方法

      1.2.1 提取工藝

      工藝流程:200g干燥的木瓜片→粉碎成粉狀(60目過篩)→加入甲醇浸提(2000mL)→抽濾→旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)(60℃旋轉(zhuǎn)至100mL)→冷凍干燥得51.3g固體→取7g加入150mL蒸餾水充分溶解→加入100mL正己烷萃取→加入100mL氯仿→濾紙過濾→通過0.22μm水系濾膜過濾→獲得濾液80mL→旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)(60℃旋轉(zhuǎn)至50mL)→冷凍干燥得2.0g綠原酸粗品。

      檢測步驟:取2.0g綠原酸粗品和綠原酸標準品0.020g分別于100mL的容量瓶中用蒸餾水溶解并定溶,即得到樣品液和0.2g/L綠原酸標準溶液。標準液稀釋10倍后為0.02g/L的綠原酸標準溶液。樣品液和0.02g/L標準溶液分別通過0.45μm水系濾膜過濾,分別上高壓液相色譜儀進行檢測。流動相為甲醇-水(3:7,V/V),流速0.8mL/min,紫外檢測器檢測波長設(shè)定為329nm,用Dikma HPLC反相C18柱(250mm×46mm,5μm)分離,確證提取液中是否含有綠原酸。

      1.2.2 光皮木瓜綠原酸提取的單因素試驗

      采用1.2.1節(jié)提取工藝,用紫外-可見分光光度計檢測綠原酸含量。

      1.2.2.1 甲醇溶液的選擇

      精確稱取5.00g木瓜粉,分別用體積分數(shù)50%、70%、90%、100%甲醇溶液100mL作為浸提劑, 40℃水浴浸提12h。按照1.2.2節(jié)方法進行操作。

      1.2.2.2 浸提時間的選擇

      精確稱取5.00g木瓜粉,用100mL 70%甲醇溶液作為浸提劑,分別在40℃水浴下浸提8、12、24、36h,按照1.2.2節(jié)方法進行操作。

      1.2.2.3 浸提溫度的選擇

      精確稱取5.00g木瓜粉,用100mL 70%甲醇溶液作為浸提劑,分別在30、40、50、60℃水浴下浸提12h,按照1.2.2節(jié)方法進行操作。

      1.2.2.4 料液比的選擇

      按照浸提料液比為1:10、1:20、1:30、1:40(g/mL)精確稱取10.00、5.00、3.33、2.50g木瓜粉,用100mL 70%甲醇溶液作為浸提劑,在40℃水浴下浸提12h,按照1.2.2節(jié)方法進行操作。

      1.2.3 木瓜中綠原酸的甲醇提取法正交試驗

      將甲醇溶液體積分數(shù)、浸提時間、浸提溫度、浸提料液比4個因素,分別設(shè)計3個不同水平,選擇L9(34)正交試驗表(表1),按照1.2.2節(jié)方法進行試驗。

      表1 甲醇提取法提取木瓜中綠原酸因素水平表Table 1 Factors and levels for extracting chlorogenic acid from Chaenomeles sinensis Koehne

      1.2.4 正交試驗預(yù)期最佳組合驗證實驗

      從正交試驗中得到的最佳組合如果沒有在正交試驗表中,則進行驗證實驗。

      1.2.5 光皮木瓜甲醇提取物中綠原酸的檢測

      粗提物中綠原酸的確證采用HPLC方法檢測,后續(xù)結(jié)果均采用紫外分光光度計法檢測。

      1.2.5.1 綠原酸標準品紫外分光光度法檢測波長的掃描

      精確稱取綠原酸標準品0.020g,用無水甲醇溶解,定容于100mL容量瓶中,在紫外分光光度計上從310~400nm對標準溶液進行波長掃描,獲得標準品稀釋液的紫外吸收光譜曲線。

      1.2.5.2 綠原酸標準品標準曲線的制作

      精確稱取綠原酸標準品20mg,用100mL無水甲醇溶解配制為200μg/mL的綠原酸標準溶液,吸取一定體積的200μg/mL綠原酸標準溶液分別制作成質(zhì)量濃度1.0、3.0、5.0、7.0、10.0、15.0、20.0、25.0、30.0μg/mL的梯度溶液,用無水甲醇作參比液,在紫外分光光度計上于329nm波長處分別測量各自的吸光度,繪制標準曲線。

      1.2.6 光皮木瓜綠原酸提取產(chǎn)率的計算

      將木瓜綠原酸提取樣品溶液稀釋100倍,分別于329nm處檢測其吸光度,根據(jù)其吸光度在標準曲線上查得綠原酸含量。所有實驗平行3次,數(shù)值為3次實驗平均值。光皮木瓜綠原酸提取產(chǎn)率按下式計算:

      式中:V為稀釋100倍濾液中綠原酸的含量/(μg/mL);C為過濾后的體積/mL;m為木瓜粉的質(zhì)量/g。

      1.2.7 抗菌活性實驗

      使用瓊脂擴散法進行抗菌實驗[16]。細菌細胞菌懸液經(jīng)24h培養(yǎng)將濃度調(diào)整到1×108CFU/mL。將滅菌營養(yǎng)瓊脂倒入滅菌平板中,待瓊脂凝固后以每20mL瓊脂加200μL細菌菌懸液的比例加入調(diào)整好濃度的細菌菌懸液,并使其分布均勻。用滅菌的打孔器在平板中均勻地打孔。在孔穴中或不銹鋼圈中加入70μL綠原酸提取液,用與綠原酸提取液相同濃度的青霉素作為陽性對照,用空白樣做陰性對照。每個實驗重復(fù)1次。

      1.2.8 數(shù)據(jù)處理

      所有數(shù)據(jù)采用DPS數(shù)據(jù)處理軟件(V2.000)處理和分析(α=0.01)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 綠原酸最大吸收波長的掃描

      圖1 2μg/mL綠原酸標準品溶液(無水甲醇作為溶劑)的紫外光譜掃描圖譜Fig.1 Ultraviolet absorption spectrum of chlorogenic acid standard solution (2μg/mL in anhydrous methanol)

      實驗發(fā)現(xiàn)以200μg/mL綠原酸標準溶液稀釋100倍(2 μg/mL)后的掃描圖譜最好。即從圖1可看出,綠原酸的最大吸收峰都在329nm(峰4),即選取329nm為HPLC和紫外分光光度法檢測綠原酸的檢測光波長。

      2.2 光皮木瓜甲醇粗提物中綠原酸的HPLC檢測結(jié)果

      由圖2可以看出,木瓜綠原酸提取純化液的HPLC圖譜中峰2與綠原酸標品溶液的峰1重合,而且綠原酸是提取物中的一個主要成分。

      圖2 綠原酸樣品液和0.02g/L綠原酸標品溶液HPLC圖譜的比對Fig.2 HPLC chromatograms chlorogenic acid sample solution and 0.02 g/L of chlorogenic acid standard solution

      2.3 綠原酸標準品標準曲線

      用200μg/mL的綠原酸標準液溶液制作質(zhì)量濃度分別為0.0、1.0、3.0、5.0、7.0、10.0、15.0、20.0、25.0、30.0μg/mL的溶液,利用紫外分光光度計在329nm波長處測出各自的吸光度繪制出標準曲線如圖3所示:y = 0.0562x-0.009(R2= 0.9992)。

      圖3 綠原酸標準品溶液(無水甲醇作為溶劑)的標準曲線Fig.3 Standard curve of chlorogenic acid standard solution (anhydrous methanol as solvent)

      2.4 木瓜中綠原酸的甲醇提取法單因素試驗

      2.4.1 甲醇溶液(浸提劑)體積分數(shù)對綠原酸產(chǎn)率的影響

      圖4 不同甲醇溶液(浸提劑)中甲醇體積分數(shù)對綠原酸產(chǎn)率的影響Fig.4 Effect of ethanol concentration on the yield of chlorogenic acid

      從圖4可以看出,用甲醇溶液作為浸提劑時甲醇體積分數(shù)分別是50%、70%、90%時,綠原酸產(chǎn)率呈逐漸上升趨勢,當(dāng)90%甲醇作提取溶劑時綠原酸產(chǎn)率達到最大,甲醇體積分數(shù)為90%~100%時綠原酸產(chǎn)率迅速減小。方差分析顯示在1%差異水平下,90%甲醇作為浸提溶劑時與100%甲醇作為浸提溶劑時綠原酸產(chǎn)率的差異是極顯著的,說明甲醇體積分數(shù)在70%~90%之間為提取綠原酸的最佳區(qū)域。所以做正交試驗時甲醇體積分數(shù)的3個水平分別選取為80%、85%、90%。

      2.4.2 浸提時間對綠原酸提取的影響

      圖5 浸提時間對綠原酸產(chǎn)率的影響Fig.5 Effect of extraction time on the yield of chlorogenic acid

      從圖5可看出,浸提時間從8~12h綠原酸產(chǎn)率迅速提高,12h達到最高,12h后開始逐漸降低,24h次之,36h綠原酸產(chǎn)率最低。方差分析顯示,在1%差異水平下,8h浸提的產(chǎn)率與其他各水平的產(chǎn)率呈極顯著性差異。浸提時間12、24h和36h各水平之間,綠原酸產(chǎn)率的差異都是極不顯著的。從提高綠原酸的效率角度考慮,選取正交試驗該因素的不同水平選在12h左右為宜。故做正交試驗時,浸提時間這個因素的3個水平分別選取為10、12、14h。

      2.4.3 浸提溫度對綠原酸產(chǎn)率的影響

      圖6 浸提溫度對綠原酸產(chǎn)率的影響Fig.6 Effect of extraction temperatures on the yield of chlorogenic acid

      從圖6可看出,浸提溫度分別設(shè)定為30、40、50、60℃時,綠原酸產(chǎn)率呈現(xiàn)先增高后減小趨勢。30℃到40℃為上升階段,40℃時最大,從40℃到50℃迅速降低,而50℃到60℃緩慢下降。說明在40℃以下時隨溫度的增加產(chǎn)率增加,但當(dāng)溫度超過40℃時,溫度再升高產(chǎn)率不僅沒有增加,反而導(dǎo)致產(chǎn)率下降,這與時間因素的現(xiàn)象一致。方差分析顯示,在1%差異水平下,50℃和60℃與40℃和30℃水平之間綠原酸產(chǎn)率的差異都極顯著。因此為了提高提取綠原酸的效率,在40℃左右為最佳,所以正交試驗時浸提溫度的3個水平分別選取35、40、45℃。

      2.4.4 料液比對綠原酸產(chǎn)率的影響

      圖7 液料比對綠原酸產(chǎn)率的影響Fig.7 Effect of liquid-to-solid ratio on the yield of chlorogenic acid

      從圖7可看出,料液比從1:10減小到1:20時綠原酸產(chǎn)率迅速增加,料液比從1:20減小到1:30時其產(chǎn)率緩慢增加,料液比在1:30到1:40時其產(chǎn)率緩慢下降。說明當(dāng)料液比達到一定的比例但卻未達到飽和綠原酸溶解度時,綠原酸的產(chǎn)率隨料液比的減小而增大,料液比在1:30和1:40之間可能是綠原酸在木瓜粉細胞內(nèi)外的溶解平衡區(qū)。方差分析顯示,在1%差異水平下,料液比1:30、1:40、1:20各水平間的綠原酸產(chǎn)率的差異是極不顯著的;料液比1:10與其他各水平之間的綠原酸產(chǎn)率的差異都是很顯著的。因此為了提高提取綠原酸的效率、節(jié)省提取劑,做正交試驗時料液比的3個水平分別選取為1:25、1:30、1:35。

      2.5 木瓜中綠原酸的甲醇提取法正交試驗

      2.5.1 木瓜中綠原酸甲醇提取法正交試驗極差分析

      表2 甲醇提取木瓜中綠原酸產(chǎn)率L9(34)正交試驗設(shè)計及結(jié)果Table 2 Results and analysis of the orthogonal test

      由表2中各因素極差R值可知,影響木瓜中綠原酸產(chǎn)率的因素主次順序為:C>B>A>D,即浸提料液比>甲醇體積分數(shù)>浸提時間>浸提溫度。由正交試驗極差分析還可知,其最佳組合條件為A3B2C2D2,即浸提時間14h、甲醇體積分數(shù)85%、浸提料液比1:30、浸提溫度40℃。

      2.5.2 木瓜中綠原酸甲醇提取法正交試驗方差分析

      對木瓜中綠原酸提取正交試驗的方差分析結(jié)果,采用新復(fù)極差法進行方差分析(表3)。

      表3 甲醇提取木瓜中綠原酸產(chǎn)率正交試驗方差分析結(jié)果Table 3 Analysis of variance

      表3以D因素(影響最小)來估計其他各因素的F值,從表3結(jié)果可看出,其他因素F值均小于Fα,即4個因素影響都不顯著,這說明各因素水平取值在最佳范圍。從表3還可以看出,影響木瓜中綠原酸產(chǎn)率因素主次順序為C>B>A,即浸提料液比>甲醇體積分數(shù)>浸提時間,這與2.5.1節(jié)中的極差分析結(jié)果相一致。

      2.5.3 預(yù)期最佳組合的驗證實驗結(jié)果

      由于最佳組合試驗并沒有在正交表中,所以按照最佳的試驗組合A3B2C2D2進行驗證實驗,結(jié)果所測得的產(chǎn)率為(0.142±0.006)%,高于正交試驗9個試驗組合中任一個產(chǎn)率值,說明正交試驗結(jié)果可靠。

      2.5.4 抗菌活性檢測結(jié)果

      經(jīng)初步純化的綠原酸樣品液對金黃色葡萄球菌的抗菌試驗結(jié)果如圖8A所示,對志賀氏痢疾桿菌的抗菌試驗結(jié)果如圖8B所示。

      從圖8A可以看出,綠原酸樣品液對金黃色葡萄球菌具有明顯的抗菌活性,而且隨劑量的增大抗性增強。當(dāng)綠原酸質(zhì)量濃度從0.49×10-3g/mL增大到0.71×10-3g/mL時,抑菌圈從(12.0±0.3)mm增大到(16.2±0.2)mm。從圖8B可以看出,綠原酸樣品液對志賀氏痢疾桿菌也具有明顯的抗菌活性,當(dāng)綠原酸質(zhì)量濃度為0.49×10-3g/ mL時,抑菌圈直徑為(12.3±0.1)mm,表現(xiàn)出對志賀氏痢疾桿菌與對金黃色葡萄球菌相當(dāng)?shù)目剐?。這個結(jié)果表明,民間使用木瓜白酒浸泡液對冶療腹瀉和腫脹的機理是因為其中含有主要活性成分綠原酸。面對當(dāng)前病原菌對抗生素類藥物產(chǎn)生了普遍的耐藥性[15-16],利用我國豐富的木瓜資源開發(fā)出抗菌新藥,這無疑具有廣闊的前景。

      圖8 綠原酸樣品液的抗菌活性檢測結(jié)果Fig.8 Antibacterial activities of chlorogenic acid sample solution against Staphylococcus aureus and Shigella dysenteria

      3 結(jié) 論

      3.1 本實驗首次從光皮木瓜中提取出綠原酸,通過數(shù)據(jù)分析可知,甲醇提取法在試驗范圍內(nèi)各因素對綠原酸產(chǎn)率影響作用的大小依次為浸提料液比>甲醇體積分數(shù)>浸提時間>浸提溫度。

      3.2 甲醇提取法提取木瓜中綠原酸的最佳工藝參數(shù)是:以體積分數(shù)85%甲醇溶液為浸提溶劑,以浸提料液比1:30(g/mL)在40℃浸提14h后得到綠原酸的最高產(chǎn)率為0.142%。

      3.3 綠原酸樣品液對引起炎癥的金黃色葡萄球菌和對引起腹瀉的志賀氏痢疾桿菌具有明顯的抗性。該結(jié)果表明民間木瓜白酒浸泡液的主要藥理活性成分為綠原酸。

      [1]VIVIANE M, ADRIANA F. Chlorogenic acids and related compounds in medicinal plants and infusions[J]. Food Chemistry, 2009, 113: 1370-1376.

      [2]ZHANG Lunyi, COSMA G, GARDNER H, et al. Effect of chlorogenic acid on hydroxyl radical[J]. Mol Cell Biochem 2003, 247: 205-210.

      [3]NARDINI M, CIRILLO E, NATELLA F, et al. Absorption of phenolic acids in humans after coffee consumption[J]. J Agric Food Chem, 2002, 50: 5735-5741.

      [4]ZHAO Zhaohui, SHIN HS, SATSU H, et al. 5-Caffeoylquinic acid and caffeic acid down-regulate the oxidative stress- and TNF-α-induced secretion of interleukin-8 from Caco-2 cells[J]. J Agric Food Chem, 2008, 56: 3863-3868.

      [5]YANG B, MENG Z Y, YAN L P, et al. Pharmacokinetics and metabolism of 1,5-dicaffeoylquinic acid in rats following a single intravenous administration[J]. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2006, 40: 417-422.

      [6]FEDERICA P, STEFANIA B, LARA M, et al. Analysis of phenolic compounds and radical scavenging activity of Echinacea spp.[J]. Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2004, 35: 289-301.

      [7]DONATA B, MICHAEL M, WERNER P, et al. Detection and activity evaluation of radical scavenging compounds by using DPPH free radical and on-line HPLC-DPPH methods[J]. Eur Food Res Technol, 2002, 214: 143-147.

      [8]LI Shuyuan, CHANG Cuiqing, MA Fuying, et al. Modulating effects of chlorogenic acid on lipids and glucose metabolism and expression of hepatic peroxisome proliferator-activated receptor-α in golden hamsters fed on high fat diet[J]. Biomedical and Environmental Sciences, 2009, 22: 122-129.

      [9]FARAH A, DONANGELO C M. Phenolic compounds in coffee[J]. Brazilian Journal of Plant Physiology, 2006, 18: 23-36.

      [10]WANG Guifeng, SHI Liping, REN Yudan, et al. Anti-hepatitis B virus activity of chlorogenic acid, quinic acid and caffeic acid in vivo and in vitro[J]. Antiviral Research, 2009, 83: 186-190.

      [11]CLIFFORD W B, MAMDOUH M A, ADRIENNE L E K, et al. A flavanone and two phenolic acids from Chrysanthemum morifolium with phytotoxic and insect growth regulating activity[J]. Journal of Chemical Ecology, 2004, 30(3): 589-606.

      [12]TRAN M H, MINKYUN N, PHUONG T T, et al. Antioxidant activity of caffeoyl quinic acid derivatives from the roots of Dipsacus asper Wall [J]. Journal of Ethnopharmacology, 2006, 108: 188-192.

      [13]李瓊, 劉樂全, 徐懷德, 等. 光皮木瓜中有機酸成分研究[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2008, 17(1): 207-210.

      [14]張冬松, 高慧媛, 吳立軍. 光皮木瓜的化學(xué)成分藥理活性及臨床研究進展[J]. 沈陽藥科大學(xué)學(xué)報, 2007, 24(11): 721-726.

      [15]RUUD H D, ELLEN E S. The evolution of Staphylococcus aureus[J]. Infection, Genetics and Evolution, 2008, 8: 747-763.

      [16]RAYMOND B, MARIE D, CARLOS R, et al. Molecular epidemiology of multidrug-resistant Shigella dysenteriae type 1 causing dysentery outbreaks in Central African Republic, 2003-2004[J]. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 2006, 100: 1151-1158.

      Extraction of Chlorogenic Acid from Fruit of Chaenomeles sinensis Koehne and Evaluation of Its Antibacterial Activity

      HU Zhong-qiu,HONG Xiao-di,YUE Tian-li
      (College of Food Science and Engineering, Northwest A&F University, Yangling 712100, China)

      Chlorogenic acid was extracted from the fruit of Chaenomeles sinensis Koehne using methanol as solvent. Effects of four extraction variables (methanol concentration, extraction temperature, solid/liquid ratio and extraction time) on yield of chlorogenic acid were investigated by conducting single factor test. Subsequently, a L9(34) orthogonal test was employed to optimize the extraction conditions. In the following, the anti-Shigella dysenteriae and Staphylococcus aureus activities were evaluated by using inhibition zone test. Results showed the optimum extractions conditions were as follows: aqueous methanol concentration 85%, the solid/liquid ratio 1:30 (C. sinensis Koehne powder(g)/aqueous methanol (mL)), extraction at 40 ℃ for 14 hours. Under the optimum conditions, the yield of chlorogenic acid were 0.142%. The antibacterial activity of chlorogenic acid samples against S. dysenteriae and S. aureus was significant. It indicated that chlorogenic acid may be a main pharmacological compound of a folk medicine of white spirit soaked with C. sinensis Koehne.

      Chaenomeles sinensis Koehne;chlorogenic acid;extraction and optimization;antibacterial activity;Shigella dysenteriae;Staphylococcus aureus.

      S646

      A

      1002-6630(2010)24-0008-06

      2010-02-06

      “十一五”國家科技支撐計劃項目(2006BAK02A24)

      *通信作者:胡仲秋(1969—),男,講師,博士,研究方向為天然產(chǎn)物提取。E-mail:hutiger-2005@126.com

      猜你喜歡
      光皮甲醇溶液木瓜
      儲罐防腐涂料在不同含水率甲醇中的性能研究
      同叫“木瓜”,功效不同
      木瓜老奶奶的云
      木瓜老奶奶的云
      光皮木瓜與木瓜的鑒別研究
      植物幫之木瓜
      甲醇對溶液酸堿性的影響研究
      甲酯化方法對番茄、哈密瓜、葡萄和石榴四種籽油脂肪酸組成分析的影響
      高效液相色譜儀蒸發(fā)光散射檢測器校準用標準物質(zhì)的選擇
      光皮樹果實內(nèi)含物含量的測定與綜合利用
      武宣县| 凉城县| 湖州市| 临江市| 阿尔山市| 礼泉县| 来安县| 元江| 安国市| 华容县| 西城区| 龙泉市| 三台县| 花莲市| 宝山区| 邵阳县| 通渭县| 建德市| 汉寿县| 黄石市| 苍溪县| 乐业县| 环江| 平陆县| 富裕县| 诸城市| 封丘县| 宾阳县| 霍山县| 东丽区| 肃宁县| 定州市| 庄浪县| 夏河县| 苗栗县| 沙河市| 河北省| 巴东县| 南安市| 若尔盖县| 菏泽市|